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实时荧光定量PCR原理与分析方法实时荧光定量PCR（qPCR）是一种基于PCR技术的DNA定量方法，可以在实时反应过程中实时监测PCR产物的累积情况。
与传统的终点PCR相比，qPCR具有更高的灵敏度和准确性，可以定量检测非常低浓度的目标DNA。
实时荧光定量PCR的原理是利用荧光染料与PCR产物结合发出荧光信号，通过监测荧光信号的强度来测定PCR产物的数量。
qPCR有两种常用的检测方法：SYBR Green I染料法和探针法（如TaqMan探针法）。
SYBR Green I染料法是一种简单而常用的qPCR检测方法。
SYBR Green I是一种DNA结合荧光染料，在PCR反应过程中会与PCR产物的DNA结合，从而产生荧光信号。
这种方法的优点是简便、经济，但缺点是非特异性，可能产生假阳性结果。
探针法是一种更为特异和准确的定量PCR方法。
在这种方法中，需要设计一对特异性引物和一个包含荧光探针的引物。
在PCR反应过程中，引物与目标DNA特异性结合，探针结合在引物的靶区上，当PCR反应进行到延伸阶段时，Taq聚合酶会切割探针上的荧光标记，导致断裂，这样就分离出信号的发射荧光信号。
探针法具有高特异性和准确性，能够避免假阳性结果。
无论是SYBR Green I染料法还是探针法，实时荧光定量PCR的分析方法都是通过构建标准曲线并计算目标DNA的模板数量来定量分析样品中的目标物质。
首先，需要用已知浓度的目标DNA制备标准品，根据不同浓度标准品的CT值（荧光信号阈值）绘制标准曲线。
然后，将样品DNA与引物一起进行PCR扩增反应，监测荧光信号强度并记录CT值。
利用标准曲线可以计算出样品中目标物质的浓度。
实时荧光定量PCR技术详解和总结
一、什么是实时荧光定量PCR
实时荧光定量PCR（Real-Time Quantitative Polymerase Chain Reaction，简称RT-qPCR）是一种PCR扩增技术，具有灵敏度高、重复性好等特点，可以在实时监测PCR扩增过程中特定片段DNA的产生。
它可以用来检测细胞中其中一特定基因mRNA的表达水平，从而揭示基因活动和表达情况，同时用于特定基因检测，如非病毒性疾病的病原检测以及芯片高通量分析等。
二、实时荧光定量PCR的基本原理
实时荧光定量PCR其基本原理就是利用PCR技术，在特定温度、适当时间内，将少量的模板 DNA 放大成数十亿倍以上。
实时荧光定量PCR的一大特点就是，它能够在实时监测PCR的扩增过程中，随时得知扩增物（amplicon）的数量。
根据扩增的量，从而确定所检测样本中的特定片段DNA的数量，即“定量”。
实时荧光定量PCR可实现定量检测，是因为它引入了一种特殊的参考基因，即“内参基因”，其用来抵消PCR条件、酶种类、反应液等的影响，从而测定量结果的准确性。
三、实时荧光定量PCR的实验步骤
（一）模板提取和核酸纯化：根据实验材料，提取DNA或RNA模板，进行核酸纯化，获得纯度较高的核酸。
（二）制备PCR反应液：制备由dNTPs、PCR酶、聚合酶等试剂组成的PCR反应液，根据所要检测的基因。
实时荧光定量PCR（RT-qPCR）完全手册所谓的实时荧光定量PCR就是通过对PCR 扩增反应中每一个循环产物荧光信号的实时检测从而实现对起始模板定量及定性的分析。
RT-qPCR是由三个步骤组成 RT-qRCR影响分析可靠性关键点(Key porint)关键词：荧光实时实时荧光定量PCRRT-qPCRRT-PCR反转录定量PCRQRT-PCR方法简介所谓的实时荧光定量PCR就是通过对PCR 扩增反应中每一个循环产物荧光信号的实时检测从而实现对起始模板定量及定性的分析。
在实时荧光定量PCR反应中，引入了一种荧光化学物质，随着PCR 反应的进行，PCR 反应产物不断累计，荧光信号强度也等比例增加。
每经过一个循环，收集一个荧光强度信号，这样我们就可以通过荧光强度变化监测产物量的变化，从而得到一条荧光扩增曲线。
RT-qPCR是由三个步骤组成:1.反转录:依赖反转录酶将RNA反转录成cDNDA;2. 扩增:用PCR的方法扩增cDNA;3.检测:实时检测和定量扩增的产物.RT-qRCR影响分析可靠性关键点(Key porint):1.分析结果依赖于模板的数量、质量以及合理的检测方法设计2.反转录反应的非标准化影响试验的稳定性3.数据分析应该高度客观，如果不合理的分析，从分析结果中会得到混淆的错误结果，因此通过对RT-qPCR的每一组分进行质量评价以达到最小化变异性，最大化可重复性，而且还需要沿用一个通用的数据分析的指南。
对基因表达分析的标准化的需要是与人类临床诊断分析相适应的。
存在的问题由于各个学术团体和科研机构使用不同的操作流程，必然导致大家使用不同定量的来源物以及数据分析：1.新鲜、冰冻、甲醛固定的样品2.整个组织样本，显微切割样本，单个细胞，组培细胞3.总RNA或者mRNA4.RNA反转录成cDNA的不同的引发策略5.不同的酶以及酶的不同组合6.变异系数、灵敏度7. 多类型的检测化学方法，反应的条件，热循环仪的分析以及汇报方式。
实时荧光定量PCR的原理及应用1. 简介实时荧光定量PCR（Real-time quantitative polymerase chain reaction，简称qPCR）是一种强大的分子生物学技术，能够在同一反应体系中完成DNA扩增和定量，具有高灵敏度、高特异性和高精确性的优势。
本文将介绍实时荧光定量PCR 的原理和应用。
2. 原理实时荧光定量PCR基于传统PCR技术的基础上，引入荧光染料或探针来实时监测PCR反应过程中产生的增量扩增DNA量。
其原理如下：1.DNA模板的变性：通过加热将DNA模板的双链DNA变性成两个单链。
2.引物结合：待扩增的特定DNA序列的引物（Forward primer和Reverse primer）与模板DNA的互补序列结合。
3.DNA聚合酶扩增：DNA聚合酶沿着模板DNA链酶解附近的单链DNA，并将新的DNA链合成。
4.荧光信号监测：引入特定的荧光染料（如SYBR Green）或探针（如TaqMan探针），实时监测PCR反应体系中DNA扩增量的变化。
5.数据分析：使用特定的PCR仪器记录和分析荧光信号，根据荧光信号的变化量确定目标DNA序列的起始量。
3. 应用实时荧光定量PCR技术在许多领域中有广泛的应用，主要包括以下方面：3.1 疾病诊断与检测实时荧光定量PCR可以用于快速检测和诊断各种疾病，例如：•新型冠状病毒（COVID-19）检测•癌症标志物的检测•细菌和病毒感染的检测•遗传性疾病的检测3.2 基因表达分析实时荧光定量PCR可以用于研究基因的表达水平，包括：•基因表达差异分析•基因调控网络的研究•基因表达谱的分析•转录因子的研究3.3 环境监测实时荧光定量PCR可以应用于环境监测领域，用于检测和量化环境中的微生物和污染物，例如：•水质监测中细菌和病毒的检测•土壤中污染物降解菌的鉴定和定量•空气中微生物的检测3.4 遗传学研究实时荧光定量PCR在遗传学研究中也有广泛的应用，包括：•DNA定量和质量检测•突变检测和鉴定•群体遗传学分析•基因组学研究4. 总结实时荧光定量PCR技术是一种准确、高效、灵敏的分子生物学技术，广泛应用于医学、生物学、环境科学和农业等领域。
⼀⽂看懂：荧光定量PCR的原理、⽅法及结果分析⾃从1983年K. Mullis发明聚合酶链式反应(Polymerase chain reaction，PCR)以来，PCR技术很快成为科研、临床诊断的热点技术。
⽽实时荧光定量PCR技术，顾名思义，就是在PCR的基础上加⼊荧光基团，通过荧光信号的变化的实时监测PCR的反应过程，最后通过对未知模板进⾏定量分析的⽅法。
⽬前，实时荧光定量 PCR 已成为不同样品间进⾏基因表达⽔平定量差异⽐较的权威性⽅法。
在过去⼗⼏年中，该⽅法迅速流⾏，涉及科学的多个领域，包括农业、环境、⼯业和医学研究。
实时荧光定量PCR的应⽤⽬前，qPCR技术已经⼴泛应⽤于⽣物医药⾷品等⾏业，应⽤于疾病的早期诊断、遗传病的早期诊断、药物研究、肿瘤的诊断与研究、⾷品病原微⽣物的检测、转基因⾷品检测、动物疫病检测等，除此之外，还包括：●基因扩增●扩增特异性分析●基因定量分析●基因检测●基因分型● SNP分析● RFLP多态性分析●单/多基因表达研究●⾼通量基因表达谱研究……实时荧光定量PCR的常⽤⽅法 染料法荧光染料可与双链DNA结合，每个循环的延伸阶段，染料掺⼊双链DNA中，其荧光信号强度与PCR产物的数量呈正相关。
同时，其缺点也在于其⾮特异性。
当PCR反应中有引物⼆聚体或者⾮特异性扩增时，该染料也可以和这些⾮特异性扩增产物结合，发出荧光，从⽽⼲扰对特异性产物的准确定量。
常⽤的染料为SYBR Green I，各公司针对荧光信号强度、抑制作⽤等进⾏改进，也推出了很多新的染料供⼤家选择。
Promega采⽤新型荧光染料BRYT Green® Dye，对qPCR反应没有抑制作⽤，与双链DNA结合后荧光信号更强.探针法在PCR扩增时加⼊⼀对引物的同时加⼊⼀个特异性的荧光探针，该探针为⼀寡核苷酸：5’端标记⼀个报告荧光基团，3’端标记⼀个淬灭荧光基团。
探针完整时，报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩增时，Taq酶的5'-3'外切酶活性将探针酶切降解，使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离，从⽽荧光监测系统可接收到荧光信号。
实时荧光定量PCR全方位解析实时荧光定量PCR技术于1996年由美国Applied Biosystems公司推出，所谓实时荧光定量PCR技术，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
PCR原理所谓实时荧光定量PCR技术，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
1. Ct 值的定义在荧光定量PCR技术中，有一个很重要的概念-- Ct值。
C代表Cycle，t代表threshold，Ct值的含义是：每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数。
2. 荧光域值（threshold）的设定PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号，荧光域值的缺省设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍，即：threshold = 10 ′ SDcycle 6-15 3. Ct值与起始模板的关系研究表明，每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系〔1〕，起始拷贝数越多，Ct值越小。
利用已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线，其中横坐标代表起始拷贝数的对数，纵坐标代Ct值。
因此，只要获得未知样品的Ct值，即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。
4. 荧光化学荧光定量PCR所使用的荧光化学可分为两种：荧光探针和荧光染料。
现将其原理简述如下：1）TaqMan荧光探针：PCR扩增时在加入一对引物的同时加入一个特异性的荧光探针，该探针为一寡核苷酸，两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。
探针完整时，报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收；PCR扩增时，Taq酶的5'－3'外切酶活性将探针酶切降解，使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离，从而荧光监测系统可接收到荧光信号，即每扩增一条DNA链，就有一个荧光分子形成，实现了荧光信号的累积与PCR产物形成完全同步。
实时荧光定量PCR技术详解和总结实时荧光定量PCR技术是一种用于测定DNA样本中特定序列的数量和表达水平的分子生物学技术。
它能够在PCR反应进行过程中实时监测PCR 产物的扩增情况，通过检测荧光信号的强度和PCR循环次数来确定起始模板的数量。
该技术具有高灵敏度、准确性和广泛的应用领域，被广泛用于基因表达分析、病原微生物的定量检测和分子诊断等领域。
在使用引物和探针系统进行实时荧光定量PCR时，引物通过与模板DNA序列的互补配对，在PCR扩增过程中结合并扩增目标序列，而探针是一种荧光标记的序列，通过与目标序列的特定区域配对来检测PCR产物的扩增。
当目标序列存在于DNA模板中时，引物与探针结合扩增会释放出荧光信号。
荧光信号的强度与PCR产物的数量成正比，通过监测荧光信号的强度和PCR循环数，可以推导出起始模板的数量。
SYBR Green是一种无标记引物的特殊荧光染料，可以与扩增产物的双链DNA结合并发出荧光信号。
在PCR扩增反应中，SYBR Green会通过与扩增产物结合形成复合物，并发出荧光信号。
由于SYBR Green能与任意DNA结合形成复合物，所以在使用SYBR Green进行实时荧光定量PCR 时，需要进行特异性验证和内参基因的设计，以确保准确测量目标序列的数量。
在实时荧光定量PCR技术中，还需要进行标准曲线法来定量PCR产物的数量。
标准曲线法是通过制备一系列已知浓度的标准DNA模板并进行PCR反应，测量荧光信号的强度和标准DNA模板的浓度之间的关系，建立一个标准曲线。
然后，通过测量待测样品PCR反应的荧光信号强度，根据标准曲线来计算待测样品中目标序列的起始模板数量。
总结来说，实时荧光定量PCR技术是一种高灵敏度、准确度和广泛应用的分子生物学技术，可以实时监测PCR反应中荧光信号的强度来确定PCR产物的数量。
它的基本原理包括使用引物和探针系统或SYBR Green 染料来检测PCR反应产物的扩增，并通过荧光信号强度和PCR循环数来推导起始模板的数量。
实时荧光定量pcr技术原理与应用实时荧光定量PCR技术原理与应用一、引言实时荧光定量PCR技术（Real-time quantitative PCR，qPCR）是一种基于荧光信号的PCR方法，可以实时监测PCR反应的进程。
相比传统的末端定量PCR方法，qPCR具有更高的灵敏性、准确性和可靠性。
本文将介绍qPCR的原理和应用。
二、原理qPCR利用荧光探针在PCR过程中发出的荧光信号来定量PCR产物的数量。
其原理基于PCR技术，但在反应过程中引入了荧光探针。
在PCR反应的扩增过程中，荧光探针与靶DNA序列特异性结合，通过荧光信号的增强来检测靶DNA的数量。
qPCR的主要荧光探针有两种：TaqMan探针和SYBR Green探针。
TaqMan探针是一种双标记探针，它包含一个荧光染料和一个荧光淬灭剂。
在PCR反应中，TaqMan探针与靶DNA序列结合后，酶的活性将荧光染料释放出来，产生荧光信号。
SYBR Green探针是一种非特异性结合荧光染料，其荧光信号与PCR产物的数量成正比。
三、应用1. 基因表达分析qPCR广泛应用于基因表达分析。
通过检测靶基因的mRNA水平，可以评估基因的表达情况。
qPCR可以检测低表达基因和高表达基因之间的差异，并对基因调控进行定量研究。
这对于研究基因功能、诊断疾病以及药物开发具有重要意义。
2. 病原体检测qPCR在病原体的检测和诊断中起着重要作用。
通过设计特异性引物和荧光探针，可以快速、准确地检测病原体的DNA或RNA。
例如，在临床诊断中，qPCR被广泛用于检测病毒、细菌、真菌等致病微生物。
3. 遗传疾病筛查qPCR也被用于遗传疾病的筛查。
通过检测患者的DNA样本，可以准确判断某些遗传疾病的患病风险。
例如，qPCR可以检测染色体异常、突变等遗传变异，为遗传咨询和疾病预防提供重要依据。
4. 肿瘤标记物检测qPCR在肿瘤标记物检测中也有广泛应用。
通过检测肿瘤相关基因的表达水平，可以评估肿瘤的发生和发展情况。
实时荧光定量pcr的基本原理宝子们！今天咱们来唠唠一个超酷的生物技术——实时荧光定量PCR。
这玩意儿听起来是不是有点高大上？其实呀，理解起来也没那么难啦。
PCR呢，全称是聚合酶链式反应，就像是一个基因复印机。
它能把咱们想要研究的那一小段基因，像复印机复印文件一样，不断地复制，让本来很少很少的基因变得多多的，这样咱们就好研究啦。
但是呢，普通的PCR只能告诉我们有没有这个基因，就像只知道有没有这个东西，却不知道有多少。
这时候，实时荧光定量PCR就闪亮登场啦。
实时荧光定量PCR的特别之处就在这个“荧光”和“定量”上。
咱先说说这个荧光。
想象一下，基因就像是一群小怪兽，而我们给它们身上都贴上了会发光的小标签。
这个小标签就是荧光染料或者荧光探针啦。
当PCR在复制基因的时候呢，每复制出一份新的基因，就会有一个小标签亮起来，就像小怪兽每繁殖一个就会亮起一盏小灯一样。
随着反应的进行，小灯越来越多，荧光也就越来越强啦。
那这个定量是咋回事呢？这就像是数小灯的个数来知道小怪兽有多少一样。
仪器会一直盯着这些荧光，然后根据荧光的强度来计算出最开始有多少个基因。
比如说，荧光强一点，那就说明最开始的基因数量多一些；荧光弱一点，那最开始的基因就少一些。
是不是很神奇呀？而且哦，这个实时荧光定量PCR可聪明啦。
它在反应的过程中就一直在检测荧光，不像普通的PCR要等反应结束了才知道结果。
这就好比我们做蛋糕，普通PCR是等蛋糕烤好了才知道烤得咋样，而实时荧光定量PCR呢，在烤蛋糕的过程中就一直在看，要是发现有点不对劲，马上就能调整。
这样就可以更准确地知道基因复制的情况啦。
在实际应用里，实时荧光定量PCR可帮了大忙呢。
比如说在医学上，要是怀疑一个人感染了某种病毒，就可以用这个技术来看看他身体里病毒的基因有多少。
如果病毒基因数量在增加，那就说明病毒在身体里还很活跃，得赶紧想办法治疗。
在科研上，研究人员想知道某个基因在不同环境下的表达情况，也可以用这个技术。
实时荧光定量PCR技术的原理与应用PCR技术是分子生物学中非常重要的分析手段，具有高效、灵敏、快速的特点。
而实时荧光定量PCR技术是PCR技术的一种重要应用，因其具有高精准、可靠性强的特点，在医学、生物工程等领域得到广泛应用。
本文将介绍实时荧光定量PCR技术的原理、优点和应用，以便更好地了解和应用该技术。
一、实时荧光定量PCR技术的原理实时荧光定量PCR技术是PCR技术进一步发展的产物，是一种可以对PCR扩增反应进行实时监测和测量的技术。
实时荧光定量PCR技术采用荧光探针来定量PCR扩增产物，具有高灵敏度、高精准度、自动化程度高等优点。
实时荧光定量PCR技术的基本原理是利用特殊荧光探针来定量PCR扩增产物。
荧光探针用于测量PCR扩增反应的进行程度，它具有独特的结构和物理性质。
荧光探针由两部分组成，一部分是荧光染料，另一部分是与染料相连的标记序列。
在PCR过程中，荧光探针与PCR扩增产物结合后，在DNA聚合酶的作用下，标记序列被切断，导致荧光染料释放出来，从而使荧光强度发生变化。
荧光强度的变化与PCR扩增产物量呈正比关系，样品产量越多，荧光信号越强，反之越弱。
二、实时荧光定量PCR技术的优点实时荧光定量PCR技术具有以下优点：1. 灵敏度高：实时荧光定量PCR技术可以检测极低数量的DNA分子，可以检测单个DNA分子。
2. 精准性高：实时荧光定量PCR技术可以精确测量PCR扩增产物的数量，可以避免使用传统的分析方法中存在的误差和测量误差。
3. 可靠性强：实时荧光定量PCR技术可以消除PCR扩增反应中的不确定性因素，减少用户操作的干扰，提高检测的可靠性和准确性。
4. 实时检测：实时荧光定量PCR技术可以在PCR扩增反应进行的同时，实时检测PCR扩增产物数量的变化情况，从而可以及时判断PCR反应的质量和结果。
三、实时荧光定量PCR技术的应用实时荧光定量PCR技术在医学、生物工程、农业等领域得到了广泛的应用。
实时荧光定量PCR技术详解及总结实时荧光定量PCR技术的原理是基于PCR扩增过程中的荧光信号变化。
在PCR过程中，当荧光标记的探针与待扩增模板的特定序列结合时，荧光信号增加。
通过实时监测PCR反应体系中荧光信号的强度变化，可以定量计算起始模板数量。
与传统PCR技术相比，实时荧光定量PCR技术具有更高的灵敏度和准确性。
实时荧光定量PCR技术在现代生物学研究中有广泛的应用。
首先，它被广泛应用于基因表达分析。
通过检测特定基因的mRNA水平，可以揭示基因在生物体内的表达情况及其调控机制。
其次，实时荧光定量PCR技术在病原微生物的检测和分析中也发挥了重要作用。
例如，可以利用实时荧光定量PCR技术检测病毒、细菌等病原微生物的存在，并确定其数量，这对于疾病的早期诊断和治疗具有重要意义。
此外，该技术还常用于遗传多态性的分析、基因突变的检测、DNA甲基化的检测等。
相对于传统PCR技术，实时荧光定量PCR技术具有多项优势。
首先，实时荧光定量PCR技术具有更高的灵敏度。
实时荧光定量PCR技术可以实时监测扩增反应的进程，不仅可以提供扩增过程中的荧光信号变化曲线，还可以精确计算起始模板数量，从而实现对少量模板的高灵敏度检测。
其次，实时荧光定量PCR技术具有更高的准确性。
实时荧光定量PCR技术通过测量荧光信号，可以排除PCR反应中的假阳性结果，并准确计算起始模板的数量，从而提高了实验结果的准确性。
此外，实时荧光定量PCR技术的操作流程简单、快速，并以其高通量特点被广泛应用于高通量筛查和生物信息学研究中。
总结而言，实时荧光定量PCR技术是一种重要的分子生物学技术，它通过结合PCR扩增和荧光探针技术，实时监测和定量DNA扩增过程中的荧光信号变化，以实现对目标DNA序列的高灵敏度、高准确性的定量分析。
该技术在基因表达分析、病原微生物检测、遗传多态性分析等领域具有广泛应用。
实时荧光定量PCR技术的发展和应用，为生物学研究和临床诊断提供了重要的工具和方法。
实时荧光定量PCR全方位解析实时荧光定量PCR技术于1996年由美国Applied Biosystems公司推出，所谓实时荧光定量PCR技术，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
PCR原理所谓实时荧光定量PCR技术，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。
1. Ct 值的定义在荧光定量PCR技术中，有一个很重要的概念-- Ct值。
C代表Cycle，t代表threshold，Ct值的含义是：每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数。
2. 荧光域值（threshold）的设定PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号，荧光域值的缺省设置是3-15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍，即：threshold = 10 ′ SDcycle 6-15 3. Ct值与起始模板的关系研究表明，每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系〔1〕，起始拷贝数越多，Ct值越小。
利用已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线，其中横坐标代表起始拷贝数的对数，纵坐标代Ct值。
因此，只要获得未知样品的Ct值，即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。
4. 荧光化学荧光定量PCR所使用的荧光化学可分为两种：荧光探针和荧光染料。
现将其原理简述如下：1）TaqMan荧光探针：PCR扩增时在加入一对引物的同时加入一个特异性的荧光探针，该探针为一寡核苷酸，两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。
探针完整时，报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收；PCR扩增时，Taq酶的5'－3'外切酶活性将探针酶切降解，使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离，从而荧光监测系统可接收到荧光信号，即每扩增一条DNA链，就有一个荧光分子形成，实现了荧光信号的累积与PCR产物形成完全同步。
而新型TaqMan-MGB探针使该技术既可进行基因定量分析，又可分析基因突变（SNP），有望成为基因诊断和个体化用药分析的首选技术平台。
2）SYBR荧光染料：在PCR反应体系中，加入过量SYBR荧光染料，SYBR荧光染料特异性地掺入DNA双链后，发射荧光信号，而不掺入链中的SYBR染料分子不会发射任何荧光信号，从而保证荧光信号的增加与PCR产物的增加完全同步。
操作过程一、样品RNA的抽提1. 取冻存已裂解的细胞，室温放置5分钟使其完全溶解。
2. 两相分离每1 ml的TRIZOL试剂裂解的样品中加入0.2 ml的氯仿，盖紧管盖。
手动剧烈振荡管体15秒后，15到30℃孵育2到3分钟。
4℃下12 000 rpm 离心15分钟。
离心后混合液体将分为下层的红色酚氯仿相，中间层以及无色水相上层。
RNA全部被分配于水相中。
水相上层的体积大约是匀浆时加入的TRIZOL试剂的60%。
3. RNA沉淀将水相上层转移到一干净无RNA酶的离心管中。
加等体积异丙醇混合以沉淀其中的RNA，混匀后15到30℃孵育10分钟后，于4℃下12 000 rpm 离心10分钟。
此时离心前不可见的RNA沉淀将在管底部和侧壁上形成胶状沉淀块。
4. RNA清洗移去上清液，每1 mlTRIZOL试剂裂解的样品中加入至少1 ml的75%乙醇（75%乙醇用DEPCH2O配制），清洗RNA沉淀。
混匀后，4℃下7 000 rpm离心5分钟。
5. RNA干燥小心吸去大部分乙醇溶液，使RNA沉淀在室温空气中干燥5-10分钟。
6. 溶解RNA沉淀溶解RNA时，先加入无RNA酶的水40μl用枪反复吹打几次，使其完全溶解，获得的RNA溶液保存于-80℃待用。
二、RNA质量检测1. 紫外吸收法测定先用稀释用的TE溶液将分光光度计调零。
然后取少量RNA溶液用TE稀释（1:100）后，读取其在分光光度计260nm和280nm处的吸收值，测定RNA溶液浓度和纯度。
（1）浓度测定A260下读值为1表示40 μg RNA/ml。
样品RNA浓度(μg/ml)计算公式为：A260 ×稀释倍数×40 μg/ml。
具体计算如下：RNA溶于40 μl DEPC水中，取5 μl，1:100稀释至495 μl的TE中，测得A260 = 0.21RNA 浓度= 0.21 ×100 ×40 μg/ml = 840 μg/ml 或0.84 μg/μl取5 ul用来测量以后，剩余样品RNA为35 μl，剩余RNA总量为：35 μl × 0.84 μg/μl = 29.4 μg（2）纯度检测RNA溶液的A260/A280的比值即为RNA纯度，比值范围1.8到2.1。
2. 变性琼脂糖凝胶电泳测定（1）制胶1 g琼脂糖溶于72 ml水中，冷却至60℃，10 ml的10×MOPS电泳缓冲液和18 ml的37% 甲醛溶液(12.3 M)。
10×MOPS电泳缓冲液浓度成分0.4 M MOPS，pH 7.00.1 M 乙酸钠0.01 M EDTA灌制凝胶板，预留加样孔至少可以加入25 μl溶液。
胶凝后取下梳子，将凝胶板放入电泳槽内，加足量的1×MOPS电泳缓冲液至覆盖胶面几个毫米。
（2）准备RNA样品取3 μgRNA，加3倍体积的甲醛上样染液，加EB于甲醛上样染液中至终浓度为10 μg/ml。
加热至70℃孵育15分钟使样品变性。
（3）电泳上样前凝胶须预电泳5 min，随后将样品加入上样孔。
5-6 V/cm电压下2 h，电泳至溴酚兰指示剂进胶至少2-3 cm。
（4）紫外透射光下观察并拍照28S和18S核糖体RNA的带非常亮而浓（其大小决定于用于抽提RNA的物种类型），上面一条带的密度大约是下面一条带的2倍。
还有可能观察到一个更小稍微扩散的带，它由低分子量的RNA（tRNA和5S核糖体RNA）组成。
在18S和28S核糖体带之间可以看到一片弥散的EB染色物质，可能是由mRNA和其它异型RNA组成。
RNA制备过程中如果出现DNA污染，将会在28S核糖体RNA 带的上面出现，即更高分子量的弥散迁移物质或者带，RNA的降解表现为核糖体RNA带的弥散。
用数码照相机拍下电泳结果。
三、样品cDNA合成1. 反应体系序号反应物剂量1 逆转录buffer2 μl2 上游引物0.2 μl3 下游引物0.2 μl4 dNTP 0.1 μl5 逆转录酶MMLV 0.5 μl6 DEPC水 5 μl7 RNA模版 2 μl8 总体积10 μl轻弹管底将溶液混合，6 000 rpm短暂离心。
2. 混合液在加入逆转录酶MMLV 之前先70℃干浴3分钟，取出后立即冰水浴至管内外温度一致，然后加逆转录酶0.5 μl，37℃水浴60分钟。
3. 取出后立即95℃干浴3分钟，得到逆转录终溶液即为cDNA溶液，保存于-80℃待用。
四、梯度稀释的标准品及待测样品的管家基因（β-actin）实时定量PCR1. β-actin阳性模板的标准梯度制备阳性模板的浓度为1011，反应前取3 μl 按10倍稀释（加水27 μl并充分混匀）为1010，依次稀释至109、108、107、106、105、104，以备用。
2. 反应体系如下：标准品反应体系序号反应物剂量1 SYBR Green 1 染料10 μl2 阳性模板上游引物F 0.5 μl3 阳性模板下游引物R 0.5 μl4 dNTP 0.5 μl5 Taq酶 1 μl6 阳性模板DNA 5 μl7 ddH2O 32.5 μl8 总体积50 μl轻弹管底将溶液混合，6 000 rpm短暂离心。
3. 管家基因反应体系：序号反应物剂量1 SYBR Green 1 染料10 μl2 内参照上游引物F 0.5 μl3 内参照下游引物R 0.5 μl4 dNTP 0.5 μl5 Taq酶 1 μl6 待测样品cDNA 5 μl7 ddH2O 32.5 μl8 总体积50 μl轻弹管底将溶液混合，6000 rpm短暂离心。
3. 制备好的阳性标准品和检测样本同时上机，反应条件为：93℃2分钟，然后93℃1分钟，55℃2分钟，共40个循环。
五、制备用于绘制梯度稀释标准曲线的DNA模板1. 针对每一需要测量的基因，选择一确定表达该基因的cDNA模板进行PCR反应。
2. 反应体系序号反应物剂量1 10×PCR缓冲液 2.5 ul2 MgCl2 溶液 1.5 ul3 上游引物F 0.5 ul4 下游引物R 0.5 ul5 dNTP混合液 3 ul6 Taq聚合酶 1 ul7 cDNA 1 ul8 加水至总体积为25 ul轻弹管底将溶液混合，6000rpm短暂离心。
35个PCR循环（94℃1分钟；55℃1分钟；72℃1分钟）；72?C延伸5分钟。
（3）PCR产物与DNA Ladder在2％琼脂糖凝胶电泳，溴化乙锭染色，检测PCR 产物是否为单一特异性扩增条带。
（4）将PCR产物进行10倍梯度稀释: 将PCR产物进行10倍梯度稀释: 设定PCR产物浓度为1×1010，依次稀释至109、108、107、106、105、104几个浓度梯度。
六、待测样品的待测基因实时定量PCR1. 所有cDNA样品分别配置实时定量PCR反应体系。
2. 体系配置如下：序号反应物剂量1 SYBR Green 1 染料10 ul2 上游引物 1 ul3 下游引物 1 ul4 dNTP 1 ul5 Taq聚合酶 2 ul6 待测样品cDNA 5 ul7 ddH2O 30 ul8 总体积50 ul轻弹管底将溶液混合，6 000 rpm短暂离心。
（3）将配制好的PCR反应溶液置于Realtime PCR仪上进行PCR扩增反应。
反应条件为：93℃2分钟预变性，然后按93℃1分钟，55℃1分钟，72℃1分钟，共40做个循环，最后72℃7分钟延伸。
七、实时定量PCR使用引物列表引物设计软件：Primer Premier 5.0，并遵循以下原则：引物与模板的序列紧密互补；引物与引物之间避免形成稳定的二聚体或发夹结构；引物不在模板的非目的位点引发DNA 聚合反应(即错配)。
八、电泳各样品的目的基因和管家基因分别进行Realtime PCR反应。
PCR产物与DNA Ladder在2％琼脂糖凝胶电泳，GoldView染色，检测PCR产物是否为单一特异性扩增条带。
注意事项防止RNA酶污染的措施1. 所有的玻璃器皿均应在使用前于180℃的高温下干烤6hr或更长时间。
2. 塑料器皿可用0.1% DEPC水浸泡或用氯仿冲洗（注意：有机玻璃器具因可被氯仿腐蚀，故不能使用）。
3. 有机玻璃的电泳槽等，可先用去污剂洗涤，双蒸水冲洗，乙醇干燥，再浸泡在3% H2O2 室温10min，然后用0.1% DEPC水冲洗，晾干。
