食品中菌落总数的测定方法(参照材料)
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食品中菌落总数的测定一、实验目的(1)学习和掌握测定食品中菌落总数的基本方法(2)学会菌落总数的报告方式二、实验材料1、仪器与设备:恒温培养箱、托盘天平、电炉、吸管、三角瓶、平皿、试管、试管架、酒精灯、灭菌刀或剪刀、75%酒精棉球、玻璃蜡笔。
2、培养基和试剂:75%乙醇、0.85%生理盐水、琼脂培养基:胰蛋白胨5.0g、酵母浸膏2.5g、葡萄糖1.0g、琼脂15.0g、蒸馏水1000mL、pH 7.0±0.23、检样:利乐包装鲜牛奶250ml三、实验方法与步骤1、检验程序菌落总数检验程序:检样→做成几个适当倍数的稀释液→选择2-3个适宜稀释度各以1ml之量分别入灭菌平皿内→每皿内加入46℃15-20ml营养琼脂→置36±1℃恒温箱内培养(48±2)h取出→菌落数→报告2、检样稀释及培养(1)以无菌操作,将检样包装打开,用吸管取25ml鲜牛奶,放于含有225ml灭菌生理盐水的500ml灭菌玻璃三角瓶内(瓶内预先置适当数量的玻璃珠),经充分振摇做成1:10的均匀稀释液。
(2)用1ml灭菌吸管吸取1:10稀释液1ml,沿管壁徐徐注入含有9ml灭菌生理盐水的试管内(注意吸管尖端不要触及管内稀释液,下同),振摇试管混合均匀,做成1:100的稀释液。
(3)另取1ml的灭菌吸管,按上项操作顺序作10倍递增稀释液,如此每递增稀释一次,即换用1支1ml灭菌吸管。
(4)根据食品卫生检验标准要求和检样的菌落数量,选择3个连续适宜稀释度即10、10-1、10-2,分别在作10倍递增稀释的同时,即以吸取该稀释度的吸管移1ml稀释液于灭菌平皿内,每个稀释度作两个平皿。
(5)稀释液移入平皿后,应及时将凉至46℃营养琼脂培养基注入平皿15ml~20mL,并转动平皿使与稀释检样混合均匀,同时将营养琼脂培养基倾入加有1ml稀释液(不含样品)的灭菌平皿内作空白对照。
(6)等琼脂凝固后,翻转平板,置36±1℃恒温箱内培养(48±2)h取出,计算平板内菌落数目乘以倍数,即得1mL样品所含菌落总数。
食品中菌落总数的测定和不确定度分析一、引言食品中菌落总数是指在特定条件下,通过培养基培养和统计法,对食品中细菌和真菌等微生物菌落数的测定。
食品中菌落总数是评价食品卫生质量的重要指标之一,可以反映食品是否受到污染、保存条件是否良好等情况。
对食品中菌落总数进行准确测定和不确定度分析,对于食品卫生和质量控制至关重要。
二、食品中菌落总数的测定方法食品中菌落总数的测定方法通常采用菲尔氏杯平板法和薄膜法。
菲尔氏杯平板法是将食品样品稀释后均匀铺在富含寒天的琼脂培养基上,培养并统计菌落数;薄膜法是将食品样品均匀涂抹在琼脂培养基上,培养并统计菌落数。
三、食品中菌落总数的不确定度分析1. 采样不确定度:食品中菌落总数的测定首先要进行食品样品的采样和样品的制备,采样过程中可能会存在采样不均匀、采样器具的精密度等因素,引入采样不确定度。
2. 复现性不确定度:食品中菌落总数的测定通常需要进行多次重复测定,由于操作者、环境等因素的影响,可能会出现不一致的结果,引入复现性不确定度。
3. 实验条件不确定度:食品中菌落总数的测定受到实验条件的影响,如温度、湿度等条件会对微生物生长产生影响,引入实验条件不确定度。
4. 测量设备不确定度:食品中菌落总数的测定需要借助于培养箱、平板计数器等设备,设备的准确度和精度会影响测定结果,引入设备不确定度。
四、食品中菌落总数的不确定度评定食品中菌落总数的不确定度评定需要考虑上述不确定度因素的影响,并采用合适的方法进行计算评定。
不确定度评定的目的是为了确定测定结果的可靠性和准确性,提高测定结果的可信度。
1. 不确定度计算方法食品中菌落总数的不确定度可以采用GUM不确定度评定方法,通过不确定度传递法和不确定度组分法计算总的不确定度。
在实际计算中,需要考虑到各种不确定度来源的具体数值和权重,综合计算得出总的不确定度值。
2. 不确定度控制方法为了减小不确定度的影响,可以采取以下控制方法:(1)采样不确定度的控制:采用合适的采样方法和器具,确保样品的均匀性和代表性;(2)复现性不确定度的控制:严格控制实验条件和培养操作流程,尽量减小操作者和环境的影响;(3)实验条件不确定度的控制:控制实验条件的稳定性和准确性,进行实验前后的环境监测和校准;(4)测量设备不确定度的控制:对测量设备进行定期维护和校准,确保设备的准确度和精度。
食品中菌落总数测定方案菌落总数测试片1.操作步骤1.1 样品的稀释1.1.1 称取25g样品(剪碎)置盛有225ml无菌生理盐水的三角瓶中,充分振摇混匀,制成1:10的样品匀液。
1.1.2 用1ml微量移液器吸取1:10的样品匀液1ml,沿管壁缓慢注入盛有9ml无菌生理盐水的无菌试管中(注意吸头尖端不要触及稀释液面),充分振摇混匀,制成1:100的样品匀液。
1.1.3 用1ml微量移液器吸取1:100的样品匀液1ml,沿管壁缓慢注入盛有9ml无菌生理盐水的无菌试管中(注意吸头尖端不要触及稀释液面),充分振摇混匀,制成1:1000的样品匀液。
1.2 样品的接种揭开菌落总数测试片上层膜,用1ml微量移液器分别吸取1:10、1:100、1:1000的样品匀液1ml慢慢均匀地滴加到纸片上,然后将上层膜缓慢盖下,静置10s左右使培养基凝固(每个样品匀液做2个纸片)。
同时做一片空白阴性对照。
1.3 培养将测试片叠在一起放回原自封袋中,并封口,透明面朝上水平置于36℃±1℃培养箱内培养15~24h,堆叠片数不超过12片。
1.4 菌落计数1.3.1 细菌在测试片上生长后会显示红色斑点,可用肉眼观察,必要时用放大镜,记录稀释倍数和相应的菌落数量。
菌落计数以菌落形成单位(CFU)表示。
1.3.2 选取菌落数在30CFU—300CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。
低于30CFU的纸片记录具体菌落数,大于300CFU的可记录为多不可计。
每个稀释度的菌落数应采用两个纸片的平均数。
1.3.3 其中一个纸片有较大片状菌落生长时,则不宜采用,而应以无片状菌落生长的纸片作为该稀释度的菌落数;若片状菌落不到纸片的一半,而其余一半中菌落分布又很均匀,即可计算半个纸片后乘以2,代表一个纸片菌落数。
1.3.4 当纸片上出现菌落间无明显界线的链状生长时,则将每条单链作为一个菌落计数。
—1 —— 2 —1.5 结果与报告1.5.1 菌落总数的计算方法1.5.1.1 若只有一个稀释度纸片上的菌落数在适宜计数范围内,计算两个纸片菌落数的平均值,再将平均值乘以相应稀释倍数,作为每g 样品中菌落总数结果。
菌落总数标准一、菌落总数定义菌落总数是指食品经过处理,在一定条件下培养后,所得每克(每毫升)检样中所生长出来的细菌菌落总数。
它是一种反映食品卫生状况的重要指标,用以判定食品被污染的程度。
二、菌落总数测定方法1. 按照国家标准方法,将样品进行稀释,取一定量稀释液接种到培养基上,置于恒温箱中培养。
2. 观察每个培养基上的菌落数量,并记录。
3. 根据稀释倍数和培养基上的菌落数量,计算出每克(每毫升)样品中的菌落总数。
三、菌落总数卫生标准根据国家卫生部门的规定,食品中的菌落总数应符合以下标准:1. 饮料、饮用水:≤100cfu/ml。
2. 植物性食品、罐头食品:≤1000cfu/g。
3. 肉制品、乳制品:≤50000cfu/g。
4. 调味品、粮谷类食品:≤1000cfu/g。
5. 冷饮食品:≤2000cfu/g。
四、菌落总数食品卫生要求1. 食品生产过程中,应采取有效措施控制菌落总数的污染,确保食品的安全卫生。
2. 生产过程中使用的原料、水源、容器等应符合卫生要求,避免污染。
3. 食品加工设备、器具、管道等应定期清洁消毒,保持良好的卫生状况。
4. 成品储存应避免污染,严格控制温度、湿度等条件,确保菌落总数不超标。
五、菌落总数环境卫生要求1. 生产场所应保持清洁卫生,定期进行清洁消毒,保持良好的卫生状况。
2. 生产场所的通风、照明等设施应符合卫生要求,防止细菌滋生。
3. 生产过程中产生的废弃物、污水等应及时处理,防止污染环境。
六、菌落总数检验规则1. 按照国家规定的标准方法进行检验,确保数据的准确性。
2. 检验时应选取具有代表性的样品,确保样品的代表性。
3. 对于不合格的样品,应进行复检,以确认数据的可靠性。
4. 对于批量生产的食品,应按比例抽样检验,确保整批产品的质量。
七、菌落总数标识、储存、运输要求1. 标识:产品标签上应注明菌落总数指标,以提示消费者注意食品的卫生质量。
2. 储存:食品应储存在清洁卫生的环境中,避免污染。
菌落总数的测定标准一、采样方案1.1 采样对象:本标准适用于各类食品、药品、化妆品等产品。
1.2 采样量:根据产品类型及实际需要,一般采样量为10-50g(mL)。
1.3 采样方法:用无菌采样器随机取样,然后将样品混匀,制成1:10的稀释液。
二、培养基2.1 选择培养基:使用国家规定的标准培养基,如营养琼脂、孟加拉红培养基等。
2.2 培养基配制:按照培养基说明书进行配制,加入适量添加剂以满足实验要求。
三、培养温度3.1 培养温度:菌落总数培养温度为36℃±1℃。
3.2 恒温培养:培养过程中需保持恒温,不得超过±2℃。
四、培养时间4.1 培养时间:菌落总数培养时间为48小时±2小时。
4.2 时间记录:记录每个平皿的培养时间,以获得准确的菌落计数。
五、结果报告5.1 计数方法:使用菌落计数器对各稀释度平皿进行计数,并记录每个稀释度的平均菌落数。
5.2 结果报告:根据平均菌落数计算出每克(mL)样品中的菌落总数,并按照规定格式填写结果报告。
六、精度要求6.1 重复精度:同一稀释度同一平皿的菌落数偏差不得超过10%。
6.2 仪器精度:菌落计数器的精度应符合国家相关标准要求。
七、空白对照7.1 空白培养基:取适量空白培养基放入恒温培养箱中,观察其是否受到污染。
7.2 空白样品:取适量空白样品(如无菌水)进行实验,观察其是否受到污染。
八、重复试验8.1 重复次数:同一批次样品至少进行两次独立实验,以验证实验结果的可靠性。
8.2 异常情况处理:如出现异常数据或不符合要求的数据,应重新进行实验或采用备用样品进行实验。
食品安全国家标准食品微生物学检验菌落总数测定1 范围本标准本标准规定了食品中菌落总数(Aerobic plate count)的测定方法。
本标准适用于食品中菌落总数的测定。
2 术语和定义2.1 菌落总数 aerobic plate count食品检样经过处理,在一定条件下(如培养基、培养温度和培养时间等)培养后,所得每g(mL)检样中形成的微生物菌落总数。
3 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:3.1 恒温培养箱:36 ℃±1 ℃,30 ℃±1 ℃。
3.2 冰箱:2 ℃~5 ℃。
3.3 恒温水浴箱:46 ℃±1 ℃。
3.4 天平:感量为0.1 g。
3.5 均质器。
3.6 振荡器。
3.7 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL 刻度)、10 mL(具0.1 mL 刻度)或微量移液器及吸头。
3.8 无菌锥形瓶:容量250 mL、500 mL。
3.9 无菌培养皿:直径90 mm。
3.10 pH 计或pH 比色管或精密pH 试纸。
3.11 放大镜或/和菌落计数器。
4 培养基和试剂4.1 平板计数琼脂培养基:见附录A 中A.1。
4.2 磷酸盐缓冲液:见附录A 中A.2。
4.3 无菌生理盐水:见附录A 中A.3。
5 检验程序菌落总数的检验程序见图1。
图1 菌落总数检验程序6 操作步骤6.1 样品的稀释6.1.1 固体和半固体样品:称取25 g 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000 r/min~10000 r/min 均质1 min~2 min,或放入盛有225 mL 稀释液的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1 min~2 min,制成1:10 的样品匀液。
6.1.2 液体样品:以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成1:10 的样品匀液。
食品中菌落总数的测定
一、实验目的
(1)学习和掌握测定食品中菌落总数的基本方法
(2)学会菌落总数的报告方式
二、实验材料
1、仪器与设备:恒温培养箱、托盘天平、电炉、吸管、三角瓶、平皿、试管、试管架、酒精灯、灭菌刀或剪刀、75%酒精棉球、玻璃蜡笔。
2、培养基和试剂:75%乙醇、0.85%生理盐水、琼脂培养基:胰蛋白胨5.0g、酵母浸膏2.5g、葡萄糖1.0g、
琼脂15.0g、蒸馏水1000mL、pH 7.0±0.2
3、检样:利乐包装鲜牛奶250ml
三、实验方法与步骤
1、检验程序
菌落总数检验程序:
检样→做成几个适当倍数的稀释液→选择2-3个适宜稀释度各以1ml之量分别入灭菌平皿内→每皿内加入46℃15-20ml营养琼脂→置36±1℃恒温箱内培养(48±2)h取出→菌落数→报告
2、检样稀释及培养
(1)以无菌操作,将检样包装打开,用吸管取25ml鲜牛奶,放于含有225ml灭菌生理盐水的500ml灭菌玻璃三角瓶内(瓶内预先置适当数量的玻璃珠),经充分振摇做成1:10的均匀稀释液。
(2)用1ml灭菌吸管吸取1:10稀释液1ml,沿管壁徐徐注入含有9ml灭菌生理盐水的试管内(注意吸管尖端不要触及管内稀释液,下同),振摇试管混合均匀,做成1:100的稀释液。
(3)另取1ml的灭菌吸管,按上项操作顺序作10倍递增稀释液,如此每递增稀释一次,即换用1支1ml灭菌吸管。
(4)根据食品卫生检验标准要求和检样的菌落数量,选择3个连续适宜稀释度即10、10-1、10-2,分别在作10倍递增稀释的同时,即以吸取该稀释度的吸管移1ml稀释液于灭菌平皿内,每个稀释度作两个平皿。
(5)稀释液移入平皿后,应及时将凉至46℃营养琼脂培养基注入平皿15ml~20mL,并转动平皿使与稀释检样混合均匀,同时将营养琼脂培养基倾入加有1ml稀释液(不含样品)的灭菌平皿内作空白对照。
(6)等琼脂凝固后,翻转平板,置36±1℃恒温箱内培养(48±2)h取出,计算平板内菌落数目乘以倍数,即得1mL样品所含菌落总数。
四、检样中细菌菌落总数的计算与报告
1、菌落计算方法
(1)菌落计数方法
做平板菌落计数时,可用肉眼观查,必要时用放大镜检查,以防遗漏。
在记下各平板的菌落数后,求出同稀释度的各平板平均菌落总数。
(2)菌落计数的报告
①平板菌落数的选择
选取菌落数在30~300 CFU之间的平板作为菌落总数测定标准。
一个稀释度使用两个平板,应采用两个平板平均数,
②稀释度的选择
应选择平均菌落数在30~300 CFU之间的稀释度,乘以稀释倍数报告之。
若有两个稀释度,其生长的菌落数均在30~300之间,按以下公式计算:
N = 样品中菌落数
ΣC = 含适宜范围CFU的平板菌落数之和
n1 = 第一稀释度(低稀释度)平板个数
n2 = 第二稀释度(高稀释度)平板个数
d = 稀释因子(第一稀释度)
若所有稀释度的平均菌落数均大于300 CFU,则应按稀释度最高的平均菌落数乘以稀释倍数报告之,
若所有稀释度的平均菌落数均小于30 CFU,则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数报告
若所有稀释度及样品原液均无菌落生长,则以小于l乘以最低稀释倍数报告之,若所有稀释度的平均菌落数均不在30~300 CFU之间,其中一部分大于300 CFU或小于30 CFU时,则以最接近30 CFU或300 CFU的平均菌落数乘以稀释倍数报告之。
③菌落数的报告
菌落数小于100 CFU 时,按“四舍五入”原则修约,以整数报告。
菌落数大于或等于100 CFU 时,第3 位数字采用“四舍五入”原则修约后,取前2 位数字,后面用0 代替位数;也可用10 的指数形式来表示,按“四舍五入”原则修约后,采用两位有效数字。
若所有平板上为蔓延菌落而无法计数,则报告菌落蔓延。
若空白对照上有菌落生长,则此次检测结果无效。
称重取样以CFU/g 为单位报告,体积取样以CFU/mL 为单位报告。
3、实验结果与记录
判定所检测样品菌落总数是否符合国家标准
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·Is Prepared to add the following tests; light absorbing impurities, related substances and particle size to their OTC COA;
·Will provide a COA as evidence that these tests have been conducted and added to the COA;
·Will update VMF 6023 to include the data and report to support validation or verification of the methods used to analyze the tests cited above; and
·Will provide us with a report or a statement to confirm that they have performed appropriate validation or verification of the methods.
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