全自动血液分离机(G4) 与传统手工法(夹板)制备(保存)洗涤红细
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血站血液成分制备技术操作规程1.1 血液成分品种1.1.1 血液成分品种符合国家有关全血及成分血质量要求。
1.2 制备环境1.2.1 制备环境应当卫生整洁,定期消毒。
1.2.2 应尽可能以密闭系统制备血液成分。
1.2.3 用于制备血液成分的开放系统,制备室环境应达到10000级、操作台局部应达到100级(或在超净台中进行)。
1.2.4 制备需要冷藏的血液成分时,应尽可能缩短室温下的制备时间。
1.3 设备1.1.1 设备数量及功能应能满足制备工作的要求。
1.1.2 应建立和实施设备的确认、维护、校准和持续监控等管理制度,实施唯一性标识及使用状态标识,以确保设备符合预期使用要求。
1.4 物料1.4.1 物料应能满足制备工作的需要。
1.4.2 物料质量及其生产和供应方的资质应符合相关法规的要求。
1.4.3 物料使用前,应检查有效期、外观质量等,确认符合质量要求后方可使用。
对不合格物料应进行标识、隔离,防止误用。
1.4.4 制备方法制备新品种的血液成分或制备条件发生明显改变时,应对血液制备方法进行确认。
1.5 起始血液1.5.1 用于制备血液成分的起始血液应符合国家有关全血及成分血质量要求。
1.5.2 起始血液的保存和运输应当符合国家有关规定的要求。
1.5.3 接收起始血液时,应核对数量,检查外观、血袋标签等内容,确认符合质量要求后方可用于血液成分制备。
1.6 制备方法1.6.1 离心1.6.1.1 根据所制备血液成分要求和离心机操作手册,确定离心转速、加速和减速、离心时间和温度等参数,编制离心程序。
1.6.1.2 制备血小板、粒细胞的离心温度为22±2℃。
1.6.1.3 制备其他血液成分的离心温度为4±2℃。
1.6.1.4 离心程序应经过确认,应能分离出符合质量要求的血液成分。
1.6.1.5 对已经投入常规使用的离心程序的变更实施控制,定期检查核对,防止被非授权修改。
1.6.1.6 每批血液制备的离心记录应包括离心操作者签名和所采用的离心程序。
血液成分制备操作规程血液成分制备是一项重要的医疗技术,用于分离和提取血液中的不同成分,以满足临床上的特定需求。
本文将详细介绍血液成分制备的操作规程,确保操作的准确性和安全性。
1. 术前准备在进行血液成分制备之前,需要进行充分的术前准备工作。
首先,确保工作环境清洁整齐,并摆放好所需设备和试剂。
然后,核对所需试剂和设备的数量和有效期限,确保其符合使用要求。
最后,进行必要的人员培训和健康检查,保证操作人员的技能和健康状态,以防止交叉感染等问题。
2. 样本采集血液成分制备的第一步是采集合适的血液样本。
操作人员应严格按照标准程序和无菌要求进行采集。
首先,使用无菌方法消毒采血部位,然后选择合适的血管进行采血。
注意遵循采血容器的配对原则,确保采集的血液与之后的操作要求相符。
3. 血液分离采集好的血液样本需要进行分离以获得不同的成分。
常用的分离方法包括离心法和过滤法。
离心法通过调整离心机的速度和时间来分离血浆、红细胞和血小板。
过滤法则通过过滤纸或滤膜来分离血液成分。
操作人员应根据实际需要选择合适的分离方法,并确保操作的准确性和安全性。
4. 血小板制备血小板是血液中的重要成分,对于治疗一些出血性疾病有着重要的作用。
在血小板制备过程中,首先需要将采集到的血液样本进行离心分离,然后取得血小板上清液。
接下来,根据临床需要,可以通过加入适当的搅拌剂和保存液来处理血小板。
最后,将处理好的血小板分装到合适的容器中,准备好供临床使用。
5. 红细胞制备红细胞是血液成分中最为常见的一种,具有携氧功能。
在红细胞制备过程中,需要通过离心分离和洗涤等步骤来获得纯净的红细胞。
首先,将采集到的血液样本进行离心分离,然后将得到的红细胞沉淀进行洗涤,以去除杂质和外源性物质。
最后,根据临床需要,可以将红细胞进行保存和分装,以备临床使用。
6. 血浆制备血浆是血液成分中含有大量生理活性物质和抗体的液体部分。
在血浆制备过程中,需要将采集到的血液样本进行离心分离,并将分离得到的上清液即为血浆。
血液成分分离机操作规程血液成份分离机操作规程一、所需耗材1、一次性使用单采血液成份分离器P-2000型2、血液保存液Ⅰ(500ml)二、设置参数1、进入设置参数项目,显示工作参数。
可对工作参数进行设置和检查。
2、用▲和▼键将光标移向需检查或更改的参数项。
3、光标指向某个参数时可用修改键删除,再用数字键重新设置。
4、当需设置和检查的项目完成后,按确认键,返回工作项目菜单。
三、分离血液成分屏幕显示血小板工作菜单时,按0键或确认键,进入血小板/血浆程序。
(一)、登记供血者:按照屏幕显示用▲和▼键将光标移向要输入的项目,用数字键输入供血者序号、血型卡号及操作员代号。
完成后按确认键继续下面的操作。
(二)、安装耗材:登记供浆者完成后,屏幕提示安装耗材。
操作者面向机器,按照下列操作规程进行耗材的安装。
1、安装前检查(1)确认抗凝剂针头、采血针头上的保护她未脱落,离心杯接口连接的管路应无脱落;(2)管路应无扭结、缠绕或压痕;(3)袋子无小孔或破裂;(4)离心杯表面无裂痕,杯内无可见碎屑;(5)离心杯静止头固定时杯体应能自如的旋转。
2、安装离心杯(1)打开离心机盖;(2)离心杯下口朝向离心杯的右边,稍稍用力把离心杯按入离心杯的杯座内;、(3)关好盖子,旋紧盖开关,直至显示屏上的离心杯和离心机盖前出现符号﹡,只有杯子安放正确后才能顺利盖上盖子,如盖子闭合不严,则应检查杯子的位置和方向。
3、安装管路(1)把离心杯下口连接管路装入管路探测顶部的槽口中,将与系统压力监测器街头连接的“Y”接头置于管路探测器与阀门之间。
确保管路完全放入管路探测器的槽底部,显示屏上管路探测器前会出现符号﹡。
(2)安装系统压力监测器接头,使之固定,并用手轻轻拉动压力监测器接头管路,确认其安装正确,显示屏上系统压力监测器前会出现符号﹡。
(3)将沿离心杯下口连接管路上的“T”至血小板袋的绿色管路装入绿色阀4,另一条黄色管路装入黄色阀3,确保管路在阀门中安装到位,不允许管路滑落在外。
全自动血液分离机(G4)制备洗涤红细胞(MAP)的关键控制环节摘要】目的:探讨如何提高全自动血液分离机(G4)制备的洗涤红细胞(MAP)的质量,确保输血安全。
方法:用G4制备洗涤红细胞(MAP),并从原料血的制备与选择、接驳点的位置、上机的操作方法、洗涤次数、乳糜血的制备等几个方面就如何提高洗涤红细胞(MAP)的质量进行探讨。
结果:保持冷链制备优质的原料血,选用保存期﹤14d的库存血,选择合适的接驳点,正确掌握上机操作手法,选择合适的洗涤次数,提高乳糜血液的洗涤质量,洗涤红细胞(MAP)质量得到提高。
结论:以上方法是提高G4制备洗涤红细胞(MAP)的关键控制环节。
【关键词】全自动血液分离机G4;洗涤红细胞(MAP);制备【中图分类号】R197.6 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2015)05-0128-02Fully automatic blood separator preparation of washed red blood cells (MAP) (G4) key control links Huang Xiaoqin,Luo Jiezhen. Blood center of Guangzhou, in Guangdong Province, Guangzhou 510095, China【Abstract】Objective To explore how to improve the automatic blood separator (G4) preparation of the quality of washed red blood cells (MAP), guarantee the safetyof blood transfusion. Methods Preparation with G4 washed red blood cells (MAP), and blood from the raw material preparation and selection, the location of the interchange station, computer operation, a number of washing, the preparation of chyle bloodfrom several aspects such as how to improve the quality of washed red blood cells (MAP) are discussed. Results Keep cold chain blood preparation of high quality raw material, choose the banked blood storage life ﹤ 14 d, choose the appropriate connection points, correctly master the computer operation skill, choosing the appropriate number of washing, improve the quality of chyle blood washing, washing quality of red blood cells (MAP) was improved. Conclusions The above method is to improve the preparation of washed red blood cells (MAP) G4 key control links.【Key words】Fully automatic blood separator G4; Wash red blood cells; The preparation of洗涤红细胞去除了几乎所有的血浆蛋白及大部分的白细胞,主要用于减少或避免血浆蛋白所致的过敏反应,也适应于自身免疫性溶血性贫血和阵发性睡眠性血红蛋白尿需输血的患者及对血浆蛋白、白细胞和血小板产生抗体的患者[1]。
索林XTRA自体血液回收/分离机唯一具有自动、手动模式血液分离设备术前血液分离的三种模式1、PPP 贫血小板血浆2、PRP1富血小板血浆红细胞3、RP2血小板血浆红细胞术前分离适应症:1、体外循环下的心脏手术2、体外循环时间>2H3、术前血小板计数>150×109/L4、红细胞压积>35%5、术前凝血功能正常6、非体外循环手术,预计出血量大的手术术前分离禁忌症:1、血流动力学不稳定2、血小板数量<50×109/L3、血栓性疾病4、低蛋白血症(<60g/L)5、凝血功能紊乱6、感染术前分离开始时间:1、麻醉插管后,肝素化之前2、静脉通路开放3、各项监测分离时间:1H左右操作时间(125ML离心杯一个循环分离为7-9Min225ml离心杯一个循环分离为10-12Min)保存方法:血小板的保存室温22°(±2°)轻微振荡保存红细胞常温保存输注时间:体外循环结束,鱼精蛋白中和肝素后采集血小板参数设置:泵速:10--100毫升/分钟(可调)离心机转速:5600--2400rpm(机器自动调节)美国德克萨斯医学院附院周少凤教授Assistant Professor, Cardiovascular Anesthesia,The University of Texas Medical School at Houston, Texas 嘿嘿禁忌临床意义:1.保护血浆、血小板中凝血因子免遭体外循环过程中各种有害因素的刺激与破坏,最大限度地保护血浆、血小板功能,有效促进病人的术后康复、大大缩短患者的ICU及普通病房住院时间,提高病床周转率。
2.CPB结束、鱼精蛋白中和肝素后PRP输回患者,保存的血小板中大量的凝血因子迅速参与凝血过程,使术后凝血功能得以迅速恢复,及时发挥止血作用,防止或减少术后出血,达到血液保护的目的3.可以解决临床用血小板、血浆、红细胞的供应紧张,还可以有效的节约血液流失、更好的做到血液保护。
临床输血技术规范第一章总则第一条为了规范、指导医疗机构科学、合理用血,根据《中华人民共和国献血法》和《医疗机构临床用血管理办法》(试行)制定本规范。
第二条血液资源必须加以保护、合理应用,避免浪费,杜绝不必要的输血。
第三条临床医师和输血医技人员应严格掌握输血适应证,正确应用成熟的临床输血技术和血液保护技术,包括成分输血和自体输血等。
第四条二级以上医院应设置独立的输血科(血库),负责临床用血的技术指导和技术实施,确保贮血、配血和其他科学、合理用血措施的执行。
第二章输血申请第五条申请输血应由经治医师逐项填写《临床输血申请单》,由主治医师核准签字,连同受血者血样于预定输血日期前送交输血科(血库)备血。
第六条决定输血治疗前,经治医师应向患者或其家属说明输同种异体血的不良反应和经血传播疾病的可能性,征得患者或家属的同意,并在《输血治疗同意书》上签字。
《输血治疗同意书》入病历。
无家属签字的无自主意识患者的紧急输血,应报医院职能部门或主管领导同意、备案,并记入病历。
第七条术前自身贮血由输血科(血库)负责采血和贮血,经治医师负责输血过程的医疗监护。
手术室的自身输血包括急性等容性血液稀释、术野自身血回输及术中控制性低血压等医疗技术由麻醉科医师负责实施。
第八条亲友互助献血由经治医师等对患者家属进行动员,在输血科(血库)填写登记表,到血站或卫生行政部门批准的采血点(室)无偿献血,由血站进行血液的初、复检,并负责调配合格血液。
第九条患者治疗性血液成分去除、血浆置换等,由经治医师申请,输血科(血库)或有前科室参加制订治疗方案并负责实施,由输血科(血库)和经治医师负责患者治疗过程的监护。
第十条对于Rh(D)阴性和其他稀有血型患者,应采用自身输血、同型输血或配合型输血。
第十一条新生儿溶血病如需要换血疗法的,由经治医师申请,经主治医师核准,并经患儿家属或监护人签字同意,由血站和医院输血科(血库)提供适合的血液,换血由经治医师和输血科(血库)人员共同实施。
血细胞分离机工作原理
血细胞分离机是一种用于分离血液中不同种类细胞的设备,其工作原理基于细胞的大小、形状和密度等特性。
下面是血细胞分离机的工作原理的简要描述:
1. 离心分离:血液样本首先通过一个离心机,以高速旋转的方式将血细胞和血浆分离。
由于血细胞比血浆更重,它们在离心过程中会被向外挤压到离心管的底部,而血浆则被推向离心管的上方。
2. 密度梯度离心:离心分离后,将血细胞与血浆的分界面取出,并进一步进行密度梯度离心。
这一步骤通过在离心管中加入不同密度的溶液来分离血细胞。
溶液的密度逐渐递增,从上到下形成一个密度梯度。
在离心过程中,不同种类的血细胞会在不同密度的梯度上下移动,最终沉积到梯度的不同位置。
3. 层析分离:通过调整离心速度和时间,从密度梯度中分离出具有不同种类血细胞的层。
在离心过程中,重量较轻的细胞(如淋巴细胞)会在离心管的上层沉积,而重量较重的细胞(如红细胞和白细胞)则会沉积到下层。
总的来说,血细胞分离机通过利用细胞的物理性质,如大小、形状和密度等,将血液中的细胞分离出来。
这种分离技术常用于临床检验、生物学研究和血液处理等领域。
手工法和自动法制备去白细胞悬浮红细胞质量分析发表时间:2019-08-19T11:07:45.727Z 来源:《医药前沿》2019年18期作者:潘汉站[导读] 全自动血液分离机制备去白细胞悬浮红细胞的产品质量更高、更稳定、过程追踪更完善,在采供血机构成分血制备中应得到推广使用。
(广西血液中心广西柳州 545005)【摘要】目的:研究传统手工法和全自动血液成分分离机制备去白细胞悬浮红细胞的质量抽检结果差异。
方法:对传统手工法(2016年9月—2017年9月制备)和自动法(2017年10月—2018年10月制备)两种方法制备去白细胞悬浮红细胞进行质量抽检,按照国家质量标准计算合格率,对两种方法在容量、血比容、血红蛋白含量、储存期末溶血率等项目合格率进行统计分析。
结果:手工法和自动法制备的去白细胞县浮红细胞容量合格率分别为92.3%、92.3%,血红蛋白含量合格率分别为100%、100%,血比容合格率分别为75%、94%,储存期末溶血率的合格率分别为100%、100%.血比容合格率比较差异有统计学意义(P<0.05),其他项目检测合格率差异比较无统计学意义(P>0.05)。
结论:使用自动成分分离机制备去白细胞悬浮红细胞的质量比传统手工法高,应推广使用全自动血液分离机。
【关键词】全自动血液分离机;手工法;去白细胞悬浮红细胞;质量分析【中图分类号】R331 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752(2019)18-0219-02去白细胞悬浮红细胞是临床应用最为广泛的成分血液制品,近年来随着医学技术不断地发展,临床成分输血治疗日益扩大,人们对血液质量,输血治疗,输血安全提出了更高的要求[1],传统手工法分离去白细胞悬浮红细胞由人工来完成,工作效率低,产品质量不稳定。
为了满足临床需要,我中心近年来已经采用全自动血液成分分离机制备去白细胞悬浮红细胞。
为了解手工法和自动法制备的去白细胞悬浮红细胞抽检质量差异,推广使用自动化制备去白细胞悬浮红细胞标准化和自动化提供理论依据,笔者报告如下。
全自动血凝仪的基本结构和工作流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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全自动血液分离机(G4) 与传统手工法(夹板)制备(保存)洗涤红细胞的质量比较
发表时间:2014-04-15T11:13:59.513Z 来源:《中外健康文摘》2013年38期供稿作者:杨丽美何博范斌
[导读] 笔者所在血站使用未去白悬浮红细胞作为洗涤原料,所以洗涤中去除白膜层会提高下一步的滤器滤白效果。
杨丽美何博范斌(广州血液中心广东广州 5 1 0 0 9 5 )
【摘要】目的比较全自动分离机和传统手工制备的洗涤红细胞的质量。
方法将24 袋的1U(200ml)红细胞悬液随机分为两组进行洗涤制备:全自动血液分离机洗涤组和传统手工法洗涤组,对制备的洗涤红细胞的血红蛋白含量、储存期末溶血率、上清蛋白含量进行检测作比较。
结果全自动血液分离机法与传统手工法制备的洗涤红细胞的血红蛋白含量无显著性差异(P >0.05),但全自动血液分离机洗涤法储存期末溶血率和上清蛋白含量低于传统手工洗涤法,其二者存在显著性差异(P<0.05),且制备效率提高。
结论 Compomat G4 全自动血液分离机制备洗涤的红细胞比传统手工制备的洗涤红细胞的质量好,可以替代手工法制备洗涤红细胞。
【关键词】全自动血液分离机手工法洗涤红细胞
【中图分类号】R197.324 【文献标识码】A 【文章编号】1672-5085(2013)38-0024-02
洗涤红细胞制品临床用于因多次输血而产生白细胞抗体的贫血病人,以及器官移植后病人,减少排斥反应 [1]。
目前国内血站系统洗涤红细胞制品大多采用手工开放式和封闭式洗涤方法来制备,尚无机器自动洗涤来制备洗涤红细胞制品。
手工制备的缺点是洗涤过程由人工来完成,受操作人员熟悉程度、人工操作方式单一,和操作流程难以标准化,在血红蛋白含量高和储存期末溶血率及上清蛋白含量低环节上波动较大,直接导致洗涤红细胞制品的不稳定。
为保证洗涤红细胞制品质量及提高工作效率,我们使用Compomat G4 全自动血液分离机制备洗涤红细胞,传统手工制备的洗涤红细胞的质量进行比较,现将结果报告如下。
1 材料与方法
1.1 材料
大型冰冻离心机,Beckman counter 血细胞计数仪,无菌接管机(德国费森尤斯卡比公司),热合机(德国费森尤斯卡比公司),洗涤红细胞套袋(含三联袋250 ml 化钠注射液,一个转移袋,100 ml 红细胞保存液——广州费森尤斯公司),电子秤(型号:G&G D T -2000), Compomat G4 全自动血液分离机(德国费森尤斯卡比公司),分浆架,止血夹,在4℃ ±2℃保存的外观正常并在保存期内的1U(200ml)红细胞悬液共24 袋。
1.2 方法
1.2.1 血袋的接驳在准备好的红细胞悬液随机抽取24 袋,将红细胞悬液与洗涤红细胞套袋的主管道用无菌接管机接驳(减少了污染的机会),接驳完成后折断一袋氯化钠注射液的折通管,向红细胞悬液袋注入等体积即200ml 氯化钠注射液,轻轻摇匀,夹上止血夹。
1.2.2 全自动血液分离机制备洗涤红细胞在准备好的24 袋红细胞悬液随机抽取12 袋,以(2156g、8m i n、4℃ ±2℃)为离心条件,进行轻离心,离心后的血袋悬挂于Compomat G4 全自动血液分离机上,按照预先编制的程序,自动进行红细胞悬液第一次洗涤制备,分离完毕,机器将自动热合转移袋。
然后将洗涤好的红细胞悬液以离心条件(4036g、8m i n、4℃ ±2℃)进行重离心,离心后的血袋悬挂于Compomat G4 自动血液分离机上,按照预先编制的程序,自动进行红细胞悬液第二次洗涤制备。
洗涤完毕将红细胞悬液置于离心机,以第二次的离心条件进行第三次离心,离心后的血袋悬挂于Compomat G4 自动血液分离机上按照预先编制的程序,自动进行第三次洗涤制备。
待第三次洗涤完毕,取下血袋,挤压红细胞保存液袋向红细胞悬液注入50ml 红细胞保存液。
1.2.3传统手工制备洗涤红细胞:离心设备、条件与机器分离的相同,每次离心后的红细胞悬液由手工通过分浆夹操作挤白膜、除上清液和注入保存液等步骤进行制备。
1.2.4 洗涤红细胞制品的检测按Beckman counter 血细胞计数仪说明书提供的方法和配套试剂对洗涤红细胞制品进行检测。
1.3 统计学分析
数据比较用t 检验,P<0.05 具有统计学意义
2 结果
2.1全自动血液分离机法与手工法制备洗涤红细胞程序比较见表1。
表1 两种方法制备洗涤红细胞的程序比较
* t 分别为: 2.583、2.218 均为P < 0.05,﹟ t=1.599,P > 0.05
3 讨论
依靠全自动血液分离机洗涤来制备洗涤红细胞制品具备自动可控,更易符合国家质量标准;手工制备的缺点是洗涤过程由人工来完成,受操作人员熟悉程度、人工操作方式单一,和操作流程难以标准化,直接导致洗涤红细胞制品的不稳定,所以,笔者认为为达到洗涤红细胞的质量好评估,G4 可完成这一目标。
同时手工法操作耗时是G4 的两倍,可见工作效率低,影响工作进展。
全自动血液分离机洗涤的红细胞制品符合血红蛋白含量(≥ 18g/200ml)、储存期末溶血率(< 0.8%)、上清蛋白含量(< 0.5g)的国家质量标准,且质量更能得到保证。
究其原因,笔者认为,因上清蛋白含量的高低与洗涤液的用量成正比,故而当洗涤液达到一定时,就可达到较为满意的血浆蛋白清除程度;分离机分离上清液会比手工挤来得更标准,且二者存在差异。
为保证分离机洗涤血红蛋白含量,在分离、洗涤以及废弃液排出的全过程,都在红外探头监控下完成的,减少了制备过程红细胞的不必要损失,对红细胞母袋的冲洗也减少了一部分红细胞的损失。
分离机洗涤储存期末溶血率低的原因在于手工操作不能掌握夹板的力度与挤压距离,因红细胞具有机械性脆性,即由于碰撞挤压可引起细胞破裂溶血,而机器可准确控制挤压的空间与力度,既显著减少红细胞损伤,又大大减少手工挤白膜层(白细胞)和上清液过程中导致的红细胞损失,这也是分离机法保证血红蛋白含量的又一个主要原因。
白细胞滤器的使用,使洗涤红细胞质量指标取消了白细胞残留量,有文献报道去白膜红细胞比不去白膜红细胞的洗涤效果有差异,前者的红细胞回收率更高, 白细胞残留量更低[2、3]。
笔者所在血站使用未去白悬浮红细胞作为洗涤原料,所以洗涤中去除白膜层会提高下一步的滤器滤白效果。
综上所述,尽管本身数量及范围有限,但就离心后红细胞洗涤而言,采用CompomatG4 自动血液分离机是提高血液成分分离精度和效果的一种方法,更适用于因多次输血而产生白细胞抗体的贫血病人,以及器官移植后病人,减少排斥反应,减少了污染的机会,值得临床输血广泛推广应用。
参考文献
[1] 孙艳萍. 浅谈成分输血中红细胞制品的临床应用. 实用医技杂志,2007,14(3):329-330.
[2] 刘颖, 康炜, 周世航. 两种原料血制备洗涤红细胞的效果分析. 临床输血与检验,2011,13(3):267-268.
[3] 赵秀萍, 刘梅, 焦红霞, 等. 不同方法制备洗涤红细胞检测指标比较. 山东医药,2006,46(10):71.。