生理学实验五

五.实验注意事项
1.操作要细心，不要损伤迷走神经；不要损伤迷走神经与 胃的联系。
2.注意经常用任氏液湿润神经和胃肠道，以防止干燥，但 应注意不要让电极短路。
3.每次刺激前后，应仔细比较胃肠道运动的变化情况。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
六.作业与思考
1.胃肠道肌肉有什么生理特性？ 2.胃肠道运动有哪些形式？你观察到有哪些？ 3.比较刺激胃肠道前后胃肠道运动有什么不同，并分析其
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
三.实验材料与用具
胡子鲶或乌鳢，培养皿、烧杯、滴管，烧瓶夹，注射 器1支，生理试验多用仪1台，刺激用保护电极1根，普通 电极1根，支架、常用手术器械、蛙板、蛙心夹、污物缸、 纱布1块、棉线、抹布1块，鱼用任氏液，肾上腺素（1： 10000），乙酰胆碱（1：10000）。
7.当胃肠道强烈运动时，将肾上腺素溶液滴加在胃肠道上， 观其反应。完成后用鱼用任氏液清洗腹腔。
8.当胃肠道运动减弱后，将乙酰胆碱溶液滴加在胃肠道上， 观其反应。完成后用鱼用任பைடு நூலகம்液清洗腹腔。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
9.重复第7项内容。
10.按第6项的刺激参数，对胃肠道肌肉直接进行电刺激， 观其反应。
四.实验操作与观察
1.破坏延脑等脑组织。
2.打开腹腔，暴露其内脏。不拨动胃肠道的条件下观察胃 肠道运动形式和运动程度。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
3.拨动胃肠道之后，再观察胃肠道的运动情况。
4.小心地摘除掉肝脏和胆囊。
5.观察食道左侧迷走神经的走向和分布。分离该迷走神经， 穿线备用。
6.电刺激迷走神经，观察胃肠道运动情况的变化。
实验五 鱼类胃肠道运动的观察
课件制作 吴洪流

实验五种子活力的测定（红墨水法）一、实验目的掌握快速测定种子活力的方法二、实验原理种子生命力是指种子能够萌发的潜在能力或种胚具有的生命力。

它是决定种子品质和实用价值大小的主要依据，与播种时的用种量直接有关。

活细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的能力，而死的细胞原生质膜丧失这种能力，于是红墨水染料可进入死细胞而使其染色。

活细胞不能吸收红墨水所以不染色。

三、试剂、材料5%红墨水、培养皿、刀片青稞种子四、实验过程1、将随机购买的种子用温水浸泡3-6小时，使其充分吸胀。

2、吸胀后的种子挑选50粒，沿胚中心线纵切为两半。

3、一半至于培养皿中，用红墨水浸泡染色10分钟，染色后倒去红墨水，用清水冲洗至液体无色。

4、另取50粒种子吸胀，沸水煮熟成死种子，重复步骤3，作为空白对照。

五、计算结果未被染色的种子数目种子活力＝*100％总种子数目实验一植物组织水势的测定--小液流法一、实验目的1、掌握植物细胞水势概念及计算公式；2、了解小液流法测定植物组织水势的方法。

二、实验原理1、植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定；2、当植物细胞或组织放在外界溶液中时：A、ψw＜ψs，则植物组织吸水，C外↑，液滴↓；B、ψw＞ψs，则植物组织失水，C外↓，液滴↑；C、ψw＝ψs，则二者水分保持动态平衡，C外不变，液滴不动。

三、试剂、材料试管、试管架、滴管、打孔器、蔗糖溶液菠菜四、实验过程1、取出8支试管，依次编号1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M、0.60M、0.70M、0.80M一系列不同浓度的蔗糖溶液，取出8支试管用力混匀。

五、实验结果根据公式计算叶片细胞的水势公式：ψw =-RTiC式中：ψw为细胞水势，R为摩尔气体常数，0.083×105（L٠Pa）/（mol٠K）；T为热力学温度，单位K；即273+t ，t为实验温度，单位是℃；i为解离系数，蔗糖为1；C为等渗溶液的质量摩尔浓度，单位是mol/L。

第1篇一、实验目的本次生理学实验旨在通过一系列的实验操作，加深对生理学基本理论的理解，掌握实验技能，培养科学思维和实验操作能力。

通过本次实验，我们学习了生理学实验的基本原则和方法，了解了生理学实验的基本步骤和注意事项。

二、实验内容1. 神经反射实验- 实验目的：观察和分析神经反射的基本现象，了解反射弧的组成和功能。

- 实验方法：采用小鼠作为实验动物，通过电刺激法刺激坐骨神经，观察肌肉的收缩反应。

- 实验结果：成功观察到电刺激坐骨神经后，肌肉出现明显的收缩反应，证实了神经反射的存在。

2. 血压测量实验- 实验目的：学习血压测量的原理和方法，了解血压的正常范围及其生理意义。

- 实验方法：使用血压计对实验动物进行血压测量，并记录血压数据。

- 实验结果：成功测量了实验动物的血压，结果显示血压在正常范围内。

3. 呼吸生理实验- 实验目的：观察和分析呼吸运动的基本规律，了解呼吸系统的生理功能。

- 实验方法：通过观察呼吸肌的收缩和舒张，以及肺容积的变化，分析呼吸运动的机制。

- 实验结果：观察到呼吸肌的规律性收缩和舒张，以及肺容积的变化，证实了呼吸运动的规律性。

4. 消化生理实验- 实验目的：观察和分析消化系统的生理功能，了解食物的消化和吸收过程。

- 实验方法：通过观察消化液的分泌和消化器官的活动，分析消化系统的生理过程。

- 实验结果：观察到消化液分泌的增加和消化器官的活动增强，证实了消化系统的生理功能。

三、实验过程1. 实验前准备：了解实验原理，熟悉实验器材，做好实验记录表格。

2. 实验操作：严格按照实验步骤进行操作，注意实验安全和数据记录。

3. 实验观察：仔细观察实验现象，及时记录实验数据。

4. 实验结果分析：对实验数据进行整理和分析，得出结论。

四、实验结果分析1. 神经反射实验：通过电刺激坐骨神经，成功观察到肌肉的收缩反应，证实了神经反射的存在。

2. 血压测量实验：血压测量结果显示在正常范围内，说明实验动物的生理状态良好。

生理学实验报告实验一坐骨神经-腓肠肌标本制备[1] 实验目的1.学习机能学实验基本的组织分离技术；2.学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；3.了解刺激的种类。

[2] 实验原理蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。

若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。

在机能学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标本是机能学实验的一项基本操作技术。

[3] 实验对象蛙[4] 实验药品任氏液[5] 仪器与器械普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器。

[6] 实验方法与步骤①破坏脑、脊髓取蛙一只，用自来水冲洗干净（勿用手搓）。

左手握住蛙，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯(以头颅后缘稍稍拱起为宜)。

右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管（图3-1-1）。

然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2～3次，捣毁脑组织。

如果探针在颅腔内，应有碰及颅底骨的感觉。

再将探针退回至枕骨大孔，使针尖转向尾端，捻动探针使其刺入椎管，捣毁脊髓。

此时应注意将脊柱保持平直。

针进入椎管的感觉是，进针时有一定的阻力，而且随着进针蛙出现下肢僵直或尿失禁现象。

若脑和脊髓破坏完全，蛙下颌呼吸运动消失，四肢完全松软，失去一切反射活动。

此时可将探针反向捻动，退出椎管。

如蛙仍有反射活动，表示脑和脊髓破坏不彻底，应重新破坏。

图2-1-1 捣毁蟾蜍脊髓②剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蛙的脊柱，右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断（图3-1-2），然后左手握住蛙的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去（注意避开坐骨神经），并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢（图2-1-3）。