抗黄曲霉毒素B1单链抗体在Sf9昆虫细胞中的表达与性质分析_刘爱平
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中国生物工程杂志 China Biotechnology,2016,36( 5) : 40-45 DOI: 10. 13523 / j. cb. 20160506
抗黄曲霉毒素 B1 单链抗体在 Sf9 昆虫细胞中 的表达与性质分析*
刘爱平1,2 李 诚1 刘书亮1 王小红2** 陈福生2**
( 1 四川农业大学食品学院 雅安 625014 2 华中农业大学食品学院 武汉 430070)
摘要 目的: 在原核表达抗黄曲霉毒素 B1( aflatoxin B1,AFB1) 单链抗体( single chain Fv fragment, scFv) 研究的基础上,为进一步了解和提高抗 AFB1 scFv 的活性,利用 Sf9 昆虫细胞表达抗 AFB1 scFv,并对其活性进行探索研究。方法: 构建 pFastBac 1-scFv2E6VHVL 重组质粒,将重组质粒转化 Escherichia coli ( E. coli) DH10Bac 细胞,进行蓝白斑筛选,挑取阳性克隆。提取相应的重组杆状 病毒穿梭载体 Bacmid 侵染 Sf9 昆虫细胞,表达 scFv,利用镍亲和层析法纯化 scFv,并以 ELISA 检 测 scFv 活性。结果: 蓝白斑筛选后,经菌落 PCR 和测序验证挑取的白斑阳性单克隆含有正确的 单链抗体基因。提取相应的重组杆状病毒穿梭载体 Bacmid 侵染 Sf9 昆虫细胞,通过 Western blot 检测得知抗 AFB1 scFv 在 Sf9 昆虫细胞中成功表达。AFB1 对 scFv 的抑制中浓度( IC50 ) 为 30μg / ml。结论: 与 E. coli BL21( DE3) 表达系统相比,scFv 灵敏度转好,但仍有较大提升空间。 关键词 AFB1 ELISA Sf9 细胞 scFv 中图分类号 Q511
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Hale Waihona Puke 刘爱平 等: 抗黄曲霉毒素 B1 单链抗体在 Sf9 昆虫细胞中的表达与性质分析
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物有限公司; Easy Taq 酶、Trans2K Plus DNA Marker: 中 国北京全式金生物技术有限公司; Ni-NTA 亲和层析填 料、ECL 显色液: 美国 Thermo 公司; 羊抗小鼠 IgG-HRP 酶标二抗: 中国华美生物工程公司; 质粒提取试剂盒: 中国 北 京 擎 科 新 业 生 物 技 术 有 限 公 司; PageRuler Prestained Protein Ladder: 美国 Thermo 公司; DNA 凝胶 回收纯化试剂盒: 中国北京庄盟国际生物基因科技有 限公司。 1. 2 方 法 1. 2. 1 引物设计与目的基因扩增 以课题组保存的 载体 pET-3d scFv2E6VH-linker-2E6V[11]为模板,PCR 扩 增 scFv2E6VHVL 基 因 片 段,并 在 目 的 基 因 N 端 加 上 Kozak 序列和信号肽序列。PCR 引物由南京金斯瑞生 物科技有限公司合成,序列如下:
将“1. 2. 1”中第三轮 PCR 产物以限制性内切核酸酶 BamHI 和 XhoI 进行双酶切,克隆到同样酶切处理的质 粒 pFastBac 1,并转化 E. coli DH5α 细胞。挑取单克隆 进行菌落 PCR 验证,选取阳性转化子送至南京金思瑞 生物技术有限公司测序。
1. 2. 3 E. coli DH10Bac 感受态细胞制备 将 E. coli DH10Bac 菌液以 1∶ 250 接种到含 50μg / ml 卡那霉素和 10μg / ml 四环素的 LB 液体培养基,过夜培养后取 20μl 接种于含 50μg / ml 卡那霉素和 10μg / ml 四环素的 5ml 新鲜 LB 液体培养基中,37℃ 振荡培养至 OD600nm 达 0. 5 左右; 将备用的 1. 5ml 离心管和菌液置于冰块中预冷, 吸取 1. 2ml 预冷的菌液至离心管,以 5 000r / min 4℃ 离 心 5min,弃 上 清 液,加 入 800μl 预 冷 的 50mmol / L CaCl2 ,轻轻悬浮并在冰上放置 30min; 于 4℃ 5 000r / min 离心 5min,弃上清液,加 100μl 预冷的 50mmol / L CaCl2 ,轻轻悬浮,加入等体积预冷的 40% 甘油,吹打混 匀后分装,保存在 - 80℃ 。 1. 2. 4 重组杆状病毒穿梭载体 Bacmid 的筛选及鉴定
收稿日期: 2015-11-19 修回日期: 2015-12-13 * 国家自然科学基金( 31271876) ,中央高校基本科研业务费专项 资金( 52209-814012) 资助项目 **通讯作者,电子信箱: wxh@ hzau. edu. cn; chenfs@ hzau. edu. cn
外源 基 因。 BEVS 已 被 广 泛 用 于 生 产 大 量 ( 高 达 1 000mg / ml) 的已适当翻译修饰( 折叠,二硫键形成、低 聚、糖基化、酰化、蛋白水解裂解) 、具有生物活性的重 组蛋白 。 [10]
抽提重组质粒 pFastBac 1-scFv2E6VHVL,转化到含有 Bacmid 的感受态 E. coli DH10Bac,而后将适量转化后 的菌液涂布在含有 50μg / ml 卡 那 霉 素、10μg / ml 四 环 素、7μg / ml 庆大霉素、100μg / ml X-Gal ( 5-溴-4-氯-3-吲 哚-β-D-半乳糖苷) 和 40μg / ml IPTG( 异丙基-β-D-硫代 吡喃半乳糖苷) 的 LB 平板上,37℃ 培养 48h。挑取白色 单菌落,以 Bacmid 上的 M13 引物进行菌落 PCR 验证, PCR 扩增条件为: 93℃ 预变性 5min,( 9℃ 变性 30s,55℃ 退火 45s,72℃ 延伸 3min) × 35cycles,72℃ 延伸 10min。 PCR 产物经 0. 8% 的琼脂糖凝胶电泳分析。 1. 2. 5 抗 AFB1 scFv2E6VHVL 在 Sf9 细胞的表达与性 质分析
昆虫细胞表达系统是常用的外源蛋白质表达系统 之一[1],与原核表达系统相比,它能够进行更复杂的翻 译后修饰[2],表达哺乳动物来源的蛋白质时,更易获得 可溶性蛋白质[3]。昆虫细胞表达系统常用的有果蝇表 达系 统 和 昆 虫 杆 状 病 毒 表 达 载 体 系 统 ( baculovirus expression vector system,BEVS) 。BEVS 能够容纳较大 的外源基因,得到的重组病毒易于筛选,具有完备的翻 译后加工修饰系统和高效表达外源基因的能力 [4-7],与 果蝇表达系统相比,其生产周期和便利性更强[8]。
1 材料与方法
1. 1 材 料 AFB1: 瑞 士 Alexis 公 司; 杆 状 病 毒 转 移 质 粒
pFastBac 1、E. coli DH5α、E. coli DH10Bac 和昆虫 Sf9 细胞: 课题组保存; SFM 培养液、Cellfectin 转染试剂: 美 国 Life Technologies 公司; 小牛血清: 中国杭州四季青生
( 1) 昆虫 Sf9 细胞转染、重组杆粒制备及抗 AFB1 scFv2E6VHVL 预表达测试。将处于对数生长期的 Sf9 细胞悬浮,并以 1. 5 × 106 cell / ml 接种到 6 孔细胞培养 板,27℃ 培养 2h,倒置显微镜下观察 90% 以上细胞已贴 壁,弃去培养液,并用 2ml 不含小牛血清的 SFM 培养液 洗涤两次。抽提“1. 2. 4”中阳性克隆子的重组杆粒,以 两个不同质量的重组 Bacmid 杆粒 DNA 进行细胞转染。 首先分别将 1μg 和 2μg 两个不同量的杆粒 DNA 用不 含小牛血清的 SFM 培养液稀释至 100μl,同时相对应的 转染试剂 Cellfectin( 分别为 5μl 和 9μl) 稀释至 100μl。 将稀释的 Cellfectin 试剂滴加到稀释的杆粒 DNA,轻轻 吹打混合,室温孵育 15 ~ 30min。加入 0. 8ml 不含小牛 血清的 SFM 培养液,轻轻混匀,将混合物加至含有细胞 的孔中,27℃ 培养 5h,弃去混合物。加入含 5% 小牛血 清的 SFM 培养液,培养至出现明显的病毒感染症状。 收集上清液,以 1 000r / min 离心 5min,分别取上清液, 此即为 P1 代病毒株( 将 1μg 杆粒 DNA 对应的 P1 代病
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Vol. 36 No. 5 2016
毒命名 为 AP1 ,2μg 的 命 名 为 BP1 ) 。连 续 感 染,获 得 AP2 和 BP2 病毒株,并将收集的 Sf9 细胞和培养上清液 用于预表达测试验证。
采用 Western blot 对 scFv 的预表达情况进行测试 分析。将 Sf9 细 胞 悬 浮 在 上 样 缓 冲 液 中 经 煮 沸 5 ~ 10min 直接上样。对于细胞上清 液,取 1ml,与 经 PBS 缓冲溶液洗涤的 80μl 镍柱亲和层析填料在室温孵育 0. 5h,再经 1ml PBS 缓冲溶液洗涤 3 次,将镍柱亲和层 析填料在 上 样 缓 冲 液 中 经 煮 沸 5 ~ 10min 直 接 上 样。 经 SDS-PAGE 后,转印 PVDF 膜,以 5% 牛奶封阻 PVDF 膜,采用羊抗小鼠 IgG-HRP 酶标二抗孵育,并利用 ECL 显色液显色,观察结果。