RT-qPCR技术的原理及应用

实时荧光定量pcr检测核酸的原理实时荧光定量PCR（Real-Time Quantitative PCR，RT-qPCR）是一种基于聚合酶链反应（Polymerase Chain Reaction，PCR）的技术，能够快速、准确地定量检测核酸。

RT-qPCR的原理基于PCR的扩增和荧光信号的监测。

PCR是一种通过反复复制DNA片段的方法，它由DNA模板、引物和DNA聚合酶组成。

引物是专门设计的短链DNA片段，它们能够在目标DNA序列的两端精确结合并指导DNA聚合酶的复制。

PCR的循环包括三个步骤：变性、退火和延伸。

在变性步骤中，双链DNA被加热至94-98℃，使其解离成两条单链DNA。

在退火步骤中，引物与单链DNA特异性结合。

在延伸步骤中，DNA聚合酶沿着单链DNA模板合成新的DNA链。

每一个PCR循环会使目标DNA的数量翻倍，经过多个循环，目标DNA的数量会大幅增加。

RT-qPCR通过引入荧光探针实现对PCR扩增产物的实时检测。

荧光探针也是一种短链DNA片段，其中包含一个荧光染料和一个荧光信号抑制器。

荧光信号抑制器通过与荧光染料的近距离接触，抑制了荧光信号的发射。

当荧光探针与PCR扩增产物结合时，荧光信号抑制器与荧光染料分离，荧光信号得以释放。

通过荧光信号的增加可以判断PCR扩增产物的数量。

RT-qPCR的步骤包括样品处理、反转录、PCR扩增和荧光信号检测。

首先，需要从待检测样品中提取出核酸。

然后，通过反转录酶将RNA转录成cDNA，以便后续PCR扩增。

接下来，将引物、荧光探针和PCR反应液与样品一起加入PCR扩增管中。

PCR扩增过程中，荧光探针与PCR产物结合，并释放荧光信号。

PCR扩增和荧光信号检测是在同一反应管中进行的，所以可以实现实时监测。

最后，根据荧光信号的强度，可以计算出PCR扩增产物的初始数量。

RT-qPCR具有高灵敏度、高特异性和高准确性的特点。

它可以在短时间内检测到低浓度的核酸，并且能够区分不同的核酸序列。

反转录pcr原理及应用反转录PCR（RT-PCR）是一种将RNA转化为DNA并进行扩增的技术。

它利用酶逆转录酶（reverse transcriptase）将RNA逆转录为互补的cDNA，然后通过聚合酶链式反应（PCR）扩增cDNA，从而实现对RNA表达的定量分析。

RT-PCR技术在分子生物学和医学领域中广泛应用，主要有以下几个方面：1. 定量分析RNA表达：因为RT-PCR技术可以将RNA表达量转化为cDNA扩增的数量，所以它可以用来定量分析基因在不同组织或条件下的表达。

2. 检测RNA病毒感染：RT-PCR技术可以用来检测病毒引起的RNA感染，如新冠病毒、HIV等。

3. 分析组织学标本：RT-PCR技术可以用于分析组织学标本中的RNA表达，如肿瘤组织中的癌基因表达等。

4. 检测基因突变：因为RT-PCR技术可以扩增含有突变的cDNA序列，所以它可以用来检测和鉴定基因突变。

5. RNA测序：RT-PCR技术可以用来预制RNA靶点，供后续RNA测序实验使用。

RT-PCR技术有多种不同的类型，它们的原理和应用有所不同。

以下介绍几种常见的RT-PCR技术：1. 实时荧光定量PCR（qPCR）：qPCR采用荧光探针实时检测PCR反应过程中扩增产物的数量，从而实现对RNA表达量的准确量化。

2. 反向转录-定量PCR（RT-qPCR）：RT-qPCR在RT-PCR的基础上，加入了荧光定量的测量方法，可以准确检测低浓度RNA样品中的表达情况。

3. 等温扩增RT-PCR：等温扩增RT-PCR是一种在恒定温度下进行的扩增，不需要特殊的PCR仪器，适合于在野外等条件下进行分析。

4. 数字PCR（dPCR）：dPCR是一种基于液滴PCR技术的扩增方法，可以用来检测少量RNA样品中的寡核苷酸序列。

虽然RT-PCR技术在RNA表达分析及临床应用方面有很多优势，但是这项技术也存在一些潜在的问题。

例如，使用PCR扩增技术时，可能会出现非特异性扩增产物，或者PCR抑制效应，这些都会影响数据分析的准确性。

简述RT-PCR的原理及应用1. RT-PCR的原理RT-PCR（Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction）是一种将RNA转录成DNA并通过聚合酶链式反应（PCR）扩增的技术。

它结合了逆转录反应（RT）和PCR技术，能够从RNA分子中扩增出目标序列的DNA片段。

RT-PCR的原理可以分为以下几个步骤： - 逆转录反应：在逆转录酶（RT酶）的作用下，将RNA模板反转录成单链cDNA（互补DNA）。

- 第一链合成：通过加入一条适配器序列，形成一条新的DNA链，并使其保持单链状态。

- 第二链合成：加入第二个引物，依靠DNA聚合酶进行DNA链的合成。

此时，所得到的双链cDNA与原始RNA分子完全互补。

这样，通过逆转录和扩增两个步骤，我们可以从RNA模板中获得目标序列的DNA片断。

接下来，这些DNA片段可以通过PCR技术进一步扩增，以获取更多目标DNA。

2. RT-PCR的应用RT-PCR技术具有广泛的应用范围，包括以下几个方面：2.1 基因表达分析RT-PCR广泛应用于基因表达分析领域，其敏感性、特异性和快速性使其成为研究基因表达的重要工具。

通过从细胞中提取RNA，然后经过逆转录反应合成cDNA，最后通过扩增PCR得到目标基因的片段，可以定量分析目标基因在不同条件或组织中的表达水平。

2.2 病毒检测与诊断RT-PCR技术在病毒检测和诊断方面具有重要的应用价值。

病毒RNA是RT-PCR的理想模板，通过逆转录和扩增，可以检测病毒的存在和数量。

例如，在COVID-19大流行期间，RT-PCR被广泛用于检测冠状病毒的RNA，以诊断感染者和筛查潜在的传播者。

2.3 遗传疾病筛查RT-PCR也被广泛用于遗传疾病的筛查，特别是单基因遗传病的检测。

通过RT-PCR扩增目标基因的DNA片段，可以鉴定致病基因的突变。

这对于帮助家族中可能患有遗传病的个体进行早期诊断和咨询是非常重要的。

实时荧光定量PCR技术详解和总结
一、什么是实时荧光定量PCR
实时荧光定量PCR（Real-Time Quantitative Polymerase Chain Reaction，简称RT-qPCR）是一种PCR扩增技术，具有灵敏度高、重复性好等特点，可以在实时监测PCR扩增过程中特定片段DNA的产生。

它可以用来检测细胞中其中一特定基因mRNA的表达水平，从而揭示基因活动和表达情况，同时用于特定基因检测，如非病毒性疾病的病原检测以及芯片高通量分析等。

二、实时荧光定量PCR的基本原理
实时荧光定量PCR其基本原理就是利用PCR技术，在特定温度、适当时间内，将少量的模板 DNA 放大成数十亿倍以上。

实时荧光定量PCR的一大特点就是，它能够在实时监测PCR的扩增过程中，随时得知扩增物（amplicon）的数量。

根据扩增的量，从而确定所检测样本中的特定片段DNA的数量，即“定量”。

实时荧光定量PCR可实现定量检测，是因为它引入了一种特殊的参考基因，即“内参基因”，其用来抵消PCR条件、酶种类、反应液等的影响，从而测定量结果的准确性。

三、实时荧光定量PCR的实验步骤
（一）模板提取和核酸纯化：根据实验材料，提取DNA或RNA模板，进行核酸纯化，获得纯度较高的核酸。

（二）制备PCR反应液：制备由dNTPs、PCR酶、聚合酶等试剂组成的PCR反应液，根据所要检测的基因。

RT-qPCR实验技术方案基本概念荧光定量逆转录PCR (quantitative reverse transcription PCR, RT-qPCR)是在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号累积实现了实时监测整个PCR进程，并对起始模板进行定量分析的方法。

首先通过采集的样本来提取RNA，然后将提取的RNA通过逆转录酶合成互补DNA (cDNA)。

随后，以cDNA为模板进行qPCR反应，实时采集荧光信号来监控扩增反应过程。

目前RT-qPCR用于多种分子生物学领域，在科研端可用于基因表达量分析、病原体检测、RNA干扰验证，同时也是分子体外诊断的行业金标准，例如在临床疾病诊断、动物检验检疫、食品安全和科学研究等应用场景均有涉及，尤其在新型冠状病毒、肝炎、艾滋病、流感、登革热、感染性腹泻等的检测、诊断和治疗上发挥着重要作用。

RT-qPCR实验方案样本处理样本采集1.避免外源RNase影响外源无处不在RNase是导致RNA降解的主要因素。

采集和实验环境要尽可能整洁，使用的耗材需要用DEPC处理或购买无酶耗材；同时实验人员操作迅速熟练，缩短降解时间2.避免内源RNase影响某些富含RNA内源酶的部位(如脾脏、胸腺) 本身就容易降解，建议在液氮条件下将组织碾碎，且匀浆时使用更多裂解液。

3.根据提取量分装样本取样前先明确一次提取的组织量，取样后按照一次提取的量分管保存，避免二次分管和并管造成的污染和降解。

4.选择高丰度组织部位不同组织部位的RNA丰度不同，需尽量选用高丰度的组织部位，如动物样本的肝脏、脾脏、心脏的RNA丰度可达2-4 μg/mg，植物样本中的叶片、根茎为0.2-0.3 μg/mg。

样本保存保存方式对样本RNA质量有着极大影响，需要根据样本类型选择较为保存方式和操作方法。

一般保存方法都是用RNA组织细胞保存液(ATG #R202)或者Trizol (ATG #201) 低温保存组织细胞，若暂时不抽提RNA，可在低温下适当研磨匀浆后用液氮速冻，适当的匀浆有利于细胞分散充分接触保存液(浸透)，减少大块样本内部RNA降解；血液样本可以适当加入抗凝剂比如柠檬酸钠。

rtqpcr原理RT-qPCR（real-time quantitative polymerase chain reaction）是一种用于检测DNA或RNA的数量的分子生物学技术。

它基于PCR技术，通过测量PCR反应过程中的荧光信号来实时监测DNA或RNA的扩增过程，从而能够准确、快速地定量分析样品中目标基因的表达水平或拷贝数。

本文将详细介绍RT-qPCR的原理及其在科研和临床中的应用。

RT-qPCR的原理主要包括RNA反转录、PCR扩增和荧光信号检测三个步骤。

首先，RNA反转录将RNA转录为cDNA，即反转录过程。

然后，PCR扩增通过DNA聚合酶酶链反应（PCR）使得目标DNA序列在体系中不断复制，从而形成指数级增长。

最后，荧光信号检测通过荧光染料实时监测PCR过程中的DNA合成量，从而得到实时的扩增曲线。

这三个步骤共同构成了RT-qPCR的原理。

RT-qPCR在科研和临床中有着广泛的应用。

在科研领域，RT-qPCR可以用于基因表达分析、病原微生物检测、基因型鉴定等方面。

在基因表达分析中，科研人员可以通过RT-qPCR技术准确地测定目标基因在不同组织或不同处理条件下的表达水平，从而揭示基因在生物学过程中的功能和调控机制。

在病原微生物检测中，RT-qPCR可以快速、灵敏地检测样品中的微生物DNA或RNA，对于临床诊断和疾病监测具有重要意义。

在临床领域，RT-qPCR常被用于病毒载量检测、癌症早期诊断、药物代谢鉴定等方面。

例如，临床医生可以利用RT-qPCR技术监测病毒患者血液中病毒载量的动态变化，指导临床治疗方案的调整。

总之，RT-qPCR作为一种准确、快速、灵敏的分子生物学技术，已经成为科研和临床实验室中不可或缺的工具。

它的原理简单清晰，应用广泛多样，为生命科学领域的研究和临床诊断带来了许多便利和突破。

相信随着技术的不断进步和完善，RT-qPCR在未来会有更加广阔的发展前景。

RTPCR的原理实验步骤及应用概述逆转录聚合酶链式反应（Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction，简称RT-PCR），是一种常用的分子生物学实验技术，用于检测和定量分析RNA分子在细胞中的表达水平。

本文将介绍RT-PCR的原理、实验步骤及应用。

原理RTPCR利用逆转录酶（Reverse Transcriptase，简称RT）将RNA模板逆转录为cDNA（complementary DNA），然后通过聚合酶链式反应（Polymerase Chain Reaction，简称PCR）对cDNA进行扩增，最终得到大量的目标DNA片段。

RT-PCR的基本原理如下：1.逆转录：反转录酶RT利用RNA模板合成与之互补的cDNA。

在逆转录过程中，需要引入一条逆转录引物（反向互补RNA链）作为反转录的起始点。

2.PCR扩增：将逆转录合成的cDNA作为模板，引入一对特异性引物，通过PCR反应进行DNA扩增。

PCR反应分为三个步骤：变性、退火和扩增。

3.变性：将反应温度升高至95°C，使DNA双链变性为两条单链。

4.退火：将反应温度降低至特异性引物的退火温度，使引物与模板序列互相结合。

5.扩增：将反应温度升高至适合DNA聚合酶的活性温度，使DNA聚合酶逆反应合成DNA。

通过多轮的PCR反应，可以扩增出大量的目标DNA片段，其数量呈指数级增长。

实验步骤1. 样品处理首先需要从待检测的样品中提取总RNA，常用的提取方法有酚氯仿法和柱式纯化法。

提取得到的总RNA需要通过比色法或者用分光光度计进行测量，确保样品的质量和浓度。

2. 逆转录反应逆转录反应是将RNA模板转录为cDNA的过程。

需要准备逆转录试剂盒，主要包括逆转录酶、随机引物、dNTPs（脱氧核苷酸三磷酸盐）和逆转录缓冲液。

按照试剂盒说明书的配方，将总RNA与逆转录试剂混合，进行逆转录反应。

反应结束后，需要进行热灭活，以停止反应。

rtqpcr原理RT-qPCR（real-time quantitative polymerase chain reaction）是一种用于检测和定量DNA或RNA分子的技术。

它是PCR技术的一种改进，能够实时监测PCR反应过程中的增长曲线，从而可以精确地定量目标分子的数量。

本文将介绍RT-qPCR的原理及其在科研和临床中的应用。

RT-qPCR的原理基于PCR技术，PCR是一种体外扩增DNA的方法，通过反复的循环使得DNA序列得以复制。

RT-qPCR在PCR的基础上增加了实时监测功能，通过荧光信号实时监测PCR反应过程中的DNA合成量。

在RT-qPCR中，首先需要将RNA模板转录成cDNA，然后利用DNA聚合酶进行扩增，同时监测PCR反应过程中的荧光信号，从而实时定量目标分子的数量。

RT-qPCR的原理主要包括以下几个步骤，首先是RNA的逆转录（RT）反应，将RNA转录成cDNA；然后是PCR扩增反应，利用引物和荧光探针进行DNA的扩增和实时监测；最后是数据分析，根据荧光信号的变化，可以计算出目标分子的初始数量。

在RT-qPCR中，荧光信号的监测是实现定量的关键。

通常采用SYBR Green或探针技术来监测PCR反应过程中的DNA合成量。

SYBR Green是一种DNA结合染料，当与双链DNA结合时会发出荧光信号，因此可以实时监测PCR反应的进程。

而探针技术则是设计特定的探针，当探针与目标序列结合时会发出荧光信号，通过监测探针的荧光信号变化来实现定量。

RT-qPCR技术在科研和临床中有着广泛的应用。

在科研领域，RT-qPCR可以用于基因表达分析、病原体检测、基因型分析等领域。

在医学临床中，RT-qPCR被广泛应用于疾病诊断、药物疗效监测、肿瘤标志物检测等方面。

由于其高灵敏度、高特异性和高准确性，RT-qPCR已成为生物医学研究和临床诊断中不可或缺的技术手段。

总之，RT-qPCR作为一种高效、准确的分子生物学技术，其原理基于PCR技术的改进，通过实时监测PCR反应过程中的荧光信号来实现DNA或RNA分子的定量。

RT-PCR的原理、实验步骤及应用1. 原理RT-PCR（逆转录聚合酶链式反应）是一种常用的分子生物学技术，它结合了逆转录和聚合酶链式反应的原理，用于检测和定量RNA的表达水平。

下面是RT-PCR的基本原理：•首先，通过逆转录作用，将RNA转录成相应的cDNA（互补DNA）。

逆转录酶会在反应中合成cDNA互补链，其中DNA聚合酶将dNTPs部分替换为对应的ddNTPs（荧光标记的核苷酸）用于标记合成的cDNA。

•然后，在PCR反应中使用特定的引物（primers）来扩增目标cDNA。

引物是两个短的DNA序列，它们能够与cDNA互补的序列部分结合，从而指导DNA聚合酶合成新的DNA链。

•最后，通过荧光检测仪读取PCR反应体系中的信号，从而定量检测目标RNA的表达水平。

2. 实验步骤RT-PCR实验通常包括以下步骤：2.1 样品准备•收集所需的细胞或组织样品，并保存在RNA保护液中以保护RNA的完整性。

•如果需要，使用RNA提取试剂盒从细胞或组织中提取RNA。

2.2 逆转录反应•准备RT-PCR反应体系，包括逆转录酶、随机引物、RNA样品和其他反应组分。

•混合反应液，然后进行逆转录反应。

此步骤通常在反应器中以特定温度下进行。

2.3 PCR反应•将逆转录反应产生的cDNA用作PCR反应的模板。

•准备PCR反应体系，包括DNA聚合酶、引物和其他反应组分。

•将PCR反应液混合均匀，然后进行PCR反应。

PCR反应通常包括一系列的循环，在每个循环中，温度会发生变化以使DNA链合成和扩增。

2.4 结果分析•将PCR反应体系中的产物用琼脂糖凝胶电泳进行分离。

•根据PCR反应产物大小，使用合适的染料将琼脂糖凝胶染色。

•使用紫外线透射仪观察琼脂糖凝胶中的DNA带，以便分析目标基因的扩增效果。

3. 应用RT-PCR广泛应用于分子生物学和医学领域，具有以下应用方面：•基因表达分析：通过测量RNA的表达水平，可以了解目标基因在不同样品中的表达情况，从而研究基因调控、识别潜在的生物标记物等。

rt-qpcr是一种结合了逆转录和实时荧光定量PCR技术的方法，用于对RNA分子进行定量检测。

其原理主要包括三个方面：逆转录、PCR 扩增和实时荧光定量检测。

1. 逆转录rt-qpcr实验首先需要将RNA转录为cDNA，这是通过逆转录酶（Reverse Transcriptase）催化的反应来实现的。

逆转录酶可以将RNA模板转录成相应的cDNA，为后续的PCR扩增提供模板。

2. PCR扩增在cDNA合成完成后，接下来是PCR扩增反应。

PCR扩增需要引物（primers）来选择性地扩增目标基因的片段。

在PCR过程中，引物与模板结合，逐渐扩增出大量目标片段，这些片段即为实验所关注的RNA分子的转录产物。

3. 实时荧光定量检测在PCR扩增过程中，可以加入SYBR Green等实时荧光染料，以实现实时监测PCR反应过程中产生的DNA片段数量。

这种实时荧光检测技术可以实现对PCR反应的动态观察，并能够定量分析反应体系中的DNA含量。

rt-qpcr实验步骤主要包括样品准备、逆转录、PCR扩增和荧光定量检测，以下为详细步骤：1. 样品准备首先需要准备待检测的RNA样品，其中包括目标RNA分子的提取、纯化和定量等工作。

样品的处理质量将直接影响后续实验结果的准确性和可靠性。

2. 逆转录将RNA样品与逆转录酶、随机引物和dNTPs等混合物一起进行逆转录反应。

逆转录过程一般包括以下步骤：首先将RNA与随机引物混合，然后加入dNTPs和逆转录酶，进行逆转录反应。

3. PCR扩增在逆转录完成后，将逆转录得到的cDNA作为模板，与特定引物和PCR Master Mix（包括酶、缓冲液和dNTPs等）进行PCR扩增反应。

PCR扩增条件需要根据引物的特性和目标片段的长度进行优化，以保证扩增反应的特异性和准确性。

4. 荧光定量检测在PCR扩增过程中，引入实时荧光染料（如SYBR Green）或探针（如TaqMan探针）来进行荧光定量检测。

rtqpcr原理RT-qPCR（real-time quantitative polymerase chain reaction）是一种准确、快速、灵敏的核酸定量技术，广泛应用于基因表达分析、病原体检测、基因型鉴定等领域。

本文将介绍RT-qPCR的原理及其在科研和临床中的应用。

RT-qPCR原理。

RT-qPCR是一种结合了逆转录（RT）和聚合酶链式反应（PCR）的技术，能够在同一反应体系中完成RNA的逆转录和DNA的扩增。

其原理主要包括以下几个步骤：1. RNA逆转录，首先，RNA模板经过逆转录酶的作用，转录成相应的cDNA。

逆转录过程中，逆转录酶利用RNA模板合成cDNA，同时RNA模板被降解，生成单链cDNA。

2. DNA扩增，接下来，利用PCR酶和引物对cDNA进行扩增。

PCR酶在不断的退火、延伸和连接过程中，将cDNA逐渐扩增成双链DNA。

3. 荧光信号检测，在扩增的过程中，荧光探针与扩增产物结合，释放出荧光信号。

荧光信号的强度与起始模板的数量成正比，通过检测荧光信号的变化，可以实时监测扩增过程。

RT-qPCR的应用。

RT-qPCR技术具有高灵敏度、高特异性和高准确性的特点，因此在科研和临床中有着广泛的应用。

1. 基因表达分析，科研人员可以利用RT-qPCR技术对特定基因在不同组织、不同时间点或不同处理条件下的表达水平进行定量分析，从而揭示基因在生物学过程中的功能和调控机制。

2. 病原体检测，临床上常用RT-qPCR技术对病原体（如病毒、细菌等）进行快速、准确的检测，对于传染病的早期诊断和流行病学调查具有重要意义。

3. 基因型鉴定，RT-qPCR技术可用于检测基因多态性和基因突变，对于遗传性疾病的诊断和个体化治疗具有重要意义。

总结。

RT-qPCR作为一种高效、准确的核酸定量技术，已经成为分子生物学和临床诊断中不可或缺的工具。

通过实时监测扩增过程中的荧光信号，可以快速获取目标核酸的数量信息，具有高通量、高灵敏度和高特异性的优势。

RT-PCR的基本原理及应用1. 介绍逆转录聚合酶链式反应（RT-PCR）是一种广泛应用于分子生物学研究中的技术方法。

它结合了逆转录和聚合酶链式反应（PCR）两种关键技术，能够在研究中快速、高效地扩增目标DNA片段。

本文将介绍RT-PCR的基本原理及其在生物学、医学和遗传学等领域中的应用。

2. RT-PCR的基本原理RT-PCR主要包含以下步骤： - 逆转录：使用反转录酶将RNA转录为互补的DNA模板。

反转录酶在逆转录过程中合成互补的DNA链，使得RNA转变为DNA 模板。

- 聚合酶链式反应：使用DNA聚合酶通过不断的复制和扩增DNA模板来合成目标DNA片段。

聚合酶链式反应通过两个引物将目标序列夹在中间，然后利用DNA聚合酶将这两个引物的序列逐渐复制扩增，产生大量的目标DNA片段。

3. RT-PCR的应用场景RT-PCR在科学研究和医学诊断中有着广泛的应用，以下是一些常见的应用场景：3.1 基因表达分析RT-PCR可以用来检测和分析基因的表达水平，通过测量特定基因的mRNA水平来了解该基因在细胞或组织中的表达情况。

这种方法可以帮助研究人员深入了解细胞信号传导、疾病发展以及药物治疗的效果等。

3.2 病原体检测RT-PCR在病原体检测中具有高度的敏感性和特异性，可以用于快速准确地检测病原体的存在。

例如，在流行病学研究中，RT-PCR可以用来检测病毒、细菌或真菌感染，从而帮助医生选择最佳的治疗方法。

3.3 遗传疾病筛查许多遗传性疾病可以通过RT-PCR来进行筛查和诊断。

通过检测具有特定基因突变的人体细胞中的mRNA，医生可以确定是否存在特定遗传突变，从而帮助确定疾病的风险和预后。

3.4 癌症诊断和监测癌症细胞通常会表达特定的基因表达模式，这些模式可以通过RT-PCR来检测和分析。

通过分析癌细胞中特定基因的表达水平，医生可以帮助诊断和监测癌症的类型、进展和治疗效果。

4. RT-PCR的优势和局限性4.1 优势•高灵敏度：RT-PCR可以检测到非常低浓度的目标DNA或RNA，具有高度的灵敏度。

定量逆转录-聚合酶链反应（RT-qPCR）一、实验原理逆转录-聚合酶链反应(Quantitative Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction，RT-qPCR)的原理是：提取组织或细胞中的总RNA，以其中的mRNA作为模板，采用Oligo （dT）或随机引物利用逆转录酶反转录成cDNA，再以cDNA为模板进行PCR扩增，而获得目的基因或检测基因表达。

二、实验步骤（一）总RNA提取1.Trizol裂解收集各处理组细胞于1.5ml离心管，用PBS缓冲液洗涤1次，每5～10×106个细胞加入1ml Trizol，吹打数次，使细胞充分裂解，室温静置5min。

（裂解后若不能及提取RNA，可在加入Trizol后，将其保存于-80℃）2.氯仿（三氯甲烷）萃取（1）每管加入200ul氯仿（Trizol :氯仿= 5 : 1），盖好离心管后，涡旋震荡15s后，放置室温静置2min。

（2）4℃、12000rpm条件下离心15min后，溶液分为上、中、下3层，上层为水相（无色透明，含RNA），下层为有机层（粉红色，含DNA和蛋白质等）。

3.异丙醇沉淀（1）吸取上层水相（约500μL）至RNase-free离心管中。

（不要吸到中间层）（2）加入500μL异丙醇（与上层水相等量），颠倒混匀数次。

（不要剧烈摇晃）（3）4℃、12000rpm条件下离心15min后，吸弃上清液，保留底部白色沉淀。

4.75%乙醇洗涤沉淀（1）加入1mL 75%乙醇（现配现用，DEPC水:无水乙醇= 1:3，配制后上下颠倒混匀）洗涤沉淀，涡旋震荡。

（2）4℃、12000rpm条件下离心5min后，吸弃上清液，将离心管开盖干燥10min。

5. RNA干燥溶解每管加入50μL DEPC水，盖好离心管后，敲打溶解。

（二）RNA浓度和纯度检测1.提前10min对酶联免疫分析仪进行预热。

2.用DEPC水洗涤微量比色皿。