生物制药技术试验

  • 格式:pdf
  • 大小:287.95 KB
  • 文档页数:10

生物制药技术实验

实验一 多粘菌素E发酵及管碟法测定生物效价

一、目的要求

了解抗生素发酵的基本过程。

了解管碟法测定抗生素生物效价的基本原理。

学会管碟法测定抗生素效价方法,并学习抗生素发酵过程一些重要生理生化指标分析。

二、基本原理

多粘菌素E是由多粘芽孢杆菌产生的一种碱性多肽类抗生素,由10个氨基酸和1个脂肪酸衍生物

构成。结构如图5-1。

多粘菌素E主要对绿脓杆菌、百日咳杆菌、大肠杆菌等革兰氏阴性细菌有显著的杀菌作用(是作用

于细胞膜的抗生素)。是治疗烫伤、肠道疾病、呼吸道疾病、尿路感染、眼部感染及外科手术感染时较

好的药物。

抗生素液体发酵共分三大工序:菌种、发酵、提炼。配合三个工序进行分析化验和有关产物测定。

(一) 菌种

图5-1 多粘菌素E的结构式 生物制药技术实验

种子质量指标:无杂菌,全部形成芽孢,摇瓶发酵效价达35 000 u/mL以上(30℃,48 h培养,

方可用于生产。

(二) 发酵

抗生素发酵过程除需经常镜检排除杂菌污染外,接种12 h后,每2 h进行一次pH、生物量、总糖、

还原糖、氨基氮测定。多粘菌素E发酵一级种子同时需检测2,3-丁二醇,发酵需检测糊精和抗生素效

价。

一级种子质量指标:无杂菌,全部杆菌,粗壮整齐,无噬菌体;pH 5.5~6.0;刚刚出现2,3-丁二醇。

二级发酵质量指标:菌体粗壮整齐,无噬菌体和杂菌感染;pH 6.0;糊精刚刚消失;多粘菌素E

效价10000~35000 u/mL。

(三) 提炼

衡量抗生素发酵液中抗菌物质的含量称效价。抗生素效价测定可采用化学法或生物效价测定法。

生物效价测定有稀释法、比浊法、扩散法三大类。管碟法是扩散法的一种。本实验采用管碟法测定抗

生素的效价。

管碟法就是利用有一定体积的不锈钢制的小管,叫牛津杯,将抗生素溶液装满小杯,并在含有敏

感试验菌的琼脂培养基上进行扩散渗透作用,经过一定时间后,抗生素扩散到适当的范围,产生透明

的抑菌圈。抑菌圈的半径与抗生素在管中的总量(单位)、抗生素的扩散系数(cm2/h)、扩散时间(即抗生

素溶液注入钢管至出现抑菌圈所需的时间)、培养基的厚度(mm)和最低抑菌浓度(u/mL)等因素有关。

抗生素总量的对数和抑菌圈直径的平方呈直线关系。因此,抗生素效价可以由抑菌圈的大小来衡量。

将已知效价的多粘菌素E硫酸盐标准液先制成标准曲线,比较已知效价标准液与未知效价的被检品溶

液的抑菌圈的大小,就可算出样品中抗生素的效价。

三、实验材料

(一) 菌种

多粘芽孢杆菌19、大肠杆菌A1.543、检测多粘菌素E敏感指示菌。

(二)培养基(见附录)

1.麸皮培养基(保存和活化菌种用)

配制麸皮培养基100 mL,分装30支试管、每管约3mL培养基,100Pa灭菌20 min.冷凉

摆斜面,供全班同学使用。

2.种子培养基 砂子孢子

(4℃±1℃冰箱保存) 第一代孢子(试管斜面)

(28℃麸皮培养基,培养5 d) 第二代孢子(茄瓶或克氏瓶)

(28℃麸皮培养基,培养5 d)

种子罐发酵(一级,种子培养基)

(30℃±2℃,培养12~16 h) 发酵罐发酵(二级,发酵培养基)

(28~30℃,培养48 h) 放罐

发酵液 滤液 中和滤液 饱和树脂 解吸液

白色粉末(成品)多粘菌素E硫酸盐 多粘菌素游离碱 中和氧化滤液 草酸酸化

板框压滤 加NaOH中和

板框压滤

中和、氧化、过滤 加氨水沉淀

离心甩干,洗去氨 加6 mol/L H2SO4,调pH

6.0~6.5, 溶解 加NaOH及KMnO4 解吸

喷雾干燥 1 mol/L H2SO4

吸附 上离子交换柱 生物制药技术实验

配制200 mL(实际160 mL)种子培养基,分装于250mL锥形瓶,每瓶装30mL。100 Pa灭菌20 min,

供4人使用。

3.发酵培养基

配制300 ml(实际240 mL)发酵培养基,分装于500mL 锥形瓶,每瓶装30 mL。100Pa灭菌20min,

供4人使用。

4.效价捡测用的底层培养基(含2%琼脂)

配制200mL底层培养基,分装于250 mL锥形瓶,每瓶装50 mL。100Pa灭菌20min,供4人使用。

5.效价检测用的上层培养基

配制300 mL上层培养基,分装于250 mL锥形瓶,每瓶装50 mL。100 Pa灭菌20 min,供4人使用。

6.大肠杆菌A1.543保存和活化培养基

配制100 mL培养基,分装30支试管,每管约3 mL培养基,100 Pa灭菌20 min,灭菌后摆成斜

面,供全班同学使用。

7.无菌生理盐水

每管5 mL,每人2管。

(三) 试剂

1. 2,3-丁二醇测定试剂(V.P.试剂) 见附录。

2. 糊精测定试剂(碘液) 见附录。

3. 多粘菌素E测定试剂 见附录。

(1)1/15mol/L pH 6.0磷酸缓冲液 见附录。分别配制500 mL 1/15 mol/L pH 6.0 KH2PO4溶液;

l00mL 1/15mol/L pH 6.0 Na2HPO4·2H2O溶液。将上述二种溶液按KH2PO4:Na2HPO4=9:1比例混合,然

后分装于250 mL锥形瓶中,每瓶装100 mL,100 Pa灭菌20 min,供全班同学使用。

(2) 多粘菌素E标准液 见附录。先用1/15mol/L pH 6.0 磷酸缓冲液配制1mL含10 000单位多粘

菌素E母液,贮于冰箱中。临用前再稀释至每mL含1000单位。

(四) 仪器

恒温箱、摇床、水浴锅、台式离心机、台秤等

(五) 其他物品

1. 每组两人,洗涤、包扎、灭菌物品

移液管(1mL)8只、滴管(长管细口)8支、镊子4把、培养皿10套、陶瓷盖10个,洗涤挑选规格相

同的牛津杯(8个/每皿) 4套。

2. 每组两人,洗涤备用玻璃器皿

大试管4支,小试管8支,离心管4支,玻璃小漏斗4个,5 mL移液管4支,1 mL 移液管4支,

10 mL移液管8支,250 mL锥形瓶4个,载玻片8张等。

四、实验内容

(一) 发酵

1. 种子培养

将多粘芽孢杆菌E由斜面接入盛有种子培养基的锥形瓶内,于转速为220~240 r/min 旋转式摇床

上振荡培养12~16 h,进行镜检、pH和2,3-丁二醇测定。以2,3-丁二醇出现时间为转移种子的最适时间。

本实验只选用培养16 h的种子接入发酵瓶。同时进行镜检、pH和丁二醇测定。

2. 发酵

本实验发酵在锥形瓶内进行。

分别吸取培养好的种子液3.5 mL,接入盛有发酵培养基的多个发酵瓶内(500 mL 锥形瓶盛发酵培

养基30 mL,30℃振荡培养36~48 h,一般培养至40 h取出1 瓶发酵液,镜检并测定pH和糊精,其余

发酵瓶继续振荡培养,以后每隔1 h检测一次,直至无糊精时发酵结束。本实验采用培养48 h的发酵

液进行镜检、pH、糊精和多粘菌素E效价测定。 生物制药技术实验

(二) 提取(发酵液中多粘菌素E粗品提取)

抗生素可分泌胞内或胞外,分泌于细胞内的抗生素通常采用加热酸化处理,使细胞壁破裂,抗生

素释放。本实验采用此法。

取发酵液25mL,加入0.5 g 草酸,放在沸水浴中煮沸0.5 h,使菌体内的多粘菌素E迅速释放,然

后用冷水迅速冷却,经滤纸过滤,此滤液即含多粘菌素E的样品。

(三) 测定

1. 镜捡

在油镜下观察简单染色涂片后的各生长期多粘芽孢杆菌个体形态,辨别有无杂菌和噬菌体污染,

菌体被噬菌体感染后,往往染色不匀,菌体变形。包括麸皮斜面、种子液和发酵液。

2. pH 测定

用精密pH试纸测定种子液转移和发酵终止时发酵液的pH。

3. 2,3-丁二醇测定

种子瓶从12 h开始就检测2,3-丁二醇,以后每2 h 测定一次。取发酵液2 mL,用蒸馏水稀释5倍,

3000 r/min 离心10 min,取上清液约0.5 mL,加40%KOH溶液约1mL,再加5% α-奈酚3滴,加5%

碳酸胍3滴,摇动几分钟,或水浴加热5 min,出现粉红色即可移种。

4. 糊精测定

发酵瓶36~40 h后,就开始测定糊精。取发酵液1mL,用蒸馏水稀释至25 mL,加3滴碘液,蓝

紫色消失就可终止发酵。

5. 多粘菌素E效价测定

本实验用不同浓度的多粘菌素E溶液作标准曲线,以抑菌圈直径的平方值为横坐标,多粘菌素E

标准品效价的对数值为纵坐标,绘制标准曲线作为定量依据。具体作法如下:

(1) 大肠杆菌菌悬液制备 取活化的大肠杆菌A1.543菌种接种于大肠杆菌活化培养基斜面,37℃

培养24 h,然后每支斜面加无菌生理盐水10 mL,刮下菌苔,搓匀。

(2) 倒底层平板 将灭菌的2%琼脂水底层培养基加热融化后,冷凉至45~50℃左右,倾倒入培养

皿制成底层平板,每人2~3个,凝固后于皿底贴上标签。

(3) 制备混菌上层平板 将检测用上层培养基加热融化后,冷凉至50℃左右,50 mL上层培养基

加入大肠杆菌菌悬液0.5mL,轻轻摇匀。在每一培养皿底层平板上加入10 mL混菌上层培养基(动作迅

速,以免培养甚中琼脂凝固;倾倒上层培养基时不要有气泡。若有气泡应赶到平板边缘),凝固后成上

层平板即为双碟备用。制备双碟时必须在水平的桌面上,并选择平底的培养皿。贴好标签的培养皿,

放于白瓷盘上。

(4) 滴加多粘菌素E标准品和样品 先将10 000 u/mL的标准多粘菌素E,用1/15mol/L pH 6.0

磷酸缓冲液稀释成800、1000、1200 u/mL。根据酸化后滤液颜色粗略估计发酵样品效价,用1/15 mol/L

pH 6.0的磷酸缓冲液稀释至1000 u/mL。

每人取制备好的2~3个双碟,打开皿盖,用无菌镊子夹取已灭菌的钢管(牛津杯),每个双碟中放

置钢管6个(如图5-1~2所示)。其中相间隔的3个钢管滴加多粘菌素E标准液。另外3个钢管滴加

发酵液样品。A管中用无菌滴管滴加多粘菌素E 800 u/mL的标准液,B管滴加多粘菌素E 1000 u/mL

的标准液,C管滴加多粘菌素E 1200 u/mL的标准液,D管滴加发酵样品稀释液。滴加时必须仔细小

心,勿在小钢管中形成气泡,勿使溶液流出管外,加的量各管要一致,恰好滴满。滴加完毕后,加上

灭菌陶瓷盖。将放双碟的白瓷盘小心平端于37℃恒温箱内,培养6~8 h后取出。

(5) 抑菌圈直径的测量及校正 将双碟中的钢管倒入白瓷缸中,加洗涤灵和水,然后煮沸0.5 h,

清水冲洗晾干。用玻璃皿盖换下白陶瓷盖,然后用卡尺测量双碟中每管抑菌圈的直径。