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植物叶绿素含量检测试剂盒说明书

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第 1 页，共 2 页植物叶绿素含量检测试剂盒说明书

微量法

货号：BC0995

规格：100T/96S产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致，有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称规格保存条件

提取液液体×1瓶（自备）4℃保存

试剂一粉剂×1瓶4℃保存

溶液的配制：

1、提取液：自备无水乙醇和丙酮，将无水乙醇：丙酮（V：V）=1:2混合待用，提供一个125mL空瓶。

产品说明：

植物叶绿素广泛存在于绿色植物组织中，是光合作用的细胞器。其含量与光合作用、营养状况密切相关，是

反应植物生长状况的重要指标。

叶绿素a和叶绿素b在645nm和663nm处有最大吸收，根据经验公式可计算得叶绿素a和叶绿素b以及总叶绿素的

含量。

注意：实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者

增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计/酶标仪、微量玻璃比色皿/96孔板（建议使用非聚苯乙烯材质的96孔板）、可调式移液枪、天

平、研钵/匀浆器、锡箔纸、蒸馏水、10mL试管、无水乙醇和丙酮。

操作步骤：

一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）

1. 取新鲜植物叶片或其它绿色组织，用蒸馏水洗干净，然后吸干表面水分，去掉中脉，称取约0.1g，剪碎放

入研钵或匀浆器中。

2. 加入1mL蒸馏水，少量试剂一（约10mg），在黑暗或弱光条件下充分研磨，转入10mL试管中。

3. 用提取液冲洗研钵，将所有冲洗液转入10mL试管中，用提取液定容至10mL，置于黑暗条件下或者包上

锡箔纸浸提3h，观察底部组织残渣颜色接近于白色则提取完全，若组织残渣未完全变白，继续浸提至组织残渣颜

色接近于白色。

二、测定步骤

1、分光光度计/酶标仪预热30min以上，调节波长至645nm和663nm，分光光度计用提取液调零。

2、取上层浸提液200μL于微量玻璃比色皿/96孔板中（若使用聚苯乙烯材质的96孔板，请在5min内尽快测定完成），

测定663nm和645nm处吸光值，分别记为A

663和A

645。

三、叶绿素的计算

叶绿素a含量（mg/g 质量）=（21.2×A

663-4.48×A

645）×V提×F÷W÷1000 = 0.01×（21.2×A

663-4.48×A

645）×F÷W

叶绿素b

含量（

mg/g 质量）=（38.2×A

645-7.8×A

663）×V提×F÷W÷1000 = 0.01×（38.2×A

645-7.8×A

663）×F÷WBeijing Solarbio Science & Technology Co., Ltd

Tel: 400-968-6088

Http://www.solarbio.com 第 2 页，共 2 页叶绿素总含量（mg/g 质量）=（33.7×A

645+13.4×A

663）×V提×F÷W÷1000= 0.01×（33.7×A

645+13.4×A

663）×F÷W

V提：提取液体积，10mL；F：稀释倍数；W：样本质量，g。

注意事项：

1、叶绿素对光敏感，研磨和提取等操作尽量避光或者在弱光下进行。

2、一定要浸提至组织残渣完全变白，否则提取不充分。

3、用提取液冲洗研钵一定要冲洗至所有的绿色物质被转移至EP管。

4、测定时吸光值超过1，可进行适当稀释；当吸光值小于0.05时，可以适当减少V提取的用量，注意计算公式中

改变V提取数值。

5、若使用聚苯乙烯材质的96孔板进行测定，请在5min内尽快测定完成。

实验实例：

取0.1g吊篮加入1mL蒸馏水，少量试剂一（约10mg），在黑暗或弱光条件下充分研磨，转入10mL试管中。用

提取液定容至10mL，置于黑暗条件下或者包上锡箔纸浸提3h，之后按照操作步骤，测得A

663=0.637，A

645=0.27，

计算叶绿素a含量（mg/g 质量）=0.01×（21.2×A

663–4.48×A

645）×F÷W=0.01×（21.2×0.637–4.48×0.27）÷W=1.23

mg/g 质量；叶绿素b含量（mg/g 质量）=0.01×（38.2×A

645–7.8×A

663）×F÷W=0.01×（38.2×0.27–7.8×0.637）÷W=0.53

mg/g 质量；叶绿素总含量（mg/g 质量）=0.01×（33.7×A

645 +13.4×A

663）×F÷W=0.01×（33.7×0.27 +13.4×0.637）

÷W=1.76 mg/g 质量。

相关发表文献：

[1]FuYuan Zhu,MoXian Chen,WaiLung Chan,et al. SWATH-MS quantitative proteomic investigation of nitrogen

starvation in Arabidopsis reveals new aspects of plant nitrogen stress responses. Journal of Proteomics. September

2018;(IF3.537)

相关系列产品：

BC2210/BC22153-磷酸甘油醛脱氢酶（GAPDH）活性检测试剂盒

BC4330/BC4335植物类胡萝卜素含量检测试剂盒

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糖原含量检测试剂盒说明书

糖原含量检测试剂盒说明书

第1页，共2页

货号：QS2603 规格：50管/48样

糖原含量检测试剂盒说明书

可见分光光度法

正式测定前务必取2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

糖原是由葡萄糖单位构成的高分子多糖，是糖的主要的储存形式之一，主要贮存在肝和肌肉中作为备用能量，分别称为肝糖原和肌糖原。肝糖原可调节血糖浓度，当血糖升高时可在肝脏合成糖原，血糖降低时，肝糖原则分解为葡萄糖以补充血糖。因此，肝糖原对维持血糖的相对平衡十分重要。肌糖原是肌肉中糖的储存形式,在剧烈运动消耗大量血糖时，肌糖原不能直接分解成血糖，必须先分解产生乳酸,随血液循环到肝脏,通过糖异生转变为肝糖原或葡萄糖。

测定原理：

蒽酮法。利用强碱性提取液提取糖原，在强酸性条件下利用蒽酮显色剂测定糖原含量。

自备实验用品及仪器：

可见分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、浓硫酸（不允许快递）和蒸馏水。

试剂的组成和配制：

提取液：液体50mL×1瓶，4℃保存；

试剂一：0.1mg/mL 的葡萄糖标准液 10mL×1瓶，4℃保存；

试剂二：粉剂×1瓶， 4℃避光保存；

糖原提取：

1﹑细胞或细菌：收集500~1000万细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；加入0.75mL提取液超声波破碎细菌或细胞（功率20％或200W，超声3s，间隔10s，重复30次）；转移至10mL试管中，95℃水浴20min（盖紧，防止水分散失），隔5min振摇试管1次，使充分混匀；取出试管冷却后，用蒸馏水定容到5ml，混匀，8000g 25℃离心10min，取上清液待测。

2﹑组织：称取0.1~0.2g样品，加入0.75ml提取液充分匀浆；转移至10ml试管中；95℃水浴20min（盖紧，防止水分散失），隔5min振摇试管1次，使充分混匀；待组织全部溶解后，取出试管冷却后，用蒸馏水定容到5ml，混匀，8000g 25℃离心10min，取上清液待测。

绿色果蔬分离叶绿素及其含量测定

绿色果蔬分离叶绿素及其含量测定

绿色果蔬分离叶绿素及其含量测定

一、引言

叶绿素存在于果蔬、竹叶等绿色植物中。叶绿素在植物细胞中与蛋白质结合成叶绿体，当细胞死亡后，叶绿素即游离出来，游离叶绿素很不稳定，对光或热较敏感；在酸性条件下生成绿褐色脱镁叶绿素，加热可使反应加速；在稀碱液中可水解为叶绿酸盐（鲜绿色）、叶绿醇和甲醇。高等植物中叶绿素有a、b两种，二者都易溶于乙醇、乙醚、丙酮和氯仿中。 叶绿素的含量测定方法多种，其中有：

（1） 原子吸收光谱法：测定镁含量，可以间接算出叶绿素含量。

（2） 分光光度法：测定叶绿素提取液的最大吸收波长的光密度，然后通过公式计算获得叶绿素含量数据。此法快速、简便。其原理如下：

叶绿素a、叶绿素 b对645nm和663nm波长的光有强吸收峰，且两吸收曲线相交于652nm处。因此，测定提取液在645nm、663nm、652nm波长下的光密度，并根据经验公式计算，可分别得到叶绿素含量数据。

V

叶绿素a含量=[12.7(D663)—2.69(D645)]×————(mg/g鲜重)

1000×W

V

叶绿素b含量=[22.9(D645)—4.68(D663)]×—————(mg/g鲜重)

1000×W

V

总叶绿素a含量=[20.0(D645)+8.02(D663)]×————(mg/g鲜重)

1000×W

如果只要求测定总叶绿素含量， 则只需测定一定浓度提取液在652nm波长的

光密度。其总叶绿素含量按下式计算：

D 652 V

总叶绿素=————×————（mg/g鲜重）

34.5 1000×W

D——表示在所指定波长下，叶绿素提取液的光密度读数；

V——为叶绿素丙酮提取液的最终体积（mL）；

W——为所用果蔬组织鲜重（g）。

二、实验材料、试剂与仪器

绿叶青菜，黄瓜，玻璃砂。

丙酮。

分光光度计。

三、实验步骤

（一）叶绿素提取及含量测定

植物总酚(TP)检测试剂盒(比色法)说明书

植物总酚(TP)检测试剂盒(比色法)说明书

植物总酚(TP)检测试剂盒(比色法)说明书

本产品仅供体外研究使用，不得用于临床诊断

产品简介：

植物组织或果实中存在花青素、叶绿素、类胡萝卜素、类黄酮、酚类等物质，这些物质与果实等样品衰老过程密切相关，对其加工性能、存储、营养价值等都有重要影响。植物酚类物质具有清除自由基，抗氧化抗衰老的作用，具有较高的营养价值和医疗保健作用而广泛应用于化妆品、食品、医药等领域。

植物总酚检测试剂盒(比色法)检测原理是总酚(TotalPhenol)溶于有机溶剂，以有机溶剂粗提总酚，根据提取液的吸收光谱特性，可利用分光光度计在特定波长(280nm)处测定其吸光度，通过与标准曲线比较，计算出总酚含量，该试剂盒主要用于植物组织或果实中总酚的提取以及定量检测总酚含量。该试盒仅用于科研领域，不宜用于临床诊断或其他用途。

产品组成：产品名称规格保存条件说明书有效期

植物总酚(TP)检测试剂盒(比色法)50TRT1份1年

试剂(A):总酚标准(1mg/ml)5ml4℃避光1份1年

试剂(B):TPAssayBuffer500mlRT1份1年

叶绿素检测作业指导书

叶绿素检测作业指导书

叶绿素检测作业指导书

1.试剂

1.1碳酸镁悬浮液：称取1.0g细粉末碳酸镁悬浮于100ml蒸馏水中。每次使用

时，要充分摇匀。

1.2丙酮溶液：在900ml丙酮中加100ml蒸馏水。

1.3盐酸溶液：量取83ml盐酸溶于水中，冷却并稀释至1000ml。

2.测定步骤

2.1浓缩：在一定量的试样中添加0.2ml碳酸镁悬浮液，充分搅匀后，用直径60mm的微孔滤膜吸滤。过滤器内无水分后，还要继续抽吸几分钟。如果要延时提取，可把载有浓缩样品的滤膜放在干燥器里冷冻避光贮存。

2.2提取：将载有浓缩样品的滤膜放入研钵中，加入3ml丙酮溶液至滤纸浸湿的程度， 把滤膜研碎，再少量地加90%的丙酮溶液，把滤膜完全研碎，然后用90%丙酮溶液将已磨碎的滤膜和丙酮溶液洗入带刻度的带塞离心管中，使离心管内提取液的总体积不超过6ml，盖上管塞，置于4℃的暗处浸泡24h。

2.3离心：将离心管放入离心机中，以4000r/min速度离心分离20min。将上清液移入标定过的10ml具塞刻度管中，加少量90%丙酮溶液于原提取液的离心管中，再次悬浮沉淀物并离心，合并上清液。此操作重复2~3次，直至沉淀不含色素为止，最后将上清液定容至10ml。

2.4测定：取上清液于10mm或50mm的比色池中，以90%丙酮溶液为对照溶液，读取波长750,663,645和630nm的吸光度。选择比色池的光程长度或稀释度，使其光密度OD663大于0.2小于1.0。

3.结果表示

从各波长的吸光度中减去波长750nm的吸光度，作为已校正过的吸光度D，按下式计算叶绿素的浓度：

Ca=（11.64D663-2.16D645+0.10D630）V1/(V2·L)

Cb=(20.97D645-3.94D663-3.66D630)V1/(V2·L)

Cc=（54.22D630-14.8D645-5.53D663）V1/(V2·L)

式中:

Ca——叶绿素a的浓度；