高效液相色谱技术(HPLC)讲义
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高效液相色谱原理一讲一、色谱概述二、高效液相色谱(HPLC)三、几种主要的HPLC 四、HPLC特点、流程及主要部件什么是色谱色谱是色谱法的简称(又叫色层法,层析法),其本质是一种分离分析方法常见的分离方法蒸馏离心电泳过滤色谱(目前最有效的分离方法)一、色谱概述色谱法简介色谱法(Chromatography)溯源多年前俄国植物学家Tswett分离植物色素时采用的实验方法他将植物色素的石油醚提取液倒入装有碳酸钙的直立玻璃管,再加入石油醚使其自由流下,结果色素中各组份互相分离形成各种不同颜色的谱带Tswett用希腊语chroma(色)和graphos(谱)描述他的实验方法即现在的Chromatography(色谱法)色谱法的发展色谱法是一种现代的分离方法年正式命名世纪年代开始广泛研究和应用高效液相色谱法的广泛应用始于世纪年代色谱法原理色谱法的原理利用混合物中各组份在不同的两相(流动相、固定相)中溶解,分配,吸附等化学作用性能的差异,当流动相中所携带的混合物流过固定相时就会和固定相发生作用(力的作用)。
由于混合物中各组分在性质和结构上有差异与固定相发生作用的大小也有差异。
因此在同一推动力作用下不同组分在固定相中的滞留时间有长有短从而按先后不同的次序从固定相中流出。
两相中有一相是固定的,叫作固定相(StationaryPhase),有一相是流动的,称为流动相(MobilePhase),流动相又叫洗脱剂,溶剂相(Phase):物理化学术语,特指在某一系统中,具有相同成分及相同物理、化学性质的均匀物质部分。
各相之间有明显可分的界面。
分离分离是一个物理过程。
固定相(StationaryPhase)流动相(MobilePhase)进样(Injection)洗脱(Elution)相互作用(Interaction)Temporalcourse淋洗液色谱分离色谱法的分类()按分离过程的机理分:吸附色谱(AbsorptionChromatography)根据样品组分对活性固定相表面吸附亲和力的不同实现分离分配色谱(PartitionChromatography)分离基于样品组分在固定相和流动相中的溶解度(分配系数)不同离子交换色谱(IonExchangeChromatography)根据样品组份离子交换亲和力的差异分离,简称离子色谱(IC)亲和色谱GPC(GelPermeationChromatography)固定相是疏水性凝胶,流动相是有机溶剂GFC(GelFiltrationChromatography)固定相是亲水性凝胶,流动相是水溶液利用多孔性物质对不同大小的分子的排阻作用进行分离的方法体积排除色谱(SizeExclusionChromatography)利用生物大分子和固定相表面存在的某种特异性亲和力进行选择性分离。
高效液相色谱法(HPLC)一.概述色谱法是一种应用范围相当广泛的分离分析技术,它已有近百年的发展史。
二十世纪五、六十年代石油及石油化工的突起促使了GC技术大发展,而七、八十年代生命科学、生化、制药工业的发展推动了HPLC的迅速发展。
目前除分析化学外,生物化学,石油化学,有机化学,无机化学等学科都普遍采用色谱技术。
现代高效液相色谱仪,以其高效,快速和自动化等特点成为当代分析仪器中发展最快的仪器。
HPLC已成为操作方便、准确、快速并能解决困难分离问题的强有力的分析手段。
1.HPLC的特点(1)适用范围广已知有机物中仅20%不经预先化学处理,可用GC分析;而其余80%有机物可用HPLC分析。
HPLC适于分离生物、医学大分子和离子化合物,不稳定的天然产物,种类繁多的其它高分子及不稳定化合物。
(2)流动相及固定均与样品分子作用,而GC仅固定相与样品分子作用。
(3)具有独特性能的柱填料(固定相)种类较多,具有多种分离方式,适于各种化合物分析。
(4)分离温度较低,提高了分离效率。
(5)具有一些独特的检测器:电化学,示差折光,可见紫外吸收及荧光检测器等。
(6)样品易回收。
2.HPLC分类按分离机理分为四类:吸附色谱(液固):通过试样组分对活性固体表面吸附亲合力的不同实现分离。
对具有不同官能团的化合物和异构体有较高选择性,早期应用较多,现在大多可用正相键合相色谱替代,常用硅胶柱。
分配色谱:不同溶质分子按其在固定相和流动相中分配系数不同得到分离。
现代分配色谱即化学键合相色谱,是将各种不同的有机基团通过化学反应键合到硅胶表面,具有很好的化学稳定性和热稳定性。
大部分分离问题都可用键合相色谱解决。
离子交换色谱:以离子交换剂为固定相,试样中电离组分与交换剂基体相反电荷的离解部位亲合力不同而分离。
用于分离无机或有机离子。
固定相为阴(阳)离子交换树脂,流动相为电解质溶液。
分子排阻色谱:按物质分子量大小进行分离。
不仅对高聚物,对分子量差别较大的低聚物或小分子化合物也可进行分离。
高效液相色谱法(hplc)法
高效液相色谱法(HPLC)是一种分离和分析有机物的常用技术。
它是一种基于流体的分离技术,通过将一个溶液从静态或动态状态通过一个固定的表面进行分离来实现分离,在其中物质被分离、净化和分析。
HPLC是一种液体色谱技术,它可以使分子发生不同程度的分离,并对它们进行精确测量。
它可以用于分离复杂混合物中的成分,以及分析污染物、药物、细胞和酶等。
HPLC的工作原理是使用一种称为“柱色谱”的装置,其中包含一根被填充的柱,柱内装有一种吸附剂,当溶液中的物质被引入柱中时,它会在柱内部产生相应的反应,然后在柱的强度和柱顶部的压力之间产生一种排斥力,使物质在柱的不同位置分离,然后检测器将检测柱上的物质,从而达到分析的目的。
1407 高效液相色谱技术(HPLC )高效液相色谱(HPLC :High Performance Liquid Chromatography )是化学、生物化学与分子生物学、医药学、农业、环保、商检、药检、法检等学科领域与专业最为重要的分离分析技术,是分析化学家、生物化学家等用以解决他们面临的各种实际分离分析课题必不可缺少的工具。
国际市场调查表明,高效液相色谱仪在分析仪器销售市场中占有最大的份额,增长速度最快。
高效液相色谱的优点是:检测的分辨率和灵敏度高,分析速度快,重复性好,定量精度高,应用范围广。
适用于分析高沸点、大分子、强极性、热稳定性差的化合物。
其缺点是:价格昂贵,要用各种填料柱,容量小,分析生物大分子和无机离子困难,流动相消耗大且有毒性的居多。
目前的发展趋势是向生物化学和药物分析及制备型倾斜。
7.1 基本原理固定相 流动相AB CCBA固定相 —— 柱内填料,流动相 —— 洗脱剂。
HPLC 是利用样品中的溶质在固定相和流动相之间分配系数的不同,进行连续的无数次的交换和分配而达到分离的过程。
通常,按溶质(样品)在两相分离过程的物理化学性质可以作如下的分类:分配色谱:—— 分配系数亲和色谱:—— 亲和力吸附色谱:—— 吸附力离子交换色谱:—— 离子交换能力凝胶色谱(体积排阻色谱):—— 分子大小而引起的体积排阻分配色谱又可分为:正相色谱:固定相为极性,流动相为非极性。
反相色谱:固定相为非极性,流动相为极性。
用的最多,约占60~70%。
固定相(柱填料):固定相又分为两类,一类是使用最多的微粒硅胶,另一类是使用较少的高分子微球。
后者的优点是强度大、化学惰性,使用pH范围大,pH=1~14,缺点是柱效较小,常用于离子交换色谱和凝胶色谱。
最常使用的全孔微粒硅胶(3~10μm)是化学键合相硅胶,这种固定相要占所有柱填料的80%。
它是通过化学反应把某种适当的化学官能团(例如各种有机硅烷),键合到硅胶表面上,取代了羟基(-OH)而成。
它是近代高效液相色谱技术中最重要的柱填料类型。
使用微粒硅胶要特别注意它的使用pH范围是2~7.5,若过碱(>pH7.5),硅胶会粉碎或溶解;若过酸(<pH2),键合相的化学键会断裂。
键合相使用硅胶作基质的优点是:①硅胶的强度大;②微粒硅胶的了孔结构和表面积易人为控制。
③化学稳定性好。
硅胶( SiO2•n H2O) :OH OH—Si—O—Si—重要的键合相是:硅烷化键合相,它是硅胶与有机硅烷反应的产物。
最常用的键合相键型是:—Si—O—Si—CR1R1—Si—OH + X—Si—R —Si—O—Si—R + HXR2R2硅胶有机硅烷键合相X ━Cl,CH3O,C2H5O等。
R ━烷:C8H17(即C8填料),C10H21,C18H37等。
R1、R2 ━X、CH3等。
最常用的“万能柱”填料为“C18”,简称“ODS”柱,即十八烷基硅烷键合硅胶填料(Octadecylsilyl,简称ODS)。
这种填料在反相色谱中发挥着极为重要的作用,它可完成高效液相色谱70~80%的分析任务。
由于C18(ODS)是长链烷基键合相,有较高的碳含量和更好的疏水性,对各种类型的生物大分子有更强的适应能力,因此在生物化学分析工作中应用的最为广泛,近年来,为适应氨基酸、小肽等生物分子的分析任务,又发展了141CH、C3、C4等短链烷基键合相和大孔硅胶(20~40μm)。
按键合到基质上的官能团可分为:⑴反相柱:填料是非极性的,官能团为烷烃,例如:C18(ODS)、C8、C4等。
⑵正相柱:填料是极性的,官能团为-CN氰基、-NH2氨基等。
⑶离子交换键合相:阳离子官能团:-SO3H磺酸基、-COOH羧基等。
阴离子官能团:―R4N+季铵基、-氨基等。
( 由于硅胶基质的键合相只能在pH=2~7.5的范围内使用,而离子交换色谱要求有更宽的pH范围,因此其基质现在仍主要使用聚苯乙烯和二乙烯苯。
)流动相:反相色谱最常用的流动相及其冲洗强度如下:H2O<甲醇<乙腈<乙醇<丙醇<异丙醇<四氢呋喃最常用的流动相组成是:“甲醇—H2O”和“乙腈—H2O”,由于乙腈的剧毒性,通常优先考虑“甲醇—H2O”流动相。
反相色谱中,溶质按其疏水性大小进行分离,极性越大疏水性越小的溶质,越不易与非极性的固定相结合,所以先被洗脱下来。
流动相的pH对样品溶质的电离状态影响很大,进而影响其疏水性,所以在分离肽类和蛋白质等生物大分子的过程中,经常要加入修饰性的离子对物质,最常用的离子对试剂是三氟乙酸(TFA),使用浓度为0.1%,使流动相的pH值为2~3,这样可以有效地抑制氨基酸上α羧基的离介,使其疏水性增加,延长洗脱时间,提高分辨率和分离效果。
完全离子化的溶质,例如强酸或强碱,其在反相键合相上的保留值很低,近于死时间流出,不能进行分析。
根据离子对色谱的原理将一种与样品离子电荷(A+)相反的离子(B-),称为对离子,加入到流动相中,使其与样品离子结合生成弱极性的离子对,即中性缔合物,从而增强了样品的疏水性,加大了保留值,改善了分离效果。
正相色谱常用的流动相及其冲洗强度的顺序是:正己烷<乙醚<乙酸乙酯<异丙醇其中最常用的是正已烷,虽然其价格较贵,但80%的顺、反和邻位、对位异构体仍然要用正相色谱来进行分离。
流动相的选择原则是:①样品易溶,且溶解度尽可能大。
②化学性质稳定,不损坏柱子。
③不妨碍检测器检测,紫外波长处无吸收。
④粘度低,流动性好。
⑤易于从其中回收样品。
⑥无毒或低毒,易于操作。
⑦易于制成高纯度,即色谱纯。
⑧废液易处理,不污染环境。
1421437.2 基本参数1.t R⑴保留时间“t R ”:进样至出峰的时间。
⑵死时间“t 0”:不被柱子吸附的惰性物质的出峰时间。
死时间“t 0”的测定通常是使用不被柱子保留而又有紫外吸收的惰性物质,例如:正相色谱常用四氯化碳,反相色谱常用甲醇、尿嘧啶、NaNO 2、NaNO 3等。
⑶容量因子“k ’”:00't t t k R -= 或:溶质在流动相中的量溶质在固定相中的量='k “k ’”是比“t R ”还常用的保留值,它与柱子的大小及流速无关,只与溶质在固定相和流动相的分配性质、柱温以及相空间比(即固定相和流动相之体企积比)有关。
“k ’”又定义为在分配平衡时某溶质在两相中绝对量之比,消除了保留值的波动因素,而平衡常数“K ”是平衡时物质在两相中的浓度比。
k ’值的范围: 0.4<k ’<20~30 k ’=2~5为佳,过大则耗时太长。
⑷保留体积:V R =t R •F C ( F C --- 流动相的流速 mL/min )V R 是在t R 时间内流动相流过柱子的体积。
调整保留时间:t R ’= t R -t 0调整保留体积:V R ’= V R -V R 0=t R ’ •F C⑸选择性指标“α’”和相对保留值“α”α’可以更直观和方便地反映色谱峰分离的好坏:)1()2('R R t t =α相对保留值(分离因子):144 )1()2()1()2(''''k k t t R R =α=( α>1.1为好 ) 2. 柱效率: 定义: 理论塔板数 2⎪⎭⎫ ⎝⎛σR t N = ( 每米柱 )σ 标准偏差,曲线拐点处峰宽的一半 即峰高0.607处峰宽的一半为便于测量,改用半峰宽:W 1/2( 或2×△t 1/2 )最常用的计算式:22/154.5⎪⎪⎭⎫⎝⎛W t N R = 另一计算式: 216⎪⎪⎭⎫ ⎝⎛b R W t N = W b 不如W 1/2容易测量,因而此式用的较少。
理论塔板高度: N L H =L 柱长 经验式:H =2d P ( d P =10μ H =20μ N =5万 )( d P =5μ H =10μ N =10万 )d P柱填料的颗粒直径柱效的测定和计算:以反相柱为例,流动相用87%(V/V)的甲醇:水,样品用苯、联苯、萘等,加快记录仪的走纸速度,测出半峰宽W 1/2,并由走纸速度换算为与t R 相同的单位“分”或“秒”,代入公式,计算出柱效N 。
提高柱效的方法:①固定相填料要均一,颗粒细,装填均匀。
②流动相粘度低。
③低流速。
④升高柱温。
1453. 不对称因子“T f ”:用于形容色谱峰拖尾和前伸的程度,多数为拖尾峰。
拖尾 前伸AB T f = A 、B 如上图所示 通常 T f =1.2~1.3 ,若 T f >2 则峰不合格。
峰拖尾的原因是硅胶基质上的Si -OH 羟基未被全部键合而与溶质发生反应。
改进拖尾要用封尾技术:即用小分子的含甲基的物质再次对硅胶进行键合,封闭硅羟基;还可在流动相中加入带 –NH 2氨基(对羟基敏感)的物质,将残余的羟基掩闭。
分辨率: t R(1) t R(2)2112)(2W W R R S t t t t R +-= 进样4. 分离度 K 1和 K 3HPLC 的目的和要求是:峰要尽可能窄(W 1/2小),峰的间距尽可能大(t R 相差大)。
⑴基线分离度 K 1 :)1(2/1)2(2/1)1()2(1W W t t K R R --=基线分离时用K 1。
⑵峰高分离度: Hh H K -=3 K 3=1 基线分离,K 3 更反映了实际分离心度。
1465. 线速度:溶剂在柱中移动的速度。
t L u = mm/sec L ─柱长 t 0 ─死时间 H(μm)如右图所示,用实验可找到最佳的线速度: 即图中的A 点:u =1 mm/sec此处不用流量而用线速度,是因为流量与柱径有关,而线速度与柱径无关。
请记住不同柱内径的最佳流量: A u(1mm/sec)柱内径 流量 线速度5 mm 1.0 mL/min 1 mm/sec2 mm 0.2 mL/min 1 mm/sec1 mm 50 μL/min 1 mm/sec由1 mm/sec 最佳线速度可计算出适合各种柱径的最佳流量。
由上表可以看出,用5mm 柱,一天要用一并昂贵的乙腈,若用1mm 柱,则一个月才用一并。
6. 保留值方程:正相色谱: lnk ’=a +blnC b +cC b C b ─强冲洗剂浓度反相色谱: lnk ’=a +cC b 对于不同溶质 a 、b 、c 系数不同离子交换色谱: lnk ’=a +blnC b 反相色谱是线性方程正相色谱: 反相色谱:lnk ’ lnk ’C b C b147 lnk ’lnk ’b b 水)D 点:同样的容量因子,四氢呋喃 D 点:萘非极性强,k ’大,斜率陡用量少lnk ’ lnkC b bA 点甲、乙二溶质分不开,B 点比 A 点分不开,要寻找不是交叉点的C 点冲洗剂浓度高,但k ’小,省时D 点的C b 浓度为分离条件间,所以选B 点好。