细胞工程实验报告-鲍文英

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细胞工程实验报告
所在学院:生命科学学院
年级专业:09生物科学(1)班
授课老师:刘亚军
本科生:鲍文英
学号:09122014
2011年12月
烟草叶片组织培养
实验一实验前准备(2011.10.17)
1、实验目的了解植物离体培养所用培养基的配制方法。

2、实验过程
①相关材料的准备:烟草叶片、实验药品、冰箱、天平、纯水器、酸度计、常用培养基配制用玻璃仪器及分装设备、酒精灯、镊子、解剖刀、口罩、封口膜;
②培养基母液的配制:在准备室中将MS培养基中的各种成分,按原量的20倍或200倍分别称量,定容配成培养基母液,灭菌后冷却,于冰箱中保存。

这样每次使用时,按比例量取并加水稀释,制成诱芽培养液或生根培养基,培养基成分见表1;
③诱导愈伤组织培养基的配制:按表1取母液配制MS培养基(煮沸后用酸度计调
pH5.8-6.0),再向其中加NAA(0.2mg/L)和6-BA(2mg/L),即为诱导愈伤组织培养基,分装、灭菌后备用;
④无菌操作室的消毒灭菌:用过氧乙酸熏蒸灭菌,操作前开紫外灯照射30min。

3、注意事项
①趁热分装,以免培养基凝固无法转移;
②在使用提前配制的母液时,轻轻摇动盛放母液的瓶子,如果发现瓶中有沉淀、悬浮物或被微生物污染,应立即淘汰这种母液,重新进行配制;
③按顺序移取培养基母液,必须用所量取的母液将量筒或移液管润洗2次。

实验二外植体的消毒灭菌(2011.10.18)
1、实验目的了解外植体消毒原理,掌握操作过程。

2、实验原理酒精是最常用的表面消毒剂,以70%~75%酒精杀菌效果最好;升汞可以与带负电荷的蛋白质结合,使蛋白质变性,从而杀死菌体。

3、实验过程
①打开无菌操作台紫外灯照射30min;
②将用水洗净的烟草叶片放在超净工作台上的培养皿中,用解剖刀切取若干长约
1cm,宽约1cm的外植体;
③将上述外植体置于0.1%氯化汞溶液中约十分钟,期间需要不断的摇动,然后在75%的乙醇中清洗约20s。

4、注意事项
①用酒精对植物材料浸泡时应严格控制时间;
②升汞对环境危害大,使用后应做好回收工作。

实验三愈伤组织的诱导(2011.10.18)
1、实验目的运用植物的快繁技术诱导愈伤组织,熟练掌握无菌操作。

2、实验原理本实验以及下面两个实验的理论依据是植物细胞的全能性。

离体植物组织在人工诱导条件下去分化,失去其特有结构与功能变成具有未分化细胞特征,恢复到分化组织状态,形成愈伤组织,经过再分化形成具芽和根的完整植株。

3、实验过程
①接种前开无菌操作台紫外灯照射30min;
②戴上口罩,取已配制和灭菌过的培养基两瓶、灭菌的培养皿一副于无菌操作台上,向培养皿中倒入一定量的水,用于冷却镊子和解剖刀,用酒精棉球擦拭手和台面;③在酒精灯火焰边取消毒的外植体于培养基上,每瓶1-3个,瓶口和封口膜适当靠近火焰灭菌后封住瓶口,贴上标签;
④将接种过外植体的培养瓶放在光照培养室内,培养温度为25+1℃,光照强度
2000-3000LX,时间12h/d,每三到四天观察一次。

4、实验结果与分析接种后没有被细菌及霉菌污染,愈伤组织生长状况良好。

5、注意事项
①操作时不能离开火焰附近,手尽量不要经过放置外植体的培养皿上方;
②消毒灭菌后的外植体应立即接种培养;
③在接种过程中要经常灼烧接种器械,防止交叉污染;
④实验后将工作台面清理干净,各种仪器工具洗净归位。

实验四芽的诱导(2011. 11.13)
1、实验目的掌握植物离体无性繁殖诱导不定芽的原理与方法,熟练无菌操作。

2、实验过程
①取实验一中的母液配制MS培养基(煮沸后用酸度计调pH5.8-6.0),再向其中加NAA(0.2mg/L)和6-BA(2mg/L),即为诱导出芽培养基,分装、灭菌后备用;
②转接前开无菌操作台紫外灯照射30min;
③戴上口罩,从光照培养室中取出长有愈伤组织的锥形瓶,和灭菌的培养皿、两瓶培养基一起置于无菌操作台上,向培养皿中倒入一定量的水,用酒精棉球擦拭手和台面;
④在酒精灯火焰旁,用镊子取出愈伤组织放在未装水的培养皿中,切成小块,转接到新培养瓶中,每瓶1-3块,瓶口和封口膜适当靠近火焰灭菌后封住瓶口,贴上标签;
⑤将转接了愈伤组织的培养瓶放在光照培养室内,培养温度为25+1℃,光照强度2000-3000LX,时间12h/d,定时观察芽的诱导。

3、实验结果与分析转接后没有被细菌及霉菌污染,待出芽组织生长状况良好,发出新芽并有明显的生长。

4、注意事项
①转接时,宜将愈伤组织的切口处置于培养基界面上;
②操作时不能离开火焰附近,手尽量不要经过放置外植体的培养皿上方;
③在接种过程中要经常灼烧接种器械,防止交叉污染;
④实验后将工作台面清理干净,各种仪器工具洗净归位。

实验五根的诱导(2011.12.6)
1、实验目的了解植物快繁技术中诱导生根培养基的配制,掌握操作技术,熟练无菌操作。

2、实验过程
①取实验一中的母液配制MS培养基(煮沸后用酸度计调pH5.8-6.0),再向其中加NAA(0.2mg/L),即为诱导生根培养基,分装、灭菌后备用;
②转接前开无菌操作台紫外灯照射30min;
③戴上口罩,从光照培养室中取出长有出芽组织的培养瓶,和灭菌的培养皿、两瓶培养基一起置于无菌操作台上,向培养皿中倒入一定量的水,用酒精棉球擦拭手和台面;
④在酒精灯火焰旁,用镊子取出出芽组织放在未装水的培养皿中,小心切取带有芽的组织,转接到新培养瓶中,每瓶1-3颗,瓶口和封口膜适当靠近火焰灭菌后封住瓶口,贴上标签;
⑤将转接了芽组织的培养瓶放在光照培养室内,培养温度为25+1℃,光照强度
2000-3000LX,时间12h/d,定时观察根的诱导。

3、实验结果与分析转接后没有被细菌及霉菌污染,待生根组织生长状况良好,不定芽生长旺盛,诱导出的根呈乳白色,长1cm-2cm,所配制培养基适合生根培养。

4、注意事项
①切取芽组织时,谨慎操作,以免损伤不定芽;
②操作时不能离开火焰附近,手尽量不要经过放置外植体的培养皿上方;
③在接种过程中要经常灼烧接种器械,防止交叉污染;
④实验后将工作台面清理干净,各种仪器工具洗净归位。

实验感悟
经过这次细胞工程实验课的学习,我了解到植物组织培养过程中需要注意的众多关键实验操作,同时也深刻意识到前期准备工作的重要性,在已经成熟的植物组织离体快繁技术的理论和实践指导下,运用先进的实验设施和设备条件,保持强烈的无菌意识,只要实验材料准备充分,我们的实验结果会在很大程度上符合理论结果。