临床微生物标本的采集与送检2011.91

临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。

在临床诊断和治疗过程中，微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行，以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。

本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。

一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时，应使用无菌采集工具，如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。

采集工具应一次性使用，避免交叉感染。

2. 采集方法（1）棉签采集法：适用于采集分泌物、排泄物等标本。

将无菌棉签蘸取适量标本，轻轻涂抹于无菌培养基表面，注意避免棉签与培养基接触过紧，以免污染。

（2）拭子采集法：适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。

将无菌拭子轻轻擦拭采集部位，将拭子置于无菌培养基中，轻轻按压使标本附着于培养基表面。

（3）注射器采集法：适用于采集深部组织、关节液等标本。

将无菌注射器刺入采集部位，抽取适量标本后，将注射器置于无菌培养基中，拔出活塞使标本流出。

3. 采集注意事项（1）严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

（2）采集标本时，应尽量减少对标本的挤压，避免细胞破裂、毒素释放等现象。

（3）采集标本后，应尽快送检，避免长时间存放导致病原体死亡或变异。

二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后，应尽快送检，一般不超过2小时。

如无法及时送检，应将标本置于4℃冷藏保存，并在24小时内送检。

2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器，避免与其他物品接触。

标本运送过程中，应注意保持容器密封，防止标本污染。

3. 标本接收实验室接收微生物标本时，应详细核对标本信息，包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。

如发现标本不符合要求，应立即与临床工作人员沟通，重新采集标本。

4. 标本处理实验室接收标本后，应按照实验室规程进行对标本的处理，包括开盖、分区、接种、培养等。

在处理过程中，严格遵守无菌操作原则，防止标本污染。

（完整版）临床常见微生物标本的采集与运送临床常见微生物标本的采集与运送唐玉英正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。

一标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。

2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。

采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。

3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。

4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。

5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。

二标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。

2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。

三不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。

临床微生物标本采集与送检规范(试行)临床微生物标本采集与送检是临床实验室诊断质量保证中的关键环节，影响着感染样本中致病菌的分离培养的阳性率和医院感染病原体监控。

正确的微生物标本送检和检验方法对于合理选用抗菌药物、降低耐药菌的产生、提高感染的治愈率以及预测和及时发现医院感染的暴发流行等都具有十分重要的意义。

因此，希望临床各科能按照本操作规范采样送检。

在医院感染标本的采集和运送中，应遵循以下原则：1.发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于40％。

2.尽量在抗菌药物使用前采集标本。

3.采集标本时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。

4.采集标本后应立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。

5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子，应立即送检。

6.盛标本须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。

7.送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。

常见的医院感染标本送检方法包括：1.血液与骨髓：通常采血部位为肘静脉，但疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。

采血前应严格消毒，每次采血量应控制在一定范围内，采血后应立即送至实验室。

2.尿液：采集中段尿时，女性应先冲洗外阴部及尿道口，男性须翻转包皮冲洗，采集前应用消毒液消毒尿道口。

灭菌纱布擦干后收集标本。

以上是临床微生物标本采集与送检的一些基本规范和方法，希望医务人员能够严格按照操作规范执行，以提高微生物检测的准确性和有效性，为临床诊断和治疗提供更加可靠的依据。

导尿管导尿采样是减少污染的有效方法。

对于留置导尿者，可以用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。

或消毒后解开接口，弃去导尿管前段尿液，留无污染的膀胱内尿液数毫升送检。

不可从集尿袋的下端管口留取标本。

对于尿厌氧菌培养、婴幼儿中段尿采集困难或培养结果与病情不符的情况，可以经耻骨上皮肤穿刺采集无污染的膀胱内尿液。

浅谈微生物样品的采集及送检微生物是一类在肉眼下不可见的微小生物体，包括细菌、真菌、病毒等多种类型。

它们广泛存在于自然界中的各个领域，有的对人类和动植物有益，有的则是致病菌。

对微生物的采集和送检工作显得尤为重要。

本文将从微生物样品的采集方法和送检流程两个方面进行探讨。

一、微生物样品的采集方法1. 采集工具的准备在进行微生物样品采集前，首先要准备好必备的采集工具。

一般情况下，可以准备好无细胞毒的采集管、医用消毒纱布、无菌手套、无菌刷子等。

这些工具要预先进行高温高压消毒处理，确保在采集样品时不受到外界污染。

2. 采集样品的环境准备在采集微生物样品的过程中，采集环境的准备十分重要。

首先要保持采集现场的清洁整洁，避免外界杂质的干扰。

要避免出现采集样品的交叉污染，可以对采集器具进行一定的分类和编号，同时严格遵守无菌操作的要求。

3. 采集样品的方法具体的微生物样品采集方法会根据具体情况而有所不同，这里以细菌样品的采集为例进行说明。

在细菌样品的采集过程中，首先要将采集器具置于无菌环境中，然后进行无菌操作，分别用无菌刷子或无菌吸管进行采样。

采集样品后，要及时将样品封存，并标记清晰的采集信息，如采集时间、地点、采集人员等。

4. 采集样品的保存采集好微生物样品后，要及时进行保存。

常用的保存方式有低温冷冻保存和干燥保存等。

需要根据不同样品的特性来选择适当的保存方式，确保样品的保存质量。

二、微生物样品的送检流程1. 送检前的准备工作在进行微生物样品送检前，首先要对样品进行初步的鉴定和分类，明确送检的目的和要求。

要下载填写好送检申请表，并对样品进行详细的描述和记录。

要按照送检单位的要求，准备好相应的包装材料和运输工具，确保送检样品的完整性和稳定性。

2. 选择送检单位选择合适的送检单位是送检流程中非常重要的一步。

要选择具有资质和信誉的送检单位进行合作，确保送检结果的准确性和可信度。

要了解送检单位的具体要求和流程，确保送检样品符合送检标准。

标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误, 不当标本可导致假阴性。

假阳性结果的出现。

因此正确采集临床微生物标本, 直接影响到微生物培养鉴定结果。

可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物, 延缓细菌耐药, 减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步, 也是最重要的一步。

为此应正确采集各种细菌学标本。

一、血液标本的采集1、皮肤消毒程序:a.75%酒精清洁局部皮肤 30s 以上。

b. 待皮肤干后, 再用1%-2.%碘酊作用 30s 或 10%碘伏作用 90s 以上,从穿刺点中心部位向外画圈消毒,范围不应小于 3cm (直径 , 且不能用手指触摸消毒后的皮肤。

c. 皮肤碘酒干后 (约1min , 穿刺采集血液, 采血量成人 10-20ml ,婴幼儿 1-2ml 。

儿童 3-5ml 。

d. 培养瓶消毒程序:70%酒精擦拭血培养橡皮塞,作用 60s ;用无菌棉签清除橡皮塞表面残余酒精。

用注射器无菌采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。

立即送检,切勿冷藏。

一般情况下可把血培养瓶放 20-22℃。

不放冰箱。

2、注意事项:a. 怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃采血可提高阳性率, 但也要防止因等待而延误时机。

b. 对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。

切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本, 也不能从静脉导管及动脉插管中取血。

c. 培养基与血液之比以 10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人, 培养基与采血量之比可为 20:1或大于这个比例。

d. 近年研究表明, 将血液注入血培养基前, 更换针头反而易导致污染。

e. 每例至少采血两次,间隔 0.5-1h , 以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。

f. 疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h3-4次和增加采血量(可增加 10ml 。