尿生成实验
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尿生成技能实验报告1. 引言尿液作为人类生物体的一种排泄物,具有非常重要的生物医学信息。
尿液中含有大量的代谢产物、酶、激素等物质,可以反映人体的代谢水平、健康状况和疾病发展等信息。
因此,对尿液进行科学而全面的分析和研究对于人类健康具有重要意义。
近年来,尿生成技能作为一种新兴的医学手段,受到了广泛的关注。
尿生成技能通过改变尿液的成分和性质,使其具有特定的功能和用途,从而为临床医学、医学研究提供更多的手段和途径。
本实验旨在通过尿生成技能,探究不同成分尿液对实验对象的生物反应。
2. 实验目的1. 探究尿液中不同成分对实验对象的生物反应;2. 通过尿生成技能了解尿液的潜在应用价值。
3. 实验方法3.1 实验材料- 健康成年人尿液样本- 实验对象(小白鼠等)- 高精度天平- 实验设备3.2 实验步骤1. 收集健康成年人的尿液样本并进行初步处理,去除杂质。
2. 将尿液样本分成若干部分,每部分加入不同的试剂,形成不同成分的尿液。
3. 将实验对象分为不同组,每组分别投喂不同成分的尿液。
4. 观察每组实验对象的生物反应,记录相关的数据和现象。
5. 分析实验结果,得出结论。
4. 实验结果和分析通过观察实验对象的生物反应,我们发现不同成分的尿液对实验对象的影响是不同的。
在实验过程中,我们发现添加有较高脂肪含量的尿液会使实验对象的体重增加较快,而添加含有高蛋白质的尿液则使实验对象的肌肉生长速度加快。
此外,添加含有某些激素的尿液还会对实验对象的性腺功能产生一定的影响。
通过对实验结果的分析,我们可以得出结论:尿液中的不同成分对生物体有着不同的生物学作用,通过改变尿液的成分和性质,可以实现对实验对象的生物调控和治疗。
尿生成技能具有广泛的应用前景,可以用于研究代谢疾病、探索生物调控机制等方面。
5. 实验结论本实验通过尿生成技能探究了尿液中不同成分对实验对象的生物反应。
实验结果表明,尿液中的不同成分对实验对象的生物学作用是不同的。
尿生成实验报告篇一:尿生成机能学实验报告某些因素对家兔尿液生成的影响一、实验目的1. 掌握膀胱插管技术,神经分离技术,学习尿量的记录和测量方法。
2. 观察神经体液因素(生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素) 和电刺激对尿生成的影响,并分析其作用机制。
二、实验材料家兔一只,氨基甲酸乙酯,生理盐水,葡萄糖溶液,去甲肾上腺素,呋塞米,垂体后叶素,手术器械一套,兔手术台,膀胱插管,注射器两支,针头两个,微机生物信号采集处理系统,电刺激连线,棉线若干,婴儿秤,培养皿。
三、实验方法1(兔子称重,根据1mg/kg从兔耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯麻醉。
2(待兔麻醉后,将其仰卧在兔手术台上,先后固定四肢及兔头。
3(剪去家兔颈前部兔毛,正中剪开皮肤5,6厘米,用止血钳纵向分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的右血管神经鞘,用玻璃分针细心分离出右侧鞘膜内的迷走1神经,在神经下穿线备用。
4.从耻骨联合向上沿中线作长约4厘米的切口,沿腹白线打开腹腔,找到膀胱,用镊子小心将膀胱轻拉至腹壁外。
辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用三把止血钳提起膀胱前壁,选择血管较少处,剪一纵行小口,插入膀胱插管后用线固定,尿液从膀胱插管中流出。
用线结扎膀胱颈部以阻断膀胱同尿道的通路。
使插管的引流管出口处低于膀胱水平,用培养皿盛接由引流管流出的尿液。
手术完毕后,用纱布拭去腹部内的血,并用温热的生理盐水纱布覆盖腹部创口,用止血钳关闭腹腔。
5.开启微机生物信号采集处理系统,与上一次实验相同。
6.(1)在注射药物之前记录1min正常排尿量。
快速注射37?生理盐水20ml,记录5min内每分钟的排尿量。
(2)间隔2~3min,记录1min正常排尿量。
快速静脉注射20,葡萄糖5ml,记录5min内每分钟的排尿量。
(3)间隔2~3min,记录1min正常排尿量。
静脉注射1:10000去甲肾上腺素0.3ml,记录5min内每分钟的排尿量。
尿生成实验报告尿生成实验报告引言:尿是人体代谢产物,尿液的组成和性质可以反映人体的健康状况。
因此,尿液分析成为了一项重要的医学检查项目之一。
尿液的生成与肾脏功能密切相关。
本实验旨在通过观察尿液生成的过程,了解尿液的成分和生理功能。
实验目的:1.了解尿液生成的过程;2.观察尿液的颜色、气味和混浊程度;3.探究尿液中的成分。
实验材料与仪器:实验动物(小白鼠或大鼠)、尿管、玻璃器皿、显微镜、草酸、尿糖试纸、尿蛋白试纸。
实验步骤:1.将小白鼠收入实验笼中;2.观察和记录小白鼠的生活习性、饮食情况以及排尿情况;3.将小白鼠隔离在一个玻璃器皿内,待其排尿;4.记录尿液的颜色、气味和混浊程度;5.使用尿糖试纸和尿蛋白试纸检测尿液中的糖和蛋白质含量;6.将一部分尿液放置在显微镜下观察尿液中的颗粒和细胞。
实验结果:在实验中观察到小白鼠的尿液呈现黄色,有一定的氨气味,但无明显的混浊现象。
尿液中未检测到糖和蛋白质。
实验讨论:根据实验结果可以得知,尿液的颜色主要是由尿色素决定的,黄色是正常尿液的颜色。
氨气味则是由尿中的尿素分解产生的。
尿液的混浊度与尿液中的颗粒物质有关,正常情况下尿液是无明显混浊现象的。
在本次实验中,尿液中未检测到糖和蛋白质,说明小白鼠的肾功能正常。
结论:通过本次实验,我们了解了尿液的生成过程,并观察了尿液的颜色、气味和混浊程度。
根据实验结果,我们得出了尿液中无糖和蛋白质的结论,表明小白鼠的肾功能正常。
实验心得:通过本次实验,我对尿液的生成过程和成分有了更加深入的了解。
通过观察尿液的颜色、气味和混浊程度,可以初步判断人体健康状况。
尿液分析是一项非常重要的检查项目,对于诊断和治疗疾病具有重要意义。
希望以后能够进一步学习和研究尿液的分析方法,为人们的健康服务。
实验目的:1. 了解尿生成的基本过程及其调节机制。
2. 掌握家兔尿生成调节实验的操作方法。
3. 分析影响尿生成的因素,探讨尿生成调节的生理意义。
实验原理:尿生成是肾脏的基本功能之一,主要包括肾小球的滤过作用、肾小管与集合管的重吸收作用以及肾小管与集合管的分泌作用。
这三个过程受到多种因素的调节,包括肾血流量、肾小球滤过压、肾小管和集合管的重吸收与分泌功能等。
实验对象:家兔实验材料:1. 实验动物:家兔2. 实验仪器:手术器械、注射器、针头、手术线、兔手术台、生理盐水、3%戊巴比妥钠溶液、20%葡萄糖注射液、呋塞米(速尿)、垂体后叶素等3. 实验试剂:生理盐水、3%戊巴比妥钠溶液、20%葡萄糖注射液、呋塞米(速尿)、垂体后叶素等实验步骤:1. 家兔称重,按1ml/kg体重的剂量,耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠溶液进行麻醉。
2. 将家兔仰卧固定于兔手术台上,剪去颈部兔毛,沿颈部正中剪开皮肤,钝性分离气管、右侧颈外静脉,行气管和静脉插管。
3. 气管插管:气管下穿一线备用,甲状软骨下做倒“T”形切口,插入气管插管,结扎固定。
4. 静脉插管:静脉下穿二线,结扎远心端,向心端切斜形切口,插入静脉插管,结扎固定。
静脉插管连于生理盐水注射液,25滴/min。
5. 游离右侧迷走神经:穿一线备用。
6. 尿道插管:将涂有石蜡油的6号或8号单腔导管插入尿道,连接到尿量收集器。
7. 观察家兔尿生成情况,记录尿量、尿比重等指标。
8. 分别给予家兔生理盐水、20%葡萄糖注射液、呋塞米(速尿)、垂体后叶素等试剂,观察尿生成情况的变化。
9. 分析实验数据,探讨影响尿生成的因素。
实验结果:1. 家兔在正常生理状态下,尿量约为20-30ml/h,尿比重约为1.015-1.025。
2. 给予家兔生理盐水后,尿量无明显变化。
3. 给予家兔20%葡萄糖注射液后,尿量明显增加,尿比重降低。
4. 给予家兔呋塞米(速尿)后,尿量明显增加,尿比重降低。
影响尿生成的因素实验报告影响尿生成的因素实验报告概述:尿液是人体代谢产物的主要排泄物之一,它的生成和排泄对维持人体内环境的稳定起着重要作用。
本实验旨在探究影响尿生成的因素,并通过实验结果分析其机制。
实验一:饮水量对尿量的影响实验目的:通过控制饮水量,观察尿液产量的变化,以验证饮水量对尿量的影响。
实验步骤:1. 将实验对象分为两组,每组10人。
2. 实验组每人饮水量为2000ml/天,对照组每人饮水量为1000ml/天。
3. 每组实验对象在实验开始前3天不进行任何特殊饮食或运动。
4. 分别记录两组实验对象的尿液产量。
实验结果与分析:实验组的尿液产量明显高于对照组。
这是因为饮水量的增加导致体内水分增加,进而刺激肾脏排尿。
实验结果表明,饮水量是影响尿液产量的重要因素之一。
实验二:饮食成分对尿液成分的影响实验目的:通过调整饮食成分,观察尿液中各种成分的变化,以验证饮食成分对尿液成分的影响。
实验步骤:1. 将实验对象分为两组,每组10人。
2. 实验组饮食中添加高蛋白食物,对照组饮食保持常规。
3. 每组实验对象在实验开始前3天不进行任何特殊饮水或运动。
4. 分别收集两组实验对象的尿液样本,并进行尿液分析。
实验结果与分析:实验组的尿液中尿素氮、尿酸等成分的浓度明显高于对照组。
这是因为高蛋白饮食会增加氮负荷,肾脏需要更多的工作来排泄代谢产物。
实验结果表明,饮食成分的改变会影响尿液中各种成分的浓度。
实验三:运动对尿液成分的影响实验目的:通过控制运动量,观察尿液成分的变化,以验证运动对尿液成分的影响。
实验步骤:1. 将实验对象分为两组,每组10人。
2. 实验组进行每天30分钟的中等强度有氧运动,对照组保持常规生活方式。
3. 每组实验对象在实验开始前3天不进行任何特殊饮食或饮水。
4. 分别收集两组实验对象的尿液样本,并进行尿液分析。
实验结果与分析:实验组的尿液中乳酸和尿酸浓度明显高于对照组。
这是因为运动时,肌肉代谢产生的乳酸和尿酸会通过尿液排出体外。
一、实验目的本研究旨在探讨影响尿生成的各种因素,包括神经体液因素、药物因素和环境因素等,并通过实验验证这些因素对尿生成的影响。
通过对尿生成的影响因素进行深入研究,有助于我们更好地理解尿生成机制,为临床治疗相关疾病提供理论依据。
二、实验材料与仪器1. 实验动物:家兔(体重2-3kg)2. 实验试剂:生理盐水、葡萄糖、去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素、肝素、氨基甲酸乙酯等3. 实验仪器:手术器械、生理信号采集系统、压力传感器、注射器、膀胱插管、输尿管插管等三、实验方法1. 实验分组:将实验动物随机分为对照组、神经体液因素组、药物因素组和环境因素组。
2. 实验操作:(1)对照组:给予生理盐水灌胃,观察尿生成情况。
(2)神经体液因素组:给予生理盐水灌胃,并注射神经体液因素(如去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素等),观察尿生成情况。
(3)药物因素组:给予生理盐水灌胃,并注射药物(如呋塞米、甘露醇等),观察尿生成情况。
(4)环境因素组:将动物置于不同温度、湿度等环境条件下,观察尿生成情况。
3. 数据收集:通过膀胱插管或输尿管插管收集尿液,并记录尿量、尿比重、尿pH值等指标。
四、实验结果1. 对照组:尿量为100-150ml/24h,尿比重为1.015-1.020,尿pH值为5.5-6.5。
2. 神经体液因素组:- 去甲肾上腺素组:尿量显著增加,尿比重降低,尿pH值降低。
- 呋塞米组:尿量显著增加,尿比重降低,尿pH值降低。
- 垂体后叶素组:尿量显著增加,尿比重降低,尿pH值降低。
3. 药物因素组:- 呋塞米组:尿量显著增加,尿比重降低,尿pH值降低。
- 甘露醇组:尿量显著增加,尿比重降低,尿pH值降低。
4. 环境因素组:- 高温组:尿量增加,尿比重降低,尿pH值降低。
- 低湿度组:尿量增加,尿比重降低,尿pH值降低。
五、讨论与分析1. 神经体液因素对尿生成的影响:去甲肾上腺素、呋塞米、垂体后叶素等神经体液因素均可通过调节肾小球滤过率、肾小管重吸收和分泌等过程,影响尿生成。
尿生成实验报告实验目的:通过实验探究人体内尿液的生成过程。
实验材料:1.人体2.尿样采集器材3.生理盐水4.分析仪器:尿钙分析仪,尿比重计,尿pH计,尿蛋白定量仪实验步骤:1.实验员在清晨起床后,通过尿样采集器材采集尿样,并且记录该尿样的采集时间和标签。
2.将采集到的尿样送至实验室,然后利用尿比重计一个尿样的尿比重。
3.为了确保尿样的相对浓度,填充尿样容器的所有位置,然后在每个尿样的顶部归零。
使用尿钙分析仪测量各个尿样中的钙离子浓度。
4.测量尿样的pH值。
5.使用尿蛋白定量仪测量各个尿液样品中的尿蛋白水平。
实验结果:实验过程中,我们检测到了不同因素对尿样的影响。
下面是我们观察到的结果。
1.尿比重:尿比重可以作为尿液的相对浓度测量工具。
测量的结果显示,在尿液生成的不同时间点,尿液的浓度会发生变化。
我们发现,在早晨第一次收集的尿液中,尿比重最高,而在一天内任何其他时间收集的尿液中,尿液的比重都会降低。
2.尿钙:尿液中的钙离子是尿中的一种重要荷尔蒙,可以发挥重要的调节作用。
我们通过使用尿钙分析仪测量尿液中的钙离子浓度,发现人体在早晨的尿液中分泌了更高浓度的钙离子,事实上,这是一种帮助我们从睡眠中唤醒的生理机制。
3.pH值:pH值是尿液中酸性或碱性的度量单位。
我们发现在不同时间点收集的尿样中,pH值也有所不同。
尿液中的pH值,与膳食的变化和情绪变化有关,如在酸性环境下,尿液中尿酸的相对浓度会增加。
4.尿蛋白:尿蛋白定量仪是用于测量尿液中蛋白质水平的设备。
我们发现在不同时间收集的尿样中,尿蛋白水平也会发生变化。
在早期的尿样中,尿蛋白的浓度较高,而在日常活动的最后一遍排尿时,尿液中的尿蛋白数量相对较少。
结论:尿液生成过程是一个非常复杂的过程,受许多因素的影响。
我们发现,个人的生理状态、饮食习惯和心理状态等方面都会影响尿液的生成能力。
通过实验,我们得出了上述结论,并深入研究了尿液的生成和生理机制。
尿液生成的影响因素实验报告实验目的:了解和探究尿液生成的影响因素,了解尿液生成的生理机制。
实验原理:尿液的生成受到多种因素的影响,主要包括身体的水分摄取量、饮食、药物、并发症等。
在正常情况下,尿液生成的过程主要由肾脏、输尿管、膀胱和尿道共同协调完成。
实验材料:1. 实验动物:小鼠/家兔2. 实验设备:尿液采集器、尿液分析仪、天平3. 实验试剂:水、口服葡萄糖水、口服盐水、利尿剂实验步骤:1. 将实验动物随机分为四组,每组分别采取不同的处理方法,第一组只提供水,第二组提供口服葡萄糖水,第三组提供口服盐水,第四组给予口服利尿剂。
2. 每组动物被固定在尿液采集器上,并定时检测和收集其尿液,每次收集和称重1ml的尿液,记录下尿液的数量和质量,以及尿液的密度和pH值。
3. 实验时间持续24小时,在此期间,动物的饮食和饮水需通过人工控制,禁止食用任何除固定食物以外的其他食物和饮料。
4. 实验结束后,将尿液收集器和尿液分析仪清洗干净,记录实验数据。
实验结果:通过实验观察和数据分析,得到以下结果:1. 给小鼠口服葡萄糖水后,尿液生成量明显增加,而口服盐水后尿量相对减少。
2. 给小鼠口服利尿剂后,尿液密度和pH值均有不同程度的改变。
3. 不同组别的动物尿液生成量、密度和pH值均不同,但总体上一般符合尿液生成的生理规律。
实验结论:本实验结果表明,尿液生成受到多种因素的影响,如饮水量、饮食、药物等等。
尿液生成量主要受到身体内水分的供应和代谢等因素影响;而尿液密度和pH值则反映了不同身体状态下的代谢和过程的变化。
通过本实验的探究,可以更深入了解尿液生成的生理机制,为临床应用提供指导和参考依据。
一、实验目的1. 了解尿生成的基本过程和影响因素。
2. 掌握膀胱插管技术,学习尿量的记录和测量方法。
3. 观察神经体液因素对尿生成的影响。
二、实验原理尿生成过程包括肾小球的滤过作用、肾小管和集合管的重吸收作用以及肾小管和集合管的分泌作用。
肾小球滤过作用是尿生成的基础,肾小管和集合管的重吸收和分泌作用则对尿量及尿液成分有重要影响。
三、实验材料1. 实验动物:家兔2. 实验试剂:生理盐水、0.01%去甲肾上腺素、20%葡萄糖、呋塞米、垂体后叶素等3. 实验仪器:手术器械、膀胱插管、压力传感器、注射器等四、实验步骤1. 家兔麻醉:称重后,采用2%戊巴比妥钠,2ml/kg,耳缘静脉注射进行麻醉。
2. 膀胱插管:在兔耳缘静脉注射生理盐水,待膀胱充盈后,进行膀胱插管。
插管成功后,用生理盐水冲洗膀胱,收集尿液。
3. 观察神经体液因素对尿生成的影响:a. 静脉注射生理盐水,观察尿量变化;b. 静脉注射0.01%去甲肾上腺素,观察尿量变化;c. 静脉注射20%葡萄糖,观察尿量变化;d. 静脉注射呋塞米,观察尿量变化;e. 静脉注射垂体后叶素,观察尿量变化。
4. 记录实验数据,分析实验结果。
五、实验结果1. 生理盐水组:尿量较对照组无明显变化。
2. 去甲肾上腺素组:尿量较对照组明显减少。
3. 葡萄糖组:尿量较对照组无明显变化。
4. 呋塞米组:尿量较对照组明显增加。
5. 垂体后叶素组:尿量较对照组无明显变化。
六、实验分析1. 生理盐水组:尿量较对照组无明显变化,说明生理盐水对尿生成无显著影响。
2. 去甲肾上腺素组:尿量较对照组明显减少,可能是由于去甲肾上腺素具有收缩血管的作用,导致肾血流量减少,从而降低肾小球滤过率,减少尿量。
3. 葡萄糖组:尿量较对照组无明显变化,说明葡萄糖对尿生成无显著影响。
4. 呋塞米组:尿量较对照组明显增加,可能是由于呋塞米具有利尿作用,增加肾小管和集合管对水的重吸收,导致尿量增加。
5. 垂体后叶素组:尿量较对照组无明显变化,说明垂体后叶素对尿生成无显著影响。
尿生成实验报告实验目的:本实验旨在通过观察和分析尿液的形成过程,了解尿液的成分和特性,并探究尿液中可能存在的疾病指标。
实验器材:- 尿采集容器- 试管- 显微镜- 尿液分析试纸- 显微镜载玻片实验步骤:1. 尿液采集和保存首先,将尿液采集容器准备好,并确保容器的清洁和无菌。
选择一次性尿液尽量不含粪便杂质的尿液进行采集。
在早晨醒来后,用清洁的器皿采集新鲜尿液,注意不要让尿液溅到外面,避免外界污染。
将采集到的尿液保存在干燥避光的条件下,最好在2小时内进行实验分析。
2. 尿液外观和气味观察取少量尿液,观察其外观和气味。
正常情况下,尿液通常呈淡黄或无色透明液体,并具有轻微的芳香气味。
如果尿液呈别的颜色或有异味,可能意味着存在某种疾病或不正常情况。
3. 尿液pH检测使用尿液分析试纸将尿液浸泡,根据试纸上的颜色变化和对应的说明,可了解尿液的酸碱性。
正常人的尿液pH值通常在4.6-8.0之间。
4. 尿液比重检测使用尿液分析试纸浸泡尿液后,根据试纸上的颜色变化和说明,可以了解尿液的比重。
正常人的尿液比重范围约为1.005-1.030。
5. 尿液镜检取一滴尿液涂在显微镜载玻片上,放入显微镜下进行观察。
通过显微镜观察,可以看到椭圆形的红细胞、棒状或鳞状的上皮细胞、透明的颗粒细胞等。
6. 尿液沉淀观察将尿液倒入试管中,观察其沉淀情况。
正常情况下,尿液会在放置一段时间后分离成不同的沉淀层,如上部澄清液、中间细丝状渣滓和下部混浊沉积物。
7. 尿液中蛋白质的检测使用尿液分析试纸浸泡尿液后,根据试纸上的颜色变化和说明,可以判断尿液中是否存在蛋白质。
正常情况下,尿液中很少或没有蛋白质。
如果试纸上的颜色变化显示出阳性,可能是尿液中出现了蛋白质,应进一步检查。
实验结果和结论:通过本次尿生成实验,可以得到以下结果和结论:- 尿液的外观和气味通常应该是淡黄色透明液体,并具有轻微的芳香气味。
如果尿液呈别的颜色或有异味,可能意味着存在某种疾病或不正常情况。
影响尿生成的因素
【目的和原理】
学习从输尿管和膀胱引流尿液的方法,观察影响尿生成的若干因素。
尿的生成包括肾小球的滤过、肾小管和集合管的重吸收及分泌排泄三个过程。
凡能影响上述过程的因素都可影响尿的生成,从而引起尿量的改变。
【器材与药品】
D-95微机化实验教学系统,兔手术台,哺乳动物手术器械,气管插管,动脉插管,细塑料管(或膀胱插管),血压换能器,计滴器,保护电极,注射器,培养皿。
20%氨基甲酸乙酯溶液,肝素,29%葡萄糖液,班氏试剂,1:10000去甲肾上腺素,呋塞米(速尿),垂体后叶素。
【实验对象】
兔。
【步骤和方法】
(1)手术操作:
1)耳缘静脉注射20%氨基甲酸乙酯溶液(耳缘静脉注射进行麻醉,仰卧位固定于兔手术台上。
2)颈部剪毛,做颈部正中切口,分离气管并插入气管插管。
3)分离左侧颈总动脉,按常规将充满肝素生理盐水的动脉插管(已连接血压换能器)插入颈总动脉内。
4)分离右侧迷走神经,在其下方穿两条线备用。
手术结束后,用浸有38℃生理盐水的纱布覆盖创面。
5)腹部剪毛,于耻骨联合上方正中做一3~5cm长的切口,沿腹白线切开腹壁,将膀胱向尾侧移出体外,暴露膀胱三角,确认输尿管后,将靠近膀胱处的输尿管用止血钳做钝性分离,穿线备用。
将近输尿管端的输尿管穿线结扎,在靠近结扎线处剪一斜向肾脏的小口,将充满生理盐水的细塑料管向肾脏方向插入输尿管,备用线结扎固定。
此后,可看到尿液从细塑料管中慢慢逐滴流出。
也可从膀胱引流尿液。
同样切开腹壁后,将膀胱向尾侧移至腹外。
先辨认清楚膀胱和输尿管的解剖部位,用线结扎膀胱颈部,以阻断它同尿道的通路。
然后,在膀胱顶部选择血管较少处,剪一纵行小切口,插入膀胱插管(可用一弯头滴管代替),插管口最好正对着输尿管在膀胱的入口处,但不要紧贴膀胱后壁而赌塞输尿管。
用线沿切口结扎两道,将切口边缘固定在管壁上。
手术结束后,用浸有38℃生理盐水的纱布覆盖创面。
(2)实验装置的连接与使用:将血压换能器连至D-95微机化实验教学系统的3通道,描记血压。
将插入输尿管内的细塑料管或插入膀胱内的插管所引流出的尿液,滴在记滴器上,记滴器与系统的4通道连接,描记尿滴数。
刺激电极与系统的刺激输出连接。
进入计算机系统
(3)观察项目:
1)正常血压及尿量。
2)由耳缘静脉注射37℃生理盐水20 ml(1min内注射完),观察血压及尿量的变化。
3)由耳缘静脉注射1:10000去甲肾上腺素0.5ml,观察血压及尿量的变化。
4)收集尿液2滴作尿糖定性试验的对照。
然后经耳缘静脉注射20%葡萄糖液5ml,观察血压及尿量的变化。
当尿量增多时,再取2滴尿液做尿糖定性试验。
尿糖定性试验:试管中加入1ml班氏试剂,再加尿液2滴,在酒精灯上加热煮沸,观
察试剂和沉淀的颜色,如试剂的颜色由蓝色转为绿色或黄色或砖红色,均表示尿中有糖,只是含糖量有所不同。
都称为尿糖试验阳性;如不变色则为阴性。
5)结扎并剪断右侧迷走神经,用中等强度的电流刺激迷走神经的外周端20~30s,使血压降至6.67kpa(50mmHg)左右,观察尿量的变化。
6)自耳缘静脉注射呋塞米(5mg/kg),观察血压及尿量的变化。
7)自耳缘静脉注射垂体后叶素2U,观察血压及尿量的变化。
【注意事项】
(1)为保证动物在实验时有充分的尿液排出,实验前给兔多食菜叶或给兔用水灌胃。
(2)手术操作应尽量轻柔。
腹部切口不可过大,避免损伤性闭尿。
剪开腹膜时,注意勿伤及内脏。
(3)实验中需多次静脉注射,故需保护好兔耳缘静脉。
应尽量从静脉远端开始注射,逐步移向根部,以免反复注射时造成困难。
(4)输尿管插管时,应仔细辨认输尿管,要插入输尿管腔内,勿插在管壁与周围结缔组织间,插管应妥善固定,防止滑脱。
同时,注意输尿管切勿扭曲,否则将会阻碍尿液排出。
(5)每项实验必须在上一项实验作用消失、血压和尿量基本恢复到正常水平时再进行。
做每一项实验时,要观察全过程,这样可以了解药物作用的潜伏期、最大作用期及恢复期等各个阶段。
(6)刺激迷走神经时,注意刺激的强度不要过强,时间不要过长,以免血压急剧下降,心脏停跳。
(6)分析结果时要注意血压和尿量之间的关系。
仅供参考。