FC500流式细胞仪培训教程
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流式细胞仪培训手册序论学习仪器的最好方法是操作仪器,然而在理解原理的基础上进行仪器操作无疑会起到事半功倍的作用。
本书介绍了流式细胞仪的基本知识,并从不同角度详尽阐述了各种台式机(FACScanTM , FACSortTM , FACSCaliburTM ,和 BD LSR与大型机(FACS VantageTM, FACSVantageTM SE, 和 FACStarPLUSTM 之间的不同。
阅读本书有助于增强读者操作仪器的动手能力和经验。
目录第 1章综述…………………………………………………………………… 4 第 2章液流系统………………………………………………………………第 3章散射光信号及荧光信号………………………………………………3.1 散射光信号………………………………………………………3.2 荧光信号…………………………………………………………3.3 荧光补偿第 4章光电系统………………………………………………………………4.1 光平台……………………………………………………………4.2 光学滤片………………………………………………………4.3 信号探测器……………………………………………………4.4 阈值………………………………………………………………第 5章数据分析………………………………………………………………5.1 数据采集及显示…………………………………………………5.2 设门………………………………………………………………5.3 细胞亚群的数据分析…………………………………………5.4 流式细胞仪其它应用的数据分析………………………………5.5 CellQuest软件使用……………………………………………5.6 MutiSet 软件使用………………………………………………5.7 Simultest 软件使用……………………………………………5.8 B27软件使用…………………………………………………5.9 WinMDI软件使用…………………………………………5.10 FACSPress软件使用…………………………………………5.11 System II软件使用…………………………………………5.12 MultiCycle软件使用…………………………………………5.13 Modfit使件使用……………………………………………第 6章流式基本检测项目6.1淋巴细胞亚群检测 (双色、三色、四色,三种软件分析6.2 B27的检测………………………………………………………6.3 血小板抗体检测………………………………………………6.4 网织血小板及红细胞分析……………………………………6.5 干细胞检测……………………………………………………6.6 DNA倍体分析……………………………………………………6.7 凋亡检测…………………………………………………………第 7章分选6.1 分选………………………………………………………………第 8章激光器及光路校正……………………………………………………7.1 激光器的工作原理………………………………………………7.2 光路校正…………………………………………………………第 9章答案………………………………………………………………第一章综述流式细胞术是一项快速检测分析单个粒子多物理特性的高技术,通常指细胞通过激光束时在液流中的特性,即粒子的大小,密度或是内部结构,以及相对的荧光强度。
FC500 日常操作流程开机前之准备补充鞘液(至8~9分满)并倒去废液瓶中之液体。
开机打开电源箱前门,按ON按钮。
依一般程序开启您的计算机进入WINDOWS界面,点选桌面上的图标,即可进入软件。
样本检测1.仪器光路和流路的检测把QC FLOW-CHECK的方案拖到工作区内。
在试管中加5滴FLOW-CHECK微球和500ul的PBS,混合后上样检测,收集5000个颗粒停止。
(蓝光、红光用不同的微球)如果HPX-CV< 3,表明仪器状态好,可以检测样本。
如果HPX-CV>3, 表明流路有气泡或堵塞,请按工具栏中的键排气泡。
2.检测样本:把所需的方案拖至工作区内。
上样已制备好的样本,收集至一定的细胞数,按工具栏上的即停止键,停止收集。
按工具栏上图标,保存数据。
3.分析数据:点选桌面上的图标,即可进入软件。
按工具栏上图标,打开数据,进行分析即可。
清洗,关机1. 准备5%漂白水1 管和双蒸水3管。
2. 点击工作区右侧的工具栏中的图标后,把CLEANING PANEL拖至工作区下方。
依次把一管漂白水和3管双蒸水放到MCL转盘的1,2,3,4号位,点击中的键,开始清洗。
3. 点击工具栏上的和图标,在真空管中加满双蒸水,分别放到MCL转盘的1,2 号位。
4 先用50%漂白液,之后用70%酒精清洗样本台周围,特别要注意样本台和样本针探头。
6 将装有2ml双蒸水的试管MCL转盘的1号位。
7 按下软件右上角的关闭软件。
8.点选桌面上的CXPOFF图示,您会听到机器关闭的声音。
9.打开电源箱前门, 按OFF按钮。
10.正常程序关掉电脑和打印机,显示器。
目 录第一章流式细胞仪简介 (1)1.1 流式细胞术发展史 (1)1.2 流式细胞仪构造和工作原理 (2)1.2.1 概述 (2)1.2.2 流式细胞仪构造 (2)1.3 流式细胞仪的主要技术指标 (10)第二章 FACSCalibur 的日常操作 (12)2.1 FACSCalibur系统 (12)2.2 FACSCalibur开机程序 (15)2.3 FACSCalibur关机程序 (16)2.4 FACSCalibur的维护与保养 (17)2.4.1 FACSCalibur的每月维护 (17)2.4.2 FACSCalibur的定期维护 (18)2.5 常见故障排除 (20)第三章 FACSComp软件 (22)3.1 FACSComp简介 (22)3.1.1 FACSComp运行条件 (22)3.1.2 FACSComp的文件类型 (23)3.2 FACSComp的功能 (24)3.2.1 光电倍增管(PMT)电压的调节 (24)3.2.2 荧光补偿的调节 (24)3.2.3 灵敏度的测试 (24)3.2.4 时间延迟的校准(对于双激光,配有FL4 PMT) (25)3.2.5 HLA-B27的校准 (25)3.2.6 LeucoCOUNT (25)3.2.7 优化 (25)3.3 FACSComp的运行 (25)3.3.1 CaliBRITE Beads的准备 (25)3.3.2 软件环境的设置 (26)3.3.3 Beads的检测 (26)3.3.4 Optimization (28)第四章 FACStation 数据管理系统 (30)4.1 FACStation 数据管理系统组成 (30)4.2 FACStation文件组成 (31)4.2.1 如何建立文件夹 (31)4.2.2 FACStation文件的类型 (31)4.2.3 如何管理文件 (32)4.3 实用的Macintosh OS X功能 (34)4.3.1 菜单栏 (35)4.3.2 Dock (37)4.3.3 查找窗口 (37)4.3.4 键盘快捷键 (38)4.4 如何设置模版 (39)4.5 实验练习:如何将ModFit LT的别名添加到Dock菜单下 (40)4.6 可选性存储装置 (40)4.6.1 可选性存储装置的基本工作原则 (40)4.6.2 光驱的维护 (41)4.6.3 光盘的维护 (41)第五章 CellQuest Pro软件 (42)5.1 概述 (42)5.1.1 获取(Acquisition) (42)5.1.2 分析(Analysis) (42)5.1.3 从获取到分析(Acquisition Analysis) (42)5.2 工具栏 (42)5.3 CellQuest Pro 的文件 (43)5.3.1 FCS数据文件 (43)5.3.2 实验文件 (44)5.3.3 仪器条件文件 (44)5.3.4 统计文件 (44)5.4 CellQuest Pro 的仪器控制 (44)5.4.1 探测器 (45)5.4.2 放大器 (45)5.4.3 阈值 (46)5.4.4 补偿 (46)5.6.1 质控-运行FACSComp (48)5.6.2 优化 (50)5.6.3 调出储存的由FACSComp 生成的仪器条件 (52)5.6.4 调节FSC/SSC探测器(电压)及FSC阈值 (53)5.6.5 设置淋巴细胞Region (53)5.6.6 调节FL1、FL2、FL3的探测器(电压) (53)5.6.7 调节荧光补偿 (55)5.7 实验练习:3色/4色预获取 (55)5.7.1 设置Acquisition & Storage 窗口 (56)5.7.2 设置Parameter Description (57)5.7.3 编辑Reagent Panel (58)5.8 实验练习:数据获取 (59)5.9 储存、恢复仪器设置 (60)5.9.1 储存仪器设置 (60)5.9.2 恢复仪器设置 (60)5.10 储存实验模板文件 (60)5.11 练习:数据分析 (60)5.11.1 画Region (61)5.11.2 限定象限marker (61)5.11.3 分析四色 (63)5.11.4 批分析其余数据 (63)5.11.5 分析数据 (64)5.11.6 将分析文件以模板形式保存 (64)5.11.7 创建文具簿(stationery pad) (64)5.11.8 将统计改为电子表格 (65)5.12 Regions 和Gating(画门) (65)5.12.1 设置Region (65)5.12.2 改变Region (65)5.12.3 用Region 统计来分析数据 (66)5.12.4 门 (66)5.12.5 多色门 (66)5.12.6 组合门 (67)5.12.7 在直方图上使用组合门分析 (68)收集系统6.1.2 分选模式 (70)6.2 分选窗口 (71)6.2.1 Sort Setup (71)6.2.2 Sort Counters (72)6.3 准备收集管 (72)6.4 分选 (73)6.4.1 清洗分选管线 (73)6.4.2 准备 (73)6.4.3 收集分选前数据 (74)6.4.4 分选条件设置 (74)6.4.5 分选目的细胞 (74)6.4.6 清洗分选管路 (75)6.4.7 浓缩样本 (76)6.5 检验分选纯度 (76)6.6 分选问题讨论 (77)6.7 FACSCalibur无菌分选 (79)6.8 分选细胞浓缩系统 (80)6.8.1 系统简介 (80)6.8.2 细胞培养基嵌入物和滤膜的制备 (81)6.8.3 确定气压参数 (82)6.8.4 如何用细胞浓缩系统进行分选 (82)6.8.5 分选浓缩细胞 (84)6.8.6 从分选管路中回收细胞 (84)6.8.7 回收细胞做进一步分析 (85)6.8.8 清洗分选管路 (85)6.8.9 清洗浓缩器 (85)第七章 DNA分析 (87)7.1 概述 (87)7.2 细胞周期 (87)7.3 DNA检测的常用术语 (87)7.3.1 Coefficient of Variation(CV):变异系数 (87)7.4.1 分辨率(CV) (88)7.4.2 线性度 (88)7.4.3 碎片 (88)7.4.4 细胞双粘体 (89)7.5 DNA质量控制(DNA QC Particles) (89)7.5.1 样本制备 (89)7.5.2 上机检测 (89)7.5.3 常见错误排除 (90)7.6 用CellQuest Pro软件获取DNA 数据 (91)7.6.1 样本制备 (91)7.6.2 用CellQuest Pro软件上机获取数据 (92)7.6.3 质量控制 (95)7.7 用ModFit 软件分析DNA数据 (95)7.7.1 运用ModFit 进行自动分析 (96)7.7.2 运用ModFit 进行手动分析 (96)7.7.3 运用ModFIT进行同步化分析 (98)7.7.4 运用ModFIT 进行增殖分析 (98)第八章 HLA-B27分析 (99)8.1 检测HLA-B27的意义 (99)8.2 HLA-B27的检测方法 (99)8.2.1 传统方法 (99)8.2.2 流式细胞术 (100)8.2.3 试剂盒介绍 (100)8.2.4 实验原理 (100)8.2.5 样本的收集和准备 (101)8.2.6 流式检测 (102)8.3 质量控制 (110)附录1:组织相容性抗原和疾病的关系 (111)附录2:强直性脊柱炎——一个常见但易被忽略的疾病 (112)第九章 MultiSET软件 (113)9.1 简介 (113)软件内容9.4.1 MultiSET界面功能分区 (116)9.4.2 MultiSET命令菜单 (116)9.4.3 MultiSET实验报告 (117)9.4.4 MultiSET运行程序 (117)9.5 利用Multiset软件的Tools和Preferences (126)9.6 Control Panels (绝对计数质控) (128)9.7 MultiSET画门及Attractor方案 (128)9.8 注意事项及常见问题处理 (129)第十章练习题 (135)10.1 补偿 (135)10.2 流式简介 (135)10.3 CellQuest 获取与分析 (136)10.4 分选 (139)第一章流式细胞仪简介1.1 流式细胞术发展史纵观历史,几乎没有哪一门科学技术象流式细胞术这样凝结了众多不同学术背景、不同科研领域的科学家的心血。
流式细胞仪操作步骤(FACSCalibur)⼀、开机程序:1.检查鞘液桶和废液桶。
确认鞘液充满状态(鞘液为鞘液桶体积的3/4位置,可以连续⼯作3个⼩时左右)、盖紧⿊盖、管道畅通、废液桶有⾜够空间容纳本批标本排弃的废液。
如果要添加鞘液,要先释放鞘液桶中⽓压。
2.依次打开流式细胞仪FACSCalibur稳压器、主机开关、电脑开关,打印机。
3.⽓压阀置于加压位置,待流式细胞仪处于STANDBY状态,做Prime,以排除管路中⽓泡。
⼆、运⾏FACSComp软件、检查仪器状况1.制备三⾊标准微球样本。
⼀般情况向1ml鞘液(或过滤PBS)中加⼊1滴质控⼩微球,也可以根据实际情况调节浓度。
2.机器预热5 min,打开FACSComp软件,选择保持路径。
选择所需校正内容,如果使⽤的微球是新⼀批产品要输⼊微球的批号。
3.在软件界⾯左侧Assay Selection选项中选择质控类型,即实验过程中是否需要清洗样品。
4.上样品,微球溶液上样之前要充分混匀。
功能键设置在“RUN”。
5.仪器⾃动检查,并做电压、补偿等设置。
6.FACSComp软件运⾏完毕,显⽰结果通过测试。
7.做Set up。
8.打印校正结果,退出FACSComp程序。
备注:在质控过程中,如果提⽰收集细胞速度慢可以提⾼细胞收集速度,但是在调节灵敏度(Sens)时,⼀定要⽤“Low”的状态上样,保证仪器灵敏度的准确。
在使⽤仪器过程中要养成好的习惯,在上样品过程中,仪器保持在“Low”“Standby”状态。
三、样品分析软件:CellQuest Pro软件,选择“联机”。
1.(2)对实验样本进⾏命名;(3)对实验通道进⾏预设(FSC,SSC,FL1-FL4)。
备注:如果界⾯被关闭,重新调出步骤:2.调出质控模板。
3.画图选择画图⼯具(⼀般选择散点图),Inspect界⾯会⾃动弹出,对⼏个常⽤选项进⾏设定:将散点图选中(⽤⿏标点击散点图边框才能够选中图形),将更改横纵坐备注:第⼀个散点图横坐标为FSC,纵坐标为SSC。
流式细胞仪操作步骤一、样品准备1. 确认样品是否符合实验要求,如细胞浓度、荧光标记等。
2. 根据实验需求,选择合适的试管和细胞样品。
3. 确认样品中是否有杂质或污染物,必要时进行离心和洗涤。
4. 尽可能缩短样品处理时间,避免细胞活性受到影响。
二、样品上机1. 打开流式细胞仪,确认仪器正常工作。
2. 将样品加入到流式细胞仪的样品管中。
3. 根据实验需求,设置合适的流速和压力。
4. 开始采集数据,观察仪器工作状态,确保数据准确可靠。
三、参数设置1. 根据实验需求,选择合适的荧光标记和检测参数。
2. 根据细胞类型和特性,设置合适的门控和阈值。
3. 确认仪器校准和定标工作已完成。
4. 根据需要,设置多色分析,以便于进行细胞分群和定量分析。
四、数据采集1. 在采集数据时,观察仪器工作状态,确保数据准确可靠。
2. 根据实验需求,确定采集的数据量,确保数据具有代表性。
3. 记录采集数据的时间和条件,以便于后续数据分析。
4. 在采集数据时,注意观察细胞活性、浓度和分布情况,及时调整实验条件。
五、数据分析1. 使用专业软件对采集的数据进行处理和分析。
2. 根据实验需求,对数据进行去噪、归一化和定量分析。
3. 进行细胞分群、细胞周期和细胞凋亡等分析。
4. 对数据进行统计学分析和可视化展示。
六、结果输出1. 根据分析结果,输出相应的图表和数据表格。
2. 对结果进行解释和注释,以便于读者理解和应用。
3. 如果需要,可将结果整理成报告形式,提供给相关人员参考和使用。
七、质量控制八、实验室清理。
Cytomics FC 500 MCL中文应用培训手册V 1.1 美国贝克曼库尔特有限公司目 录培训所需设备及试剂 (1)每日开机程序 (2)每日关机程序 (3)长期关机程序 (4)日常保养与维护 (5)Flow-Check TM自动质控操作 (7)仪器QC及验证操作 (9)双色淋巴细胞亚群获取和分析 (12)单色&多色样本获取和分析 (20)HLA-B27检测 (21)四色免洗淋巴细胞亚群绝对计数 (28)DNA测定 (32)相关文件:1.《Cytomics FC 500 MCL with CXP software Instructions For Use 》;2.《FC500 tetraCXP System guide》;3.《CYTO-STAT tetraCHROME CD45-FITC/CD4-RD1/CD8-ECD/CD3-PC5 Instructions For Use》;4.《CYTO-STAT tetraCHROME CD45-FITC/CD56-RD1/CD19-ECD/CD3-PC5 Instructions For Use》;5.《HLA-B27-FITC/HLA-B7-PE Instructions For Use》;6.《Coulter DNA Prep Reagents Kit Instructions For Use》;本手册自2011年3月1日起执行培训所需设备及试剂1.普通低速离心机(实验要求为300g,相当于1000~1500rpm,可调转速调时间,能离心12x75mm的5ml试管);2.固定或可调节的加样器及相应加样头若干: 20ul,50ul, 100ul, 200ul, 250ul,450ul,1ml;3.涡旋混匀器;4.烧杯,量筒或移液管,清洁的玻璃或塑料带盖试剂瓶(50-100ml)若干,1个棕色瓶,漏斗,滤纸,纱布,棉签若干;5.300目过滤尼龙网;6.可放置12x75mm的5ml试管的试管架2-3个;7.PBS 溶液和蒸馏水:0.22μm滤膜过滤;8.NaClO:分析纯,有效氯浓度5-10%;9.多聚甲醛。
目 录第一章流式细胞仪简介 (1)1.1 流式细胞术发展史 (1)1.2 流式细胞仪构造和工作原理 (2)1.2.1 概述 (2)1.2.2 流式细胞仪构造 (2)1.3 流式细胞仪的主要技术指标 (10)第二章 FACSCalibur 的日常操作 (12)2.1 FACSCalibur系统 (12)2.2 FACSCalibur开机程序 (15)2.3 FACSCalibur关机程序 (16)2.4 FACSCalibur的维护与保养 (17)2.4.1 FACSCalibur的每月维护 (17)2.4.2 FACSCalibur的定期维护 (18)2.5 常见故障排除 (20)第三章 FACSComp软件 (22)3.1 FACSComp简介 (22)3.1.1 FACSComp运行条件 (22)3.1.2 FACSComp的文件类型 (23)3.2 FACSComp的功能 (24)3.2.1 光电倍增管(PMT)电压的调节 (24)3.2.2 荧光补偿的调节 (24)3.2.3 灵敏度的测试 (24)3.2.4 时间延迟的校准(对于双激光,配有FL4 PMT) (25)3.2.5 HLA-B27的校准 (25)3.2.6 LeucoCOUNT (25)3.2.7 优化 (25)3.3 FACSComp的运行 (25)3.3.1 CaliBRITE Beads的准备 (25)3.3.2 软件环境的设置 (26)3.3.3 Beads的检测 (26)3.3.4 Optimization (28)第四章 FACStation 数据管理系统 (30)4.1 FACStation 数据管理系统组成 (30)4.2 FACStation文件组成 (31)4.2.1 如何建立文件夹 (31)4.2.2 FACStation文件的类型 (31)4.2.3 如何管理文件 (32)4.3 实用的Macintosh OS X功能 (34)4.3.1 菜单栏 (35)4.3.2 Dock (37)4.3.3 查找窗口 (37)4.3.4 键盘快捷键 (38)4.4 如何设置模版 (39)4.5 实验练习:如何将ModFit LT的别名添加到Dock菜单下 (40)4.6 可选性存储装置 (40)4.6.1 可选性存储装置的基本工作原则 (40)4.6.2 光驱的维护 (41)4.6.3 光盘的维护 (41)第五章 CellQuest Pro软件 (42)5.1 概述 (42)5.1.1 获取(Acquisition) (42)5.1.2 分析(Analysis) (42)5.1.3 从获取到分析(Acquisition Analysis) (42)5.2 工具栏 (42)5.3 CellQuest Pro 的文件 (43)5.3.1 FCS数据文件 (43)5.3.2 实验文件 (44)5.3.3 仪器条件文件 (44)5.3.4 统计文件 (44)5.4 CellQuest Pro 的仪器控制 (44)5.4.1 探测器 (45)5.4.2 放大器 (45)5.4.3 阈值 (46)5.4.4 补偿 (46)5.6.1 质控-运行FACSComp (48)5.6.2 优化 (50)5.6.3 调出储存的由FACSComp 生成的仪器条件 (52)5.6.4 调节FSC/SSC探测器(电压)及FSC阈值 (53)5.6.5 设置淋巴细胞Region (53)5.6.6 调节FL1、FL2、FL3的探测器(电压) (53)5.6.7 调节荧光补偿 (55)5.7 实验练习:3色/4色预获取 (55)5.7.1 设置Acquisition & Storage 窗口 (56)5.7.2 设置Parameter Description (57)5.7.3 编辑Reagent Panel (58)5.8 实验练习:数据获取 (59)5.9 储存、恢复仪器设置 (60)5.9.1 储存仪器设置 (60)5.9.2 恢复仪器设置 (60)5.10 储存实验模板文件 (60)5.11 练习:数据分析 (60)5.11.1 画Region (61)5.11.2 限定象限marker (61)5.11.3 分析四色 (63)5.11.4 批分析其余数据 (63)5.11.5 分析数据 (64)5.11.6 将分析文件以模板形式保存 (64)5.11.7 创建文具簿(stationery pad) (64)5.11.8 将统计改为电子表格 (65)5.12 Regions 和Gating(画门) (65)5.12.1 设置Region (65)5.12.2 改变Region (65)5.12.3 用Region 统计来分析数据 (66)5.12.4 门 (66)5.12.5 多色门 (66)5.12.6 组合门 (67)5.12.7 在直方图上使用组合门分析 (68)收集系统6.1.2 分选模式 (70)6.2 分选窗口 (71)6.2.1 Sort Setup (71)6.2.2 Sort Counters (72)6.3 准备收集管 (72)6.4 分选 (73)6.4.1 清洗分选管线 (73)6.4.2 准备 (73)6.4.3 收集分选前数据 (74)6.4.4 分选条件设置 (74)6.4.5 分选目的细胞 (74)6.4.6 清洗分选管路 (75)6.4.7 浓缩样本 (76)6.5 检验分选纯度 (76)6.6 分选问题讨论 (77)6.7 FACSCalibur无菌分选 (79)6.8 分选细胞浓缩系统 (80)6.8.1 系统简介 (80)6.8.2 细胞培养基嵌入物和滤膜的制备 (81)6.8.3 确定气压参数 (82)6.8.4 如何用细胞浓缩系统进行分选 (82)6.8.5 分选浓缩细胞 (84)6.8.6 从分选管路中回收细胞 (84)6.8.7 回收细胞做进一步分析 (85)6.8.8 清洗分选管路 (85)6.8.9 清洗浓缩器 (85)第七章 DNA分析 (87)7.1 概述 (87)7.2 细胞周期 (87)7.3 DNA检测的常用术语 (87)7.3.1 Coefficient of Variation(CV):变异系数 (87)7.4.1 分辨率(CV) (88)7.4.2 线性度 (88)7.4.3 碎片 (88)7.4.4 细胞双粘体 (89)7.5 DNA质量控制(DNA QC Particles) (89)7.5.1 样本制备 (89)7.5.2 上机检测 (89)7.5.3 常见错误排除 (90)7.6 用CellQuest Pro软件获取DNA 数据 (91)7.6.1 样本制备 (91)7.6.2 用CellQuest Pro软件上机获取数据 (92)7.6.3 质量控制 (95)7.7 用ModFit 软件分析DNA数据 (95)7.7.1 运用ModFit 进行自动分析 (96)7.7.2 运用ModFit 进行手动分析 (96)7.7.3 运用ModFIT进行同步化分析 (98)7.7.4 运用ModFIT 进行增殖分析 (98)第八章 HLA-B27分析 (99)8.1 检测HLA-B27的意义 (99)8.2 HLA-B27的检测方法 (99)8.2.1 传统方法 (99)8.2.2 流式细胞术 (100)8.2.3 试剂盒介绍 (100)8.2.4 实验原理 (100)8.2.5 样本的收集和准备 (101)8.2.6 流式检测 (102)8.3 质量控制 (110)附录1:组织相容性抗原和疾病的关系 (111)附录2:强直性脊柱炎——一个常见但易被忽略的疾病 (112)第九章 MultiSET软件 (113)9.1 简介 (113)软件内容9.4.1 MultiSET界面功能分区 (116)9.4.2 MultiSET命令菜单 (116)9.4.3 MultiSET实验报告 (117)9.4.4 MultiSET运行程序 (117)9.5 利用Multiset软件的Tools和Preferences (126)9.6 Control Panels (绝对计数质控) (128)9.7 MultiSET画门及Attractor方案 (128)9.8 注意事项及常见问题处理 (129)第十章练习题 (135)10.1 补偿 (135)10.2 流式简介 (135)10.3 CellQuest 获取与分析 (136)10.4 分选 (139)第一章流式细胞仪简介1.1 流式细胞术发展史纵观历史,几乎没有哪一门科学技术象流式细胞术这样凝结了众多不同学术背景、不同科研领域的科学家的心血。
FC500流式细胞仪
安装条件:
1.电源:200V+10% 、16A、50Hz单相三线专用电源,供给3KV A在线不间断电源;
2.地线:由专业电工安装的专用地线,零地电压小于2V ac;
3.接插件:二只10A插头和二只市售的多功能接线盒;
4.不间断电源:3KV A在线式UPS,配备3只单独的220V/10A单相三线输出插座;
5.环境温度:15~25摄氏度,必要时配备1.5匹空调。
空调不得与仪器共用同一电源线路。
6.仪器必需放置在稳固,无振动的台面上,台面尺寸为2.5*0.8米。
仪器后方的台面与墙
壁之间必需有0.6~0.8米的空间,便于仪器保养及维修。
主机、计算机及打印机放在台面上,电源箱放在地面上。
流式细胞仪上机操作培训手册一、样本处理以PBMC表面抗原的流式检测步骤为例1)取样。
取新鲜提取或冻存后复苏的PBMC;2)编号。
根据实验设计,标记好流式管,如每份PBMC设两管:a)1号管:相应同型对照;b)2号管:CD3,CD4,CD8,CD56四标管;3)加样。
用移液器取100ul细胞/管(约1×106个细胞/管),分别加到已经标记好的流式管底部;4)洗涤。
加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min;5)染色。
弃上清,加入100 μl PBS/管涡旋混匀细胞,并根据实验设计,向各流式管中加入相应的荧光素标记抗体,混匀,室温避光孵育30min(操作尽量保持在避光条件下进行。
)6)洗涤。
加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min;7)重悬。
弃上清,加入0.5ml PBS/管,混匀,上机检测(可选择BD FACSCantoII或BD Accuri C6)。
(注:若不能及时上机,应加入4%多聚甲醛固定,并于4℃避光保存。
)8)试验结果分析。
(注:实验过程中如果进行多色标记,需要调节荧光补偿)。
参考值:二、上机检测BD FACSCanto II简要操作流程启动流式细胞仪1 打开流式细胞仪电源2 启动计算机,打开软件登录3 确保软件连接到流式细胞仪必要时,点击Cytometer > connect检查液体水平1 启动流式细胞仪后,检查液体水平低液面水平或者废液桶满都用红色指示。
2 如果液流车未自动开启,选择Cytometer > Fluidics Startup。
3 当液流启动完成后,点击OK关闭对话框。
检查气泡1 在检查完液体水平后,开启流动室门,检查流动室中是否有气泡。
2 如果没有看到气泡,进行第5步。
如果看到气泡,点击Cytometer > CleaningModes >De-gas Flow Cell.3 当完成信息出现后,点击OK。