根癌农杆菌介导的真菌转化
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根癌农杆菌介导的真菌遗传转化研究进展根癌农杆菌介导的真菌遗传转化是一种广泛应用于真菌基因功能研究与基因工程改造的技术。
通过利用根癌农杆菌T-DNA插入系统,将外源DNA转移至真菌细胞中,并将其整合到其基因组特定位点中,以此实现真菌基因突变、功能分析和引入外源基因等目的。
本文将介绍根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术的原理、方法和应用,并对其研究进展进行概述。
一、技术原理根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)是一种经常被应用于植物基因工程的重要媒介,其T-DNA插入系统是实现外源基因整合的重要工具。
T-DNA是根癌农杆菌质粒中可转移DNA的一部分,其特点是,在植物感染过程中,T-DNA可被转移至寄主植物细胞内,并随后整合到其基因组中。
利用这一特点,将要转化的DNA导入到T-DNA载体中,然后插入到根癌农杆菌中,再将根癌农杆菌和真菌竹蜜菇接触,使得根癌农杆菌向真菌转移T-DNA,并通过T-DNA的插入将外源DNA整合到真菌基因组中。
二、方法简介根癌农杆菌介导的真菌遗传转化分为三个主要步骤,包括构建T-DNA载体、初始感染和筛选鉴定。
1. T-DNA载体构建T-DNA载体是根癌农杆菌之间传递转移DNA的载体,也是构建真菌遗传转化所需的载体。
在构建T-DNA载体时,需要创建flanking序列、筛选标记和转入基因。
其中,flanking序列是T-DNA插入到基因组中的标记,通常使用真核生物的基因表达元件,如启动序列或终止序列等,在T-DNA插入过程中随之整合到基因组中。
筛选标记则是指用于鉴定转化后的真菌是否包含T-DNA的标志,一般建议选择抗性基因或荧光蛋白基因。
转入基因则是要转入真菌中并施加特定的功能的外源基因。
2. 初始感染根癌农杆菌与真菌的接触是通过共培养实现的。
首先,将竹蜜菇生长在含有不同浓度的根癌农杆菌悬浮液的培养基上。
当根癌农杆菌悬浮液达到适当的浓度时,将其与真菌孢子混合,并将混合物培养在适当的时间和温度下,使根癌农杆菌向真菌细胞释放T-DNA,再经过植物激素、光照等处理,使真菌细胞产生表型变化,如生长速度快慢、菌丝分化、子实体大小等,这些都是外源DNA整合到基因组中的结果。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化研究进展根癌农杆菌介导的真菌遗传转化是一种重要的生物技术手段,被广泛应用于真菌基因工程研究和相关产业生产中。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术利用农杆菌Ti质粒中的T-DNA片段将外源基因导入真菌细胞内,使真菌细胞具有新的遗传特性。
近年来,随着生物技术的发展和研究的深入,根癌农杆菌介导的真菌遗传转化研究取得了令人瞩目的进展。
一、根癌农杆菌介导的真菌遗传转化原理及方法1.构建适合真菌的质粒载体,将外源基因插入T-DNA载体中,构建成适合真菌遗传转化的质粒载体。
2.将构建好的质粒载体通过农杆菌进行转化,使其含有T-DNA片段。
3.利用农杆菌与真菌细胞的接触,将质粒中的T-DNA片段导入真菌细胞内。
4.筛选和鉴定转化后的真菌株系,确认外源基因是否成功导入真菌细胞中,并对转化菌株进行鉴定和分离纯化。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术在农业生产中有着广泛的应用价值,主要体现在以下几个方面:1. 抗病力提高:根癌农杆菌介导的真菌遗传转化可以实现真菌对病原菌的抗性提高,使植物在生长过程中更加健康,减少病害发生的可能性。
2. 产量增加:通过真菌遗传转化技术可以使真菌获得更好的生长特性和代谢特性,从而提高作物产量。
3. 抗逆性提高:真菌经过遗传改造后,可能对环境中的逆境条件具有更强的抵抗能力,使植物更加适应不良环境的生长条件。
4. 品质改进:真菌遗传转化技术还可以用于改进植物的品质,比如提高农作物的风味、口感等。
1. 药物生产:利用真菌遗传转化技术可以大规模生产生物药物,比如抗生素、激素等,在生物医药领域有着重要的应用。
2. 新药研发:真菌遗传转化技术可以用于研发新的药物,通过改造真菌代谢途径等方式,获得新型的生物活性化合物。
3. 医学研究:真菌遗传转化技术也可以用于医学研究领域,比如用于疾病的基因治疗、蛋白质表达等。
1. 技术改进:研究者不断优化根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术,提高转化效率和稳定性,为真菌的遗传改造提供更好的手段。
根癌农杆菌介导法原理引言根癌农杆菌介导法是一种常用的基因转化技术,广泛应用于植物遗传工程领域。
它利用植物根癌农杆菌接触感染时产生的植物激素和DNA导入技术,将外源基因导入植物细胞,实现对植物基因组的改造。
本文将全面、详细、完整地探讨根癌农杆菌介导法的原理、应用以及优缺点。
根癌农杆菌的特点1. 根癌农杆菌简介根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens) 是一种通过植物接触感染的土壤细菌,在植物遗传工程研究中具有重要的应用价值。
它能够将其自身的T-DNA(转座子DNA)片段导入植物细胞,并在植物细胞中稳定表达。
2. 根癌农杆菌的感染机制根癌农杆菌感染植物的过程包括以下几个步骤:1.识别和结合:根癌农杆菌通过识别植物伤口释放的酚类化合物,结合到植物细胞表面。
2.感染透入:根癌农杆菌产生的信号分子诱导植物细胞产生细胞壁降解酶,使其自身进入植物细胞。
3.T-DNA转移:根癌农杆菌通过特殊的转移螺旋(vir蛋白)将T-DNA从细菌自身转移到植物细胞中。
4.T-DNA整合:转移的T-DNA片段在植物细胞染色体上整合,并导致植物细胞的遗传改变。
根癌农杆菌介导法原理根癌农杆菌介导法利用根癌农杆菌的感染机制,将外源基因导入植物细胞,从而实现对植物基因组的改造。
1. 构建适合的转化载体在根癌农杆菌介导法中,首先需要构建适合的转化载体。
转化载体通常包括以下几个重要组成部分:•T-DNA:携带待转化的外源基因片段。
•选择标记基因:用于筛选转化成功的植物细胞。
•根癌农杆菌起始核酸序列(ori):用于在根癌农杆菌中复制转化载体。
2. 根癌农杆菌感染植物将构建好的转化载体导入根癌农杆菌中,然后让根癌农杆菌感染植物组织。
通常可以通过以下步骤实现:•制备根癌农杆菌感染液:将构建好的转化载体导入根癌农杆菌中,培养至菌体达到一定浓度。
•植物组织处理:将待转化的植物组织浸泡在根癌农杆菌感染液中,利用真空处理或共振法促使菌体进入植物细胞。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化研究进展植物真菌是一类重要的微生物,在自然界中具有重要的地位,它们可以在植物体内或外引起多种作物的病害。
为了有效防治和控制植物真菌的病害,基因转化技术已经成为一种重要的手段。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术具有高效、简单、灵活等特点,在植物真菌遗传改良研究中得到了广泛应用。
本文将对根癌农杆菌介导的真菌遗传转化研究进展进行综述。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术是利用根癌农杆菌T-DNA插入真菌染色体中,实现外源基因的导入。
根癌农杆菌T-DNA在感染植物组织过程中,T-DNA的两侧的重复序列对应产生质粒的头部和尾部,T-DNA插入到植物基因组中去除了生发区和生殖区基因的调节因子,导致细胞无法分化造成根癌,自然或人工去除这些基因后,再将目的基因嵌合到T-DNA后导入目标植物组织并在细胞层或组织层产生效应。
1. 研究目的明确根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术的研究目的是为了利用该技术将外源基因导入真菌细胞中,从而使真菌获得新的性状或功能。
目前,根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术已被成功应用于多种真菌,如白僵菌、酿酒酵母、木霉等。
这些研究表明,根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术在真菌改良中具有广阔的应用前景。
2. 技术改进在根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术的研究过程中,研究人员还对该技术进行了不断改进,以提高其转化效率和稳定性。
通过对根癌农杆菌T-DNA的结构和功能进行深入研究,研究人员已成功构建了一些具有高效转化能力的根癌农杆菌株系,并利用这些株系进行了真菌遗传转化研究。
研究人员还对真菌遗传转化的各个环节进行了逐一优化,从而取得了一系列令人满意的研究成果。
3. 应用领域拓展三、面临的挑战与未来展望尽管根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术在植物真菌遗传改良研究中取得了一系列的进展,但在实际应用中仍然面临着一些挑战。
由于真菌的遗传特性复杂,其遗传转化技术相对于细菌和植物来说较为困难,因此对真菌的遗传机制和代谢途径的研究仍需要进一步加强。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化研究进展根癌农杆菌介导的真菌遗传转化是一种重要的生物技术手段,用于在真菌中引入外源基因,从而实现真菌遗传改良和生产目的。
通过这种方法,可以使真菌获得新的代谢途径、提高产酶能力、增强抗病性等,对农业、食品、医药等领域具有广泛的应用前景。
本文将介绍根癌农杆菌介导的真菌遗传转化研究的进展,包括转化技术、转化机理、影响因素等方面的最新成果。
根癌农杆菌介导的真菌遗传转化是一种经典的转化方法,其基本原理是利用根癌农杆菌在侵染植物细胞时所产生的T-DNA插入到真菌基因组中,从而实现外源基因的导入。
目前,根癌农杆菌介导的真菌遗传转化技术已经被广泛应用于多种真菌中,包括担子菌门、霉菌门、子囊菌门等。
在这一技术中,首先需要构建适合真菌转化的质粒载体,然后将所需的外源基因插入到T-DNA中,最终通过根癌农杆菌介导的转化方法将T-DNA导入到真菌中,使其表达外源基因。
二、根癌农杆菌介导的真菌遗传转化机理根癌农杆菌介导的真菌遗传转化机理主要包括侵染、T-DNA转移、T-DNA插入和表达等过程。
在侵染过程中,根癌农杆菌通过细菌分泌的外膜蛋白和植物细胞的信号物质相互作用,从而进入植物细胞内部。
随后,T-DNA与细菌Ti质粒结合成核,在细胞核区域形成T型DNA复合物,通过核孔结构进入到植物细胞核中。
一旦T-DNA进入到植物细胞核中,它就会插入到宿主基因组中,并通过宿主细胞机理来转录和翻译成蛋白质,最终表达外源基因。
在根癌农杆菌介导的真菌遗传转化过程中,有许多因素会对转化效率产生影响,包括真菌种属、株系、生长条件、遗传材料、T-DNA构建等。
不同真菌种属对根癌农杆菌转化的敏感性不同,其中以担子菌门真菌为最敏感。
真菌株系的选择和优化也是影响遗传转化效率的重要因素,通常选择易于扩增和稳定的株系可以提高转化效率。
合适的生长条件对于真菌的生长和代谢活性都是至关重要的,比如温度、光照、培养基成分等都会对真菌的遗传转化效率产生影响。
实验三根癌农杆菌介导的植物遗传转化一实验目的了解植物遗传转化的方法和理论掌握根癌农杆菌介导的遗传转化技术二原理植物遗传转化技术是指通过物理的,化学的或生物学的方法,将外源的基因导入受体植物细胞中获得再生植株的转基因技术。
自1983转基因植物问世以来,至今不到20年时间里,植物转基因技术发展迅速,除了占指导地位,运用最为广泛的农杆菌介导法,还发展了10多种转基因方法,如物理方面的基因枪法,电激法,显微注射法,超声波法,激光微束法,炭化硅纤维介导法,电泳法等;化学方面PEG介导转化,脂质体介导转化;生物学方面的种质系统法如花粉介导法,花粉管通道法等。
农杆菌介导法土壤农杆菌(Agrobacterium)是一种革兰氏阳性菌,有两个种与植物转基因有关,即根癌农杆菌(Agrobacterium Tumefaciens)和发根农杆菌(Agrobacterium Rhizogenes).它们在自然状态下具有趋化性地感染大多数双子叶植物的受伤部位,并诱导产生冠缨瘤或发状根,在离体条件下,可以在不加任何生长素的培养基中持续生长,研究表明根癌农杆菌和发根农杆菌细胞中分别含有Ti 和Ri质粒,上面有一段T-DNA区,可以通过一系列过程进入植物细胞并将这一段T-DN插入到植物基因组中,这是农杆菌侵染植物后产生冠缨瘤或发状根的根本原因,因此农杆菌是一种天然的植物遗传转化体系,人们可将所构建的目的基因插入到去除了致瘤基因的Ti(Ri)质粒的T-DNA区,借助农杆菌侵染受体植物细胞后T-DNA向植物基因组的高频转移和整合特性,实现目的基因对受体植物细胞的转化,然后通过植物细胞合和组织培养技术,利用植物细胞的全能性获得转基因再生植株。
农杆菌介导法转基因技术的关键是T-DNA整合受体植物基因组的过程,这一过程依赖与Ti质粒上的T-DNA区,和Vir区各种基因的表达以及一系列蛋白质和核酸的相互作用。
简略地说。
其过程是:植物细胞在受伤后细胞壁破裂,分泌高浓度的创伤诱导分子,它们是一些酚类化合物,如乙酰丁香酮(acetosyringone,AS)和羟基乙酰丁香酮(hydroxy- acetosyringone,OH-As)农杆菌对这类物质具有趋化性,首先在植物细胞表面发生贴壁,继而植物创伤分子诱导农杆菌Vir区各种基因的激活和表达。
一种根癌农杆菌介导转化平菇菌丝体的新方法
鲍广稳;祝嫦巍
【期刊名称】《食品与生物技术学报》
【年(卷),期】2015(034)011
【摘要】设计了一种简单高效的根癌农杆菌介导转化平菇菌丝体的方法.利用嵌套平板的方法,在内层平板培养平菇菌丝,待菌丝生长至平板边缘,将经诱导的根癌农杆菌与共培养培养基(CCM)混合,倒入内层平板与外层平板的间隙中,与正在生长中的菌丝共培养,实现转化,利用潮霉素抗性筛选获得转化子,平均转化效率33%左右.此方法操作简单,周期短,极易扩大实验规模,为平菇的分子育种以及其他丝状真菌的遗传转化提供参考.
【总页数】4页(P1168-1171)
【作者】鲍广稳;祝嫦巍
【作者单位】安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100;安徽科技学院生命科学学院,安徽凤阳233100
【正文语种】中文
【中图分类】Q819
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5.根癌农杆菌介导转化红曲菌及转化子发酵性能的研究 [J], 王璐;许赣荣;王武因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
根癌农杆菌介导的真菌转化
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根癌农杆菌介导的真菌转化
(一)农杆菌电击感受态制备及电击转化A感受态的制备
1)将农杆菌菌液划线于Yeb平板(50μg/mlkana),28℃,36-48h。
2)挑单菌落至3mlYeb试管(50μg/mlkana)中,28℃,200rpm培养过夜。
3)转1ml至50mlYeb中,28℃,200rpm培养至oD600=0.8。
4)于4℃,5000rpm,10min收集菌体。
5)用50mL10%的甘油(去离子水配置,湿热灭菌)洗沉淀3次(4℃,5000rpm,10min),洗涤时一定要把菌体悬浮均匀。
6)重悬于1ml10%甘油中(约1011个细胞/ml),可立即使用,或分装为每管50μl,液氮速冻后,-80℃保存备用。
b电击转化
1)将1μl质粒加入到农杆菌感受态细胞中,混匀,转至无菌预冷的电击杯中。
2)将电击杯放入电转化仪的电极之间,16kv/cm,5ms。
3)取出电击杯,迅速加入200-300μlYeb(不加抗生素),并将混合液转入ep管中。
4)于28℃,220rpm,2-3h。
5)将50-100μl菌液涂布于Yeb平板(50μg/mlcar和50μg/mlkana)上,于28℃培养2-3天后,挑斑鉴定。
(二)农杆菌化学感受态制备及化学法转化petentcells
1)Inoculateasinglecolonyto5mlLb2)growat28℃tologphage,shakingat250rp m
3)Inoculate2mlofthecultureto50mlLbmediumandgrowtooD600=0.5ca.8h ours4)chillonicefor10minutes
5)spindownthecellsbycentrifugationat3000g(8000rpm)for10minutesat4℃
6)Resuspendcellsin1mlof20mmcacl2
7)Aliquotsinto0.1ml,thenfreezeinliquidnitrogen,andstoreat-80℃bplasmid Transformation
1)Thawcompetentcellsonice.
2)Add1μgplasmid(5μl)tothecompetentcellsandmixwell.3)Freezeinliquidni trogenfor5min.4)heatshockat37℃for5min.
5)Add1mlLbandgrowat28℃for3hrwithshakingat150rpm.
6)spreadcellsontoLbplatescontaininganappropriateantibioticandincubate atroom
temperaturefor2-3days.
(三)农杆菌介导的真菌转化
1将已转入目的质粒的农杆菌接种于4mlYeb液体培养基(50μg/mlcar和50μg/mlkana)中,于28℃摇床中220rpm过夜培养(16-20h)。
2将培养液12000rpm,3min,并用ImAs液体重悬菌体至oD660=0.1-0.15,体积约为10-15ml(一般用50ml三角瓶)。
3于28℃摇床220rpm培养6-7h。
4制备真菌孢子悬液,浓度105-106/ml(制备方法参见(四))。
5将上述农杆菌菌液100μl和孢子悬浮液100μl混匀,涂布于ImAs
平板(涂板后要将其风干至未见明显水纹为止),25℃共孵育2天。
6用3-5ml无菌水洗涤共孵育2d后的培养物,将充分混匀的洗涤物200μl涂布于m-100平板(200μg/mlppT和300μg/mlcef)上,适当风干后,放入25℃培养,5-6d后挑选生长比较大的菌落于48cellsDAY 板。
7培养3-4天,再将48cellsDAY板中的菌丝转接到小平板(直径6cm,贴有玻璃纸)上,3d后抽提基因组验证是否转化成功。
(四)孢子悬液的制备(现配现用)
1从培养约14d的pDA平板上刮取适量的孢子粉到1.5ml无菌的0.05%Tween-20中,涡旋分散。
2用脱脂棉过滤除去菌丝,滤液收集于1.5mlep管中,12000rpm,3min收集孢子。
3去上清,用1ml无菌水重悬孢子,12000rpm,2min,再次收集孢子。
4再用适量的无菌水重悬孢子,血球计数板计算孢子数目,并将孢子悬液调到105-106/ml。
(五)相关培养基配方1Yeb培养基
蔗糖0.5%(w/v)细菌用酵母提取物0.1%(w/v)细菌用蛋白胨1%(w/v)mgso4.7h2o0.05%(w/v)
121?c灭菌20min,固体加入1.5%琼脂粉
2培养基母液(stocksolutions)2.12.5×mmsaltsforIm1L
K2hpo43.625gKh2po45.125gmgso4.7h2o1.25gnacl0.375gcacl2.2h2o(w/v
)0.165gFeso4.7h2o(w/v)0.0062g(nh4)2so4(w/v)1.25g
Dissolveeachsaltoneatatime,donotautoclave.storeatroomtemperature.Fi nalsolutiontypicallycontainsasmallamountofwhiteprecipitate.2.2m-100tr aceelementsolution
h3bo330mgmncl2.4h2o70mgZncl2200mgna2moo4.2h2o20mgFecl3.6h2 o50mgcuso4.5h2o200mgddh2oTo500mlfinalvolume
2.3m-100saltsolution
K2hpo416g
na2so44g
Kcl8g
mgso4.7h2o2g
cacl21g
m-100Traceelementsolution8ml
ddh2oTo1Lfinalvolume
3mediaandplates3.11mmes
称9.762gmes,溶于约40mlddh2o中,然后用5mKoh调ph值至5.3,最后定容到50ml,并过滤灭菌。
3.210mmAs
称0.0981gAs,溶于约40mlDmso中,然后用5mKoh调ph值至8,最后定容到50ml,并过滤灭菌。
3.3Inductionmedium(Liquid)
Ingredients1xmmsalts10mmglucose5‰glycerolddh2o
Autoclave.coolto50℃,thenadd:
40mmmes
200μmAs
For200mlmedium
80mlof2.5xmm0.36g1ml
To188mlfinalvolume8mlof1mstock4mlof10mmAs
notethatthereistwiceasmuchglucoseintheliquidinductionmediumthanthe inductionmediumplates.
3.4Inductionmediumplates:
IngredientsFor200mlmedium1xmmsalts80mlof2.5xmm10mmglucose0.1 8g5‰glycerol1mlddh2oTo188mlfinalvolume1.5%Agar3g
Autoclave.coolto50℃,thenadd:
40mmmes8mlof1mstock
200μmAs
4mlof10mmAs
3.5m-100plateswith300μg/mlcefotaximeand200μg/mlppTIngredientsFor 1000mlmediumm-100saltsolution62.5mlglucose10gKno33gddh2oTo100 0mlfinalvolume1.5%Agar15g
Afterautoclavingandcoolingthemediumuntilitisjustwarmtothetouch,add3 ml100mg/mlcefotaximeandappropriatevolumeofppT(dependingonconce ntrationofcommercialstock).
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