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人体及动物生理学实验人体及动物生理学实验是一种探究生命科学的实验技术。
它包括生命体系（如人体或动物）的组织、器官、细胞和分子水平的生理过程的研究。
人体及动物生理学实验在医学、生物化学、药理学等领域应用广泛，可用于阐明一系列生理过程，如糖代谢、蛋白质合成和分解、细胞增殖、免疫系统的功能等。
在这篇文章中，我们将探讨人体及动物生理学实验的一些事项。
实验品种选择实验品种是人体及动物生理学实验的一个重要方面。
医学和生物学研究中常用的动物种类包括小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猪和猕猴等姐稳标准动物模型。
小鼠和大鼠最常用于实验有其原因，首先是因为小鼠和大鼠的易得性和繁殖能力。
其次，小鼠和大鼠的基因组已经被很好地研究过，因此这些动物为疾病条件下的遗传学研究提供了独特的机会。
实验条件实验条件的设置对于获得有意义的结果至关重要。
动物的生理过程非常复杂，它们会对环境的变化作出反应，这就需要特定的实验环境。
例如，实验室应该保持适宜的温度和湿度，以确保实验室中环境的一致性。
此外，光照的时间和强度、饮食和水的质量、动物容纳空间的大小以及实验室卫生状况也都需要严格控制。
实验过程在进行人体及动物生理学实验前，需要制定实验计划和一份实验方案，以确保实验结果的可重复性和准确性。
需要逐一考虑可能影响实验结果的变量，并尽可能加以控制。
另外，实验中的操作技能也非常重要。
例如，手术技巧、标本制备和实验技术等。
通过训练培养实验人员的技术水平，可以提高实验结果的准确性和有效性。
安全在进行人体及动物生理学实验时，需要非常重视安全问题。
为了确保人和动物的安全，应在实验前评估潜在的风险，并采取相应的措施进行应对。
例如，在进行手术操作时，需要采取最大可能的无菌措施以及避免实验过程中的并发症。
同时，在动物实验过程中，应尽最大努力减少对动物的伤害和压力。
结语人体及动物生理学实验是研究生命科学的一个重要手段。
为了获得稳定、可重复、准确的实验结果，需要注意选择实验品种、设置实验条件、制定实验方案、提高实验技巧和注意安全问题。
第20卷第6期2008年12月六盘水师范高等专科学校学报J oum{l l of“up ans hui’r eachel l s C ol l e geV01．20N O．6D ec．2008人体及动物生理学实验教学改革探索徐大德；李方满(肇庆学院生命科学学院；广东肇庆526062)摘要：人体及动物生理学实验教学的改革包括合并实验教学内容、改进教学方法和教学手段，采取开放实验室、改革实验考核方法等措施，以促进实验教学效果，提高学生综合素质。
关键词：人体及动物生理学；实验教学：改革探索中图分类号：G471文献标识码：A文章编号：1671—055X(2008)06一0053一03，E xpl o豫60n O n t heRefo珊of t l l e H蝴锄d A I l i I na l Physi ol o舒Experi m ent al T each i I l g A ppr∞ch笛X U D a—de，U Fhn g—lI】咀n(D epar t m ent of B i o l ogy，Zh aoqi ng U ni V e玛i t y。
Z haoqi ng526062，C hi na)A bs t r act：T hi s a ni c l e di s cuss es tl l e t eachi ngr e f o咖on t lle exp er i m en t s i n hum an and ani m al physi ol ogy．I n order t o i m pm ve tl l e t ea chi ng e矗．ect s跚d8t uden t s’com p r ehens i V e abi I i t i es，t he r efo珊st r esses on i m pr o V i ng t lIe c o nt e nt s of experi m ent and s t r engt heni ng t echni c t r ai ni n g，ch angi ng t}l e t eachi n g m ode and t ea c hi ng 印pr oache8，ope m ng t he l a bor at or y and r ef bm i ng t lle exper i m ent e xa m i nat i on．1【ey w or ds：hum aI l卸d粕i m a l phys i ol og)r；exp翻m ent al t ea c hi ng r ef o瑚；com prehensi ve abi l i t y人体及动物生理学是研究人体及高等动物体生命活动(机能)及其规律的一门科学，是生命科学的基石．它是生物科学专业必修的一门重要专业基础课。
人体解剖及动物生理学实验报告感觉生理学【实验步骤】实验1：辐辏双眼视力要求左右眼睛里的图像合二为一。
只有当图像落在视网膜左右相应的部位置时，才能将一个物体的两个图像融合为一，否则会出现重影。
步骤：1.让实验者先看一个远距离的物体，然后将该物体放在实验者面前15cm的位置再看。
注意观察实验者在看近距离物体时眼睛的移动方向。
2.向前伸出前臂，竖起食指，使其与远处的一个物体在一条线上（比如与墙上挂的钟）。
看着你的指头，但是集中注意力在远处的物体上。
注意，这时所看到的远处物体是两个，即有两个图像，紧挨着。
3.再挡住右眼，远处物体右边的图像消失。
4.再用双眼看远处的物体，这时你看到的指头是两个。
5.再挡住右眼，这时你指头左边的图像消失。
6.按照所示伸出双臂和两个指头，再用双眼看远处的物体，注意，你的指尖好像漂浮在空中。
描述你在进行辐辏实验时看到的东西。
实验2：适应性调节（聚焦）眼睛能够通过改变瞳孔的形状（变焦）调节视力。
步骤：1.挡住或者闭住一只眼睛，拿一个别针放在另外一只眼睛前面15cm处，并让这个别针与远处的一个物体在一条直线上。
2.当你看远处的物体时，别针就变模糊，不在焦距内了。
3.而当你看别针时，远处的物体变模糊了。
对近处物体（别针）的适应性调节似乎费力一些。
4.如果戴眼镜，请取掉，挡住一只眼睛，拿一个别针，向前伸直前臂，在看着别针尖端的同时，慢慢地向眼睛处移动别针，直到模糊时。
别针被看到的最短距离就是“近视点”。
用尺子测量这个距离，将数值填写在表中，看一下你是否是近视。
实验3：跳动抑制你能够看到你自己的眼睛移动吗？步骤：1.面对着你前方30cm-60cm处的一个镜子。
2.交替地看你左右眼睛里的图像。
3.你能够察觉到你的眼睛在移动吗？4.如果你们组的其他成员在你进行观察时也在看你，5.他们察觉到你的眼睛在移动吗？实验4：盲点每个眼睛的视野里都有一个盲点，称为视盘，是视网膜的一个部分，这个地方没有光感受器。
《人体及动物生理学实验》综合性实验项目实验一蟾蜍内脏血管灌流[实验目的] 采用恒压灌流法，可观察交感神经和去甲肾上腺素对内脏血管舒缩的作用。
[实验原理] 器官灌流为常用的实验方法，广泛用于研究体液因素和药物对器官的直接作用。
[实验对象]蟾蜍[实验药品] 任氏液、0.01%去甲肾上腺素溶液[仪器与器械] 蛙类手术器械、橡皮接管、细塑料管、电子刺激器和保护电极、秒表、1mL注射器和针头[实验方法与步骤]1.组装恒压灌流装置用一个500mL下口瓶作贮液瓶(也可用倒置的盐水瓶代替)内盛任氏液约400mL，瓶口橡皮塞中心插入的进气玻璃管下口距瓶底约1厘米。
进气管下口水平面与动脉插管口水平面的垂直距离，即为灌流压的高度(厘米水柱cmH2O)，它不受瓶中液面变化的影响。
贮液瓶下口用橡皮管连接作动脉插管的细塑料管。
接管中可串接一个计滴用的摩氏(Muiphy)滴管，并在其上方的接管上夹一个调节流量用的何氏夹。
在管道中充满灌流液，驱净气泡。
调整贮液瓶高度，使灌流压为30cmH2O左右。
调节何氏夹的螺丝，使灌流液流量为20滴/min左右。
然后将接管下段夹闭。
2.制备蟾蜍内脏血管灌流标本破坏蟾蜍的脑和脊髓，背位固定于蛙板上。
在腹部作一正中切口，用棉球将腹内脏器推向一侧。
小心地剪开背侧的腹膜，可见到由两支主动脉弓汇合而成的背主动脉，汇合后的第一分支为粗而短的腹腔系膜动脉，其分支分布于胃、肠、肝、胆、脾、胰等腹腔内脏。
在背主动脉下方，穿细线备用。
再找到汇入静脉窦和后腔静脉和前腹壁内面的腹静脉，亦各在其下方穿线备结扎之用。
在脊柱近旁两侧，找到由交感神经节组成的交感干，从第三对至第五对交感神经节发出的分支组成内脏神经，与腹腔系膜动脉伴行，支配胃、肠、肝、胆、脾、胰、肾等腹腔内脏。
在内脏神经(或交感干)下方穿一细线备用。
用留置线将两支主动脉弓一起结扎。
在结扎远心端的一支主动脉弓上剪一斜口，将充满灌流液的细塑料管插入，直至背主动脉发出腹腔系膜动脉处的近端，用留置线结扎固定好动脉插管，再将背主动脉的远端(在发出肾动脉分支前)结扎。
华南师范大学实验报告学生名字闫红博学号20122501108专业生物科学年级、班级12级生科三班课程名称人体与动物生理学实验实验项目反射时测定和反射弧分析神经干动作电位的测定实验类型□验证□设计□综合实验时间2014年10月30日实验指导老师胡学军实验评分一、实验材料蛙(frog)或蟾酴(toad)常用手术器械（手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、毁髓针、玻璃分针）、蜡盘、蛙板，玻璃板、固定针、锌铜弓、培养皿或不锈钢盘、污物缸、滴管、纱布、粗棉线、任氏液、2%普鲁卡因、0.5%及1%硫酸溶液、滤纸片支架、蛙嘴夹、小烧杯、秒表、神经屏蔽盒PowerLab 10T、刺激线、USB线、电脑二、试验方法（一）手术：脊蛙（只毁脑），分离右侧股部坐骨神经穿线备用（二）反射时的测定与反射弧分析（1）将脊蛙的上颌夹在支架上，右后肢最长趾浸入0.5%硫酸溶液中2~3mm(<10s),测屈反射时3次，同样测左后肢最长趾的。
（2）损毁感受器实验（3）对照没损毁感受器实验（4）测擦或抓反射（搔扒反射）（5）麻醉坐骨神经，加药后每隔2min重复步骤（4）（记录加药时间）（6）屈反射什么时候停止？立即重复步骤（4），每隔2min重复一次步骤（4）直到抓反射消失，记录时间。
（7）左侧后肢最长趾反射时有无变化。
（8）毁坏脊髓后重复实验三、坐骨神经干标本的制备双毁髓->剥制后肢->分离两后肢分离坐骨神经到踝关节附近将神经干标本放入神经屏蔽盒四、设置CH3 BioAmp和Stimulator五、开始实验点右下角Start ，即可看到刺激输出后得到的动作电位波形图每点一次START，记录号增加在图下方调节单刺激持续时间Duration和振幅大小，以及调节放大器HighPass 等参数，均对实验结果有影响，找一个理想的双相动作电位。
单相动作电位：先用纸吸干神经再损伤神经，方法可用麻醉、夹闭、打结扎六、实验结果（一）反射时的测定第一次第二次第三次均值屈反射（S) 5.32 6.85 5.45 5.87抓反射(s) 2.05 2.72 1.915 2.23（二）反射弧分析实验项目实验现象记录1、测左右两后肢最长趾屈反射左：发生屈反射，反射时间3.04S右2、环剪左后肢最长趾基部，去趾上皮肤后测屈反射无反应3、测右后肢其他趾屈反射发生屈反射，反射时3.554、测右侧被抓反射5、右侧坐骨神经滴加普鲁卡因，加药时开始计时，每隔2min重复步骤3，记录每次重复反射时变化加药2min后，屈反射消失反射时：无反射6、屈反射不能出现时每隔2min重复步骤4，记录每次重复反射时的变化加药4min后，抓反射消失反射时：无7、测左后肢最长趾屈反射 1.45s反应剧烈8、毁坏脊髓，重复步骤7 没有反应（三）坐骨神经标本制备图一图二图三图四七、实验分析与结论<实验一反射时与反射弧的分析>1.反射时的测定从刺激开始至反射出现所需要的时间，即反射通过反射弧的时间，称为反射时。
《人体及动物生理学实验》设计性（创新性）实验实验一血型鉴定实验设计[设计要求]已知甲某的血型为A型（或B型），现在又无标准血清,要求设计一实验来判断乙某的血型？[实验目的][实验原理][实验对象][实验药品][仪器与器材][实验方法与步骤]：[注意事项][思考题]（可以引伸思考的问题）实验二影响心输出量的因素[设计要求]心输出量是衡量心功能的重要指标。
心输出量是指一侧心室每分钟射出的血量，等于每搏输出量与心率的乘积。
心输出量的多少取决于每搏输出量的多少和心率的快慢。
每搏输出量反映了心肌收缩力与做功的大小，可受前负荷、后负荷及心肌收缩能力等因素的影响。
本实验拟用离体蟾蜍(或豚鼠等)心脏，在消除了神经反射对心率的影响，可保持心率基本恒定。
因此，主要考虑每搏输出量对心输出量的影响。
心室收缩前负荷是心肌尚未收缩时所遇到的阻力，与心室舒张末期容积（充盈量）直接有关。
在一定范围内，回心血量增加，心室舒张末期容积增加，心肌收缩开始前受到的前负荷增加，使心肌纤维初长度拉长，每搏输出量也增加，心肌开始收缩受到的总外周阻力（大动脉血压）即是后负荷。
后负荷如大动脉血压增加时，心室壁收缩期张力增大，做功增加。
心肌收缩力是指心肌内在收缩机制改变所引起的收缩力量的改变，与前、后负荷无关，而且可受去甲肾上腺素、乙酰胆碱等神经递质和体液因素的影响。
现要求根据上述原理，设计一实验来探讨前负荷、后负荷及心肌收缩能力改变对每搏输出量的影响（可是某一单个或多个因素），并对心脏功能进行评价。
[实验目的][实验原理]要求在上述原理的基础上，进一步阐述拟采用的实验方法和技术路线的理论根据（即通过何仪器和技术实现引起心输出量改变的因素？如何评价心泵血功能）。
[实验药品][仪器器械][实验对象][实验步骤与方法]1.现介绍两种离体心脏灌流标本的制备方法供参考：（1）离体蛙心双管灌流标本的制备①取蟾蜍（或蛙）破坏脑和脊髓，背位固定于蛙板上，剪开胸壁，暴露心脏，分离两侧主动脉，用线结扎右主动脉后再在左主动脉下穿一线备用。
《人体及动物生理学实验》教学大纲一、课程基本信息课程编码：0905127B课程名称：人体及动物生理学实验英文名称：Animal Physiology Experiments课程类别：专业核心课总学时：33总学分：1适用专业：生物科学（检验与检测方向）二、实验课程的性质、目标与任务(一)实验性质人体及动物生理学实验是高等院校生物教育专业主要专业课之一，也是生物科学专业的一门重要的专业基础课程，普通生物学、生物化学是本课程的先修课程。
该实验课与人体及动物生理学理论课程同步进行，主要学习在人体及动物体上进行实际实验的方法和技术，包括解剖和生理两方面的内容，其中组织解剖是基础，生理功能是重点。
（二）实验目标与任务课程教学目标在于通过实验动手操作，使学生掌握生理学实验的基本理论、方法和技能；从实验中观察到的生理现象或效应，可加深对人体及动物生理学理论知识的直观理解，为后续学习专业基础课程、掌握临床操作技能和开展科学研究等打下坚实的基础。
通过课堂教学等环节培养学生扎实的人体及动物生理学实验技能和创新思维与意识，支撑专业学习成果中相应指标点的达成。
三、实验课程教学基本要求主要以活体动物或具有生物学活性的材料为研究对象，采取急性离体和在体实验的实验方法，主要利用急性分离、离体灌流等实验技术设计动物生理学的实验内容，用以验证动物生理学的基本理论。
大部分实验是以学生自己设计、动手操作为主，发挥学生的主观能动性，在实践中培养学生掌握科学实验的基本方法及操作技能，培养科学的思维方法及严谨的科学态度，培养动手能力及独立解决问题的能力。
其次，通过计算机对实验结果的处理、统计以及对实验结果进行分析讨论，书写规范的实验报告，使学生初步掌握撰写科技论文的基本方法。
四、实验教学内容及要求实验一用显微镜观察四种基本组织【实验类型】演示性【目的与要求】联系机能了解被覆上皮组织的结构特点及分布；观察并了解结缔组织的共同特征，并联系机能了解结缔组织的结构特点及分布；比较观察平滑肌、骨骼肌和心肌三种肌纤维的结构特点；观察神经元的结构特点及尼氏体的形态与分布；观察有髓神经纤维的的形态结构；识别并比较观察各种血细胞与血小板的形态特征。
实验题目：骨骼肌生理姓名：王超杰合作者: 唐用组别：第一组日期：5月8日室温：24.5℃【实验目的】：确定肌肉收缩的A、阈水平、最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系B、三个时期：潜伏期、缩短期和舒张期C、刺激频率与收缩之间的关系【实验方法】：1、双毁髓法处死蟾蜍，剥离神经干保留腓肠肌和膝关节。
结扎，保持湿润。
将标本放入标本盒内，连接张力换能器。
在试验过程中注意标本休息，连接RM6240生物信号采集系统。
2、选择菜单栏刺激强度对骨骼肌的收缩的影响，更改相应数据，测量肌肉收缩的阈水平、最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系1)连接通道一，检查神经的活性，测试仪器是否正常工作2)开始记录，可适当调零，开始刺激3)当收缩幅度不再变化时，停止刺激，停止记录4)应用测量工具，确定收缩的阈水平和最大收缩和其对应的最小刺激强度，记录下收缩幅度，刺激和放大器的参数设置，绘制刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系曲线3、测量肌肉收缩的三个时期：潜伏期、缩短期和舒张期1)展开上一实验最大刺激强度对应的收缩，测量三个时期2)复至少三次3)计算平均值和标准差4、测量刺激频率与收缩之间的关系1)打开信号采集软件，关闭通道3 和4，保留通道1 和2，分别对应肌肉收缩信号和肌肉动作电位信号。
示波状态下修改参数设置：采集频率20kHz；通道1：通道模式为张力，扫描速度400ms/div，灵敏度7.5g (可根据收缩幅度合理选择)，放大器时间常数设为直流，滤波频率100Hz；通道2：通道模式为生物电，扫描速度400ms/div，灵敏度2mv，放大器时间常数0.001s，滤波频率1kHz。
刺激模式为串单单刺激，波宽1ms，延时20ms，选择一定的刺激脉冲个数(10-60 个，避免让肌肉受到过多的刺激)和刺激强度（阈上刺激强度即可，不必达到最大刺逐渐减小刺激间隔，直到第二个CAP开始减小，进入相对不应期2)开始记录，开始刺激3)观察肌肉收缩的总和现象，确定肌肉收缩的最小融合频率，观察肌肉动作电位与收缩的关系，测量并记录不同频率引起肌肉收缩的幅度【实验结果与讨论】：见附图一：Physiology Lab #4 Skeletal Muscle Physiology实验A：测量肌肉收缩的阈水平、最大收缩和刺激强度与肌肉收缩幅度之间的关系从图中表格和数据可以看出，实验所用蟾蜍神经干腓肠肌标本肌肉收缩的阈水平为0.183g ，最大收缩为3.61g讨论１：刺激强度与收缩幅度的关系是怎样的？为什么？从图表不难看出，最初一段时间并没有收缩产生，随着刺激强度的增加到达0.15v 的时候，开始到达阈水平，肌肉开始收缩，之后随着刺激强度增加，收缩强度也增加，直到刺激强度到达0.33v 的时候，到达最大收缩强度，然后收缩不再增加。
人体及动物生理学 实验指导支立峰 徐平 编著2007 年 3 月实验一动物生理学实验常用仪器和基本技术1.1 动物生理实验常用手术器械1.1.1 常用手术器械的使用方法动物生理学实验常用手术器械与医学外科手术器械大致相同，但也有一些专用器械。
现仅介绍常规的手术器械。
1、手术刀手术刀主要用来切开皮肤和脏器。
手术刀片有圆刃、尖刃和弯刃三种。
刀柄也分多种，最常用的是4号刀柄和7号刀柄（图3.1-1）。
可根据手术部位、性质的需要自由拆装和更换变钝或损坏的手术刀片（图3.1-2）。
持刀的方式有4种(图3.1-3)，其中“执弓式”是一种常用的的持刀方式。
其动作范围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
2、手术剪和粗剪刀手术剪分钝头剪、尖头剪。
其尖端有直、弯之分。
主要用于剪皮肤、肌肉等软组织。
也可用来分离组织，即利用剪刀尖插入组织间隙，分离无大血管的结缔组织。
另外，还有一种小型的眼科剪，主要用于剪血管和神经等软组织。
一般说来，深部操作宜用弯剪，不致误伤。
剪线大多为钝头直剪，剪毛用钝头、尖端上翘的。
正确执剪姿势是用拇指与无名指持剪，食指置于手术剪的上方（图3.1-4）。
粗剪刀，为普通的剪刀。
在蛙类的实验中，常用来剪蛙的脊柱、骨和皮肤等粗硬组织。
3、手术镊手术镊种类很多，名称也不统一，常用的有无齿镊和有齿镊两种,用于夹住或提起组织，以便剥离、剪断或缝合。
有齿镊用于提起皮肤、皮下组织、筋膜、肌腱等较坚韧的组织，使其不易滑脱。
但有齿镊不能用以夹持重要器官，以免造成损伤。
无齿镊用于夹持神经、血管、肠壁或其他脏器,较脆弱组织，而不致使之受损伤。
正确执镊方法如图3.1-5，用力适当地把持着。
4、血管钳血管钳又称止血钳，有直、弯、带齿和蚊式钳等数种。
主要用于夹血管或止血点，以达止血的目的。
也用于分离组织、牵引缝线，把持或拔缝针等。
正确持钳和持剪方法相同（图3.1-6）。
开放血管钳的方法是利用右手已套入血管钳的拇指与无名指相对挤压，继而两指向相反的方向旋开，放开血管钳(图3.1-7)。
一、实习目的和意义动物生理学是研究动物生命活动规律和生命现象的科学。
通过本次实习，我旨在加深对动物生理学理论知识的理解，提高实验操作技能，培养独立思考和解决问题的能力，为今后从事生物学研究和实践打下基础。
二、实习内容本次实习主要分为以下几个部分：1. 实验室参观：了解实验室的基本布局、设备、实验操作规程等。
2. 生理学实验：通过动物生理学实验，掌握动物生理学实验的基本原理、方法和技能。
3. 实验报告撰写：对实验过程进行总结和分析，撰写实验报告。
三、实习过程及结果1. 实验室参观在实验室参观过程中，我了解了实验室的基本布局，包括实验台、试剂柜、显微镜、离心机等设备。
同时，熟悉了实验操作规程，为后续实验操作奠定了基础。
2. 生理学实验（1）实验一：观察心脏的搏动实验目的：观察心脏的搏动，了解心脏的结构和功能。
实验步骤：①观察心脏的结构，了解心房、心室、瓣膜等部位。
②观察心脏的搏动，记录心率和血压。
实验结果：通过观察，我掌握了心脏的结构和功能，了解了心率、血压等生理指标。
（2）实验二：观察肌肉的收缩实验目的：观察肌肉的收缩，了解肌肉的生理特性。
实验步骤：①观察肌肉的结构，了解肌肉纤维、肌腱等部位。
②观察肌肉的收缩，记录肌肉收缩的频率和力量。
实验结果：通过实验，我掌握了肌肉的结构和生理特性，了解了肌肉收缩的原理。
（3）实验三：观察神经系统的功能实验目的：观察神经系统的功能，了解神经传导和反射。
实验步骤：①观察神经系统的结构，了解神经元、神经纤维等部位。
②观察神经传导和反射，记录神经传导速度和反射时间。
实验结果：通过实验，我掌握了神经系统的结构和功能，了解了神经传导和反射的原理。
3. 实验报告撰写在完成实验后，我根据实验过程和结果，撰写了实验报告。
报告内容包括实验目的、原理、步骤、结果、分析和讨论等部分。
四、实习收获与体会通过本次实习，我收获颇丰：1. 加深了对动物生理学理论知识的理解，为今后从事生物学研究和实践打下了基础。
“人体及动物生理学实验”基本实验操作技能一、“RM6240多道生理信号采集处理系统”操作说明1. 开机：先打开仪器电源，然后开启计算机（一定要注意开机顺序！）。
2. 打开软件：用鼠标双击计算机屏幕上的“RM6240生物信号采集处理系统2.x”图标即可进入实验系统。
3. 选择实验项目：系统预先设置了大量的实验项目，只需通过“实验”菜单选择你所需要的实验项目，系统将自动设置好有关参数。
4.示波：点击“开始示波”键系统即开始采集信号，并把采集到的信号波形实时显示出来。
在示波环境可以调节各种实验参数如通道模式、扫描速度、灵敏度、时间常数等（一般在选定实验项目后就不改变实验参数了！），示波时采集到的信号只作实时显示，但未记录到硬盘。
5. 记录：点击“记录”键系统即开始在显示波形的同时将采集到的信号实时存储到硬盘（只要实验正式开始，就要点击记录，否则不能获得实验数据）。
请注意，实时记录的信号是以临时文件的形式记录的，只有在退出系统前正式存盘，该文件才能转换成正式文件。
在记录状态如点击暂停键，则暂停记录，再次点击暂停键，则系统在原记录文件基础上继续记录。
6. 添加标记：记录过程中需要作标记，则点击添加标记对话框输入标记名称及添加。
在记录文件中打标记后，事后通过选择不同的查询方式，可迅速找到标记所在位置，点击“查询”按键即会弹出与之相对应的对话框。
7. 刺激输出：如果实验过程中需要刺激输出，则连接好刺激输出线后，点击刺激器图标，弹出刺激输出对话框进行刺激参数的设置与刺激控制。
刺激器对话框有一个“同步触发”，即每发一次刺激显示一幅图形（一般不使用这个功能！）。
8. 结束：实验结束，点击“停止”按钮，随后第一时间将此实验结果的波形另存一个文件名在计算机硬盘上，以防止数据因不慎或硬件故障而意外丢失!。
如果记录是非连续的（中途停止记录，过后又继续记录），则每一段记录都以子文件形式存在同一文件中，以后在系统中可用计算机的“Page Up”和“Page Down”键选择各段记录。
人体解剖及动物生理学实验报告模拟各种药物对蛙心灌流的影响【实验原理】心脏的正常节律性活动需要一个适宜的内环境，内环境的变化直接影响着心脏的正常活动.本实验通过模拟软件在蛙心的灌流液内人为地加入一些物质而改变心脏活动的内环境，通过对心跳张力和收缩幅度的观察，判断药品成分对心脏的影响及不同药品之间的相互关系。
【实验步骤】1、抽取蛙心灌流液，加入无钙任氏液，得到实验结果2、加2%氯化钙溶液3、加入1%氯化钾溶液4、加入0.001%乙酰胆碱溶液5、加入0.5%阿托品溶液6、加入0.01%肾上腺素溶液7、加入0.2%普萘洛尔溶液【实验结果与分析】1.抽取蛙心灌流夜，加入无钙任氏液，得到实验结果如下：图一：加入无钙任氏液心脏张力变化由图像知：加入无钙任氏液后，曲线的幅度变小，即心脏的最大张力缓慢降低至2.3g，同时可观察到心脏收缩幅度降低，心率变化不大。
分析：心肌的收缩依赖外源钙离子的供给和启动，细胞外的钙离子进入心肌细胞，激活肌质网膜上钙离子释放通道，使钙离子从基质网池中释放至胞质中，钙离子浓度迅速上升，结合肌钙蛋白C，解除肌球蛋白结合位点的抑制，心肌收缩。
将心肌放在无钙溶液中，心肌将很快停止收缩。
2、加氯化钙溶液后的心脏张力变化图二：加氯化钙溶液后的心脏张力变化由图像知：加入氯化钙后，心脏最大张力增大，约7.05g。
同时可见曲线上升到一定程度后维持水平，心率先有所增加，增至38bmp后降低为0，心脏在加液一段时间后停止收缩。
分析：加入氯化钙后，胞外的钙离子浓度增加，进入细胞内的钙离子变多，引发心脏收缩，并使其收缩幅度增大，而钙离子浓度过高时，其可以与肌钙蛋白结合且不能解离，使心脏停留在收缩期不可舒张。
3、加1%氯化钾溶液图三：加入氯化钾时心脏张力变化由图像知：加入氯化钾后，曲线幅度不断下降，最后接近于一条直线，心率逐渐变小为0，心脏慢慢停止不动，停留在舒张期。
分析：胞外钾离子的浓度增加，静息电位减小，阈电位增大，导致心肌收缩振幅降低，最后不能收缩。
咖啡对离体坐骨神经排肠肌收缩特性的影响
【目的要求】
探讨咖啡对牛蛙离体坐骨神经脉肠肌收缩特性的影响。
【基本原理】
喝咖啡能使人振作精神，减轻疲劳, 已知这种效应与咖啡中含有的咖啡碱等嘌呤碱类化合物有关, 这类物质对中枢神经有兴奋作用; 咖啡碱由于抑制磷酸二脂酶, 使细胞能cAMP增多, 收缩时释放钙离子增加的机制,从而影响肌肉的收缩。
实验材料：牛蛙2只咖啡
实验器具：生物机能实验系统, 张换能器,常用蛙类手器械, 铁架台, 培养皿，双凹夹，电脑。
滑轮，固定针，腊盘等。
【实验步骤】
1、配制0.5g/L 1g/L 2g/L的咖啡溶液，任氏液为空白对照
2、用配制的咖啡溶液代替去离子水配制任氏液
3、制备牛蛙坐骨神经排肠肌标本：将实验用牛蛙双毁髓后，按照常规方法制备坐骨神经- 腓肠肌标本,室温下在任氏液中稳定15min
5、仪器连接：把张力换能器与生物机能实验系统相连，将标本的股骨固将腓肠肌标本固定在蛙板,连接张力换能器,使用刺激电极密切接触腓肠肌, 电极接头与生物机能实验系统的刺激输出线联通。
6、刺激参数的设置：单收缩曲线的测定:单刺激;延时：100m s ;强度:3V ;波宽：0 . 30m s ;放大倍数：20倍;刺激频率：30H Z
7、记录单收缩曲线和闭强度。
人体及动物生理学实验教案
实验一: 骨骼肌收缩特性和收缩形式
实验学时： 6 学时
实验类型：（综合）
每组人数： 3 人／组
一、实验目的
本实验通过对蛙类进行解剖、制备坐骨神经-腓肠肌标本、电磁刺激标本坐骨神经等实验操作，来学习骨骼肌的生理特性，以达到以下目的：
1.学习蛙类动物单毁髓和双毁髓的方法；
2.学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；
3.观察刺激强度和肌肉收缩反映的关系；
4.观察骨骼肌单收缩过程；
5.观察刺激频率与肌肉收缩形式之间的关系，理解形成复合收缩与强直收缩条件。
6.学习多通道生理信号采集系统的使用。
通过以上学习使学生树立严谨的科学态度、形成较强的团结协作意识、建立初步自主探究的能力。
二、实验原理
蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相近似，而其离体组织所需的生活条件比较简单，易于控制和掌握。
因此在实验中常用蟾蜍或蛙坐骨神经-腓肠肌标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激的一些规律以及骨骼肌的收缩及其特点等。
故坐骨神经-腓肠肌标本的制备是生理学实验的一项基本操作技术。
肌肉兴奋的外在表现是收缩。
给肌肉一个有效刺激，肌肉将发生一次收缩，称为单收缩。
单收缩一般要经历潜伏期、收缩期和舒张期三个过程。
使用相继的两个有效刺激作用于肌肉，如果相继的两个刺激的间隔时间大于该肌肉单收缩的全部时间，则出现波形互相分开的两个单收缩；逐渐缩短两个刺激的间隔时间，使第二个刺激落在第一个收缩的舒张期，从而引起两个单
收缩的复合，即舒张期复合收缩；再缩短两个刺激的间隔时间，使第二个刺激落在前一个收缩的收缩期或缩短期，此时前后两个单收缩也会复合起来，形成一个收缩幅度比较高的收缩波形，称为收缩期复合收缩。
如果将一串有效刺激加于肌肉，可因刺激频率不同呈现不同的收缩波形。
如果频率很低，即两个刺激的间隔很大，则出现一连串单收缩；逐渐增大刺激频率，若每两个刺激的间隔长于单收缩的收缩期而又短于其全部历时时，则出现相邻两个波形不同程度的复合，其曲线特点呈锯齿状，即为不完全强直收缩；再继续加大刺激频率，则肌肉处于完全、持续的收缩状态，看不出单收缩的舒张期的痕迹，此即完全强直收缩。
强直收缩的幅度大于同样刺激条件下单收缩的幅度，而且在一定范围内随刺激频率的增大，收缩高度也增大。
正常机体在自然状态下的肌肉收缩，几乎都是完全强直收缩。
本实验通过解剖蛙类动物，制作坐骨神经-腓肠肌标本，固定刺激的其它参数，仅改变刺激频率的方法描记各种收缩形式，从而揭示刺激频率与肌肉收缩形式之间的关系，涵盖了动物学、解剖学、生理学等多学科的知识点。
三、实验方案
本实验方案可分为坐骨神经腓肠肌标本制备和骨骼肌生理特性观察两部分。
过程如下：
（一）坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法
1.破坏脑和脊髓：取蟾蜍一只,用水冲净.左手握住蟾蜍,用食指压住其头部前端使头部前端前俯,右手持探针从枕骨大孔垂直刺入,有落空感时即表明已进入枕骨大孔。
然后向前刺入颅腔,左右搅动、捣毁脑组织; 再将探针抽出至枕骨大孔位置,向后刺入椎管捣毁脊髓，此时如蟾蜍的四肢松软,呼吸消失,形体对称,表示脑和脊髓已完全破坏,否则应按上法再行捣毁。
2.剪除躯干前部及内脏：在骶髂关节水平以上0.5-1厘米处剪断脊柱,左手握蟾蜍后肢,用大拇指压住骶骨,使蟾蜍头与内脏自然下垂,右手持粗剪刀，沿骶骨两侧剪开背部皮肤，再在耻骨联合前剪断腹侧软组织(注意勿损伤坐骨神经)，留下两后肢、脊柱及由它发出的坐骨神经。
3.剥皮：左手捏脊柱断端（注意不要握住和压迫神经），右手捏住其上的皮肤边缘，向下剥掉全部后肢皮肤，将标本放在盛有任氏液的培养皿中。
4.将手及用过的剪子、镊子等全部手术器械洗净，再进行下述步骤。
5.分离两腿：左手捏脊柱并将标本提起，将背面向上，使尾骨上翘。
从尾骨尖开始，用粗剪刀紧靠尾骨两侧游离尾骨并将其剪断（注意勿损伤坐骨神经），
然后沿中线用剪刀将脊柱分为两半，并从耻骨联合中央剪开两侧大腿，这样两腿即完全分离。
将两条腿浸于盛有任氏液的培养皿中。
6.制作坐骨神经腓肠肌标本：将一条蟾蜍腿的小腿背侧向上、脊柱腹侧向上，用刨钉固定于蛙板上。
蛙腿下垫浸有任氏液的玻璃板。
1）游离坐骨神经：用玻璃针沿脊柱侧游离坐骨神经，并于近中枢端穿线结扎。
将标本背侧向上放置，剪断位于坐骨神经沟上的梨状肌及其附近的结缔组织，再循坐骨神经沟（股二头肌及半膜肌之间的裂缝处），找出坐骨神经之大腿部分，用玻璃针小心分离，然后从脊柱根部将坐骨神经剪断，手执结扎神经的线将神经轻轻提起，剪断坐骨神经的所有分支，并将神经一直游离至膝关节为止（图3-1）。
2）完成坐骨神经小腿标本：将游离干净的坐骨神经搭于腓肠肌上，在膝关节周围剪断并剥离全部大腿肌肉，用粗剪刀将股骨刮干净，然后在股骨中部剪去上段股骨，保留的部分就是坐骨神经小腿标本。
3) 完成坐骨神经腓肠肌标本：将上述坐骨神经小腿标本在跟腱处穿线结扎后剪断跟腱。
游离腓肠肌至膝关节处，然后沿膝关节将小腿其余部分剪掉，这样就制成一个带有股骨的坐骨神经-腓肠肌标本。
随即将标本浸于盛有干净任氏液的培养皿中。
（二）骨骼肌收缩特性的观察
1.仪器装置准备好生理信号采集系统及张力换能器的记录装置。
2.将标本与生理信号采集系统连接将标本的股骨残端固定于肌动器的螺旋孔内，将跟键与张力换能器悬臂的着力点用丝线连接，通过调节丝线紧张度，使腓肠肌处于自然拉长的长度。
3.观察与纪录
（1）．从小到大调整刺激强度从而寻找最适刺激强度，并固定此刺激强度不变。
（2）．选择刺激输出方式为“单”，通过刺激器脉冲个数记数窗口设置单一刺激，开动慢鼓，描记单收缩曲线（图3-11）。
（3）．选择刺激输出方式为“单”，通过刺激器脉冲个数记数窗口设置两个刺激，从小到大调节刺激频率，描记舒张期复合收缩和收缩期复合收缩曲线四、主要仪器及试剂
1．仪器多通道生理信号采集系统、张力换能器、屏蔽盒。
2．器械蛙手术器械一套、支架、双凹夹等。
3．药品任氏液。
五、实验要求
本实验是一个涉及动物解剖学、生理学及生理仪器使用的综合性实验，要求
同学们在实验前预习实验的目的内容、材料用具和具体的操作步骤，提前准备好实验试验用的蛙类动物、各种试剂和器材，查阅有关解剖学和生理学方面实验资料，理解实验原理，熟悉操作步骤，了解注意事项，并对查阅的知识进行归纳总结，写出具体的实验方案。
六、思考题
1.用各种刺激检验标本兴奋性时，为什么要从中枢端开始？
2.为什么剥皮后必须清洗双手和用过的器械？
3.根据你的体会，要想使标本兴奋性良好必须注意什么问题？
4.骨骼肌的收缩与刺激强度之间的关系如何？
5.为什么在阈刺激和最大刺激之间，骨骼肌收缩会随刺激强度的增强而增强？
6.怎样理解潜伏期？本实验中的潜伏期包括哪些时间因素？
7.说明形成不完全强直收缩和完全强直收缩的条件。
完全强直收缩有何生理意义？
七、实验报告
本实验结束后以实验报告的形式验收，实验报告内容包括实验的目的原理、材料用具、实验的具体操作步骤、实验结果及分析等（本实验结果为打印的收缩曲线）。
同时在实验报告中要对实验中出现的特殊现象进行解释，若实验失败，须分析失败原因。
八、其它说明
必要时可根据专业特点对上述相关内容进行补充和修订。
附件3 综合性、设计性实验项目验收表
邯郸学院综合性、设计性实验项目验收表
说明：①此表一式两份，系（二级学院）和教务处各留一份。
②实验项目基本信息由课程负责人填写，并提交相关依据材料。
