生物学实验技术课程说明书

COMPASS 软件介绍数据分析Xianting WangMar,2022G E L-R U N N I N G AU TO T R A N SFER-F R E E B LOT-F R E E H A N D S -F R E EMEET SIMPLE WESTERN1Simple Western 工作原理2Simple Western 优势及应用3Simple Western 实验操作简介超微量样品+自动化+定量J E S S A B B Y W E S配制样品和试剂 2. 加样•加marker•加样品•加封闭液•加一抗•加二抗•加发光液010203010203数据分析前检查数据分析新建Assay打开Assay保存另存为导入Protocol导入Template导出Protocol导出Template打印（Protocol/Template）退出软件剪切拷贝粘贴默认分析设置默认分析预览参数设置剪切拷贝粘贴默认分析设置默认分析预览参数设置剪切拷贝粘贴默认分析设置默认分析预览参数设置剪切拷贝粘贴默认分析设置默认分析预览参数设置Compass 软件用户手册Simple Western 用户手册检查更新版本注释导出仪器日志发送RunCompass 软件相关信息‣12–230kit：1kDa，29 kDa，230 kDa ‣66–440 kit：57 kDa，280 kDa‣2–40 kit：1 kDa，26 kDa打开run增添run关闭关闭所有run 保存另存为导出报告退出软件打开Run增加Run关闭Run关闭所有Run 保存另存为导出为表格导出形式导出报告退出软件荧光内参荧光内参样品荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管荧光内参样品展示选择的毛细管Wes展示所有毛细管荧光内参样品展示选择的毛细管荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管Wes Abby荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管Wes Abby荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管Wes Abby荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesAbbyProbe 1荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesAbbyProbe 1荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesAbbyProbe 1Probe 2荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesJessAbbyProbe 1Probe 2荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesJessAbbyProbe 1Probe 2荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesJess化学发光AbbyProbe 1Probe 2荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesJess化学发光NIRAbbyProbe 1Probe 2荧光内参样品展示选择的毛细管展示所有毛细管WesJess化学发光NIRIRAbbyProbe 1Probe 2。

实验一动物细胞的传代培养一、实验目的1．熟悉细胞培养过程中的无菌操作技术。

2．了解细胞传代培养的基本方法和主要操作步骤二、实验原理细胞培养(cell culture)是指从机体内取出某种组织或细胞，模拟机体内的生理条件使其在体外生存、生长和繁殖的过程。

细胞的体外培养在细胞生物学和医学研究领域有着极为广泛的用途，这一技术已成为研究细胞生理、细胞增殖、细胞遗传、细胞癌变和细胞工程等课题的一项不可缺少的手段。

细胞培养技术的突出优点在于能为研究者提供大量的生物性状相同的细胞作为研究对象，便于人们在体外利用各种不同的方法从不同的角度研究细胞生命活动的规律。

另外，利用细胞培养技术还可使人们较为方便地研究各种物理、化学和生物因素对细胞结构和功能的影响。

细胞培养可分为原代培养和传代培养2种情况。

所谓原代培养(primary culture)是指直接从机体取出组织或细胞后所进行的首次培养。

而传代培养(subculture)是指当原代培养的细胞增殖到一定密度后，将其从原培养容器中取出，以1：2或其他比例转移到另一个或几个容器中所进行的再培养。

传代培养可简称传代。

在体外培养过程中，要使细胞能正常地生长、繁殖，需经常对其进行传代。

传代的累积次数就是细胞的代数。

在从事细胞培养工作时常常会接触到细胞系(cell line)和细胞株(cell strain)这两个容易混淆的概念。

一般认为，细胞系指通过原代培养并经传代后所形成的细胞群体，由于细胞系来源于原代培养，而原代培养物中所含的细胞种类较多，故一个细胞系往往由多个生物学性状不同的细胞群体所组成，而细胞株是利用单细胞分离培养法或克隆形成法从原代培养物或细胞系中选择出的细胞群体，一个细胞株往往具有特殊的生物学性状或标记并可持续存在。

细胞培养是一种程序复杂、条件较多且要求严格的实验性工作。

由于细胞在体外的生长、繁殖会受到温度、营养物质、酸碱度、渗透压及微生物等多种因素的显着影响，故细胞培养工作的各个环节如培养器皿清洗消毒、营养液配制和除菌、pH值调整、温度调节等操作都有严格的要求和规定，特别要注意无菌操作，这是细胞体外培养成败的关键。

高中生物学实验课教案
目的：通过观察显微镜下的细胞结构，了解细胞的基本组成和特点。

实验目标：掌握显微镜的使用方法，观察细胞的特征和结构，理解细胞是生物体的基本单位。

实验材料：显微镜、载玻片、盖玻片、显微镜玻片，甲醇、细胞样本、眼镜布。

实验步骤：
1. 将细胞样本放在载玻片上，加一滴甲醇固定。

2. 取一张盖玻片，将其斜着放在载玻片上，让甲醇慢慢渗透。

3. 将载玻片放在显微镜平台上，调整显微镜镜头，找到合适的放大倍数。

4. 通过显微镜观察细胞的形态、结构和特征。

5. 记录观察到的细胞特征，包括形状、大小、细胞核的位置等。

6. 将观察到的细胞特征绘制成示意图，标注重要结构。

7. 将绘制的示意图上交给老师检查，并进行讨论和总结。

实验注意事项：
1. 使用显微镜时，要注意轻拿轻放，避免碰撞。

2. 在观察过程中，要保持显微镜和样本的清洁。

3. 确保显微镜的光源充足，调整焦距时要小心操作。

4. 在进行细胞观察时，要注意细心观察，保证观察结果准确。

5. 完成实验后，将使用过的显微镜和载玻片清洗干净，保持实验台整洁。

实验评价标准：
1. 能够熟练操作显微镜，找到合适的放大倍数。

2. 能够观察并描述细胞的形态、结构和特征。

3. 能够将观察到的细胞特征绘制成示意图，并标注重要结构。

4. 能够对细胞的观察结果进行总结和讨论。

5. 在实验过程中，能够遵守实验室的安全规定，保持实验台整洁。

生命科学实验指南系列精编细胞生物学实验指南ＳｈｏｒｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＣｅｌｌＢｉｏｌｏｇｙ〔美〕Ｊ．Ｓ．博尼费斯农　等　著章静波　方　瑾　王海杰　谭玉珍　主译陈实平　陈誉华　张钦宪　陈克铨　主校北　京图字：０１唱２００５唱３９５４号内　容　简　介 本书内容翔实全面，主要包括：细胞培养、细胞的制备与分离、亚细胞组分分离和细胞器分离、抗体、显微镜技术、细胞蛋白质的特性、电泳与免疫印迹、蛋白标记和免疫沉淀、蛋白质的磷酸化作用、蛋白质转运，以及细胞增殖、衰老和死亡、体外重建、细胞黏附和细胞外基质、细胞的能动性、细胞器运动。

全书还附有各种实用信息和数据，包括试剂与溶液的配制、细胞生物学研究中常用的药物概要和各种常用技术的介绍等。

原书名：ＳｈｏｒｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＣｅｌｌＢｉｏｌｏｇｙ．Ｃｏｐｙｒｉｇｈｔ憋２００３ｂｙＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ．Ｉｎｃ．Ａｌｌｒｉｇｈｔｓｒｅｓｅｒｖｅｄ．ＡｕｔｈｏｒｉｚｅｄｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎｆｒｏｍｔｈｅＥｎｇｌｉｓｈｌａｎｇｕａｇｅｅｄｉ唱ｔｉｏｎｂｙＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．　图书在版编目（ＣＩＰ）数据　精编细胞生物学实验指南／（美）Ｊ．Ｓ．博尼费斯农等著；章静波等译．—北京：科学出版社，２００７　（生命科学实验指南系列）　ＩＳＢＮ９７８７唱０３唱０１７５７９唱４　Ⅰ畅精…　Ⅱ畅①博…②章…　Ⅲ畅细胞生物学实验指南　Ⅳ畅Ｑ２唱３３　中国版本图书馆ＣＩＰ数据核字（２００６）第０７３９８４号责任编辑：李　悦　彭克里　刘　晶／责任校对：朱光光责任印制：钱玉芬／封面设计：王　浩科学出版社出版北京东黄城根北街１６号邮政编码：１００７１７ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｓｃｉｅｎｃｅｐ．ｃｏｍ双青印刷厂印刷科学出版社发行　各地新华书店经销倡２００７年１月第　一　版２００７年１月第一次印刷印数：１—３０００ 开本：７８７×１０９２　１／１６印张：５４１／４字数：１２４２０００定价：１２０畅００元（如有印装质量问题，我社负责调换枙科印枛）译校者名单译　者　章静波（中国协和医科大学基础医学院）董　敏（中国医学科学院基础医学研究所）王艳辉（中国医学科学院基础医学研究所）熊伟鹏（中国医学科学院基础医学研究所）陈实平（中国医学科学院基础医学研究所）冯　若（郑州大学医学院）刘书漫（郑州大学医学院）崔景彬（郑州大学医学院）陈鲤翔（郑州大学医学院）朱自强（中国医学科学院基础医学研究所）刘　伟（中国医学科学院基础医学研究所）王艾琳（北华大学医学院）安倍莹（北华大学医学院）曲　莉（北华大学医学院）宋　艳（北华大学医学院）赵永娟（中国医学科学院基础医学研究所）方　瑾（中国医科大学基础医学院）张惠丹（中国医科大学基础医学院）赵伟东（中国医科大学基础医学院）陈　澄（中国医科大学基础医学院）王海杰（复旦大学上海医学院）谭玉珍（复旦大学上海医学院）王莎丽（中国医学科学院基础医学研究所）审校者　陈克铨（中国协和医科大学基础医学院）陈实平（中国医学科学院基础医学研究所）章静波（中国协和医科大学基础医学院）张钦宪（郑州大学医学院）刘　伟（中国医学科学院基础医学研究所）朱自强（中国医学科学院基础医学研究所）方　瑾（中国医科大学基础医学院）陈誉华（中国医科大学基础医学院）译　者　序细胞生物学的重要性及其在生命科学中的重要地位已被科学家们所公认。

国赛生物糖化说明书糖化是一种常见的生物学实验技术，用于研究糖的反应性质和生理活性。

这种技术广泛应用于生物化学、代谢和营养学方面的研究中，能够量化糖类化合物的含量和特征，为相关研究提供有力的实验支持。

本文就糖化技术的原理、实验步骤、注意事项以及应用进行详细介绍，为读者提供指导意义。

一、原理糖化是一种化学反应，通过热力学和动力学的过程使糖分子和蛋白质、脂类等其他大分子结合，形成糖化产物。

糖化反应分为非酶促和酶促两种形式，非酶促糖化是指在高温条件下进行，通常需要添加还原糖和胺基酸等反应物，而酶促糖化则需要特定酶的参与，通常是一种具有转移酯基或巯基的酶。

二、实验步骤1.准备试样：选择合适的糖类化合物和大分子结构样本，根据实际需要调整反应浓度和温度。

2.糖化反应：将试样加入糖化缓冲液中，在适宜的pH和温度下进行反应，一般需要持续数小时。

3.糖基化释放：将产生的糖化产物加入还原剂中，可以将脱酸或酸性条件下形成的糖基上的巯基或酯基还原为自由糖或还原糖化合物。

4.糖化产物检测：使用具有选择性的方法，如高效液相色谱和毛细管电泳等，检测糖化产物的物质和化学特征。

三、注意事项1.准确称量和调配反应液的浓度，避免由于误差引起糖化反应的不一致性。

2.注意糖类结构的选择，有些糖类化合物需要有待研究的生理活性和反应条件的限制。

3.精准的温度控制和时间控制对于糖化反应的产物和结果具有很大影响，需要严谨把握。

4.反应后制备样品的方法和时效性也会影响糖化实验结果的准确性。

四、应用1.糖化实验可以应用于糖尿病和其他代谢性疾病的研究，精确定量和定性这些疾病的糖化产物。

2.糖化实验也可以用于食品和饮料中糖含量的定量和分析，帮助食品行业制定食品的营养配方。

3.通过糖化实验，可以研究和优化酒类及其他饮料生产过程中的糖化反应。

4.糖化实验还可以应用于医药学中，研究药物代谢和吸收过程中，药物与糖类化合物相互作用的实验证据。

综上所述，糖化实验技术在生物学中具有广泛的应用前景，并受到越来越多的关注。

分子生物学实验教学教案一、实验课程名称：DNA提取与鉴定1. 实验目的：（1）掌握DNA的提取方法；（2）了解DNA的理化性质；（3）学会使用紫外光谱仪进行DNA含量测定。

2. 实验原理：本实验通过盐析法、酶处理等方法提取植物组织中的DNA，通过紫外光谱仪进行DNA含量测定。

3. 实验材料：新鲜植物组织、氯化钠、硫酸、蛋白酶K、无水乙醇、紫外光谱仪等。

4. 实验步骤：（1）植物组织研磨：取新鲜植物组织约0.5g，加入预冷的研钵中，加入适量氯化钠、硫酸和蛋白酶K，迅速研磨至匀浆；（3）DNA纯化：将沉淀的DNA用滤纸轻轻吸干，加入预冷的70%乙醇洗涤两次，弃去滤液，晾干DNA；（4）DNA溶解：将干燥的DNA加入适量的双蒸水，用玻璃棒搅拌至DNA完全溶解；（5）DNA含量测定：取适量DNA溶液置于紫外光谱仪中，测定DNA的吸光度，计算DNA的浓度和纯度。

5. 实验结果分析：通过紫外光谱仪测定DNA的吸光度，可以得到DNA的浓度和纯度。

DNA浓度越高，吸光度越大；DNA纯度越高，吸光度曲线越平坦。

二、实验课程名称：PCR扩增目的基因1. 实验目的：（1）掌握PCR扩增技术；（2）学会分析PCR产物；（3）了解基因克隆的基本原理。

2. 实验原理：PCR（聚合酶链反应）是一种在生物体外复制特定DNA的核酸合成技术。

通过高温变性、低温复性和中温延伸等步骤，使目的基因在短时间内大量扩增。

3. 实验材料：DNA模板、引物、dNTPs、Taq酶、PCR反应缓冲液、琼脂糖凝胶、DNA Marker 等。

4. 实验步骤：（1）DNA模板准备：将DNA模板稀释至适当浓度；（2）引物设计：根据目的基因序列设计引物，并合成；（3）PCR反应：将DNA模板、引物、dNTPs、Taq酶和PCR反应缓冲液混合，进行PCR扩增；（4）PCR产物分析：取PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳分析，观察目的基因的扩增情况；（5）的目的基因克隆：将PCR产物与克隆载体连接，转化大肠杆菌，筛选阳性克隆。

初中生物实验教案设计
实验目的：通过观察植物叶子的结构，让学生了解植物叶子的组成和功能。

实验材料：
1. 植物叶子样本（例如：植物叶片、显微镜）
2. 水平切片刀、手套
3. 显微镜玻片和载玻片
4. 布片和显微镜
实验步骤：
1. 准备植物叶子样本：将一片新鲜的植物叶子取下来，清洗干净后放在工作台上。

2. 制作叶子横切片：戴上手套，使用水平切片刀将植物叶子横切成薄片。

3. 放在显微镜下观察：取一个叶子横切片放在显微镜载玻片上，加入一滴水后用另一个载
玻片盖住，放在显微镜上观察。

学生可以调节显微镜镜头来观察叶子的细胞结构。

4. 观察叶子的细胞结构：让学生观察叶子上的不同细胞结构，如表皮细胞、气孔、叶脉等。

5. 讨论叶子的功能：通过观察叶子的结构，让学生讨论叶子的功能，如光合作用、蒸腾作
用等。

实验总结：通过本实验，学生可以深入了解植物叶子的结构和功能，加深对植物生物学的
认识。

同时，学生也可以培养观察、实验和思考的能力。

初中生物学实验套装教案
实验目的：通过观察植物细胞的结构，帮助学生了解植物细胞的特点和功能。

实验材料：
1. 鲜叶片（适量）
2. 盐水
3. 菜刀
4. 显微镜
5. 盖玻片
6. 丙烯酸胺
7. 染色剂（如伊曼红）
8. 显微摄像头
实验步骤：
1. 将鲜叶片放入盐水中浸泡片刻，以软化叶片。

2. 使用菜刀将叶片切成薄片，然后将薄片放入丙烯酸胺中，以保持细胞结构的完整性。

3. 将叶片薄片放入盖玻片上，加入一滴染色剂（如伊曼红）。

4. 将盖玻片放入显微镜下，调整镜头，观察植物细胞的不同部分（如细胞壁、细胞质、叶绿体等）。

5. 让学生用显微镜和显微摄像头分别观察和记录细胞结构的特点。

实验注意事项：
1. 注意使用菜刀和显微镜时的安全操作。

2. 注意保持显微镜的清洁和调整镜头的正确方法。

3. 在观察过程中不要将染色剂溅到皮肤或衣物上。

实验结果分析：
1. 学生通过观察能够看到植物细胞具有细胞壁、细胞质、叶绿体等特点。

2. 学生可以理解植物细胞的结构与功能的关系，例如叶绿体是光合作用的地点。

拓展实验：
1. 可以观察其他植物组织的细胞结构，比较它们之间的差异。

2. 可以进行与动物细胞结构的比较实验，帮助学生了解植物与动物细胞的异同之处。

通过这个实验，学生可以更好地了解植物细胞的结构和功能，增强他们对生物学知识的理解。

高中生物实验指南：分子生物学实验操作手册1. 简介分子生物学是研究生物体内分子结构、组成、功能以及相互作用的科学。

在高中生物学课程中，通过进行一系列分子生物学实验，可以加深对基因、DNA、RNA等内容的理解，并培养学生动手实践和科学探究的能力。

本操作手册将介绍一些适合高中副标准课程的基本分子生物学实验，帮助教师和学生更好地开展这方面的实验教学。

2. 实验一：提取DNA2.1 实验目的了解DNA的结构和提取过程，并掌握提取DNA的基本方法。

2.2 材料与仪器•成熟香蕉或其他植物材料•盐水溶液（含氯化钠）•蛋白酶（如葡萄胺酸酶）•洗涤剂（如洗衣粉）•咖啡滤纸或滤纸漏斗•烧杯•酒精1.将香蕉剥皮后放入砧板上，用刀将香蕉捣碎成泥状。

2.在烧杯中加入适量的盐水溶液，并将捣碎的香蕉放入其中搅拌均匀。

3.加入少量蛋白酶和洗涤剂，再次搅拌均匀，让细胞破裂释放DNA。

4.将混合物过滤到另一个烧杯中，通过滤纸除去大颗粒的残渣。

5.将过滤后的溶液倒入试管中，并缓慢地倾斜试管，在溶液与酒精接触的界面处，会出现白色粘稠物质，即提取到的DNA。

2.4 实验结果及分析实验中提取到的DNA呈现为白色细丝状物质。

通过这个实验可以观察到DNA 在水相和酒精相之间的界面上凝聚堆积。

说明了DNA在酒精中不溶性，从而便于提取。

3. 实验二：PCR扩增3.1 实验目的了解聚合酶链式反应（PCR）的原理和基本步骤，并能够进行PCR扩增实验。

3.2 材料与仪器•PCR试剂盒（含模板DNA、引物、聚合酶等）•热循环仪•PCR试管或反应管1.准备PCR反应体系，按照试剂盒说明书的要求加入模板DNA、引物和聚合酶等。

2.将装有反应溶液的PCR管放入热循环仪中。

3.设置PCR的温度程序，包括变性、退火和延伸阶段。

4.启动热循环仪开始PCR扩增反应。

5.完成PCR后，可以通过凝胶电泳等方法检测扩增产物。

3.4 实验结果及分析通过PCR扩增，可以在较短的时间内大量复制并放大目标基因片段。