神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告一、实验目的研究神经干动作电位的基本特征及产生机制。

二、实验原理神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究。

神经干动作电位是由大量神经细胞同时产生的、电位差较大的电信号。

当神经细胞兴奋峰值超过一定阈值时，会产生神经冲动，传导到轴突末梢，并触发神经干动作电位。

三、实验器材和试剂1.脉冲发生器2.示波器3.探针4.青蛙腓肠神经5.盐水试剂四、实验步骤1.准备工作：将青蛙放入盐水中，使其神经麻痹，然后取出青蛙腓肠神经进行实验。

2.将脉冲发生器的输出端与示波器的输入端相连接，将示波器的探针分别连接到接地端和腓肠神经上。

3.调整脉冲发生器的参数，包括幅值、频率和脉冲宽度等，观察示波器上的波形变化。

4.记录神经干动作电位的波形、幅值和频率等特征。

五、实验结果和分析根据实验结果及已知知识，我们可以进一步分析神经干动作电位的产生机制。

神经细胞内外的离子浓度存在差异，细胞外Na+浓度较高，而细胞内K+浓度较高。

当神经细胞兴奋时，细胞膜上的离子通道会打开，导致Na+离子大量进入细胞内，从而产生快速上升期；随后，Na+通道关闭，而K+通道打开，导致K+离子大量流出，产生快速下降期。

在超极化期，细胞膜上的Na+/K+泵恢复细胞内外离子的平衡，使细胞膜电位恢复至静息状态。

六、实验结论通过神经干动作电位实验，我们掌握了神经干动作电位的基本特征和产生机制。

神经干动作电位具有典型的波形特征，包括快速上升期、峰值期、快速下降期和超极化期。

神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究，并且神经干动作电位的产生是由于细胞内外离子浓度差异以及离子通道的打开和关闭所导致的。

七、实验总结神经干动作电位是研究神经细胞兴奋状态的重要方法之一、通过实验，我们不仅了解了神经干动作电位的基本特征和产生机制，还掌握了记录和观察神经干动作电位的实验技巧。

该实验对于进一步研究神经细胞的功能和机制具有重要意义。

神经干动作电位的实验报告神经干动作电位的实验报告引言：神经干动作电位（nerve conduction action potential）是指神经细胞在受到刺激后产生的电信号，它是神经系统正常功能的重要指标之一。

本实验旨在研究神经干动作电位的特征及其在临床应用中的意义。

实验方法：本次实验采用了小鼠尾神经为研究对象。

首先，将小鼠固定在实验台上，用电刺激仪器对尾神经进行刺激。

刺激强度和频率分别为10mA和1Hz。

同时，使用电极记录尾神经上的动作电位，并将信号放大放大后通过示波器显示和记录。

实验结果：经过实验记录和数据分析，我们得到了以下结果：1. 动作电位的波形特征：在实验中，我们观察到尾神经上的动作电位呈现出典型的波形特征。

首先是负向的初始反应，随后是正向的峰值反应，最后是负向的复极化反应。

这一波形特征反映了神经细胞在受到刺激后的电活动过程。

2. 动作电位的幅值和潜伏期：通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性。

实验结果显示，动作电位的幅值和潜伏期与刺激强度和频率呈正相关关系。

这一结果表明，神经传导速度和神经细胞的兴奋性受到刺激强度和频率的调节。

3. 动作电位的传导速度：实验结果显示，动作电位在尾神经中的传导速度为Xm/s。

这一结果与已有的文献报道相符，进一步验证了本实验的可靠性。

实验讨论：神经干动作电位的实验结果对于临床应用具有重要意义。

首先，通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性，从而诊断和监测神经系统疾病。

例如，在神经病学领域，动作电位的异常可以提示神经疾病的存在和发展。

其次，动作电位的传导速度可以用来评估神经损伤的程度和康复进展。

在临床上，这对于神经损伤患者的康复治疗和预后评估非常重要。

此外，神经干动作电位的实验方法还可以应用于药物研发和毒理学研究中。

通过测量动作电位的变化，我们可以评估药物对神经细胞兴奋性的影响，从而指导药物的合理使用和毒性评估。

神经干动作电位的引导实验报告一、实验目的1、学习并掌握神经干动作电位的引导方法。

2、观察神经干动作电位的基本特征，包括双相动作电位和单相动作电位。

3、了解刺激强度、刺激频率对神经干动作电位的影响。

二、实验原理神经干由许多神经纤维组成，在神经干的一端给予电刺激，产生的兴奋会沿着神经纤维传导。

由于不同神经纤维的兴奋性和传导速度不同，因此记录到的神经干动作电位是由多个神经纤维动作电位复合而成的。

动作电位是指可兴奋细胞在受到刺激时，细胞膜电位在静息电位的基础上发生的一次快速、可逆、可传播的电位变化。

在神经纤维上，动作电位表现为“全或无”的特性，即刺激强度达到阈值时，动作电位产生，且幅度不随刺激强度的增加而增大。

当在神经干的一端给予刺激时，兴奋会向两端传导，在记录电极处可记录到双相动作电位。

如果将两个记录电极之间的神经干损伤，兴奋只能通过未损伤的部位向一个方向传导，此时记录到的是单相动作电位。

三、实验材料1、实验动物：蟾蜍2、实验器材：蛙类手术器械、神经屏蔽盒、刺激电极、引导电极、生物信号采集处理系统、任氏液等。

四、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经干标本破坏蟾蜍的脑和脊髓，将其仰卧固定在蛙板上。

从脊柱的下部开始，沿脊柱两侧剪开皮肤，分离肌肉，暴露脊柱。

用玻璃分针分离出坐骨神经，尽量去除神经周围的结缔组织和血管，将神经干从梨状肌下孔中轻轻拉出，在其下面穿线，结扎并剪断神经的分支，制成约 3-4cm 长的坐骨神经干标本。

将标本放入装有任氏液的培养皿中备用。

2、连接实验装置将神经干标本置于神经屏蔽盒内，用棉花蘸取任氏液保持标本湿润。

刺激电极连接刺激输出端，引导电极连接信号输入端，接地电极接地。

3、调节实验参数打开生物信号采集处理系统，选择合适的采样频率和增益。

设置刺激参数，包括刺激强度、刺激波宽、刺激频率等。

4、引导神经干动作电位给予神经干单个刺激，观察并记录双相动作电位。

逐渐增加刺激强度，观察动作电位的幅度变化，确定阈值和最大刺激强度。

⽣理学实验神经⼲动作电位的测定实验四神经⼲动作电位的测定【实验⽬的】学习⽣物电活动的细胞外记录法；观察坐⾻神经⼲动作电位的基本波形、潜伏期、幅值以及时程。

【实验原理】神经组织属于可兴奋组织，其兴奋的客观标志是产⽣动作电位，即当受到有效刺激时，膜电位在静息电位的基础上将发⽣⼀系列的快速、可逆、可扩布的电位变化。

动作电位可以沿着神经纤维传导。

在神经细胞外表⾯，已兴奋的部位带负电，未兴奋的部位带正电。

采⽤电⽣理学实验⽅法可以引导出此电位差或电位变化，根据引导的⽅式不同，所记录到的动作电位可呈现单向或双向的波形。

由于坐⾻神经⼲是由许多神经纤维组成的，所以其产⽣的动作电位是众多神经纤维动作电位的叠加，即为⼀个复合动作电位。

这些神经纤维的兴奋性是不同的，所以在⼀定范围内增⼤刺激强度可以使电位幅度增⼤。

这和单⼀细胞产⽣的动作电位是有区别的。

本实验所引导出的动作电位即为坐⾻神经⼲的复合动作电位。

【实验对象】蛙或蟾蜍。

【实验材料】两栖类⼿术器械 1 套、滴管、BL-410⽣物机能实验系统、神经屏蔽盒、刺激电极、接收电极、任⽒液。

【实验步骤】1．制备坐⾻神经⼲标本坐⾻神经⼲标本的制备⽅法与制备坐⾻神经-腓肠肌标本相似。

⾸先按照制备坐⾻神经- 腓肠肌标本的⽅法分离坐⾻神经，当游离⾄膝关节处时，在腓肠肌两侧找到胫神经和腓神经，任选其⼀剪断，然后分离留下的⼀⽀直⾄⾜趾并剪断。

保留与坐⾻神经相连的⼀⼩段脊柱，其余组织均剪除。

此时，即制成了坐⾻神经⼲标本。

将标本浸于任⽒液中，待其兴奋性稳定后开始实验。

2．接标本与实验仪器1）棉球沾任⽒液擦拭神经标本屏蔽盒内的电极，将标本的脊柱端置于屏蔽盒的刺激电（图 4－1 屏蔽盒）极端（即 0刻度端），其神经部分横搭在各个电极上。

2）取出 BL-410 ⽣物机能实验系统专⽤刺激电极，将其插头插在与主机“刺激”插⼝中，另⼀端的两个鳄鱼夹分别夹在屏蔽盒左侧的两个刺激接⼝上。

红⾊接正极，⿊⾊接负极。

一、实验目的1. 理解神经干动作电位的基本概念和形成机制。

2. 掌握神经干动作电位的引导方法和步骤。

3. 通过实验观察神经干动作电位的特点，包括波形、传导速度和不应期。

4. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化，如刺激强度、损伤和药物作用等。

二、实验原理神经干动作电位是神经纤维在受到有效刺激时产生的可传导的电位变化，是神经细胞兴奋的客观标志。

神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。

三、实验材料1. 实验对象：青蛙或蟾蜍2. 实验药品和器材：任氏液，2%普鲁卡因，各种带USB接口或插头的连接导线，神经屏蔽盒，蛙板，玻璃分针，粗剪刀，眼科剪，眼科镊，培养皿，烧杯，滴管，蛙毁髓探针，BL-420N系统四、实验方法和步骤1. 制备神经标本：将青蛙或蟾蜍处死，解剖出坐骨神经干，用任氏液浸泡并保持湿润。

2. 安放引导电极：将引导电极固定在神经干上，确保电极与神经干良好接触。

3. 安放刺激电极：将刺激电极固定在神经干上，距离引导电极适当距离。

4. 启动试验系统：连接BL-420N系统，打开软件，设置实验参数。

5. 观察记录：逐渐增加刺激强度，观察并记录神经干动作电位的波形、传导速度和不应期。

6. 分析实验结果：分析不同刺激强度下神经干动作电位的变化，以及损伤和药物作用对神经干动作电位的影响。

五、实验结果1. 神经干动作电位波形：观察到神经干动作电位呈双相波形，第一相为上升支，第二相为下降支。

2. 神经干动作电位传导速度：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高。

3. 神经干动作电位不应期：观察到神经干动作电位存在不应期，不应期随刺激强度的增加而缩短。

六、讨论1. 神经干动作电位的形成机制：神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。

2. 刺激强度对神经干动作电位的影响：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高，不应期缩短。

第1篇一、实验目的1. 了解神经干的结构与功能特点；2. 掌握神经干动作电位实验方法；3. 观察神经干动作电位波形，分析其传导特点；4. 研究神经干损伤对动作电位传导的影响。

二、实验原理神经干是由神经纤维组成的，具有传导神经冲动、调节器官功能等作用。

神经干动作电位是指神经纤维受到刺激时产生的电位变化。

本实验通过观察神经干动作电位波形，分析其传导特点，研究神经干损伤对动作电位传导的影响。

三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验药品：任氏液、2%普鲁卡因；3. 实验器材：神经屏蔽盒、蛙板、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统。

四、实验方法1. 捣毁脑脊髓：将蟾蜍置于蛙板上，用眼科剪剪开蟾蜍头部皮肤，暴露出脑和脊髓，用蛙毁髓探针捣毁脑和脊髓；2. 分离坐骨神经：将蟾蜍的四肢剪去，用眼科剪剪断坐骨神经，用眼科镊分离出坐骨神经干；3. 安放引导电极：将引导电极插入坐骨神经干的一端，另一端与BL-420N系统连接；4. 安放刺激电极：将刺激电极插入坐骨神经干的另一端，另一端与BL-420N系统连接；5. 启动试验系统：打开BL-420N系统，设置实验参数，启动实验；6. 观察记录：观察神经干动作电位波形，记录波形特点；7. 实验分组：将实验分为正常组、损伤组、局麻药组；8. 损伤组：用剪刀在坐骨神经干上剪一个小口，造成神经损伤；9. 局麻药组：在坐骨神经干上滴加2%普鲁卡因，观察局麻药对神经干动作电位传导的影响；10. 观察记录：观察各组神经干动作电位波形，分析其传导特点。

五、实验结果1. 正常组：神经干动作电位波形呈双相，传导速度约为10m/s；2. 损伤组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低；3. 局麻药组：神经干动作电位波形消失，传导速度降低。

六、实验讨论1. 神经干动作电位波形呈双相，表明神经干由两种类型的神经纤维组成，即A类和C类纤维；2. 损伤组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明神经干损伤会导致动作电位传导障碍；3. 局麻药组神经干动作电位波形消失，传导速度降低，表明局麻药可阻断神经干动作电位传导。

一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。

二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。

当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。

本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。

三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。

四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。

五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。

六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。

神经干动作电位实验报告实验目的，通过对神经干动作电位的测定，了解神经细胞的兴奋传导特性，探究不同刺激条件下神经细胞的反应。

实验原理，神经细胞在受到刺激时，会产生电位变化，即动作电位。

通过电极记录这种电位变化，可以观察神经细胞的兴奋传导过程。

实验仪器，本次实验使用的仪器包括生理记录仪、电极、刺激器等。

实验步骤：1. 将动物神经干置于生理盐水中，使其保持活性。

2. 将电极插入神经干内，通过生理记录仪记录下神经干的基础电位。

3. 使用刺激器对神经干进行刺激，记录下不同刺激条件下的动作电位变化。

4. 分析实验数据，观察神经细胞在不同刺激条件下的反应特点。

实验结果：经过实验记录和数据分析，我们得到了以下结论：1. 在不同刺激条件下，神经细胞产生的动作电位幅度和频率均有所不同。

2. 强刺激下，动作电位幅度较大，频率较高；弱刺激下，动作电位幅度较小，频率较低。

3. 在一定范围内，刺激强度与动作电位幅度呈正相关关系，刺激强度与动作电位频率呈正相关关系。

实验讨论：通过本次实验，我们深入了解了神经细胞的兴奋传导特性。

神经细胞在受到刺激时，会产生电位变化，这种动作电位的幅度和频率受到刺激强度的影响。

这为我们进一步研究神经细胞的兴奋传导机制提供了重要的实验基础。

实验结论：本次实验通过对神经干动作电位的测定，深入了解了神经细胞的兴奋传导特性。

不同刺激条件下，神经细胞产生的动作电位幅度和频率均有所不同，刺激强度与动作电位幅度、频率呈正相关关系。

这为进一步研究神经细胞的兴奋传导机制提供了重要的实验基础。

结语：通过本次实验，我们对神经细胞的兴奋传导特性有了更深入的了解。

希望通过这一实验，能够为相关领域的研究工作提供一定的参考和帮助。

神经科学是一个充满挑战和机遇的领域，我们将继续努力，探索更多神经细胞的奥秘。

神经干动作电位实验报告篇一:泥蛙神经干动作电位的引导传导速度的测定实验报告神经干动作电位传导速度的测定一实验目的一掌握坐骨神经标本的制备方法。

二掌握引导神经干复合动作电位和测定其传导速度的基本原理。

二相关知识(一)兴奋及兴奋性的概念(二)动作电位的潜伏期、动作电位时程和幅值1、动作电位:各种可兴奋细胞在受到刺激而兴奋时，可以在细胞膜静息电位的基础上发生一次短暂的，可向周围扩布的电位波动。

这种电位波动称为动作电位。

(三)、动作电位的传导局部电流的形式(一)、细胞外记录1(二)、神经干的动作电位神经干是由许多粗细不等的有髓和无髓神经纤维组成的混合神经，故神经干动作电位与单根神经纤维的动作电位不同，它是由许多神经纤维的动作电位合成的一种复合电位。

四实验原理(一)、单根神经纤维动作电位的引导及其传导1、记录出了一个先升后降的双相动作电位的原理当神经纤维未受刺激时，膜外与电极所接触的两点之间没有电位差，所以两电极之间也无电位差存在，扫描线为一水平基线。

在神经干左端给予电刺激后，则产生一个向右传导的冲动(负电位)，当冲动传到1电极(负电极)下方时，此处电位较2处为低，产生了电位差，扫描线向上偏转，记录出一个向上的波形(在电生理实验中，为了便于观察，习惯上规定负波向上)。

随后，冲动继续向右侧传导，离开1电极传向2电极处。

当它到达2电极(正电极)下方时，因1电极处神经差不多已恢复到原来的状态，于是2电极处又较1电极处为负，引起扫描线向下偏转，记录出一个向下的波形。

这样，在神经冲动向右传导的过程中，就记录出了一个先升后降的双相动作电位。

负电极在前时，它首先记录到神经干表面由正变负的电位变化，经历了由正到负再到正的过程，因此记录出动作电位2的上相。

当在后的正电极记录到这种同样的电位变化过程时，显示相反的情况，记录出动作电位的下相。

如果互换正、负电极的位置，则记录到先降后升的双相动作电位。

C.A点神经纤维多于B点(次要原因)。

一、实验目的1. 掌握坐骨神经标本的制备方法。

2. 观察坐骨神经干的双相动作电位波形，并测定最大刺激强度。

3. 测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度。

4. 学习绝对不应期和相对不应期的测定方法。

5. 观察机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响。

二、实验材料1. 实验对象：牛蛙2. 实验药品和器材：任氏液，2%普鲁卡因，各种带USB接口或插头的连接导线，神经屏蔽盒，蛙板，玻璃分针，粗剪刀，眼科剪，眼科镊，培养皿，烧杯，滴管，蛙毁髓探针，BL-420N系统三、实验方法和步骤1. 坐骨神经标本的制备- 将牛蛙置于解剖盘中，用探针捣毁脑脊髓。

- 取出坐骨神经，剪去周围的肌肉组织，用任氏液冲洗干净。

- 将坐骨神经固定在蛙板上，并用眼科剪和眼科镊进行适当的分离。

2. 连接实验装置- 将神经屏蔽盒与BL-420N系统连接。

- 将刺激电极和引导电极分别固定在坐骨神经的两端。

3. 实验观察- 观察神经干双相动作电位引导（单通道，单刺激），记录波形。

- 改变单刺激强度，观察动作电位波形的变化。

- 测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度。

- 学习绝对不应期和相对不应期的测定方法。

- 观察机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响。

4. 数据记录与分析- 记录每个实验步骤中观察到的波形、传导速度、不应期等数据。

- 对实验数据进行分析，得出结论。

四、实验结果和讨论1. 神经干双相动作电位引导- 观察到一个双相动作电位波形，表明神经干兴奋后，兴奋波先后通过两个引导电极。

2. 坐骨神经干双相动作电位传导速度- 通过改变单刺激强度，测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度为15.2 m/s。

3. 绝对不应期和相对不应期的测定- 通过改变刺激强度，观察动作电位波形的变化，确定绝对不应期和相对不应期的范围。

4. 机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响- 观察到机械损伤或局麻药处理后，神经兴奋和传导受到影响，传导速度降低。

五、结论通过本次实验，我们成功制备了坐骨神经标本，并观察到了神经干双相动作电位波形。

生理实验报告神经干复合动作电位实验目的：1.了解神经干复合动作电位的形成和传导。

2.掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法。

3.观察和分析神经干复合动作电位在不同刺激条件下的变化。

实验原理:神经干是指神经纤维在离开整个神经系统后，在肌骨、脏器等部位的展开。

神经干复合动作电位（CNAPs）是指由神经干上的多个神经元细胞同时参与形成的电信号，它是神经干传导时产生的电生理事件。

通常情况下，神经干复合动作电位由4个不同的组分组成，依次是起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射。

这些组分的形成和传导过程会受到不同因素的影响，如刺激的强度、频率和持续时间等。

实验设备：1个主机1台示波器1个刺激电极2个测量电极1箱生理盐水1张生理实验纸实验步骤：1.将示波器的探头分别连接到刺激电极和测量电极上，探头的地线连接到主机上的地线端。

2.将测量电极分别放置在神经干上和离神经干较远的位置上，测量电极间距应足够大，以避免电信号重叠。

3.用生理盐水湿润纸片，将刺激电极夹在纸片中央的合适位置上。

4.调整示波器的放大倍数和时间基准以获得清晰的信号波形。

5.将主机上的刺激按钮设置为适当的参数，并按下开始按钮开始记录信号。

6.根据实验要求分别改变刺激电流的强度、频率和持续时间，并记录相应的信号波形。

7.重复实验步骤4-6，直到完成所有实验要求。

实验结果分析：1.观察到的信号波形应包含起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射这四个组分，根据波形的形态和振幅变化可以分析神经传导的速度和强度。

2.改变刺激条件后，观察信号波形的变化，记录并分析不同刺激条件下的神经传导特点如传导速度、传导延迟、反射强度等。

实验结论：1.神经干复合动作电位是由神经干上的多个神经元细胞参与形成的电信号。

2.神经干复合动作电位的形成和传导受到多种因素的影响，包括刺激强度、频率和持续时间等。

3.改变刺激条件可以观察到神经干复合动作电位的变化，进而分析神经传导的特点。

4.通过实验可以掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法，并获得相关实验结果。

神经干动作电位实验报告神经干动作电位实验报告引言：神经干动作电位是一种记录和研究神经元活动的重要方法。

通过测量神经元在受到刺激时产生的电信号，我们可以了解神经元的兴奋性、传导速度以及神经网络的功能。

本实验旨在探究神经干动作电位的特性和应用，并通过实际操作来加深对该实验的理解。

实验步骤：1. 实验前准备：将被试者坐于舒适的位置，确保其放松且不受干扰。

将电极贴于被试者的皮肤上，通常选择头皮、手腕或脚踝等部位。

2. 刺激信号的产生：使用外部刺激器，如电极或光纤，对被试者进行刺激。

可以选择不同的刺激方式，如电流、光线或声音等。

3. 信号采集：使用生物电放大器将神经干动作电位信号放大，并通过电极将信号输入到计算机或记录设备上。

确保信号的质量和稳定性，以获取准确的实验结果。

4. 数据分析：通过对采集到的信号进行处理和分析，可以得到神经干动作电位的特征参数，如幅值、潜伏期和传导速度等。

同时，还可以对不同刺激条件下的实验结果进行比较和统计。

实验结果与讨论：1. 神经干动作电位的特征参数：根据实验数据的分析，我们可以得到神经干动作电位的幅值、潜伏期和传导速度等参数。

这些参数可以反映神经元的兴奋性和传导能力，从而帮助我们了解神经系统的功能和病理变化。

2. 神经干动作电位的应用：神经干动作电位在临床医学和科学研究中有着广泛的应用。

例如，通过测量神经干动作电位，可以评估神经系统的功能状态，如神经病变、神经损伤和神经炎等。

此外，神经干动作电位还可以用于研究神经网络的连接和传导机制，对于理解大脑的工作原理和神经系统疾病的发生机制具有重要意义。

3. 实验的局限性和改进方向：在进行神经干动作电位实验时，也存在一些局限性。

例如，信号的稳定性和噪声的干扰可能影响实验结果的准确性。

此外，实验中使用的刺激方式和参数的选择也可能对结果产生影响。

因此，未来的研究可以进一步改进实验设计和信号处理方法，以提高实验的可重复性和准确性。

结论：神经干动作电位实验是一种重要的方法，用于研究神经元活动和神经系统功能。

【实验原理与目的】可兴奋组织如神经纤维在受刺激而兴奋时，细胞膜电位将发生一系列短暂的变化。

由安静状态下的膜外正膜内负的静息电位变为兴奋状态下的膜外负膜内正的去极化状态。

因此，在膜外兴奋区相对于未兴奋区来说电位为负。

这种电位差所产生的局部电流又引起邻近未兴奋区的去极化，使兴奋沿细胞膜传向整个细胞，而原来的兴奋区的膜电位又恢复到膜外正膜内负的静息水平。

这种可传播的、短暂的膜电位变化称之为动作电位。

可兴奋组织在一次兴奋之后，其兴奋性要经历一个规律的时相变化，依次是绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，然后才恢复到正常的兴奋性水平。

本实验目的在于观察动作电位的基本波形、潜伏期、幅值及时程，观察不同刺激强度对神经干动作电位波形的影响。

了解神经兴奋传导速度测定的基本原理和方法，以及神经兴奋后兴奋性变化的规律。

【实验对象】蟾蜍或青蛙。

【实验器材和药品】1．仪器生物机能实验系统（生物信号记录分析系统）或二道生理记录仪。

2．器械蛙类手术器械一套、神经标本屏蔽盒。

3．药品任氏液。

4．其它滴管、滤纸片和棉球。

【实验步骤和观察指标】1．仪器装置准备好生物信号记录分析系统及相关电极。

（参见《常用实验仪器》）2．手术操作制作坐骨神经腓肠肌标本，将其浸泡在任氏液中数分钟，待其兴奋性稳定。

然后，将神经标本屏蔽盒内所有的电极用任氏液棉球擦拭，用镊子夹住神经标本两端扎线，将标本横搭在神经标本屏蔽盒的电极上，盖好标本盒盖，并将刺激电极、引导电极及地线等接线连好（神经干粗端置于刺激电极处，细端置于记录电极）。

3．观察与纪录（1）寻找阈刺激和最大刺激先将刺激强度设为零，再逐渐增大，直至出现动作电位时（此时的刺激强度即为阈强度）；逐渐增大至动作电位幅度达到最大值为止，该强度的刺激为最大刺激（记下该强度值）。

（2）测定传导速度测量两记录电极之间的距离s（mm）和传导所用时间t（ms），然后，根据公式v=s/t，计算出传导速度。

（3）观察不应期给神经干最大刺激强度使之出现两个大小相等的动作电位，如果出现则用改变刺激间隔的时间，逐渐缩短两刺激间隔时间至第2个动作电位刚好变小，此时的刺激间隔时间即为动作电位的恢复周期。