免疫实验技术第9组
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免疫组化实验的详细步骤1. 制备组织切片- 将组织固定在适当的固定液中(如甲醛溶液)- 通过脱水、清理和浸蜡等步骤制备石蜡包埋块- 使用切片机将包埋块切成4-6微米厚的切片- 将切片贴附到载玻片上2. 脱蜡和水化- 将载玻片浸入二甲苯或者相似的溶液中,去除石蜡- 使用梯度浓度的乙醇溶液(100%,95%,70%)逐步水化切片3. 抗原修复- 抗原修复是一个关键步骤,可以暴露被固定过程掩盖的抗原表位 - 常用的方法包括加热诱导抗原修复和酶促抗原修复4. 内源性过氧化物酶或者生物素的封闭- 使用3%的过氧化氢溶液处理切片,以封闭内源性过氧化物酶活性 - 对于利用生物素-亲和素系统的实验,需要使用生物素封闭试剂进行封闭5. 加入封闭液- 使用含有蛋白质成分的封闭液(如牛血清白蛋白)处理切片- 这一步可以阻止抗体的非特异性结合6. 加入一抗- 将特异性的一抗(如小鼠抗人蛋白单克隆抗体)稀释至适当浓度- 滴加到切片上,在湿盒中于4℃过夜或37℃温育1-2小时7. 加入二抗- 洗去未结合的一抗- 加入与一抗种属相匹配的二抗(如生物素标记的羊抗小鼠抗体)8. 加入探针- 对于酶促反应型免疫组化,加入酶标记的亲和素(如过氧化物酶-亲和素复合物)- 对于荧光免疫组化,加入荧光标记的亲和素9. 显色- 酶促反应型:加入适当的染色底物(如),产生可见的棕黄色沉淀- 荧光免疫组化:不需要此步骤10. 染色和封片- 用苏木素对细胞核进行复染- 用封片剂和覆盖玻片封闭切片,制成永久装片11. 观察结果- 使用光学显微镜或荧光显微镜观察目的蛋白的分布和表达情况以上是免疫组化实验的一般步骤,具体操作细节可能因实验目的和具体方法而有所调整。
准确无误的实验步骤需要参考相关文献和说明。
免疫组化法实验操作步骤以下是免疫组化法的标准实验操作步骤:1.样本准备:a.获取待检样本,例如组织切片或细胞悬液。
b.将样本固定,常用的固定剂包括福尔马林、乙醇和乙酸等。
c.进行脱水和石蜡包埋,以便于后续切片。
2.制备切片:a.用切片机将固定的样本切成薄片,通常为4-6微米。
b.将切片平均分配在载玻片上。
3.制备蜡块:a.将切片放入烘箱中进行去蜡,以去除切片上的石蜡。
b.用乙醇对切片进行脱水然后重新水化。
c.将切片放入热稳定耐热塑料材料中,通常为硝酸纤维素薄膜等。
4.抗原恢复:a.使用高温高压(如压力锅或蒸汽炉)进行抗原恢复,以改善抗体与抗原的结合效率。
b.根据实验需要选择适当的抗原恢复缓冲液,如磷酸盐缓冲液(PBS)、EDTA缓冲液或三氯醋酸缓冲液等。
c.将切片放入抗原恢复缓冲液中进行恢复处理。
5.抗体处理:a. 选择适当的一抗(primary antibody),根据目标蛋白质的性质选择单克隆或多克隆抗体。
b.将一抗稀释至适当浓度,根据抗原的强度调整抗体浓度。
c.将一抗加入样本上共孵育,使抗体与目标蛋白质发生特异性结合。
d.对于一些抗体,可以使用辅助试剂如牛血清蛋白、牛血清、胶原蛋白等增强结合效果。
6.清洗:a.用PBS或其他合适的缓冲液冲洗切片,以去除未结合的一抗。
b.重复冲洗步骤多次,以充分去除未结合的抗体。
7.检测标记:a.选择适当的检测标记,如酶(如辣根过氧化物酶,HRP)、荧光染料或金标记等。
b.将标记物加入到一抗与抗原结合的位置上,以形成可视的标记。
8.染色:a.若使用酶标记物,则使用特定底物进行染色,产生颜色反应。
b.若使用荧光标记物,则观察荧光信号。
9.显微镜观察:a.使用适当的显微镜观察切片,记录和分析结果。
b.对于荧光标记,可以使用特定的荧光染色剂如DAPI进行细胞核染色。
10.结果分析:a.根据实验设计和目的,对结果进行定性或定量分析。
b.可以使用图像分析软件进行影像处理和数据分析。
酶免疫技术(一)单项选择题(A型题)1、HRP的活性基团是A.糖蛋白B.亚铁血红素C.白蛋白D.球蛋白E.色氨酸2、表示HRP纯度(RZ)的是A.入403nm/入275nm B.入420nm/入275nm C.入403nm/入290nmD.入275nm/入403nm E.入290nm/入275nm3、HRP(用于标记)的RZ值应大于A.3.0 B.3.1 C.3.2D.3.3 E.3.44、β-Gal的常用底物是A.OPD B.TMB C.5-ASAD.ABTS E.4MUG5、下列酶-底物-颜色反应组合中,正确的是A.HRP—OPD—蓝色B.HRP—TMB—红色C.AP—P—NPP—黄色D.HRP—P—NPP—蓝色E.AP—TMB—蓝色6、AMIT测定可以测定A.大分子抗原B.小分子抗原或半抗原C.补体D.PcAb E.McAb7、应用最广泛的均相EIA是A.CEDIA B.SPEIA C.AMITD.ELISA E.IFA8、关于酶免疫技术的特噗,正确的是A.酶标记物催化抗原反应,使其结果放大,提高了检测的灵敏度B.酶活性易受理化因素的影响,酶标记物稳定性差C.底物以酶催化后的成色,使酶标主免疫反应结果得以放大D.选择高度质量的标记用酶是建立酶免疫技术最重要的前提E.酶免疫技术检测方法较为繁琐9、关于固相化抗体的制备,正确是的A.抗体包被固相载体后,再用小牛血清蛋白包被一次为了稳寄存载体对抗体的吸附B.化学偶联包被抗体,可有效提高包被抗体的结合量.均一性和牢固程度C.为提高抗体的包被量,包被液的浓度应较高D.吸附法包被抗体时,选用偏酸性的缓冲液,可提高包被抗体的稳定性E.包被抗体时,温度越高越有利于提高包被抗体的稳定性10、关于载体的选择,正确的是A.醋酸纤维膜吸附蛋白的能力强于塑料板,但对微量样品的吸附不完全B.高分子微颗粒载体含有的基团易与抗体蛋白形成化学偶联,且结合容量大C.塑料制品吸附蛋白分子的稳定性和均一性好D.固相微颗粒因体积小,不易与磁性材料组合使用E.膜载体吸附抗体蛋白一般是采用化学偶联法11、酶免疫技术和于样品中抗原或抗体的定量测定是基于A.酶标记物参与免疫反应B.固相化技术的应用,使结合和游离的酶标记物能有效地分离C.含酶标记的的免疫复合物中酶可催化底物成色,其颜色的深玫与待测物含量相关D.酶催化免疫反应,复合物中酶的活性与样品测定值呈正比E.酶催化免疫反应,复合物中酶的活性与样品测定值呈反比12、关于HRP,描述正确的是A.HRP由具酶活性的蛋白主酶和亚铁血经素辅基构成B.测定HRP的RZ值,可判断酶活性的高低C.HRP对酶催化反尖中的受氢体专一性要求不高D.酶变性后,其RZ值不变E.邻苯二氨底物液被HRP催化显蓝色,其最大吸收波长为492nm13、均相酶免疫测定的基本特征是A.以应平衡后,抗原抗体复合物中酶活性人发生变化B.酶标抗原与抗体在固相介质表面形成复合物后,作用于底物成分C.不用分离B.F即可确定待测物质的含量,表明其反应不易受内源性酶的干扰D.反应属于非竞争结合,测定的灵敏度较高E.测定方法较为复杂,且不易用于自动化检测14、司于均相酶免疫测定的方法是A.酶联免疫化学光测定B.dot-ELISA C.双抗体夹心法ELISAD.酶增强免疫测定技术E.竞争法ELISA15、反应结束时,阴性以照管的呈色最强,此情况常见于A.双抗体夹心法ELISAB.竞争法ELISA C.间接法ELISA D.捕获法ELISA E.双抗原夹心法ELISA16、免疫渗滤试验衍生于A.RIA B.dot-ELISA C.免疫层析试验D.免疫印迹试验E.免疫扩散试验17、双位点DLISA中,造成抗原测定值低于实际含量的常见原因是A.固相抗过多B.反应时间不够C.标记抗体过多D.待测物过浓E.洗涤不彻底18、间接法ELISA中,形成的免疫复合物是A.固相抗原-抗体-酶标二抗B.固相抗体-抗原-酶标抗体C.固相二抗-IgM-抗原-酶标抗体D.固相抗体-酶标抗原固相二抗-抗体-酶标抗原19、下述酶免疫组织化学技术中,敏感性最高的方法是A.直接染色法B.间接染色法C.酶桥法D.过氧化物酶-抗过氧化物酶法E.亲和素-生物素-过氧化物酶技术20、酶桥染色法中的桥抗体是指A.免疫反应系统中的特异性抗体B.显色系统中的抗酶抗体C.第二抗体(抗抗体)D.第一抗体E.第三抗体(抗酶抗体)21、酶免疫组织化学技术中,常作的酶是A.胰蛋白酶,葡萄糖氧化酶B.辣根过氧化物酶,碱性磷酸C.胃蛋白酶,蛋白酶K D.碱性磷酸酶,胃蛋白酶E.葡萄糖氧化酶,蛋白酶K22、下列属于非标记免疫技术的是A.荧光标记免疫技术B.酶标免疫技术C.放射性核素标记免疫技术D.发光免疫技术E.免疫电泳技术23、制备ABC复合物时,亲和素的浓度不能高于A.10μg/mlB.20μg/mlC.30μg/mlD.35μg/mlE.40μg/ml 24、制备ABC复合物时,HRP-B的浓度不能高于A.2μg/mlB.4μg/mlC.6μg/mlD.8μg/mlE.12μg/ml25、PAP复合物中的酶是A.胶原酶B.胃蛋白酶C.葡萄糖氧化酶D.碱性磷酸酶E.辣根过氧化物酶26、免疫组化技术的优点不包括A.高特异性B.高敏感性C.形态学的直观性D.精确定量分析E.能对抗原表达情况进行分析27、与其他标记技术相比,免疫组化技术最大的优点是A.高特异性B.高敏感性C.形态学的直观性D.重复性好E.精确度高28、ABC技术由美籍华人Hsu于哪一年建立,已广泛应用于免疫学检测技术A.1961年B.1975年C.1981年D.1985年E.1990年29、PAP技术中酶的底物为A.TMBB.DABC.PNPD.TMBSE.OPD30、免疫组化技术不包括A.酶免疫组化B.酶免疫印迹C.荧光抗体染色D.免疫金细胞染色E.免疫电镜技术31、用于标记的HRP的RZ值应大于A.2.4B.3.0C.1.5D.3.5E.5.032、RZ表示A.酶活性B.催化效率C.标记率D.酶纯度E.效价33、HRP与底物TMB反应后的测定波长为A.278nmB.450nmC.403nmD.495nmE.492nm34、HRP与底物OPD反应后的测定波长为A.278nmB.450nmC.403nmD.495nmE.492nm35、HRP与TMB反应后,加H2SO4终止反应前呈A.蓝色B.橙黄色C.棕黄色D.黄色E.紫色36、每个亲和素能结合生物素分子的数目是A.4B.2C.1D.3E.837、生物素分子中与亲和素结合的部位是A.噻吩环B.咪唑酮环C.苯环D.羧基E.—NH—38、ELISA双抗体夹心法( )A.将酶标记特异抗体用于检测抗原B.先将待测抗原包被于固相载体C.标记一种抗体可检测多种抗原D.能用于半抗原的测定E.将酶标记抗抗体用于抗原检测39、HRP(用于标记)的RZ值应大于( )A.3.0B.3.1C.3.2D.3.3E.3.440、HRP的供氢体是( )A.TMBB.H OC.小分子醇过氧化物D.尿素过氧化物E.以上都不是41、关于ELISA的底物OPD的特点哪一条不正确( )A.具有致癌性B.灵敏度高C.比色方便D.配成应用液后稳定性好E.与酶反应后显橙黄色42、关于HRP,描述正确的是( )A.HRP由具酶活性的蛋白主酶和亚铁血红素辅基构成B.测定HRP的RZ值,可判断酶活性的高低C.HRP对酶催化反应中的受氢体专一性要求不高D.酶变性后,其RZ值不变E.邻苯二氨底物液被HRP催化显蓝色,其最大吸收波长为492nm44、HRP的活性基团是( )A.糖蛋白B.白蛋白C.球蛋白D.亚铁血红素E.色氨酸45、间接法ELISA中,形成的免疫复合物是( )A.固相抗体-抗原-酶标抗体B.固相二抗-IgM-抗原-酶标抗体C.固相抗体-酶标抗原D.固相二抗-抗体-酶标抗原E.固相抗原-抗体-酶标二抗46、制作ELISA载体材料最常用的的物质是( )A.聚氯乙烯B.聚苯乙烯C.硝酸纤维素膜D.尼龙膜E.磁性微粒47、用ELISA双抗体夹心法检测血清中甲胎蛋白(AFP),应选择的固相包被物是( )A.已知AFPB.酶标记AFPC.抗AFP抗体D.酶标记抗AFP抗体E.待检血清48、ELISA中最常用的酶是( )A.葡萄糖氧化酶和辣根过氧化物酶B.β-半乳糖苷酶和辣根过氧化物酶C.葡萄糖氧化酶和碱性磷酸酶D.脲酶和碱性磷酸酶E.辣根过氧化物酶和碱性磷酸酶49、关于ELISA的固相载体论述有误的是( )A.最常用的是聚苯乙烯微量反应板B.每一批号的聚苯乙烯在使用前需检查其性能C.聚氯乙烯对蛋白质的吸附性能比聚苯乙烯低D.阳性和阴性标本测定结果差别最大者是最适用载体E.微孔滤膜也可作固相载体50、最常用于IgM测定的ELISA方法是( )A.双抗体夹心法B.间接法C.竞争法D.捕获法E.dot-ELISA法51、表示HRP纯度(RZ)的是( )A.λ275nm/λ403nmB.λ403nm/λ275nmC.λ290nm/λ275nmD.λ420nm/λ275nmE.λ403nm/λ290nm52、关于载体的选择,正确的是( )A.醋酸纤维膜吸附蛋白的能力强于塑料板,但对微量样品的吸附不完全B.高分子微颗粒载体含有的基团易与抗体蛋白形成化学偶联,且结合容量大C.塑料制品吸附蛋白分子的稳定性和均一性好D.固相微颗粒因体积小,不易与磁性材料组合使用E.膜载体吸附抗体蛋白一般是采用化学偶联法53、ELISA间接法通常用来检测( )A.抗体B.抗原C.免疫复合物D.抗抗体E.半抗原54、均相酶免疫测定的优点不包括( )A.多用于小分子激素和半抗原的测定B.勿需分离游离的酶标抗原C.易于自动化分析D.不易受样品中非特异的内源酶的干扰E.灵敏度可达10~9mol/L55、酶增强免疫测定技术(EMIT)是一种( )A.固相酶免疫测定技术B.液相酶免疫测定技术C.均相酶免疫技术D.酶免疫组织化学技术E.酶免疫测定与电泳相结合的技术56、酶桥染色法中的桥抗体是指( )A.免疫反应系统中的特异性抗体B.显色系统中的抗酶抗体C.第一抗体D.第二抗体(抗抗体E.第三抗体(抗酶抗体)57、ELISA中用于某种特异抗体的亚型测定常采用的方法是( )A.双抗体夹心法B.捕获法C.竞争法D.间接法E.双抗原夹心法58、与双抗体夹心法相比,ELISA间接法的主要优点是( )A.有较大的放大作用B.减少了操作步骤C.减少了冲洗次数D.可以用一种酶标抗体检测各种与抗原相应的抗体E.缩短反应时间59、关于ELISA竞争法正确的是( )A.用于检测抗原B.被检测物与酶标记物的免疫活性各不相同C.被测物多则标记物被结合的机会少D.待测管的颜色比参照管的淡表示被测物量少E.只用于检测抗体60、斑点ELISA与常规ELISA比较不同之处在于( )A.二者实验原理不同B.二者所用固相载体不同C.二者所用酶不同D.二者所用酶标抗体不同E.以上都不对61、ELASA板包被后,最常用的封闭物质是( )A.人白蛋白B.人球蛋白C.牛血清白蛋白D.牛血清球蛋白E.鼠白蛋白62、免疫渗滤试验衍生于( )A.免疫扩散试验B.免疫层析试验C.免疫印迹试验D.dot-ELISAE.RIA63、目前国内ELISA常用的酶是A.HRPB.APC.β-GalD.OPDE.TMB64、双抗体夹心ELISA可用于检测A.CEAB.胰岛素C.吗啡D.ANAE.RF65、何种ELISA方法其酶标二抗具有通用特性A.双抗体夹心B.一步法C.捕获法D.竞争法E.间接法66、间接ELISA可用于检测A.AFPB.胰岛素C.HIV抗体D.吗啡E.HBsAg67、酶免疫印迹所用的固相材料为A.NC膜B.聚苯乙烯C.磁性颗粒D.尼龙膜E.凝胶68、捕获法测定病原体抗体的类别是A.IgMB.IgGC.IgAD.IgDE.IgE69、以碳酸盐作为包被缓冲液,最佳pH为A.7.2B.7.4C.7.0D.8.6E.9.670、目前通用标记HRP的试验方法为A.戊二醛交联B.过碘酸钠氧化C.琥珀酸酐法D.混合酸酐法E.碳化二亚胺法71、生物素分子中可进行修饰,形成各种活化生物素的基因是A.Ⅰ环B.Ⅱ环C.羧基D.羟基E.酮基72、链霉亲和素的活性单位是以结合多少生物素所需的量来表示A.1μgB.2μgC.3μgD.4μgE.5μg73、免疫组化技术的关键步骤是A.标本处理B.抗体的处理与保存C.免疫染色D.设立对照试验E.结果判断74、PAP复合物中的酶是A.胶原酶B.胃蛋白酶C.葡萄糖氧化酶D.碱性磷酸酶E.辣根过氧化物酶75、组化染色前,应对标本进行固定,其最主要的目的是A.保存组织细胞的抗原性B.防止细胞脱落C.防止细胞自溶D.终止胞内酶的活性E.使细胞内蛋白质凝固76、免疫组化法吸收试验是用过量已知抗原与抗体充分反应,理想的温度是A.4℃B.25℃C.56℃D.37℃E.50℃77、下列不是激光光源特征的是A.单色性强B.波长范围较宽C.亮度高D.相干性好E.方向性强78、免疫组化技术基质的来源,错误的是A.活体组织B.血清C.病毒D.培养细胞E.细菌79、微孔板包被后,加入高浓度蛋白封闭空白位点,这一过程称为A.包被B.封闭C.本底D.钩状效应E.基质效应80、与假阴性测定结果密切相关的是A.包被B.封闭C.本底D.钩状效应E.基质效应81、未加入待测物质,试验结束后测定的OD值称为A.包被B.封闭C.本底D.钩状效应E.基质效应82、标记蛋白质氨基的活化生物素为A.N-羧基丁二酰亚胺酯(BNHS)B.生物素酰肼(BHZ)C.肼化生物素(BCHZ)D.光敏生物素E.生物胞素(MPB)83、标记核酸的活化生物素为A.N-羧基丁二酰亚胺酯(BNHS)B.生物素酰肼(BHZ)C.肼化生物素(BCHZ)D.光敏生物素E.生物胞素(MPB)84、标记蛋白质醛基的活化生物素为A.N-羧基丁二酰亚胺酯(BNHS)B.生物素酰肼(BHZ)C.肼化生物素(BCHZ)D.光敏生物素E.生物胞素(MPB)85、在PAP技术中,起“桥联”作用的成分是A.Ab1B.Ab2C.anti-HRPD.HRPE.anti-AP86、在PAP技术中,与特异性抗体(Ab1)具有同种型抗原表位的成分是A.Ab1B.Ab2C.anti-HRPD.HRPE.anti-AP87、在PAP技术中,能特异性识别待检抗原的成分是A.Ab1B.Ab2C.anti-HRPD.HRPE.anti-AP88、BAS在ELISA技术中应用最广泛的反应模式是A.BABB.ABCC.BRABD.BAE.LAB89、在ABC- ELISA技术中,亲和素与生物素化酶的比例关系是A.1︰4B.1︰2C.2︰1D.4︰1E.1︰1三、名词解释1.酶免疫技术:是指利用酶的高效催化和放大作用与特异性免疫反应结合而建立的一种标记免疫技术。
免疫组织化学技术的应用免疫组织化学技术概述免疫组织化学技术是一种利用免疫学原理进行生物分子检测和定位的技术。
它采用抗体与特定抗原结合的顺反应原理,在组织切片中检测和定位某一特定分子。
原理免疫组织化学技术利用抗体与特定抗原结合的顺反应原理,即对一种特定抗原有高度选择性的抗体与组织样品中的该抗原相结合产生可见的信号。
这种信号可以是产生光学、荧光或颜色改变等形式。
应用1.生物医学研究:免疫组织化学技术可以检测组织中特定蛋白质的分布和表达,是研究生物医学领域中蛋白质分子组学的基础技术之一。
2.临床诊断:免疫组织化学技术可以应用于肿瘤诊断、流行病学调查等领域。
通过检测某些肿瘤标志物、细胞表面分子和内分泌指标等,可以帮助医生进行正确诊断。
3.药物制剂:免疫组织化学技术可以帮助研究药物分布和作用机制。
例如,在研究心血管药物时,可以用抗体检测受体的表达和分布,从而了解药物作用机制和药效。
优点1.高度特异性:免疫组织化学技术可以准确地检测特定分子,避免了其他分子的干扰。
2.高灵敏度:可以检测极微量的分子,并精确定位其位置。
3.多样性:可以应用于不同分子种类的检测和定位,有很大的应用前景。
局限性1.抗体交叉反应:某些抗体可能对多种分子有交叉反应,导致误判。
2.样品制备:样品的制备和处理对结果产生影响,需要更加严格的标准化。
3.价格昂贵:用于免疫组织化学技术的抗体相对价格较高,加上试剂盒和设备的购买,成本较高。
结论免疫组织化学技术作为一种重要的实验室技术,具有广泛的应用前景。
这种技术可以在细胞和分子层面上全面解析生物体的结构和功能,是生物医学领域中不可或缺的技术之一。
免疫组织化学技术的操作步骤1.标本制备:首先需要采集组织样本,处理后制成组织切片。
2.抗体处理:挑选合适的抗体,经过处理(如荧光标记、酶标记等),制成特定的抗体试剂。
3.特定抗原检测:在组织切片上滴加特定抗体试剂,进行特定抗原的检测。
4.反应信号检测:根据抗体的标记方式,进行相应信号的检测。
临床医学检验临床免疫技术:补体检测及应用学习资料(强化练习)1、单选C1多聚体复合物形成时,必须有下述哪种无机离子参与()A.Ca2+B.Mg2+C.Cu2+D.Fe3+E.Fe2+正确答案:A参考解析:C1多聚(江南博哥)体复合物形成时,必须有Ca的参与。
考点:补体的合成与代谢2、单选补体结合试验结果阴性时出现()A.血凝B.血凝抑制C.溶血D.不溶血E.沉淀正确答案:C参考解析:补体结合试验原理:补体结合试验是用免疫溶血机制作指示系统,来检测另一反应系统抗原或抗体的试验。
如先加入反应系统和补体,若反应系统中存在待测抗体(或抗原),则抗原抗体发生反应后可结合补体,再加入指示系统(SRBC与相应溶血素),由于反应中无游离的补体,不出现溶血,为该试验阳性;反之,为阴性。
考点:补体结合试验3、单选下列补体组分中参与吞噬调理作用的是()A.C1qB.C1C.C3b+C4bD.C5E.C1γ正确答案:C参考解析:补体在活化过程中生成的中间产物,对抗原抗体复合物有很强的亲和力,可共价结合到免疫复合物上,然后通过补体的吞噬调理作用、免疫黏附作用、免疫复合物抑制作用等清除免疫复合物。
考点:补体系统的生物活性4、单选补体活化的MBL途径的激活物,下列物质应除外的是()A.细菌内毒素B.CERC.CRP和CERD.CRPE.甘露聚糖正确答案:A参考解析:补体活化的MBL途径由血浆中甘露聚糖结合凝集素(mannan-binding lectin,MBL)直接识别多种病原微生物表面的N-氨基半乳糖或甘露糖,进而依次活化MASP-1、MASP-2、C4、C2、C3,形成和经典途径相同的C3与C5转化酶,激活补体级联酶促反应的活化途径。
MBL激活途径的主要激活物为表面含有甘露糖基、岩藻糖和N-氨基半乳糖的病原微生物。
5、单选下列补体成分中参与吞噬调理作用的是()A.C1qB.C1C.C3b+C4bD.C5E.C1γ正确答案:C参考解析:单核巨噬细胞及中性粒细胞表面有C3b、C4b受体,能与带有补体成分的免疫复合物结合,促进对免疫复合物的吞噬作用。
免疫组化技术在医学中的应用免疫组化技术是一种生物学技术,是利用抗体和其他细胞和分
子标识特定分子和细胞组织的一种技术。
它的应用范围非常广泛,包括医学、生物学、遗传学、病理学、免疫学等领域。
在医学中,免疫组化技术主要用于疾病诊断、治疗和预后判断
等方面。
它可以对细胞和组织进行免疫染色,得到大量信息,如
细胞类型、分化程度、增殖状态、代谢状态、分泌状态等。
并且
还能够在分子水平上进行分析,如检查基因突变、蛋白质表达等。
在疾病诊断方面,免疫组化技术可以帮助医生诊断各种疾病和
病理状态。
例如,肿瘤组织标本可以用免疫组化技术检查癌细胞
的类型、分化程度、蛋白质表达等,有助于病理诊断和治疗选型。
另外,免疫组化技术还可以检测某些肿瘤抗原,如PSA、CEA等,在肿瘤早期筛查和诊断中有一定的应用。
在治疗方面,免疫组化技术可以帮助医生选择合适的治疗方案。
例如,HER2阳性乳腺癌患者可以接受靶向治疗药物,而HER2阴
性患者则不适用该药物。
免疫组化技术可以检测HER2表达情况,从而指导治疗。
在预后判断方面,免疫组化技术可以评估疾病预后。
例如,某些肿瘤组织标本中,如果出现Ki-67阳性细胞数量较多,那么预后可能不太乐观,治疗要足够积极。
此外,对于乳腺癌患者,ER、PR受体阳性与否也是评估预后的一个指标。
总的来说,免疫组化技术在医学诊断和治疗方面具有重要的应用价值,可以为患者的治疗和预后提供有力的支持。
未来,随着技术的不断发展,免疫组化技术的应用会越来越广泛,成为医学研究和临床诊疗中不可或缺的一部分。
免疫组化实验步骤免疫组化操作步骤一、实验原理与意义免疫组织化学又称免疫细胞化学,是指带显色剂标记的特异性抗体在组织细胞原位通过抗原抗体反应和组织化学的呈色反应,对相应抗原进行定性、定位、定量测定的一项新技术。
它把免疫反应的特异性、组织化学的可见性巧妙地结合起来,借助显微镜(包括荧光显微镜、电子显微镜)的显像和放大作用,在细胞、亚细胞水平检测各种抗原物质(如蛋白质、多肽、酶、激素、病原体以及受体等)。
(一)、仪器设备1. 18cm不锈钢高压锅或电炉或用微波炉.2.水浴锅(二)、试剂1. PBS缓冲液(ph7."2―7."4):NaC137mmol/L,KCl2."7mmol/L ,Na2HPO44."3mmol/L, KH2PO41."4mmol/L.2."0.01mol/L柠檬酸钠缓冲液(CB,ph6."0,1000ml):柠檬酸三钠3g,柠檬酸0."4g。
3.0."5mol/L EDTA缓冲液(ph8."0):700ml水中溶解186."1g EDTA& 8226;2H2O,用10mmol/L NaOH调至ph 8."0,加水至1000ml.4. 1mol/L的TBS缓冲液(ph8."0):在800ml水中溶解121gTris碱,用1N的HCl调至pH 8."0,加水1000ml。
5.酶消化液:a.0."1%胰蛋白酶:用0."1%CaCl 12(ph7."8)配制。
b.0."4%胃蛋白酶液:用0."1N的HCl配制。
6. 3%甲醇―H2O2溶液:用30%H2O2和80%甲醇溶液配制7.风裱剂:a.甘油和0."5mmol/L碳酸盐缓冲液(pH9."0–9."5)等量混合b油和TBS(PBS)配制8."TBS/PBS PH9."0–9."5,适用于荧光纤维镜标本;ph7."0-7."4适合光学纤维标本(三)、操作流程1、脱蜡和水化:脱蜡前应将组织芯片在室温中放置60分钟或60℃恒温箱中烘烤20分钟。
免疫组化步骤范文免疫组化(Immunohistochemistry,IHC)是一种应用于组织学研究中的技术方法,用于检测和定位特定的抗原或蛋白质在组织或细胞中的表达。
免疫组化可以提供细胞和组织的一些重要信息,如蛋白质分布、定位和表达的数量。
以下是免疫组化的一般步骤:1.材料准备:-组织切片:将组织固定、包埋和切片。
-切片预处理:将切片置于载玻片上,并进行脱脂、水洗和固定处理。
2.抗原修复:-如果组织经过了形态改变或抗原损失,需要对切片进行抗原修复。
常见的方法有热处理(如煮沸、加热蒸汽、加热压力等)和酶处理(如胰蛋白酶、丝氨酸蛋白酶等)。
3.阻断非特异性结合:-切片上的非特异性结合位点可能与前体抗体非特异性结合,导致假阳性结果。
因此,需要将非特异性结合位点进行阻断,通常使用牛血清蛋白(如BSA或NGS)或非特异性抗体进行阻断。
4.一抗处理:5.洗涤:-用缓冲液对切片进行洗涤,以去除未结合的一抗和非特异结合的物质。
6.二抗处理:-加入二抗,即针对一抗的抗体。
二抗通常是与标记物连接的抗体,可以是荧光染料、酶或金纳米等。
7.洗涤:-用缓冲液对切片进行洗涤,以去除未结合的二抗和非特异性的结合。
8.标记物检测:-标记物可以是荧光染料、酶或金纳米等,它们与二抗结合形成复合物,并可通过荧光显微镜或酶反应显色方法来观察。
9.洗涤和封片:-用缓冲液对切片进行彻底的洗涤,以去除未结合的标记物或荧光染料。
然后,将切片用有机溶剂除去水分,然后使用封片剂覆盖并封装切片。
10.观察和分析:-将切片放入显微镜下观察和分析,如荧光显微镜观察、酶反应显色方法观察等。
可以通过比较反应强度、分布和定位等特征来分析抗原或蛋白质在组织或细胞中的表达情况。
以上是一般的免疫组化步骤,具体操作可能会根据实验设计和研究目的的不同而有所差异。
在进行免疫组化实验时,需要严格控制实验条件和相应的质量控制,以确保结果的可靠性和准确性。
此外,还需要根据具体的实验需求选择合适的抗体、标记物和检测方法,以及根据组织类型和抗原性质选择适当的抗原修复和阻断非特异性结合的方法。
免疫组化步骤及原理一、前言免疫组化是一种常用的实验技术,它可以用来检测组织或细胞中的蛋白质表达及其分布情况。
本文将详细介绍免疫组化的步骤及原理。
二、免疫组化的步骤1. 取材首先需要取得需要检测的样本,可以是活体组织或固定后的切片。
对于固定后的切片,需要进行脱水、透明化和包埋等处理。
2. 制备切片将取得的样本制备成厚度为4-6μm的切片,并将其放置在载玻片上。
然后进行脱蜡和再水化处理,以便后续步骤的顺利进行。
3. 抗原修复抗原修复是为了恢复经过固定和包埋处理后被破坏或掩盖了的抗原性位点,使其能够被抗体识别。
抗原修复方法有多种,如高温加压法、微波辅助法等。
4. 阻断非特异性结合位点在进行免疫反应之前,需要阻断非特异性结合位点以减少假阳性结果。
常用的方法是使用牛血清白蛋白、小鼠IgG等。
5. 抗体孵育将特异性的一抗加入载玻片上,在恰当的条件下孵育一段时间,使其与靶分子结合。
然后用洗涤缓冲液洗去未结合的抗体。
6. 二抗孵育加入与第一抗体来源物种不同的二抗,使其结合到第一抗体上。
通常二抗会标记有荧光素、辣根过氧化物酶等标记物,以便于检测。
7. 洗涤在每个孵育步骤之后都需要进行洗涤,以去除未结合的分子和杂质。
洗涤缓冲液可以是PBS、TBST等。
8. 显色对于标记有辣根过氧化物酶等标记物的二抗,需要使用底物进行显色。
底物包括DAB、VIP等,在加入底物之前需要在载玻片上加入过氧化氢等催化剂。
9. 盖片封装最后将载玻片盖上盖片,并使用透明胶水进行封装。
这样可以保持样本的湿度和防止样本污染。
三、免疫组化的原理免疫组化的原理基于抗原与抗体的特异性结合。
抗原是指能够被免疫系统识别并引起免疫反应的分子,如蛋白质、多肽等。
抗体是由B细胞分泌的一种具有特异性结合能力的分子,可以识别和结合到相应的抗原上。
在进行免疫组化实验时,首先需要选择一种特异性较高的一抗,使其与靶分子结合。
然后加入来源于不同物种的二抗,使其与第一抗体结合。
免疫组化SP法引言免疫组化(SP)法是一种常用的免疫组织化学染色技术,用于检测细胞和组织中蛋白质的表达情况。
相较于传统的免疫组化方法,SP法的敏感性和特异性更高,能够提供更准确的结果。
本文将介绍免疫组化SP法的原理、步骤和应用,并提供一些实验技巧和注意事项。
原理免疫组化SP法结合了辣根过氧化物酶(HRP)和碱性磷酸酶(AP)的酶标系统。
HRP可以催化有机物质与底物间的氧化还原反应,生成可见光。
而AP则能够催化磷酸酯与底物间的酸碱中和反应,生成二级离子,进而酶促反应。
SP法利用这两个酶的双重酶标效应,使得染色结果更明显,背景噪音更低。
实验步骤免疫组化SP法通常包括以下步骤:1.取得标本:首先需要准备待检测的组织样本或细胞制片。
可以选择固定、冻存或石蜡包埋样本。
2.制备切片:将组织样本切割成适当的厚度,一般为4-5μm。
使用玻璃片或载玻片使切片固定在切片架上。
3.脱脂去蜡:将切片在温水中浸泡片刻,去除石蜡并暴露组织。
4.抗原修复:根据需要,在组织上施加适当的抗原修复方法,以恢复由于石蜡包埋而导致的抗原损失。
5.抗体孵育:将适当的一抗或多抗添加到切片上,使其与目标蛋白结合。
根据需要,可以在抗体孵育前进行非特异性蛋白质封闭,以防止非特异性结合。
6.一抗信号放大:使用HRP标记的二抗与前一步骤结合的抗体结合。
在此步骤中,HRP将抗原邻近的HRP底物转化为可见的颜色。
7.二抗信号放大:使用AP标记的二抗与前一步骤结合的一抗结合。
AP 酶可将AP底物转化为色素,产生二级离子,使染色结果更明显。
8.染色:在适当的时间和温度条件下,在样本上施加适当的染色试剂,使目标蛋白在显微镜下呈现出想要的颜色。
9.倒置显微镜:使用倒置显微镜观察染色结果,根据需要进行图像拍摄记录。
实验技巧在进行免疫组化SP法实验的过程中,有一些技巧可以帮助提高实验效果:1.样本处理:对样本进行适当的抗原修复和封闭,以免出现非特异反应。
2.抗体选择:选择与目标蛋白有高度亲和力的特异性抗体,以提高染色的准确性。
脱蜡前烤片时间()
下午:
1、脱蜡:二甲苯2瓶5m i n、10m i n,100%乙醇2瓶5m i n、10分钟,95%乙醇--5m i n,80、70、60各5m i n,清水中泡15分钟,后浸泡H2O215m i n
2、P B S3次/5m i n
3、抗原修复:用柠檬酸修复液,高压修复2m i n,冷却至室温
4、P B S冲洗3次/5m i n
5、滴加一抗,4℃冰箱过夜(12小时以上,固定一个时间)
第二天上午
6、取出后放置半小时左右至室温,P B S冲洗3次/5m i n
7、滴加P V-6000,37℃恒温箱,25m i n,取出后P B S冲洗3次/5m i n
8、D A B显色(1m l底物液+一滴浓缩液),光镜下观察,看到棕黄色即可终止,用清水涮洗,显色时间不需要固定一个时间。
9、复染:苏木素1m i n(染细胞核),---分化液(酒精+盐酸)1秒钟即可,后置于清水中20m i n
10、脱水:从70%--80%-无水乙醇5分钟---无水乙醇10分钟---二甲苯5分钟---二甲苯10分钟
11、封片:树胶封片,加盖盖玻片,晾干(二甲苯中浸泡可去除树胶)。
免疫组化实验步骤1.血样制备:-采集血液样本,离心分离血浆或血清。
-用PBS洗涤血浆或血清,去除杂质。
2.组织固定:-采集待检组织样本,用缓冲福迪液进行固定。
常用的福迪液包括4%的甲醛和10%的中性缓冲福迪液。
-将组织固定在玻片上,通常通过石蜡包埋来保护组织样本。
3.切片:-使用旋转式或电动切片机将固定的组织切割成5-10μm厚的切片。
-将切片放置在带有去福迪剂密封的玻片上,然后进行脱脂和重水处理。
4.抗原恢复:-将切片浸泡在适当的抗原恢复缓冲液中,以恢复切片中的抗原结构。
-常用的抗原恢复方法包括热敏感抗原恢复、酶消化抗原恢复和酸碱抗原恢复等。
5.阻断非特异性结合位点:-使用适当浓度的蛋白抑制剂(如牛血清蛋白)在切片上进行阻断,防止非特异性结合。
-将切片在室温下孵育一段时间,以使蛋白抑制剂有效阻断非特异性结合。
6.抗体染色:-添加特定的初级抗体到切片上,与待检测的特定抗原结合。
-孵育切片,使初级抗体与抗原结合。
-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的抗体。
7.信号放大:-添加合适的二级抗体到切片上,与初级抗体结合。
二级抗体可标记有荧光染料、酶或金粒等。
-孵育切片,使二级抗体与初级抗体结合。
-将切片用PBS或缓冲盐水洗涤去除未结合的二级抗体。
8.检测与成像:-根据二级抗体标记的方式,使用合适的检测方法进行信号放大。
-如果使用荧光标记的二级抗体,可以利用荧光显微镜观察和拍摄图像。
-如果使用酶标记的二级抗体,可以使用底物和显色试剂进行检测和成像。
9.结果分析:-观察并分析免疫组化染色结果,评估抗原的定位和表达情况。
-可以使用计算机图像分析系统进行定量分析和比较。
10.结论和报告:-根据实验结果,得出结论并撰写实验报告。
-将实验结果与已知文献资料进行对比和解释,讨论可能的研究价值和应用前景。
注意事项:-实验过程中需严格遵守无菌操作规范,以避免交叉污染和误差。
-选用合适的正对照和阴性对照,以确保实验结果的准确性和可靠性。
免疫组化实验步骤及配方免疫组化实验是一种用于检测和定位特定蛋白质在细胞、组织或器官中表达的技术。
免疫组化实验包括一系列步骤,如抗原修复、非特异性结合抑制、免疫原和次级抗体处理、显色/荧光染色等。
下面将详细介绍免疫组化实验的步骤及配方。
1.抗原修复:抗原修复是为了恢复因组织固定而引起的抗原性损失。
一般使用高温或酶解方法进行抗原修复。
-高温方法:将组织切片置于高温缓冲液中加热,一般在95°C下加热15-20分钟。
-酶解方法:如胰酶消化、蛋白酶消化等。
例如,可以使用0.1%胰酶在37°C下进行酶解。
2.非特异性结合抑制:非特异性结合抑制是为了防止免疫试剂(如次级抗体)与非特异性蛋白结合,从而降低假阳性结果。
一般使用正常动物血清或胶体等进行非特异性结合抑制。
-正常动物血清:根据动物源种类(如小鼠、兔子等)选择相应的正常动物血清。
-胶体:如牛血清蛋白、牛血清白蛋白等。
可以在最终稀释液中加入1-2%的胶体。
3.免疫原处理:免疫原处理是为了增强目标抗原与抗体的结合效率,一般通过与次级抗体或酵素结合。
根据具体实验需求,可以选择荧光标记、酶标记或金标记等不同的方式进行免疫原处理。
-荧光标记:如荧光素等。
-酶标记:如辣根过氧化物酶(HRP)、碱性磷酸酶(AP)等。
-金标记:如胶体金、纳米金等。
4.次级抗体处理:次级抗体处理是为了增强免疫原与目标抗原之间的结合效应。
一般使用来自其他物种的抗体作为次级抗体。
根据不同实验需求,可以选择与荧光标记、酶标记或金标记结合的次级抗体。
-荧光标记:如青蒿素标记的抗兔荧光标记抗体等。
-酶标记:如HRP标记抗体、AP标记抗体等。
-金标记:如碳标记抗体、金标记抗体等。
5.显色/荧光染色:显色/荧光染色是为了可视化目标抗原的分布和定位。
根据不同的免疫标记试剂,可以选择适当的染色方法。
-显色:如DAB(3,3'-二氨基联苯)染色。
-荧光染色:根据使用的荧光标记试剂选择相应的染色方法,如DAPI 染色、FITC染色等。
免疫组化实验室方案
免疫组化是一种重要的实验技术,可用于检测细胞、组织等样本中特定蛋白质的表达和定位。
以下是一份标准的免疫组化实验室方案。
1. 实验室设备和材料
- 酶标仪和酶标板
- 1.5 mL离心管和微量离心管
- 离心机
- 冰桶
- 恒温水浴
- 96孔板
- 洗板机
- 浓缩缓冲液
- 抗体
- 次级抗体
- 显色底物
- 去污液
- 显微镜和镜片
2. 样本准备
- 收集样本并固定在石蜡块上
- 切片并将其放置在盛有Xylene的离心管中去除蜡
- 在乙醇中进行脱水
- 将样本放在恒温水浴器中进行抗原修复,以恢复细胞和蛋白质的形态
- 在PBS中洗涤样本,以去除残留的蜡和其他污染物
3. 抗体处理
- 加入抗体,并在4℃下孵育样本
- 冲洗样本以去除未结合的抗体
- 加入次级抗体,以检测已经结合的抗体
- 再次冲洗样本以去除未结合的次级抗体
4. 显色
- 加入显色底物,以观察样品中的蛋白质表达
- 冲洗样本以去除残留显色底物
5. 数据分析
- 观察样本下的显色反应,并进行镜检
- 记录观察到的蛋白质表达和定位
以上是一份标准的免疫组化实验室方案,但具体操作流程可能因实验条件和样本性质而有所差异。
在进行实验前,请先阅读实验室手册并根据样本特点进行优化。
免疫电镜实验步骤免疫电镜(immuno-electron microscopy,IEM)是一种结合了免疫学和电镜技术的方法,能够直接在细胞或组织水平上观察和定位特定抗原。
它是一种有力的工具,可以帮助研究人员研究细胞和组织中的蛋白质相互作用,了解其在亚细胞水平的功能和定位。
免疫电镜实验步骤如下:1. 细胞或组织固定:首先,需要处理样品以使其具有电镜处理所需的高度稳定性。
通常,细胞或组织样本会使用交联剂如戊二醛进行固定。
固定的目的是保持样本的形态和结构,并防止其在后续处理过程中发生破坏。
2. 裁剪:将固定的细胞或组织样品切成适当的尺寸和形状以适应电镜的观察要求。
这通常需要非常小的块,以便于后续处理。
3. 过渡液处理:将样品经过一系列的过渡液处理,以去除残留的固定剂和使样品适应后续处理步骤。
这些过渡液通常是缓冲液,比如磷酸盐缓冲液。
4. 与抗原特异性的抗体结合:将样品与抗原特异性的抗体结合,以实现对特定抗原的检测。
这一步骤是免疫电镜实验的核心。
抗体可以直接标记电镜可见的标记物,如金颗粒,或作为未标记抗体来标记后续参与复合物的二级抗体。
5. 渗透处理:对样品进行渗透处理,旨在增强电镜对样品的可见度。
渗透剂的选择基于具体的研究问题,可以使用醋酸铀、酸酮铀等物质。
6. 样品固化:使用适当的聚合剂,如聚合酮树脂,对样品进行固化,以使其能够保持其形态和结构,并便于切片后的后续处理。
7. 切片:将固化的样品切成极薄的切片,通常在50-100 nm的范围内。
切片过程通常通过使用超微切片机或超声刀来完成。
8. 样品染色:对切片的样品进行染色以增强对抗原的可见度。
可以使用核苷酸染料如乌尔红,或金标记等染色剂。
9. 电镜观察:将样品放置在电子显微镜中,并使用适当的电压和放大倍数进行观察和记录。
通过观察电镜图像,可以获得关于抗原的位置、分布和亚细胞定位的信息。
总结:免疫电镜实验是一种强大的技术,可以帮助研究人员观察和定位特定抗原。
NO.9小鼠/兔多克隆抗体制备实验方案
实验原理:当将抗原注射入实验动物体内时,会引起体液免疫,一系列抗体生成细胞B 细胞会不同程度的与抗原结合,受抗原刺激后在血液中产生不同类型的抗体,这种由一种抗原刺激产生的抗体称为多克隆抗体,而免疫效果与抗原有关,如抗原纯度、抗原分子量、免疫原性、佐剂、抗原注射剂量、抗原免疫次数等。
实验器材:乳化器、打孔器、橡胶手套、电子天平、1ml/5ml注射器、剪刀、恒温水浴箱、EP管、移液枪、玻璃片、棉签、牙签、酒精灯、剪刀、止血钳、眼科弯镊、兔台、棉线、烧杯、离心管、冰箱、青霉素小瓶、记号笔、湿盒
实验试剂:弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐剂、琼脂、生理盐水、PBS、70%的酒精、1.5%戊巴比妥
一、抗原的选择:
人IgG:分子量是146KD,分子量大,纯度较高,对家兔而言种属差异大,免疫原性高;
牛血清白蛋白:分子量 68KD,纯度较高、分子量大,对小鼠而言种属差异大,免疫原性高。
二、抗原的乳化
乳化的方法:在乳化之前,将抗原用保存在4℃的PBS稀释好,稀释后的浓度为1mg/ml。
弗氏佐剂、不完全佐剂与抗原乳化时,弗氏佐剂与稀释后抗原的比例为1:1。
1:PBS的配置:用电子天平称NaCl 0.8g、KCl 0.02g 、Na2HPO4 0.144g、KH2PO4 0.024g、ro水80ml; 加盐酸调节pH 7.2后,定容至100ml.放置在4℃。
2、人IgG的稀释:称取2mg的人IgG于5ml的EP管中,用移液枪移取 1ml PBS将2mg 的人IgG稀释。
牛血清白蛋白的稀释:称取2mg的牛血清白蛋白于5ml的EP管中,用移液枪移取1ml 的PBS将牛血清白蛋白稀释。
3、乳化:人IgG的乳化,将稀释后的1ml人IgG加入乳化器中,再加入1ml弗氏完全佐剂/不完全佐剂,进行乳化操作,操作时要缓慢,均匀。
乳化好的标志:取一滴乳化剂滴入水中呈现球形而不分散。
如出现平展扩散即为未乳化好。
乳化过的物质放置一段时间(在保存期内)出现油水分层也是未乳化好的表现,均要重新乳化。
三、动物选择
小鼠:18g左右的青年期的近交系普通雄性2只
家兔:健壮生理状态良好的青年雄性,体重为2Kg左右
四、动物的抓取与固定
(1)待小鼠在笼内安静以后,用右手拇指和食指捏住尾部中央提起来,放到粗糙的鼠笼盖上,轻轻向后拉鼠尾,再用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和头颈部皮肤,将其置于左手心中,翻转抓住颈背部皮肤,右手拉住小鼠尾部,将后肢拉直,尾巴由小指压紧,以手掌心夹住背部皮肤。
(2)待家兔在笼内安静以后,以右手抓住兔颈部的毛皮提起,然后左手托其臀部或腹部,让其体重重量的大部分集中在左手上,一般采用五点法固定。
五、动物免疫
(1)初次免疫:两只小鼠分别用标记笔标记,采用多点皮内注射,注射时用70%的酒精消毒注射部分,鼠共2只,第一次基础免疫用稀释好人的牛血清白蛋白(2mg/mL) lmL与等量的弗氏完全佐剂充混匀乳化完全后后为2ml,取0.1ml,予背皮内多点注射(10点左右),每次注射10微升,免疫一次;
兔的首次免疫:将所选用的兔做好标记,用稀释好人的牛血清白蛋白(2mg/mL) lmL与等量的弗氏完全佐剂充混匀乳化完全后,同样采用皮下多点注射,在兔的背部,选择10点以上注射,进行注射,每点大约注射0.1ml左右,每只兔注射乳化好的抗原的总量为1ml。
(2)1两周后,进行加强免疫
间隔两周后,小鼠第二次加强免疫用牛血清白蛋白(2mg/mL)lmL与等量的弗氏不完全佐剂混匀,充分乳化为2ml,取0.1ml,予皮下多点点注射10次,免疫一次;
家兔为耳缘静脉注射抗原,人IGg(2mg/mL)lmL与等量的弗氏不完全佐剂混匀,充分乳化为2ml,取1ml,予皮下多点注射10次,每点0.1ml左右,免疫一次;
注意:①皮内注射于皮下注射的区别,皮下注射:注射的时候用拇指和食指夹住皮肤轻轻上提一点,在拇指和食指前方形成的三角区进针,小鼠、家兔的皮较厚,注射针头穿过其皮肤后有空感。
③腹腔注射:左腹注射,一定要注意回抽,无回血、无肠液、无尿液,才能注射药液。
六、验血
在第二次加强免疫一周后后,验血。
(1)采血:小鼠尾部采血:手拇指和食指从背部抓住小鼠颈部皮肤,将小鼠头朝下,小鼠保定后将其尾巴置于50°热水中浸泡数分钟,或者涂抹二甲苯,使尾部血管充盈。
擦干尾部,再用剪刀或刀片剪去尾尖1~2mm,用1.5mlEP管接流出的血液,同时自尾根部向尾尖按摩。
取血后用棉球压迫止血,每次采血量0.2ml(安全采血量)。
家兔:固定之后兔耳静脉采血,将兔耳洗干净后,用针头扎破让血自然流出,下方接一离心管(安全采血量3ml以内)。
(2)血清的制备:试管的血液中,不做任何抗凝处理,3000r/min离心15min收集到离心管中待用;在5天内测定的血清标本可放置于4℃保存。
(3)效价检测:
本实验采用免疫双扩散法,①1%琼脂配制:1g琼脂+100mL生理盐水,融化后,制作琼脂板:用移液管吸取融化琼脂3.5ml~4ml注于水平放置的载玻片上,使其均匀分布不流失,厚度约2mm左右,自然冷却凝固;②打梅花孔孔6个,孔径3mm,孔距8mm,针尖挑去孔内琼脂;封底,在火焰上缓缓加热,使孔底琼脂少许融化,以免加样后液体从孔底渗漏;用记号笔给梅花孔编号;③加样:以微量移液器取15微升抗血清于中央孔,同剂量用PBS倍比稀释1:1、1;2、1:4、1:8、人IGg/牛血清白蛋白抗原分别逆时针加于周围孔,最后留一孔加生理盐水最阴性对照;将玻片放入密闭湿盒,置37℃温箱中扩散24h,④观察:若有白色沉淀线生成,即免疫成功即为阳性,则进行下一步实验;若实验结果为阴性,则需要第三次免疫,家兔腹腔注射不加佐剂的IGg液IgG(1mg/mL),取1ml予腹腔注射1次;小鼠注射不加佐剂的牛血清白蛋白(1mg/mL),取0.1ml予腹腔注射1次。
注意:兔耳静脉采血最好不要用注射器直接抽取,若抽取时,缓慢,让其自然流出为佳,以免有气泡,避免反复采血而发生溶血现象;生理盐水也就是浓度是0.9%的氯化钠溶液。
七、免疫血清的收获、保存与效价检测:
动物免疫后5--7天后放血,采血前禁食12h。
①小鼠眼球放血:左手拇、食指抓取小鼠双耳及颈后皮肤,小指固定尾部;中指将小鼠左侧前肢轻压在胸骨心脏部位,无名指按在腹部,捻动拇指,轻压取血侧眼部皮肤,使眼球充血突出;用眼科弯镊夹取眼球,并且将其头朝下提起动物,血液很快从眼眶中流入离心管;根据需要捻动拇指与食指的方向,同时用左手中指轻按小鼠心脏部位,以加快心脏泵血速度;当血液流尽时,用脱臼法处死小鼠。
②家兔:放血时仰卧固定,用1.5%戊巴比妥(2ml/kg)麻醉后,切开颈部皮肤,分离出颈动脉,结扎远心端,用止血钳夹住近心端,剪口后,松开止血钳与500ml烧杯口放血。
两次放血尽量不要让血出现在上EP管或离心管壁上,两次采集的血液37℃放置1h,在置于冰箱4℃过夜,待血清充分析出之后,3000r/min离心15min,如果一周之内用用血清分装于青霉素小瓶于4℃保存。
如果时间过长,加入0.02%卡松于-20℃保存,测定效价见验血中的免疫双扩散法。
瓶于4℃保存。
如果时间过长,加入0.02%叠氮化钠于-20℃保存。
测定血清效价见验血。