植物组织蛋白提取方法

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植物蛋白质提取方法总汇

一、植物组织蛋白质提取方法

1、根据样品重量( 1g 样品加入 3.5ml 提取液,可根据材料不同适当加入),准备提 取液放在冰上。

2、把样品放在研钵中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上静置( 3-4 小时)。

3、 用离心机离心 8000rpm40min4 C或 11100rpm20min4 °C

4、 提取上清液,样品制备完成。

蛋白质提取液: 300ml

1 、 1Mtris-HCl ( PH8) 45ml

2、 甘油( Glycerol ) 75ml

3、 聚乙烯吡咯烷酮( Polyvinylpolypyrrordone ) 6g

这种方法针对 SDS-PAGE垂直板电泳!

二、植物组织蛋白质提取方法

氯醋酸—丙酮沉淀法

1 、在液氮中研磨叶片

2、 加入样品体积3倍的提取液在-20 C的条件下过夜,然后离心(4 C 8000rpm以上1 小时)弃上清。

3、 加入等体积的冰浴丙酮(含 0.07%的3 -巯基乙醇),摇匀后离心(4C 8000rpm 以上 1

小时),然后真空干燥沉淀,备用。

4、 上样前加入裂解液, 室温放置 30 分钟,使蛋白充分溶于裂解液中, 然后离心 (15C

8000rpm以上1小时或更长时间以没有沉淀为标准),可临时保存在 4 C待用。

5、 用Brandford法定量蛋白,然后可分装放入 -80 C备用。

药品:提取液:含10%TCA和0.07%的3 -巯基乙醇的丙酮。裂解液:2.7g尿素0.2gCHAPS 溶于3ml灭菌的去离子水中(终体积为 5ml),使用前再加入 1M的DTT65ul/ml。

这种方法针对双向电泳,杂质少,离子浓度小的特点!当然单向电泳也同样适用,只 是电泳的条带会减少!

三、组织:肠黏膜 目的:WESTERN BLO检测凋亡相关蛋白的表达

应用TRIPURE提取蛋白质步骤:

含蛋白质上清液中加入异丙醇:(1.5ml每ImITRIPURE用量)

倒转混匀,置室温 10min

离心: 12000 g,10min,4 度,弃上清

加入0.3M盐酸胍/95 %乙醇:(2ml每ImITRIPURE用量)

振荡,置室温 20min

离心: 7500g ,5 min , 4 度,弃上清

重复 0.3M 盐酸胍 /95 %乙醇步 2 次

沉淀中加入 100%乙醇 2ml

充分振荡混匀,置室温 20 min

离心: 7500g ,5min,4 度,弃上清吹干沉淀

1 % SDS溶解沉淀

离心: 10000g,10min , 4 度

取上清 -20 度保存(或可直接用于 WESTERN BLO)T

存在的问题:加入 1%SDS后沉淀不溶解,还是很大的一块, 4度离心后又多了白色

沉定,SDS结晶?测浓度,含量才 1mg/ml左右。

解决:提蛋白试剂盒,另外组织大小适中,要碎,立即加 2X BUFFER然后煮5- 10

分钟,效果很好的。

四、植物材料:水稻苗,叶鞘,根

1 、 200 毫克样品置于冰上磨碎

2、加 lysis buffer ,离心, 10000rpm,4 度, 5min 取上清

3、重复离心 5min五、蛋白质样品制备

秧苗蛋白质样品的提取按 Davermal 等( 1986)的方法进行。

100mg材料剪碎后加入1OmgPVP-4O(聚乙烯吡咯烷酮)及少量石英砂,用液氮研磨成 粉,加入1.5 ml 10% 三氯乙酸(丙酮配制,含10mM即卩0.07% B -巯基乙醇),混匀,-20 C 沉淀1小时,4C, 15000 r/min 离心15 min,弃上清,沉淀复溶于1.5ml冷丙酮(含10 mM3 - 巯基乙醇),再于-20 C沉淀1小时,同上离心弃上清,(有必要再用80%丙酮(含10 mM3 - 巯基乙醇所得沉淀低温冷冻真空抽干。

按每mg干粉加入20卩1(可调)UKS液[9.5 M 尿素,5mM碳酸钾,1.25%SDS 0.5%DTT(二

硫苏糖醇 ), 2% Ampholine (Amersham Pharmacia Biotech Inc , pH3.5-10) , 6%

Triton X-100] , 37C温育30min,期间搅动几次,28度(温度低,高浓度的尿素会

让溶液结冰)16000 r/min 离心15 min,离心力越大时间长一点越好! 上清即可上样电泳。

或者 -70 度保存。

六、植物根中蛋白质的抽取

(1) sample, 液氮研磨

(2) 装 1.5 ml centrifuge 用 tube

(3) 加 1M KH2PO4 K2HPO4 700 ul

(4) 12000 rpm, 4 度, 10-15minite

(5) 取上层液,蛋白质就在里面

三氯醋酸—丙酮沉淀法

1 、在液氮中研磨叶片

2、 加入样品体积3倍的提取液在-20 C的条件下过夜,然后离心(4 C 8000rpm以上1小时) 弃上清。

3、 加入等体积的冰浴丙酮(含 0.07%的3 -巯基乙醇),摇匀后离心(4 C 8000rpm以上1 小时),然后真空干燥沉淀,备用。

4、 上样前加入裂解液,室温放置30分钟,使蛋白充分溶于裂解液中, 然后离心(15 C 8000rpm

以上1小时或更长时间以没有沉淀为标准),可临时保存在 4C待用。

5、 用Brandford法定量蛋白,然后可分装放入 -80 C备用。

药品:

提取液:含10%TCA和0.07%的 3 -巯基乙醇的丙酮

裂解液:2.7g尿素0.2gCHAPS溶于3ml灭菌的去离子水中(终体积为5ml),使用前再加入 1M 的

DTT65ul/ml 。

这种方法针对双向电泳, 杂质少, 离子浓度小的特点! 当然单向电泳也同样适用, 只是电泳 的条带会减少!植物组织蛋白质提取方法 (一)

1、根据样品重量( 1g 样品加入 3.5ml 提取液,可根据材料不同适当加入),准备提取液放 在冰上。

2、把样品放在研钵中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上静置( 3-4 小时)。

3、用离心机离心 8000rpm40mi n4C或 11100rpm20mi n4C

蛋白质提取液: 300ml

4 、提取上清夜,样品制备完成。

1 、 1Mtris-HCl ( PH8) 45ml

2、 甘油( Glycerol ) 75ml

3、 聚乙烯吡咯烷酮( Polyvinylpolypyrrordone ) 6g 这种方法针对 SDS-PAG,E 垂直板电泳!

植物组织蛋白质提取方法(二)

三氯醋酸—丙酮沉淀法

1 、在液氮中研磨叶片

2、 加入样品体积3倍的提取液在-20C的条件下过夜,然后离心(4C 8000rpm 以上1小时) 弃上清。

3、 加入等体积的冰浴丙酮(含 0.07%的3 -巯基乙醇),摇匀后离心(4C 8000rpm 以上1 小时),然后真空干燥沉淀,备用。

4、 上样前加入裂解液,室温放置30分钟,使蛋白充分溶于裂解液中, 然后离心(15C8000rpm 以上1小时或更长时间以没有沉淀为标准),可临时保存在 4C待用。

5、 用Brandford法定量蛋白,然后可分装放入 -80C备用。

药品:

提取液:含10%TCA和0.07%的 3 -巯基乙醇的丙酮

裂解液:2.7g尿素0.2gCHAPS溶于3ml灭菌的去离子水中(终体积为5ml),使用前再加入 1M 的

DTT65ul/ml。

这种方法针对双向电泳, 杂质少, 离子浓度小的特点! 当然单向电泳也同样适用, 只是电泳 的条带会减少!

TCA-丙酮沉淀法,有人做过落叶松的的花粉

步骤:

1 、液氮研磨充分

2、 加入含 10%TCA、 0.07%的巯基乙醇的丙酮溶液, -20 度沉淀过夜

3、 4 度, 1000rpm 离心 1 个小时,弃上清。

4、 加 100%丙酮,含 0.07%的巯基乙醇,沉淀一小时

5、 4 度, 1000rpm 离心 15分钟,弃上清

6、 重复第 4、 5 步

7、 80%丙酮,含 0.07%的巯基乙醇,沉淀一小时

8、 重复第 5 步

9、 沉淀干燥。

1 0.低温保存样品

TCA/丙酮法:

(1)取 4g 果肉,用液氮在研钵中将其研磨成粉。 (2) 加入12.5%冰冷的TCA/丙酮(含0.07% B -巯基乙醇),匀浆液在 -20 oC下,放置3h, 纱布过滤。

(3) 滤液在20000g离心30min,收集沉淀。

(4) 用冷丙酮洗3次,沉淀在4oC下干燥,备用。

2. 匀浆法:

( 1 )称取 4g 果肉,用液氮在研钵中研磨成粉。

(2) 加入 4ml 的匀浆缓冲液 (匀浆液中含有 20 mMTris-HCl (pH 7.5), 250 mMsucrose, 10

mM EGTA, 1 mM PMSF, 1 mM DTT, 以及 1% Triton X-100) ,继续研磨。

(3) 匀浆液 20000g 离心 30min。

(4) 将上清转移到新的离心管中,加入终浓度为 10%TCA溶液,4oC下放置2 h。

(5) 20000g离心40min,收集沉淀。

(6) 用冷丙酮洗3次,沉淀在4oC下干燥,备用。

3. 酚提取法:

(1) 称取 4g 果肉,用液氮在研钵中研磨成粉。

(2) 加入 4ml 的匀浆缓冲液 (匀浆液中含有 20 mMTris-HCl (pH 7.5), 250 mMsucrose, 10

mM EGTA, 1 mM PMSF, 1 mM

DTT, 以及 1% Triton X-100) ,继续研磨。

(3) 匀浆液 20000g 离心 30min。

(4) 在上清液中加入等体积的 pH7.8 Tris-饱和酚,充分摇荡,混匀,10000g,4oC下离心

30min,上层为水相,中间白色物质为杂质, 下层为酚相。(注:当提高匀浆缓冲液中 sucrose 的浓度到1M时,酚相会出现在上层。)

(5) 回收酚相,加入 5倍体积含 0.1M

乙酸铵的预冷甲醇,充分混匀, -20oC下过夜,沉淀蛋白。

(6) 沉淀用含 0.1M 乙酸铵的预冷甲醇洗 2次。预冷丙酮洗 2次。

(7) 沉淀在4oC下干燥,备用