两酶活性测定

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超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定
一、原理
将25℃时抑制邻苯三酚自氧化速率50%所需的SOD定义为一个活力单位。在碱性条件
下,邻苯三酚会发生自氧化,可根据SOD抑制邻苯三酚自氧化能力测定SOD活力。
二、试剂
1、A液:PH8.20 0.1mol/l三羟甲基氨基甲烷-盐酸缓冲液(内含1mmol/L EDTA·2Na)。
称取1.2114g三羟甲基氨基甲烷和37.2mgEDTA·2Na溶于62.4ml0.1mol/l盐酸溶液中,用
蒸馏水定溶至100ml。
2、B液:4.5mmol/l邻苯三酚盐酸溶液。称取邻苯三酚56.7mg溶于少量10mmol/l盐酸
溶液,并定容至100ml。
3、盐酸溶液:10mmol/l
4、蒸馏水:二重石英蒸馏水。
三、仪器
1、紫外-可见分光光度计;
2、精密酸度计,0.01PH;
3、离心机;
4、10ml比色管;
5、10ml离心管;
6、玻璃乳钵。
四、测定步骤
1、植物超氧化物歧化酶样品1.00g置于研钵中,加入9.0ml蒸馏水研磨5分钟,移入
10ml离心管。用少量蒸馏水冲洗研钵,洗液并入离心管中,加蒸馏水至刻度,经4000r/min
离心15分钟,取上清液测定。
2、在25℃左右,于10ml比色管中依次加入A液2.35ml,蒸馏水2.00ml,B液0.15ml。
加入B液立即混合并倾入比色皿,分别测定在325nm波长条件下初始时和1Min后吸光度
值,二者之差为邻苯三酚自氧化速率△A325(min-1)为0.060。
3、在25℃左右,于10ml比色管中依次加入20.0ul样液或酶液,A液2.35ml,蒸馏水
2.00ml,B液0.15ml。加入B液立即混合并倾入比色皿,分别测定在325nm波长条件下初
始时和1分钟后吸光度值,二者之差为样液或酶液抑制邻苯三酚自氧化速率△A′
325

(min-1)。加入样液或酶液的量使抑制邻苯三酚自氧化速率为1/2△A′325(min-1),即0.030。

五、计算结果

SOD活力(u/g)=
式中:
V—加入样液或酶液的体积,ml
△A
325
—邻苯三酚自氧化速率

△A′
325
—样液或酶液抑制邻苯三酚自氧化速率

D—样液或酶液的稀释倍数
V1—样液总体积,ml
4.5—反应液总体积,ml
m—样液的质量,ml
过氧化物酶(POD)活性的测定
一、目的
过氧化物酶普遍存在于植物组织中,其活性与植物的代谢强度及抗寒、抗病能有一定关
系,它在代谢中调控IAA水平,并可作为一种活性氧防御物质,消除机体内产生的H2O
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的毒害作用。故在科研上常加以测定。

二、原理
在过氧化氢存在下,过氧化物酶能使愈创木酚氧化,生成茶竭色4-邻甲氧基苯酚,在
470nm波长处测定生成物的吸光度(A)值,即可求出该酶活性。
三、材料、仪器设备及试剂
1. 材料:植物叶片
2. 仪器设备:分光光度计;离心机;离心管;研钵;移液管;移液管架;试管;试管架;
洗耳球。
3. 试剂及配制:
0.1mol·L-1磷酸缓冲液(pH7)。
反应液(100ml 0.1mol·L-1磷酸缓冲液(pH6)中加入0.5ml 愈创木酚、1ml 30﹪
H2O2,充分摇匀)。
四、实验步骤
1. 酶液提取
称取植物叶片1g,剪碎置于已冷冻过的研钵中,加入少量石英砂,分两次加入总量为
10ml pH7磷酸缓冲液,研磨成匀浆后,倒入离心管中,在8000 r/ min离心15min,上清液
即为粗酶提取液,倒入小试管低温下放置备用。
2. 酶活性测定
吸取反应液3ml 于试管中,加入酶提取液0.02ml(视酶活性可增减加入量),迅速摇
匀后倒入光径1cm的比色杯中,以未加酶液之反应液为空白对照,在470nm波长处,以时
间扫描方式,测定3min内吸光度值变化,取线性变化部分,计算每分钟吸光度变化值(△
A470)。
五、酶活性计算
按下式计算酶的相对活性

△A470 × 酶提取液总量(ml)
酶活性(△A470·g-1Fw·min-1)= ———————————————————
样品鲜重(g)× 测定时酶液用量(ml)