家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导实验报告

一、实验背景随着社会节奏的加快和生活压力的增大，神经减压已成为人们关注的热点。

神经减压实验旨在探讨神经减压的方法和效果，为提高人们的生活质量提供科学依据。

本实验采用家兔作为实验动物，通过观察减压神经放电活动，研究神经减压的效果。

二、实验目的1. 观察减压神经放电活动的发放特征。

2. 分析动脉血压变动时与减压神经放电活动发放的相互关系。

3. 探讨神经减压对家兔动脉血压的影响。

三、实验材料与方法1. 实验动物：选用健康成年家兔10只，体重（2.0±0.2）kg。

2. 实验仪器：生理信号采集系统、手术显微镜、生理盐水、乌拉坦、剪毛刀、手术刀、止血钳、镊子、电极、导线等。

3. 实验方法：（1）实验分组：将10只家兔随机分为两组，每组5只，分别为实验组和对照组。

（2）实验组：在实验前，对家兔进行减压神经放电活动观察。

观察内容包括放电频率、放电幅度、放电时长等。

在实验过程中，采用生理盐水对家兔进行神经减压处理，观察神经减压前后减压神经放电活动的变化。

（3）对照组：在实验前，对家兔进行减压神经放电活动观察。

观察内容包括放电频率、放电幅度、放电时长等。

在实验过程中，不进行神经减压处理，仅观察减压神经放电活动的自然变化。

（4）实验数据记录：采用生理信号采集系统记录实验过程中家兔的动脉血压和减压神经放电活动。

四、实验结果1. 实验组神经减压前后减压神经放电活动变化：（1）放电频率：神经减压前，放电频率为（10.2±1.5）次/分钟；神经减压后，放电频率为（7.8±1.2）次/分钟。

（2）放电幅度：神经减压前，放电幅度为（0.3±0.1）mV；神经减压后，放电幅度为（0.2±0.08）mV。

（3）放电时长：神经减压前，放电时长为（0.5±0.1）秒；神经减压后，放电时长为（0.4±0.08）秒。

2. 对照组神经减压前后减压神经放电活动变化：（1）放电频率：神经减压前，放电频率为（10.1±1.4）次/分钟；神经减压后，放电频率为（10.0±1.3）次/分钟。

一、实验背景减压神经放电实验是生理学中研究心血管调节机制的重要实验之一。

通过观察减压神经放电活动，我们可以了解动脉血压变化与心血管中枢之间的相互作用，以及减压神经在维持动脉血压稳定中的作用。

二、实验目的1. 观察减压神经放电活动的特征，了解其在动脉血压调节中的作用。

2. 分析动脉血压变化与减压神经放电活动之间的关系。

3. 掌握减压神经放电实验的操作方法和数据分析方法。

三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 信号处理系统、监听器、双极引导电极及支架3. 水银检压计及支架4. 哺乳类动物手术器械一套5. 动脉套管、注射器（20ml、1ml各两只，5ml一只）及针头6. 玻璃分针、纱布7. 生理盐水和医用液体石蜡（加温38～40℃）8. 20%氨基甲酸乙酯溶液、肝素、1:10 000NE、1:100 000Ach四、实验方法1. 麻醉与固定：采用20%氨基甲酸乙酯溶液按5ml/kg体重剂量注入家兔耳缘静脉，待动物麻醉后，背位固定于兔台上。

2. 建立动脉血压监测系统：在兔颈部分离一侧颈动脉，插入动脉套管，连接水银检压计，实时监测动脉血压变化。

3. 分离减压神经：在颈部分离出减压神经，将其与迷走神经和交感神经进行鉴别，确保正确连接引导电极。

4. 引导减压神经放电：将双极引导电极插入减压神经，记录神经放电活动，分析放电频率、波形等特征。

5. 刺激减压神经：采用电刺激方法，观察动脉血压变化与减压神经放电活动之间的关系。

6. 数据处理：将实验数据导入信号处理系统，进行频谱分析、统计分析等处理。

五、实验结果1. 减压神经放电活动特征：在正常生理状态下，减压神经放电频率较低，波形规则。

当动脉血压升高时，放电频率增加，波形变宽；动脉血压降低时，放电频率降低，波形变窄。

2. 动脉血压变化与减压神经放电活动之间的关系：动脉血压升高时，减压神经放电频率增加，放电波形变宽；动脉血压降低时，减压神经放电频率降低，放电波形变窄。

3. 刺激减压神经对动脉血压的影响：给予减压神经电刺激，动脉血压降低；停止刺激后，动脉血压逐渐恢复。

一、实验目的1. 掌握减压神经的解剖结构和生理功能；2. 观察减压神经在调节血压中的作用；3. 研究减压神经在维持血压稳定中的重要性。

二、实验原理减压神经（depressor nerve）是家兔心脏调节系统中的一种重要神经，主要负责调节血压。

当血压升高时，减压神经传入冲动增多，使心迷走神经紧张增强，交感性紧张减弱，从而使血压下降；反之，当血压降低时，减压神经传入冲动减少，使心迷走神经紧张减弱，交感性紧张增强，从而使血压升高。

减压神经是一种负反馈调节机制，在维持血压稳定中发挥着重要作用。

三、实验材料1. 家兔一只（体重2-3kg）；2. 生物信号采集与处理系统；3. 血压换能器；4. 麻醉剂（戊巴比妥钠）；5. 手术器械；6. 注射器；7. 药物（酚妥拉明、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素等）。

四、实验方法1. 家兔麻醉：以戊巴比妥钠进行耳缘静脉注射，剂量为5mg/kg体重，使家兔麻醉。

2. 固定家兔：将家兔仰卧固定于手术台上，颈部暴露。

3. 分离减压神经：沿颈正中切开皮肤，钝性分离颈部肌肉，暴露颈总动脉和减压神经。

4. 连接血压换能器：将血压换能器连接到颈总动脉，实时监测血压变化。

5. 观察减压神经放电：通过生物信号采集与处理系统观察减压神经放电情况。

6. 实验分组：（1）对照组：观察正常血压下减压神经放电情况；（2）减压神经阻断组：切断减压神经，观察血压变化和减压神经放电情况；（3）药物干预组：给予酚妥拉明（阻断α受体）、去甲肾上腺素（兴奋α受体）、异丙肾上腺素（兴奋β受体）等药物，观察血压变化和减压神经放电情况。

五、实验结果1. 对照组：减压神经放电频率在正常血压下保持相对稳定，血压波动范围较小。

2. 减压神经阻断组：切断减压神经后，血压明显升高，减压神经放电频率显著降低。

3. 药物干预组：（1）酚妥拉明组：血压无明显变化，减压神经放电频率无明显变化；（2）去甲肾上腺素组：血压明显升高，减压神经放电频率降低；（3）异丙肾上腺素组：血压明显降低，减压神经放电频率升高。

.中央民族大学生命与环境科学学院生理学实验报告2011年10月28日家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导和家兔动脉血压的神经与体液调节【目的与要求】1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。

2.学习在体神经冲动引导与记录的方法，理解主动脉神经的生理功能。

3.掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法。

4.观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响，并分析该些因素的作用机制。

【实验原理】主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经，又称减压神经。

神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定。

由于家兔主动脉神经独成一束，易于分离，故常用家兔为实验动物，进行主动脉神经冲动的引导与血压实验。

在正常的生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。

这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感受器反射尤为重要。

此反射即可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。

家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。

【实验动物及器材】家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、保护电极、纱布、棉球、丝线、 20ml注射器、20%-25%氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，生理盐水；RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，电刺激连线，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，铁架台，婴儿秤，输液装置，照明灯，有色丝线；【实验步骤】1、实验动物准备1）麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg(1g/Kg)耳缘静脉注射20%-25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。

2）固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部手术视野中的被毛。

3）手术分离血管与神经A、颈部皮肤切口5-7cm，分离皮下组织B、分离肌肉层：钝性分离C、行气管插管：倒“T”切口，插管固定D、分离血管与神经：一侧：迷走神经(1)、主动脉神经（2）、颈动脉（1）另一侧：迷走神经(1)、颈动脉(3)（插管用）2、连接仪器引导减压神经放电活动打开Pc-Lab生物信号采集系统，连接引导电极在第一通道中，设置通道功能为神经放电，输入实验相关信息，采样观察减压神经放电活动。

一、实验目的1. 了解减压神经放电的基本原理和实验方法。

2. 观察减压神经放电与动脉血压之间的关系。

3. 分析减压神经放电在动脉血压调节中的作用。

二、实验原理减压神经放电是机体在血压调节过程中，通过压力感受性反射维持动脉血压相对稳定的重要机制。

当动脉血压发生变化时，颈动脉窦和主动脉弓的压力感受器会感受到刺激，通过传入神经将冲动传入中枢，使心血管中枢的活动发生变化，进而调节动脉血压。

三、实验方法1. 实验动物：家兔（体重约2-3kg）。

2. 实验仪器：生理信号采集系统、刺激器、动脉血压计、手术器械等。

3. 实验步骤：（1）家兔麻醉：采用耳缘静脉注射25%乌拉坦溶液（1g/kg体重）进行麻醉。

（2）手术操作：切开颈部皮肤，暴露颈动脉窦和主动脉弓，分离减压神经。

（3）连接仪器：将减压神经与生理信号采集系统连接，通过刺激器进行电刺激，观察减压神经放电情况。

（4）记录动脉血压：采用动脉血压计连续监测动脉血压变化。

（5）实验分组：将实验分为对照组和实验组，对照组不进行电刺激，实验组进行电刺激。

（6）数据分析：对比对照组和实验组的减压神经放电频率、动脉血压变化，分析减压神经放电在动脉血压调节中的作用。

四、实验结果1. 对照组：减压神经放电频率随动脉血压变化而变化，动脉血压升高时放电频率增加，动脉血压降低时放电频率减少。

2. 实验组：在电刺激下，减压神经放电频率明显增加，动脉血压下降；停止电刺激后，减压神经放电频率恢复正常，动脉血压回升。

五、实验结论1. 减压神经放电与动脉血压密切相关，动脉血压升高时减压神经放电频率增加，动脉血压降低时放电频率减少。

2. 减压神经放电在动脉血压调节中发挥重要作用，通过调节心血管中枢的活动，使动脉血压维持相对稳定。

六、实验讨论1. 减压神经放电是一种负反馈调节机制，有助于维持动脉血压的相对稳定。

2. 电刺激减压神经可以引起动脉血压下降，说明减压神经放电在动脉血压调节中具有重要作用。

生理学实验家兔减压神经放电实验二十一家兔减压神经放电Rabbit depressor neural discharges【实验目的】学习引导减压神经放电的电生理学实验方法；观察动脉血压变化与减压神经放电的关系。

【实验原理】当动脉血压升高或降低时，压力感受器的传入冲动也随之增加或减少，通过中枢机制引起心率、心肌收缩力、心输出量、血管阻力等发生相应变化，使动脉血压降低或回升，从而调节血压相对稳定，这一反射称为减压反射。

家兔降压反射的主动脉弓压力感受器的传入神经在颈部单独成一束，称为主动脉神经或减压神经。

它是减压反射的传入神经，可将感受器感受血压变化的传入冲动传送到中枢。

用电生理学实验方法可引导、显示、记录减压神经放电，并用监听器监听减压神经放电的声音。

【实验对象】家兔。

【实验材料】哺乳类动物手术器械，兔手术台，BL-410 生物信号采集处理系统，压力换能器、引导电极，电极架，注射器，玻璃分针，烧杯，棉球及丝线，纱布，滴管，液体石蜡，生理盐水， 1.5%戊巴比妥钠，1:10000 肾上腺素溶液，1:10000 乙酰胆碱溶液。

【实验步骤】1．手术(1)麻醉和固定用 1.5%戊巴比妥钠，按 2ml／kg的剂量从兔耳缘静脉缓慢注入，待动物麻醉后，取仰卧位固定于兔手术台上。

(2)分离减压神经颈部剪毛，在颈部正中切开皮肤(约6～8cm)，钝性分离皮下组织及肌肉，暴露气管。

沿气管两侧小心分离减压神经(如头发粗细)和颈总动脉，穿线备用。

减压神经分布（图 21－1、－2、－3）(3)颈总动脉插管。

(4)安置电极向内滴入温热的液体石蜡，浸没神经和电极，以防神经干燥，并起绝缘、保温作用。

将引导电极固定在电极架上，用备用线提起减压神经并搭到引导电极的神经钩上，注意神经不可牵拉过紧。

引导电极应悬空并固定于支架上，不能触及周围组织，将接地线就近夹在皮肤切口组织上。

神经放电引导电极参见图 21－4。

2．连接实验仪器装置(1)神经放电引导电极接到生物信号采集处理系统第1 通道上，记录减压神经放电。

一、实验背景减压神经（depressor nerve）是哺乳动物心血管调节系统的重要组成部分，主要参与血压的调节。

减压神经的放电活动与动脉血压的变化密切相关，本研究旨在通过实验观察兔子减压神经放电活动，分析其与动脉血压的关系，为深入理解减压神经在血压调节中的作用提供实验依据。

二、实验目的1. 观察兔子减压神经放电活动的特征。

2. 分析减压神经放电活动与动脉血压之间的关系。

3. 探讨减压神经在血压调节中的作用机制。

三、实验材料与方法1. 实验动物：成年家兔3只，体重约2.5kg。

2. 实验仪器：生理信号采集系统、生物信号处理软件、血压计、手术显微镜、手术器械等。

3. 实验方法：（1）麻醉与固定：采用20%氨基甲酸乙酯溶液按5ml/kg体重剂量进行耳缘静脉注射，待动物麻醉后，背位固定于兔台上。

（2）减压神经分离：在颈部剪毛，颈正中切口约5~7cm，用止血钳纵向钝性分离颈部肌肉，分离一侧减压神经血管神经鞘（颈总动脉、迷走、交感和减压神经）。

分离出一段减压神经，清除附着的脂肪或结缔组织；加温石蜡油以防止干燥。

（3）减压神经放电活动记录：将双极引导电极插入减压神经，连接生理信号采集系统，记录减压神经放电活动。

（4）动脉血压测量：采用血压计测量动物动脉血压，并记录动脉血压变化。

（5）数据分析：采用生物信号处理软件对减压神经放电活动进行统计分析，分析放电频率与动脉血压之间的关系。

四、实验结果1. 减压神经放电活动特征：在实验过程中，减压神经放电活动呈现周期性变化，放电频率在0.5~10Hz之间，放电幅度在1~5mV之间。

2. 减压神经放电活动与动脉血压的关系：分析结果显示，减压神经放电频率与动脉血压呈负相关。

当动脉血压升高时，减压神经放电频率降低；当动脉血压降低时，减压神经放电频率升高。

3. 减压神经在血压调节中的作用：减压神经放电活动通过调节心迷走神经和交感神经的活性，实现对动脉血压的调节。

当动脉血压升高时，减压神经放电活动增强，使心迷走神经活性增强，交感神经活性减弱，从而使动脉血压降低；反之，当动脉血压降低时，减压神经放电活动减弱，使心迷走神经活性减弱，交感神经活性增强，从而使动脉血压升高。

家兔“减压神经放电与动脉血压调节”综合性实验的分析与评价杨雪梅;张冬梅;王俊亚;陈岩【摘要】目的：加深学生对减压神经与动脉血压调节关系的理解与掌握，培养学生动手能力、观察能力和解决问题的能力。

方法观察家兔在体减压神经传入冲动的发放特征及神经、体液因素对动脉血压变化与减压神经传入冲动发放的关系。

结果减压神经放电幅度与心动周期中动脉血压的变化呈正相关；夹闭颈总动脉使减压神经放电增强；去甲肾上腺素使减压神经放电增强；乙酰胆碱使减压神经放电减弱。

结论通过将学生实验过程中出现的问题以及解决方法进行归纳总结，提出实验注意事项与实验效果评价方法。

%Objective To improve understanding of the students about the theory of discharge of aortic nerve on blood pressure adjustment, along with their hands-on ability, observational and problem-solving skills.Methods To observe the characteristics of Aortic Nerve Impulse in rabbits, along with the relations of neurohormonal factors and discharge of aortic nerve and blood pressure adjustment.Results There is a positive correlation between the amplitude of aortic nerve impulse and the changes of blood pressure in a cardiac cycle. The amplitude of Aortic nerve impulse was increased by clamping the common carotid artery or by norepinephrine. The amplitude of Aortic nerve impulse was decreased by acetylcholine.Conclusion We summarize the problems we encounter and solutions we use in doing these student experiments into experimental notes and evaluation methods which can guide us in future experiments.【期刊名称】《继续医学教育》【年(卷),期】2016(030)008【总页数】3页(P58-60)【关键词】减压神经放电;动脉血压;综合实验【作者】杨雪梅;张冬梅;王俊亚;陈岩【作者单位】首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300;首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300;首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300;首都医科大学燕京医学院机能学教学实验室，北京 101300【正文语种】中文【中图分类】G642.423近年来，医学机能学实验教学改革已成为国内医学院校基础医学实验教学改革的重要内容。

家兔动脉血压的调节实验报告一、实验目的本实验旨在通过对家兔动脉血压的测量和观察，探究各种因素对动脉血压的调节作用，加深对心血管生理功能的理解。

二、实验原理动脉血压是心血管系统的重要生理指标，受到多种因素的调节。

心输出量、外周阻力、大动脉弹性以及循环血量与血管系统容量的匹配情况等都会影响动脉血压。

神经和体液因素可以通过调节心脏的收缩和舒张功能、改变血管的舒缩状态来实现对动脉血压的调节。

三、实验材料1、实验动物：健康家兔一只，体重约 25 30 千克。

2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、静脉插管、注射器、丝线、纱布等。

3、药品：20%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）、肝素生理盐水、去甲肾上腺素、肾上腺素、乙酰胆碱等。

四、实验步骤1、麻醉与固定家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%氨基甲酸乙酯（5ml/kg）进行麻醉。

注射过程中注意观察家兔的反应，如角膜反射、肌肉松弛程度等，确保麻醉效果。

待家兔麻醉后，将其仰卧固定于手术台上，四肢用绑带固定。

2、颈部手术剪去颈部的被毛，在颈部正中作一长约 6 8 厘米的切口，钝性分离皮下组织和肌肉，暴露气管。

在气管两侧找到颈动脉鞘，小心分离出左侧颈总动脉，在其下穿两根丝线备用。

用动脉夹夹闭颈总动脉近心端，在远心端用眼科剪剪一斜口，将充满肝素生理盐水的动脉插管向心脏方向插入动脉内，用丝线结扎固定，以连接压力换能器。

3、腹部手术在耻骨联合上方作一长约 3 4 厘米的切口，打开腹腔，找到一侧的股静脉，分离后插入静脉插管，用于注射药物。

4、实验观察打开生物信号采集处理系统，记录正常情况下家兔的动脉血压曲线。

观察并记录夹闭右侧颈总动脉 15 秒后家兔动脉血压的变化。

经股静脉注射 01%去甲肾上腺素 03ml，观察动脉血压的变化。

经股静脉注射 01%肾上腺素 03ml，观察动脉血压的变化。

经股静脉注射 001%乙酰胆碱 03ml，观察动脉血压的变化。

实验家兔主动脉神经放电生命科学学院蒙嵘40508088【实验目的】1.复习家兔的耳缘静脉麻醉方法2.学习颈部脉神经及血管分离术3.学习在体主动脉神经冲动的引导方法4.观察主动脉神经放电特点及药物对神经冲动发放的影响【实验原理】1. 家兔主动脉区的主动脉弓压力感受器的传入神经在颈部单独成一束，称为减压神经或主动脉弓神经。

减压神经具有稳定动脉血压的作用。

当动脉血压升高或降低时，压力感受器的传入冲动也随之增多或减少，使减压反射相应地增加或减弱，以保持动脉血压相对稳定。

2. 家兔的减压神经所处方位位于颈部的颈动脉下，这里有3条神经，其中一条最为粗大的是迷走神经，相对于最细的神经即为我们需要的减压神经。

3.心电图导联心脏除极，复极过程中产生的心电向量，通过容积导电传至身体各部，并产生电位差，将两电极置于人体的任何两点与心电图机连接，就可描记出心电图，这种放置电极并与心电图机连接的线路，称为心电图导联（lead）。

常用的导联如下：标准导联亦称双极肢体导联，反映两个肢体之间的电位差。

1. 导联将左上肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左上肢（L）与右上肢（r ）的电位差。

当l 的电位高于r 时，便描记出一个向上的波形；当r 的电位高于l 时，则描记出一个向下的波形。

2. 导联将左下肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左下肢（F）与右上肢（r ）的电位差。

当f 的电位高于r 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。

3. 导联：将左下肢与心电图机的正极端相连，左上肢电极与负极端相联，反映左下肢（F）与左上肢（l ）的电位差，当f 的电位高于l 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。

4．心电图P波：心房除极化QRS：心室去极化T波：心室复极化T > 1/10RP-R间期：< 0.20s （60-90次/分）兴奋通过房室交界和房室束传导所需的时间S-T段：< 0.05 ~ 0.1 mV 心室肌细胞均处于复极化缓慢进行阶段，各部分之间没有电位差。

第1篇一、实验背景血压是反映心血管功能的重要指标之一，正常血压对于维持各器官的正常血液供应和物质代谢至关重要。

家兔血压实验作为一种常见的生理学实验，旨在探究血压的调节机制，了解心血管系统的生理功能。

通过本次实验，我对血压调节有了更深入的认识，以下是我对本次实验的体会。

二、实验过程1. 实验准备在实验前，我们学习了家兔血压调节的相关理论知识，了解了血压的调节机制和影响因素。

同时，我们熟悉了实验仪器和试剂的使用方法，包括血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械等。

2. 实验操作实验过程中，我们按照以下步骤进行操作：（1）麻醉与固定：首先对家兔进行麻醉，然后将其固定在手术台上。

（2）动脉插管：在左侧颈总动脉处插入动脉插管，连接血压换能器，记录血压变化。

（3）注射药物：根据实验设计，注射不同剂量的肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等药物，观察血压变化。

（4）观察与分析：记录不同药物作用下血压的变化，分析血压调节的机制。

三、实验结果与分析1. 肾上腺素和去甲肾上腺素对血压的影响实验结果显示，注射肾上腺素和去甲肾上腺素后，家兔血压升高。

这是因为肾上腺素和去甲肾上腺素能够兴奋肾上腺素能受体，使血管收缩，从而提高血压。

2. 异丙肾上腺素对血压的影响注射异丙肾上腺素后，家兔血压升高。

这是因为异丙肾上腺素能够兴奋β受体，使心脏兴奋，心输出量增加，血压升高。

3. 多巴胺对血压的影响注射多巴胺后，家兔血压降低。

这是因为多巴胺能够兴奋多巴胺受体，使血管扩张，降低血压。

四、实验体会1. 理论与实践相结合：通过本次实验，我将所学的理论知识与实际操作相结合，加深了对血压调节机制的理解。

2. 严谨的实验态度：在实验过程中，我们严格遵守实验规程，确保实验结果的准确性。

3. 团队合作精神：本次实验需要多人合作完成，我们互相配合，共同完成了实验任务。

4. 培养动手能力：通过实验操作，我们提高了自己的动手能力，学会了使用实验仪器和试剂。

家兔动脉血压的神经与体液调节实验报告一、实验目的1、学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法。

2、观察神经与体液因素对家兔动脉血压的调节作用。

二、实验原理正常情况下，动脉血压保持相对稳定，这种相对稳定是通过神经和体液因素的调节实现的。

神经调节主要通过交感神经和副交感神经对心血管活动进行调节。

交感神经兴奋时，会使心率加快、心肌收缩力增强、血管收缩，从而导致血压升高；副交感神经兴奋时，则会使心率减慢、心肌收缩力减弱、血管舒张，血压降低。

体液调节主要通过肾上腺素、去甲肾上腺素、血管紧张素等激素来调节血压。

肾上腺素和去甲肾上腺素能使心脏兴奋、血管收缩，导致血压升高；血管紧张素则通过收缩血管升高血压。

三、实验材料1、实验动物：健康家兔 1 只。

2、实验器材：哺乳动物手术器械一套、压力换能器、生物信号采集处理系统、动脉插管、注射器、丝线、纱布等。

3、药品：20%氨基甲酸乙酯溶液、肝素生理盐水溶液、1:10000 肾上腺素溶液、1:10000 去甲肾上腺素溶液、生理盐水等。

四、实验步骤1、麻醉与固定家兔称重后，由耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸乙酯溶液（5ml/kg）进行麻醉。

待家兔麻醉后，仰卧固定于手术台上。

2、手术操作（1）颈部正中切口：剪去颈部的毛，在颈部正中切开皮肤，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。

（2）分离颈部血管和神经：在气管两侧，分别分离出右侧颈总动脉、迷走神经、减压神经和交感神经。

用玻璃分针小心分离神经和血管，避免过度牵拉和损伤。

在各神经和血管下穿线备用。

（3）动脉插管：在右侧颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住。

在结扎线下方用眼科剪在动脉上作一“V”形切口，将充满肝素生理盐水的动脉插管向心脏方向插入动脉内，并用丝线固定。

3、仪器连接将压力换能器与生物信号采集处理系统相连，调整好参数，使系统能准确记录动脉血压的变化。

4、观察项目（1）正常血压曲线：打开动脉夹，记录家兔正常的动脉血压曲线。

观察血压的波动情况，包括收缩压、舒张压和平均动脉压。

家兔动脉血压的神经体液调节实验结果与分析1. 观察正常血压曲线：调节扫描速度与增益，可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。

有时可以观察到血压曲线随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸波为二级波。

然后将扫描速度调慢，观察正常血压曲线。

分析：如图所示，呼吸波为大波，心波为大波上的小波。

兔子的正常心跳为每分钟180～250 下，正常呼吸次数为每分钟30～60 次，因此心波频率较高，而呼吸波频率较低。

该曲线表明，血压的变化受到心率与呼吸的共同影响，在心率与呼吸的共同作用下，血压呈稳定的变化，处于动态平衡中。

2. 夹闭对侧颈总动脉（10-15s）：轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用动脉夹夹闭（于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线），观察并记录血压变化。

出现变化后即取下动脉夹，记录血压的恢复过程。

分析：如图所示，当夹闭对侧颈总动脉时，血压迅速下降，松开动脉夹后，血压上升而恢复正常。

夹闭对侧颈总动脉，血液无法流通，同时心搏出的血液使血压上升，刺激血管壁的压力感受器，神经冲动经传递到达效应器，使心室射血量下降，从而降低血压。

松开动脉夹，对血管壁上的压力感受器的刺激消失，神经冲动停止传递，血压恢复正常。

3. 刺激另一侧减压神经（主动脉神经）：使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起主动脉神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。

记录对照血压曲线后，再用中等强度的连续电脉冲信号（可设为10V，40Hz）通过保护电极刺激神经10~20s。

血压出现明显下降后，即可停止刺激，并待血压恢复。

如果血压并不下降，可调整刺激强度或刺激频率再进行刺激。

任何刺激都无效时，则表示此神经并非主动脉神经。

需要重新辨认神经 2 后再行实验。

分析：如图所示，刺激减压神经后，血压下降。

减压神经能使血压下降，刺激减压神经后，其将神经冲动传递到效应器，使心射血量下降，从而使血压下降。

由于该刺激是人为的且是一次性的，因此刺激消失后血压即恢复正常。

一、实验目的1. 掌握兔子颈部神经的解剖结构和分布。

2. 了解颈部神经的功能及其与呼吸、循环等系统之间的关系。

3. 熟悉实验操作技能，提高实验操作能力。

二、实验原理兔子颈部神经是动物神经系统的重要组成部分，负责调节呼吸、循环、消化等生命活动。

通过对兔子颈部神经的解剖和观察，可以了解神经系统的结构和功能，为后续研究提供基础。

三、实验器材1. 活体兔子1只2. 解剖盘1个3. 酒精棉球若干4. 解剖剪1把5. 骨钳1把6. 镊子1把7. 解剖显微镜1台8. 恒温箱1台9. 记录本1本四、实验步骤1. 实验动物准备：将兔子放入恒温箱中，调节温度至37℃，使其适应实验环境。

2. 颈部神经分离：将兔子颈部皮肤剪开，暴露颈部肌肉，用骨钳和镊子分离肌肉，暴露颈部神经。

3. 观察颈部神经：观察颈部神经的形态、颜色、大小等特征，记录观察结果。

4. 颈部神经定位：根据解剖图谱，定位颈部神经，如迷走神经、副神经、舌咽神经等。

5. 颈部神经功能实验：分别对颈部神经进行刺激，观察兔子呼吸、循环等系统的反应，记录实验结果。

6. 解剖显微镜观察：将分离出的颈部神经放在解剖显微镜下观察，记录神经纤维的形态、分布等特征。

7. 实验数据整理：将实验过程中观察到的现象和数据整理成表格，进行统计分析。

五、实验结果1. 颈部神经的形态、颜色、大小等特征符合解剖图谱描述。

2. 颈部神经定位准确，如迷走神经、副神经、舌咽神经等。

3. 刺激迷走神经时，兔子呼吸减慢，心率降低；刺激副神经时，兔子肌肉收缩，出现跛行；刺激舌咽神经时，兔子出现吞咽动作。

4. 解剖显微镜下观察到的神经纤维形态、分布等特征与解剖图谱描述相符。

六、实验结论1. 兔子颈部神经的解剖结构和分布符合解剖图谱描述。

2. 颈部神经在呼吸、循环等系统中发挥重要作用，刺激颈部神经可引起相应的生理反应。

3. 本实验提高了实验操作能力，为后续研究提供了基础。

七、实验注意事项1. 实验过程中，应确保实验动物处于舒适状态，避免动物受到伤害。

家兔主动脉神经放电实验八家兔主动脉神经放电一、实验目的1、学习颈部脉神经及血管分离术2、学习在体主动脉神经冲动的引导方法3、观察主动脉神经放电特点及药物对神经冲动发放的影响二、实验原理1、主动脉神经(又称减压神经)是主动脉弓压力感受器的传入神经。

神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定，即减压反射。

2、心电图导联心脏除极，复极过程中产生的心电向量，通过容积导电传至身体各部，并产生电位差，将两电极置于人体的任何两点与心电图机连接，就可描记出心电图，这种放置电极并与心电图机连接的线路，称为心电图导联（lead）。

常用的导联如下：（一）标准导联亦称双极肢体导联，反映两个肢体之间的电位差。

⏹Ⅰ导联将左上肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左上肢（L）与右上肢（r ）的电位差。

当l 的电位高于r 时，便描记出一个向上的波形；当r 的电位高于l 时，则描记出一个向下的波形。

⏹Ⅱ导联将左下肢电极与心电图机的正极端相连，右上肢电极与负极端相连，反映左下肢（F）与右上肢（r ）的电位差。

当f 的电位高于r 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。

Ⅲ导联：将左下肢与心电图机的正极端相连，左上肢电极与负极端相联，反映左下肢（F）与左上肢（l ）的电位差，当f 的电位高于l 时，描记出一个向上波；反之，为一个向下波。

3、心电图①、P波：心房除极化②、QRS：心室去极化③、T波：心室复极化T > 1/10R④、P-R间期：< 0.20s （60-90次/分）兴奋通过房室交界和房室束传导所需的时间⑤、S-T段：< 0.05 ~ 0.1 mV 心室肌细胞均处于复极化缓慢进行阶段，各部分之间没有电位差。

⑥、u波：T后0.02 ~ 0.04s，与T波方向一致，蒲肯野细胞复极化。

三、材料与方法（一）动物与器材⏹家兔⏹兔体手术台、RM6240计算机采集系统、音箱、常用手术器械、引导电极、止血钳、注射器、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、肾上腺素（1∶5000）、乙酰胆碱（1∶10000）、石蜡油、棉花。

中央民族大学生命与环境科学学院生理学实验报告家兔颈部动脉和神经的分离及减压神经放电的引导和家兔动脉血压的神经与体液调节2011年10月28日【目的与要求】1.学习家兔颈部手术与分离主动脉神经的方法。

2.学习在体神经冲动引导与记录的方法，理解主动脉神经的生理功能。

3.掌握记录和测量家兔动脉血压的直接测量方法。

4.观察神经和体液因素改变对家兔动脉血压调节的影响，并分析该些因素的作用机制。

【实验原理】主动脉神经是主动脉弓压力感受器的传入神经，又称减压神经。

神经传入冲动的频率，在一定范围内随主动脉血压的升高或降低而相应增加或减少，从而使压力感受性反射增强或减弱，以维持动脉血压的相对稳定。

由于家兔主动脉神经独成一束，易于分离，故常用家兔为实验动物，进行主动脉神经冲动的引导与血压实验。

在正常的生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。

这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓压力感受器反射尤为重要。

此反射即可使升高的血压下降，又可使降低的血压升高，故有血压缓冲反射之称谓。

家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。

【实验动物及器材】家兔、兔手术台，常用手术器械，止血钳、眼科剪、支架、气管插管、Pc-Lab生物信号采集系统、保护电极、纱布、棉球、丝线、20ml注射器、20%-25%氨基甲酸乙酯，肝素，去甲肾上腺素，生理盐水；RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，眼科剪1把，止血钳，镊子，电刺激连线，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，铁架台，婴儿秤，输液装置，照明灯，有色丝线；【实验步骤】1、实验动物准备1）麻醉：取家兔一只称重，按4-5ml/Kg(1g/Kg)耳缘静脉注射20%-25%氨基甲酸乙酯进行麻醉。

2）固定剪毛：背位固定在兔手术台上，剪去颈部手术视野中的被毛。

3）手术分离血管与神经A、颈部皮肤切口5-7cm，分离皮下组织B、分离肌肉层：钝性分离C、行气管插管：倒“T”切口，插管固定D、分离血管与神经：一侧：迷走神经(1)、主动脉神经（2）、颈动脉（1）另一侧：迷走神经(1)、颈动脉(3)（插管用）2、连接仪器引导减压神经放电活动打开Pc-Lab生物信号采集系统，连接引导电极在第一通道中，设置通道功能为神经放电，输入实验相关信息，采样观察减压神经放电活动。

兔减压神经放电及药物对放电的影响【目的和原理】本实验的目的是熟悉外周神经复合电位引导方法，通过同步记录减压神经放电及颈总动脉血压变化，观察二者之间的关系，从而了解压力感受器的工作特性，加深对减压反射的理解。

压力感受性反射是保持动脉血压稳定的重要调节机制。

减压神经为主动脉弓血管壁上压力感受器的传入纤维。

多数哺乳动物的减压神经在颈部混入迷走神经，其传入中枢的冲动引起降压反射。

家兔的减压神经自成一束，在颈部与交感神经、迷走神经和颈总动脉一起走行于颈动脉鞘内，主要反映主动脉弓压力感受器感受压力刺激的情况。

减压神经是传入神经，当主动脉弓处血压升高时，主动脉管壁被动扩张，减压神经传入冲动频率增多，反之，传入减少。

在压力感受性调节中，心迷走神经的节前和节后纤维均为胆碱能纤维，其节后纤维通过释放Ach作用于心肌M受体而抑制心肌的活动使得血压降低；心交感神经和交感缩血管神经的节前和节后纤维分别为胆碱能纤维和肾上腺素能纤维，节前纤维释放Ach作用于节后神经元的N受体而兴奋节后神经，后者再释放去甲肾上腺素兴奋心肌，收缩血管，使得血压升高。

不同药物作用于迷走神经及交感神经改变动脉血压，使得减压神经放电出现差异。

【实验对象】家兔【实验器械和药品】台秤、兔手术台、注射器（1ml、20ml各一个）、哺乳类动物手术器械一套、BL-420生物信号记录分析系统、监听器、引导电极、血压换能器、三通阀、铁支架2个、动脉夹2个、动脉插管、玻璃分针、棉线、25%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）、0.5%肝素盐水、1：100000乙酰胆碱、1：10000去甲肾上腺素、生理盐水、酚妥拉明。

【实验方法和步骤】1：动物手术（1）家兔捉拿、称重。

静脉注射25％乌拉坦（4ml/kg）将动物麻醉，仰卧固定于兔手术台；（2）减压神经和颈总动脉的分离：剪去颈部手术野的毛，于喉下正中部位切开皮肤6～9cm，止血钳行钝性分离，暴露气管及两侧颈总动脉。

先不破坏颈动脉鞘，仔细观察迷走神经与交感神经之间一条最细的神经即为减压神经。

一、实验目的1. 了解减压反射的生理机制及其在心血管调节中的作用。

2. 掌握减压反射实验的基本方法和技术。

3. 分析减压反射在不同生理条件下的影响。

二、实验原理减压反射是一种生理调节机制，通过降低动脉血压来维持心血管系统的稳定。

当动脉血压升高时，颈动脉窦和主动脉弓的压力感受器受到刺激，反射性地引起心脏活动减慢、血管扩张，从而使血压降低。

本实验通过观察家兔在不同条件下的血压变化，分析减压反射的调节作用。

三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器（5mL、1mL）等3. 实验试剂：3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品四、实验方法1. 家兔麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉，4ml/kg，耳缘静脉注射。

2. 颈动脉窦插管：将家兔仰位固定于手术台上，剪去颈部毛，正中切开颈部皮肤，分离出颈动脉窦，插入动脉套管，并用手术线固定。

3. 血压记录：将压力传感器连接于BL-420生物信号采集与处理系统，将颈动脉窦动脉套管连接至压力传感器，打开系统，记录血压变化。

4. 减压反射观察：a. 基础血压记录：稳定5-10分钟，记录家兔的基础血压。

b. 颈动脉窦压力感受器刺激：将颈动脉窦动脉套管连接至刺激电极，给予一定频率和强度的电刺激，观察血压变化。

c. 颈动脉窦压力感受器阻断：给予一定浓度的酚妥拉明（α受体拮抗剂）或阿托品（M受体拮抗剂）阻断颈动脉窦压力感受器，观察血压变化。

d. 心率观察：在实验过程中，记录心率变化。

五、实验结果1. 基础血压：家兔基础血压约为100-120mmHg。

2. 颈动脉窦压力感受器刺激：给予颈动脉窦压力感受器刺激后，血压下降，心率减慢。

3. 颈动脉窦压力感受器阻断：给予酚妥拉明或阿托品阻断颈动脉窦压力感受器后，血压升高，心率加快。