高通量测序基础知识
- 格式:pdf
- 大小:462.87 KB
- 文档页数:13
高通量测序原理高通量测序(high-throughput sequencing)是一种快速且高效的基因测序技术,它通过对DNA或RNA样本进行大规模并行测序,能够同时获得大量的基因序列信息。
下面介绍高通量测序的原理。
高通量测序的核心技术之一是DNA片段的扩增。
首先,需要将DNA或RNA样本提取出来,并根据需要进行富集和净化处理。
然后,将样本DNA或RNA分解成较短的片段,通常为几百到几千碱基对。
接下来,为每个片段的两端连接适配体(adapter),适配体中含有特定序列,用于测序和扩增引物的结合。
在测序之前,需要将这些片段通过PCR(聚合酶链反应)进行扩增,形成DNA文库。
文库中的每个片段都带有两端适配体并连接了PCR引物。
最后,将文库进行测序。
高通量测序技术主要有两种方法:SBS(测序by合成)和SMRT(单分子实时测序)。
下面分别介绍它们的原理:1. SBS(Sequencing by Synthesis):这是目前应用最广泛的高通量测序技术。
其原理是通过单个DNA聚合酶复制 DNA的过程,依次加入四种具有不同荧光发射特性的可逆终止核苷酸(dNTPs)。
每次加入一个dNTP后,检测其是否被聚合到待测序片段上,并记录其信号。
然后,将其去除,以便加入下一个dNTP。
重复这个过程,直到测序结束。
通过检测每个位置的荧光信号,就可以获得该位置的碱基信息。
2. SMRT(Single-molecule Real Time sequencing):这种技术利用了DNA聚合酶的优异性质,实现了单分子级别的DNA测序。
SMRT测序使用了一种称为“ZMW”的奇特结构,即零模式波导孔(Zero-mode waveguide)。
在这种结构中,只有非常小的体积(约为20nm)被激光所照亮,并记录荧光信号。
通过DNA聚合酶复制过程,加入了与待测DNA碱基互补的荧光标记的dNTPs,并记录下其荧光信号。
通过不断加入dNTPs,观察荧光信号的变化,就可以获得DNA测序信息。
高通量测序原理及分析高通量测序是一种快速测序技术,它可以在短时间内获取大量DNA或RNA序列信息。
它的原理是将DNA或RNA样本分解成小片段,然后通过特定的方法将这些片段固定在固定载体上,再通过PCR扩增得到数百万个复制的片段。
完成测序后,这些片段将被连接到一个固定的载体上,形成一个DNA文库。
然后使用高通量测序仪器进行测序,通常采用的是Illumina测序技术。
这种技术是一种基于合成荧光标记的测序方法,其原理是通过逐个加入不同的荧光标记的碱基,测定每个碱基的顺序。
在测序过程中,高通量测序仪器会通过激光照射荧光标记,检测每个碱基特有的荧光信号,并记录下这些信号,并根据信号的顺序得出DNA或RNA序列信息。
在测序完成后,会得到大量的DNA或RNA片段序列信息。
接下来需要对这些数据进行分析以获取有意义的结果。
分析的步骤主要包括:数据预处理、序列比对、变异检测和功能注释等。
数据预处理是将原始测序数据进行质量控制、去除污染序列、修正测序错误等步骤,以提高数据的可靠性和准确性。
序列比对是将测序得到的片段序列与已知的参考基因组或转录组进行比对,以确定这些片段来自哪些基因或转录本。
这可以帮助研究人员了解样本中基因的表达情况、基因组的结构变异等信息。
变异检测是通过比对分析,发现样本中存在的单核苷酸多态性(SNP)、插入/缺失变异(InDel)等基因组结构变异。
这可以帮助研究人员了解不同个体之间的遗传差异,或者研究疾病与基因突变的关联性。
功能注释是对已知的基因和转录本进行生物学功能的注释,以了解它们在细胞活动和生物过程中的作用。
总之,高通量测序技术以其快速、准确、经济的特点,已成为基因组学、转录组学和表观遗传学等领域的重要工具,为研究人员提供了更多理解生物信息的机会。
高通量测序流程和原理高通量测序是一种快速、准确地测定DNA或RNA序列的技术,它在生物学研究、医学诊断和药物研发等领域发挥着重要作用。
本文将介绍高通量测序的流程和原理,帮助读者更好地理解这一技术。
高通量测序的流程主要包括样品准备、文库构建、测序仪测序和数据分析四个步骤。
首先,样品准备阶段需要从生物组织中提取DNA或RNA,并进行纯化和定量。
接下来是文库构建,这一步骤包括将DNA或RNA片段连接到测序适配器上,并进行PCR扩增,然后通过尺寸筛选和纯化得到文库。
然后,文库被加载到测序仪中进行测序,测序仪会通过不同的化学方法和光学检测技术获取DNA或RNA片段的序列信息。
最后,通过数据分析软件对测序得到的数据进行处理,包括序列拼接、比对、变异检测等步骤,最终得到样品的DNA或RNA序列信息。
高通量测序的原理是基于DNA或RNA的合成和测序技术。
在测序过程中,DNA或RNA片段会被适配器连接,并通过PCR扩增得到文库。
然后,文库中的DNA或RNA片段会被固定在测序仪的表面上,并进行碱基的逐个添加和检测。
测序仪会通过光学检测技术记录每个碱基的信号强度,并将其转化为序列信息。
最后,数据分析软件会对这些信号进行处理,得到样品的DNA或RNA序列信息。
高通量测序技术的发展使得科研人员能够更快速、更准确地获取大规模DNA或RNA序列信息,从而推动了基因组学、转录组学和表观基因组学等领域的发展。
同时,高通量测序技术也在临床诊断和个性化医疗中发挥着越来越重要的作用。
总的来说,高通量测序的流程主要包括样品准备、文库构建、测序仪测序和数据分析四个步骤,其原理是基于DNA或RNA的合成和测序技术。
这一技术的发展对于推动生物学研究、医学诊断和药物研发具有重要意义,相信随着技术的不断进步,高通量测序技术将会在更多领域展现出其巨大的潜力。
高通量测序技术简介近年来,随着生物技术的发展,高通量测序技术在生物学研究、临床医学、农业科技等众多领域中发挥着越来越重要的作用。
本文将为读者简单介绍高通量测序技术的基本原理、应用及未来发展方向。
一、高通量测序技术基本原理高通量测序技术(High-Throughput Sequencing,简称HTS)是指通过同时测序数以亿计上万条DNA片段的方法,快速准确地得出基因信息。
其核心技术包括样品制备、DNA片段库构建和测序。
样品制备主要包括DNA抽提、纯化和切割等步骤。
DNA片段库构建通常分为两种方式:文库构建(Library Preparation)和逆相PCR法(Inverse PCR)构建。
其中文库构建方法包括Genomic DNA文库构建、cDNA文库构建和ChIP-seq文库构建等。
测序分为Sanger测序和第二代/第三代测序两种。
目前,Illumina、Ion Torrent、PacBio和Nanopore等公司的测序技术已开始广泛应用。
二、高通量测序技术的应用高通量测序技术在生物领域中的应用越来越广泛。
具体应用包括以下几个方面:1、基因组学:基因组学是高通量测序技术最早应用的领域之一。
通过对整个基因组进行测序,可以深入研究基因的结构、组织与表达等方面的信息,促进基因组学的发展。
2、转录组学:高通量测序技术在转录组学中的应用主要为RNA测序,可以发现RNA剪切变异、可变外显子和SNPs (Single Nucleotide Polymorphisms)等。
3、表观基因组学:表观基因组学是研究基因组DNA序列和其组杂化状况的学科。
高通量测序技术可以对DNA甲基化、组蛋白修饰、染色质状态等进行充分研究。
4、单细胞测序技术:在原有的基础上,在单细胞尺度上进行分析,可以识别不同类型的单细胞和细胞异质性在不同生理状态下的基因表达差异。
5、临床医学:高通量测序技术在临床上可以进行新生儿常染色体脆性综合征、癌症个性化治疗、基因疾病等多方面的风险评估。
转录组高通量测序中,reads、contigs、scaffold、unigene、singleton高通量测序时,在芯片上的每个反应,会读出一条序列,是比较短的,叫read,它们是原始数据;有很多reads通过片段重叠,能够组装成一个更大的片段,称为contig(克隆群);多个contigs通过片段重叠,组成一个更长的scaffold;一个contig被组成出来之后,鉴定发现它是编码蛋白质的基因,就叫singleton;多个contigs组装成scaffold之后,鉴定发现它编码蛋白质的基因,叫unigene。
基因组测序方法:链中止法测序:通过合成与单链DNA互补的多核甘酸链,由于合成的互补链可在不同位置随机终止反应,产生只差一个核苷酸的DNA分子,从而来读取待测DNA分子的顺序。
化学降解法测序:在待定的核苷酸碱基中引入化学集团,再用化合物处理,使DNA分子在被修饰的位置降解。
自动化测序:与链终止测序原理相同,这姿势用不同的荧光色彩标记ddNTP,如ddA TP 标记红色荧光,ddCTP标记蓝色荧光,ddGTP标记黄色荧光,ddTTP标记绿色荧光。
由于每种ddNTP带有各自待定的荧光颜色,二简化为由1个泳道同时判读4种碱基。
非常规DNA测序毛细管电泳、光点测序、DNA芯片测序、随机的组装(鸟枪法)鸟枪法:就有可能出现错装。
鸟枪法策略指导测序策略不需要背景信息构建克隆群时间短需要几年时间需要大型计算机得到的是草图(Draft)得到的是精细图谱EST (Expressed sequence tag)测序EST是一种重要的基因组图分子标记,以EST为探针很容易从cDNA文库中筛选全基因,又可从BAC克隆中找到其基因组的基因序列。
优点:mRNA可直接反转录成cDNA,而且cDNA文库也可比较容易构建。
对cDNA文库大量测序,即可获得大量的EST序列EST为基因的编码区,不包括内含子和基因间区域,一次测序的结果足以鉴定所代表的基因。
高通量测序技术的基本原理及其应用高通量测序技术是一种用于分析DNA或RNA序列的先进工具。
自2005年首次商业化以来,高通量测序技术已经成为生物医学研究领域中最受欢迎的技术之一。
本文将介绍高通量测序技术的基本原理以及其在各种生物研究中的应用。
一、高通量测序的基本原理高通量测序技术通过对DNA或RNA序列进行多轮扩增和差异式回收来实现序列的读取。
这些扩增和回收过程通过从核酸库中选取并扩增特定区域的DNA或RNA序列并将这些序列与标志物添加到瓶底上的方法来实现。
在扩增过程中,DNA序列被切成小碎片,并与适配器连接。
这些适配器具有序列信息,以帮助下一阶段将它们区分开来。
然后,这些DNA片段被反复复制和放大,以产生大量的DNA片段。
这些片段被装入流式细胞仪等设备中,以便单个分子可以被读取。
在差异式回收的过程中,将标记DNA(即在扩增过程中附加的标签)与扩增的DNA片段分离。
这是通过在特定区域上捕获(将标记DNA与其匹配的DNA区域连接)完成的。
这些DNA片段然后被读取并映射到基因组或转录组上,以详细分析其序列。
二、高通量测序技术的应用高通量测序技术可以用于许多应用领域,如基因组学,转录组学,表观遗传学和元基因组学。
以下是一些例子:1.基因组学高通量测序技术被广泛用于研究基因组结构和功能。
它可以识别基因组中的单核苷酸多态性(SNP),从而对个体或种群中的基因组变异进行研究。
此外,它也可以用于构建DNA序列库,用于组装参考基因组和研究基因组进化。
2.转录组学高通量测序技术可以用于分析特定细胞中的基因表达模式和代谢途径。
这些信息可以帮助生物学家理解细胞的生长和分化,并对某些疾病的发生有所帮助。
此外,通过将RNA序列映射到基因组上,可以有效地注释基因组,并识别各种转录本和剪切变异。
3.表观遗传学高通量测序技术可以用于研究表观遗传学变异,如DNA甲基化和组蛋白修饰。
通过研究这些变异,生物学家可以了解这些变异是如何影响细胞表达模式的。
高通量测序原理高通量测序是一种通过并行化技术大幅提高DNA测序速度和效率的方法。
它是基因组学研究中的重要技术手段,广泛应用于基因组测序、转录组测序、表观基因组学等领域。
高通量测序技术的发展,使得科学家们能够更快速、更精准地解读生物体的遗传信息,为生命科学研究和临床诊断提供了强大的支持。
高通量测序的原理主要包括DNA文库构建、测序反应、数据分析三个步骤。
首先是DNA文库构建,将待测序的DNA样品通过裂解、末端修复、连接连接器等步骤构建成文库。
然后进行测序反应,文库中的DNA片段被放大并通过不同的测序平台进行测序,得到大量的测序数据。
最后是数据分析,利用生物信息学方法对测序数据进行比对、拼接、注释等分析,最终得到样品的基因组信息。
高通量测序技术的原理是基于大规模并行化测序的思想。
传统的Sanger测序方法需要逐个测序DNA片段,速度慢且成本高昂。
而高通量测序技术通过将DNA文库固定在固相载体上,利用光学、电化学等方法实现大规模平行测序,大大提高了测序速度和效率。
此外,高通量测序技术还具有较高的准确性和覆盖度,能够有效地避免测序偏差和漏测现象。
高通量测序技术的原理虽然看似复杂,但其核心思想是简单而明确的,即通过并行化技术实现大规模高效测序。
这一原理的提出和应用,彻底改变了基因组学研究的面貌,为生命科学领域的发展注入了强大的动力。
随着技术的不断进步和完善,相信高通量测序技术将在未来发挥更加重要的作用,为人类健康和生物多样性的研究提供更多可能性。
总之,高通量测序技术的原理是基于大规模并行化测序的思想,通过DNA文库构建、测序反应、数据分析三个步骤实现。
这一技术的发展,将为基因组学研究和临床诊断带来革命性的变革,为人类健康和生物多样性的研究提供更多可能性。
希望在不久的将来,高通量测序技术能够取得更大的突破,为生命科学领域带来更多的惊喜和发现。
高通量测序基础知识简介陆桂什么是高通量测序?高通量测序技术(High-throughput sequencing,HTS)是对传统Sanger测序(称为一代测序技术)革命性的改变,一次对几十万到几百万条核酸分子进行序列测定, 因此在有些文献中称其为下一代测序技术(next generation sequencing,NGS )足见其划时代的改变, 同时高通量测序使得对一个物种的转录组和基因组进行细致全貌的分析成为可能, 所以又被称为深度测序(Deep sequencing)。
什么是Sanger法测序(一代测序)Sanger法测序利用一种DNA聚合酶来延伸结合在待定序列模板上的引物。
直到掺入一种链终止核苷酸为止。
每一次序列测定由一套四个单独的反应构成,每个反应含有所有四种脱氧核苷酸三磷酸(dNTP),并混入限量的一种不同的双脱氧核苷三磷酸(ddNTP)。
由于ddNTP缺乏延伸所需要的3-OH基团,使延长的寡聚核苷酸选择性地在G、A、T或C处终止。
终止点由反应中相应的双脱氧而定。
每一种dNTPs和ddNTPs的相对浓度可以调整,使反应得到一组长几百至几千碱基的链终止产物。
它们具有共同的起始点,但终止在不同的的核苷酸上,可通过高分辨率变性凝胶电泳分离大小不同的片段,凝胶处理后可用X-光胶片放射自显影或非同位素标记进行检测。
什么是基因组重测序(Genome Re-sequencing)全基因组重测序是对基因组序列已知的个体进行基因组测序,并在个体或群体水平上进行差异性分析的方法。
随着基因组测序成本的不断降低,人类疾病的致病突变研究由外显子区域扩大到全基因组范围。
通过构建不同长度的插入片段文库和短序列、双末端测序相结合的策略进行高通量测序,实现在全基因组水平上检测疾病关联的常见、低频、甚至是罕见的突变位点,以及结构变异等,具有重大的科研和产业价值。
什么是de novo测序de novo测序也称为从头测序:其不需要任何现有的序列资料就可以对某个物种进行测序,利用生物信息学分析手段对序列进行拼接,组装,从而获得该物种的基因组图谱。
获得一个物种的全基因组序列是加快对此物种了解的重要捷径。
随着新一代测序技术的飞速发展,基因组测序所需的成本和时间较传统技术都大大降低,大规模基因组测序渐入佳境,基因组学研究也迎来新的发展契机和革命性突破。
利用新一代高通量、高效率测序技术以及强大的生物信息分析能力,可以高效、低成本地测定并分析所有生物的基因组序列。
什么是外显子测序(whole exon sequencing)外显子组测序是指利用序列捕获技术将全基因组外显子区域DNA捕捉并富集后进行高通量测序的基因组分析方法。
外显子测序相对于基因组重测序成本较低,对研究已知基因的SNP、Indel等具有较大的优势,但无法研究基因组结构变异如染色体断裂重组等。
什么是mRNA测序(RNA-seq)转录组学(transcriptomics)是在基因组学后新兴的一门学科,即研究特定细胞在某一功能状态下所能转录出来的所有RNA(包括mRNA和非编码RNA)的类型与拷贝数。
Illumina提供的mRNA测序技术可在整个mRNA领域进行各种相关研究和新的发现。
mRNA测序不对引物或探针进行设计,可自由提供关于转录的客观和权威信息。
研究人员仅需要一次试验即可快速生成完整的poly-A尾的RNA完整序列信息,并分析基因表达、cSNP、全新的转录、全新异构体、剪接位点、等位基因特异性表达和罕见转录等最全面的转录组信息。
简单的样品制备和数据分析软件支持在所有物种中的mRNA测序研究。
什么是small RNA测序Small RNA(micro RNAs、siRNAs和 pi RNAs)是生命活动重要的调控因子,在基因表达调控、生物个体发育、代谢及疾病的发生等生理过程中起着重要的作用。
Illumina能够对细胞或者组织中的全部Small RNA进行深度测序及定量分析等研究。
实验时首先将18-30 nt范围的Small RNA从总RNA中分离出来,两端分别加上特定接头后体外反转录做成cDNA再做进一步处理后,利用测序仪对DNA片段进行单向末端直接测序。
通过Illumina对Small RNA大规模测序分析,可以从中获得物种全基因组水平的miRNA图谱,实现包括新miRNA分子的挖掘,其作用靶基因的预测和鉴定、样品间差异表达分析、miRNAs聚类和表达谱分析等科学应用。
什么是miRNA测序成熟的microRNA(miRNA)是17~24nt的单链非编码RNA分子,通过与mRNA相互作用影响目标mRNA的稳定性及翻译,最终诱导基因沉默,调控着基因表达、细胞生长、发育等生物学过程。
基于第二代测序技术的microRNA测序,可以一次性获得数百万条microRNA 序列,能够快速鉴定出不同组织、不同发育阶段、不同疾病状态下已知和未知的microRNA 及其表达差异,为研究microRNA对细胞进程的作用及其生物学影响提供了有力工具。
什么是Chip-seq染色质免疫共沉淀技术(ChromatinImmunoprecipitation,ChIP)也称结合位点分析法,是研究体内蛋白质与DNA相互作用的有力工具,通常用于转录因子结合位点或组蛋白特异性修饰位点的研究。
将ChIP与第二代测序技术相结合的ChIP-Seq技术,能够高效地在全基因组范围内检测与组蛋白、转录因子等互作的DNA区段。
ChIP-Seq的原理是:首先通过染色质免疫共沉淀技术(ChIP)特异性地富集目的蛋白结合的DNA片段,并对其进行纯化与文库构建;然后对富集得到的DNA片段进行高通量测序。
研究人员通过将获得的数百万条序列标签精确定位到基因组上,从而获得全基因组范围内与组蛋白、转录因子等互作的DNA区段信息。
什么是CHIRP-SeqCHIRP-Seq( Chromatin Isolation by RNA Purification )是一种检测与RNA绑定的DNA和蛋白的高通量测序方法。
方法是通过设计生物素或链霉亲和素探针,把目标RNA拉下来以后,与其共同作用的DNA染色体片段就会附在到磁珠上,最后把染色体片段做高通量测序,这样会得到该RNA能够结合到在基因组的哪些区域,但由于蛋白测序技术不够成熟,无法知道与该RNA结合的蛋白。
什么是RIP-seqRNA Immunoprecipitation是研究细胞内RNA与蛋白结合情况的技术,是了解转录后调控网络动态过程的有力工具,能帮助我们发现miRNA的调节靶点。
这种技术运用针对目标蛋白的抗体把相应的RNA-蛋白复合物沉淀下来,然后经过分离纯化就可以对结合在复合物上的RNA进行测序分析。
RIP可以看成是普遍使用的染色质免疫沉淀ChIP技术的类似应用,但由于研究对象是RNA-蛋白复合物而不是DNA-蛋白复合物,RIP实验的优化条件与ChIP实验不太相同(如复合物不需要固定,RIP反应体系中的试剂和抗体绝对不能含有RNA酶,抗体需经RIP实验验证等等)。
RIP技术下游结合microarray技术被称为RIP-Chip,帮助我们更高通量地了解癌症以及其它疾病整体水平的RNA变化。
什么是CLIP-seqCLIP-seq,又称为HITS-CLIP,即紫外交联免疫沉淀结合高通量测序(crosslinking-immunprecipitation and high-throughput sequencing), 是一项在全基因组水平揭示RNA分子与RNA结合蛋白相互作用的革命性技术。
其主要原理是基于RNA分子与RNA 结合蛋白在紫外照射下发生耦联,以RNA结合蛋白的特异性抗体将RNA-蛋白质复合体沉淀之后,回收其中的RNA片段,经添加接头、RT-PCR等步骤,对这些分子进行高通量测序,再经生物信息学的分析和处理、总结,挖掘出其特定规律,从而深入揭示RNA结合蛋白与RNA分子的调控作用及其对生命的意义。
什么是metagenomic(宏基因组):Magenomics研究的对象是整个微生物群落。
相对于传统单个细菌研究来说,它具有众多优势,其中很重要的两点:(1)微生物通常是以群落方式共生于某一小生境中,它们的很多特性是基于整个群落环境及个体间的相互影响的,因此做Metagenomics研究比做单个个体的研究更能发现其特性;(2) Metagenomics研究无需分离单个细菌,可以研究那些不能被实验室分离培养的微生物。
宏基因组是基因组学一个新兴的科学研究方向。
宏基因组学(又称元基因组学,环境基因组学,生态基因组学等),是研究直接从环境样本中提取的基因组遗传物质的学科。
传统的微生物研究依赖于实验室培养,元基因组的兴起填补了无法在传统实验室中培养的微生物研究的空白。
过去几年中,DNA测序技术的进步以及测序通量和分析方法的改进使得人们得以一窥这一未知的基因组科学领域。
什么是SNP、SNV(单核苷酸位点变异)单核苷酸多态性singlenucleotide polymorphism,SNP 或单核苷酸位点变异SNV。
个体间基因组DNA序列同一位置单个核苷酸变异(替代、插入或缺失)所引起的多态性。
不同物种、个体基因组DNA序列同一位置上的单个核苷酸存在差别的现象。
有这种差别的基因座、DNA序列等可作为基因组作图的标志。
人基因组上平均约每1000个核苷酸即可能出现1个单核苷酸多态性的变化,其中有些单核苷酸多态性可能与疾病有关,但可能大多数与疾病无关。
单核苷酸多态性是研究人类家族和动植物品系遗传变异的重要依据。
在研究癌症基因组变异时,相对于正常组织,癌症中特异的单核苷酸变异是一种体细胞突变(somatic mutation),称做SNV。
什么是INDEL (基因组小片段插入)基因组上小片段(>50bp)的插入或缺失,形同SNP/SNV。
什么是copy number variation (CNV):基因组拷贝数变异基因组拷贝数变异是基因组变异的一种形式,通常使基因组中大片段的DNA形成非正常的拷贝数量。
例如人类正常染色体拷贝数是2,有些染色体区域拷贝数变成1或3,这样,该区域发生拷贝数缺失或增加,位于该区域内的基因表达量也会受到影响。
如果把一条染色体分成A-B-C-D四个区域,则A-B-C-C-D/A-C-B-C-D/A-C-C-B-C-D/A-B-D分别发生了C区域的扩增及缺失,扩增的位置可以是连续扩增如A-B-C-C-D也可以是在其他位置的扩增,如A-C-B-C-D。
什么是structure variation (SV):基因组结构变异染色体结构变异是指在染色体上发生了大片段的变异。
主要包括染色体大片段的插入和缺失(引起CNV的变化),染色体内部的某块区域发生翻转颠换,两条染色体之间发生重组(inter-chromosome trans-location)等。