毒理学动物实验设计

潮州消毒剂毒理实验方法一、实验目的本实验旨在评估潮州消毒剂的毒理学性质，包括急性毒性、皮肤刺激、眼刺激、致突变性等方面的测试，为该消毒剂的安全使用提供科学依据。

二、实验材料1. 潮州消毒剂样品2. 实验动物：小鼠、大鼠、豚鼠等（根据实验需求选择）3. 实验设备：生理盐水、注射器、皮肤刺激试验装置、眼刺激试验装置等三、实验方法1. 急性毒性试验（1）按照消毒剂使用说明，配置不同浓度的潮州消毒剂溶液。

（2）选取健康成年实验动物，按照体重随机分为若干组。

（3）通过腹腔注射或口服给药途径，给予不同浓度的潮州消毒剂溶液。

（4）观察并记录动物的中毒表现和死亡情况，计算半数致死量（LD50）和最小致死量（MLD）。

2. 皮肤刺激试验（1）选取健康成年实验动物，随机分为对照组和试验组。

（2）在动物背部皮肤上涂抹生理盐水和潮州消毒剂样品。

（3）观察并记录皮肤刺激反应，如红斑、水肿、糜烂等。

（4）根据刺激反应的严重程度和发生率，评估潮州消毒剂的皮肤刺激性质。

3. 眼刺激试验（1）选取健康成年实验动物，随机分为对照组和试验组。

（2）将潮州消毒剂样品滴入动物的眼结膜囊内。

（3）观察并记录动物的眼部刺激反应，如结膜水肿、充血、糜烂等。

（4）根据刺激反应的严重程度和发生率，评估潮州消毒剂的眼刺激性质。

4. 致突变性试验（1）选取经过基因突变筛选的实验动物品系。

（2）按照消毒剂使用说明，配置不同浓度的潮州消毒剂溶液。

（3）通过灌胃、腹腔注射等途径给予实验动物不同浓度的潮州消毒剂溶液。

（4）观察并记录动物的生育情况、存活率、突变率等指标。

青海大学生态环境工程学院环境毒理学实验报告科目：环境毒理学姓名：田成龙学号：1200602036实验一动物试验的一般操作技术一、目的与要求毒理学的许多试验研究，主要通过动物实验来进行。

而实验过程中技术及生物材料的收集是否恰当，直接影响实验结果的质量。

因此，毒理学实验工作者必须正确地掌握动物实验中的一般操作技术，这是保证试验工作成功的基本条件之一。

本实验要求掌握动物的捉拿、固定、麻醉、编号、采血、处死方法和解剖检查。

二、实验内容和方法（一）实验动物的捉拿和固定方法1、小鼠：捉拿时先用右手将鼠尾抓住提起，放在较粗糙的台面或鼠笼上，在其向前爬行时，右手向后拉尾，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和头颈部皮肤，将其固定于左手手心中，拉直四肢并用左手无名指压紧尾和后肢，右手即可作注射或其他实验操作。

取尾血及尾静脉注射时，可将小鼠固定在金属或木制的固定器上。

2、大鼠：大鼠抓取方法基本同小鼠，抓大鼠时若操作者不熟练，或者大鼠特别凶猛，操作者最好戴上防护手套(帆布或硬皮质均可)。

如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射时，可采用与小鼠相同的手法，即拇、食指捏住鼠的耳朵及头颈皮肤，余下三指紧捏住背部皮肤，置于掌心中，调整大鼠在手中的姿势后即可操作。

3、豚鼠：豚鼠性情温和，胆小易惊，一般不易伤人，抓取时，先用手掌扣住豚鼠背部，抓住其肩胛上方，拇、食指环握颈部，另一只手托住臀部。

如果在实验时豚鼠频繁挣扎，不宜采用此方法，因为操作者的拇、食指会随动物的挣扎越抓越紧而引起豚鼠窒息。

另外，有时可用纱布将豚鼠头部轻轻盖住，操作人员轻扶住其背部或者让其头部钻到实验人员的臂下，然后进行实验操作。

4、家兔：一手抓住兔颈部的被毛与皮肤，另一手托其臀部或腹部，使其躯干的重量大部分集中在手上。

(二)实验动物的编号、标记和去毛方法1、编号和标记方法：在动物实验中，为了使实验动物个体间或组间区别开来，便于对每个实验动物的反应情况进行观察，必须对实验动物进行编号、标记。

研究生《动物毒理学》教案一、课程简介1.1 课程名称：动物毒理学1.2 课程性质：研究生课程1.3 课程目标：使学生掌握动物毒理学的理论知识，培养学生的实验技能，提高学生在实际工作中分析和解决动物毒性问题的能力。

二、教学内容2.1 动物毒理学的定义、发展史和研究方法2.2 毒物的吸收、分布、代谢和排泄2.3 毒物的毒性评价和毒性作用机制2.4 常见动物毒物及其毒性作用2.5 实验动物的选择和饲养管理三、教学方法3.1 讲授：讲解基本概念、理论体系和最新研究动态。

3.2 实验：进行毒性实验，培养学生的实验技能和动手能力。

3.3 讨论：组织学生针对案例进行分析讨论，提高学生的思维能力和解决问题的能力。

四、教学要求4.1 学生应掌握动物毒理学的基本理论和实验方法。

4.2 学生能独立完成毒性实验，掌握实验操作技巧。

4.3 学生能分析毒物毒性作用机制，解决实际问题。

五、教学评价5.1 平时成绩：包括课堂表现、作业完成情况等。

5.2 实验报告：对实验结果进行分析和讨论。

5.3 期末考试：考察学生对课程知识的掌握程度。

六、教学内容6.1 动物毒理学实验技术：包括毒物剂量测定、毒性效应观察、生物样品分析等。

6.2 短期毒性实验：急性毒性试验、亚急性毒性试验等。

6.3 长期毒性实验：亚慢性毒性试验、慢性毒性试验等。

6.4 特殊毒性实验：遗传毒性试验、生殖毒性试验、发育毒性试验等。

七、教学内容7.1 毒物代谢与毒效关系：研究毒物在体内的代谢过程及其对毒效的影响。

7.2 毒物毒性与剂量-反应关系：探讨毒物剂量与毒性效应之间的关系。

7.3 毒物毒性与时间关系：分析毒性效应随时间的变化规律。

7.4 毒物联合毒性：研究两种或多种毒物共同作用时的毒性效应。

八、教学内容8.1 动物毒理学应用领域：环境保护、食品安全、药品评价等。

8.2 实验动物福利与伦理：了解实验动物的福利要求，遵守实验动物伦理原则。

8.3 数据处理与统计分析：掌握毒理学实验数据处理方法，进行统计分析。

实习一实验动物的一般操作技术一、目的和意义毒理学研究需要用实验动物来进行各种实验，通过对动物的实验观察和分析来研究毒作用，获得毒物的毒性、剂量-反应关系、毒作用机制等方面的资料，因此动物实验是毒理学研究中重要的手段之一。

通过本次实习学习毒理学实验中有关动物实验的基本操作技术，掌握实验动物的选择、动物抓取、染毒方法和生物材料的采集等技术。

二、内容（一）健康动物的选择无论选择哪种种属品系的动物进行实验，均要求选择健康的实验动物。

健康动物检查时要求达到：外观体型丰满，被毛浓密有光泽、紧贴体表，眼睛明亮，行动迅速，反应灵活，食欲及营养状况良好。

选择时重点检查以下项目：1.眼睛明亮，瞳孔双侧等圆，无分泌物。

2.耳耳道无分泌物溢出，耳壳无脓疮。

3.鼻无喷嚏，无浆性粘液分泌物。

4.皮肤无创伤、无脓疮、疥癣、湿疹。

5.颈部要求颈项端正，如有歪斜提示可能存在内耳疾患，不应选作实验动物。

6.消化道无呕吐、腹泻，粪便成形，肛门附近被毛洁净。

7.神经系统无震颤、麻痹。

若动物（大鼠、小鼠）出现圆圈动作或体位倒置呈圆圈摆动，应该放弃动物。

8.四肢及尾四肢、趾及尾无红肿及溃疡。

（二）实验动物的性别鉴定动物性别不同对毒物的敏感性也不同，这可能与性激素、肝微粒体羟基化反应有关，也随受试物而异。

因此，要根据实验要求选择性别，一般实验如对性别无特殊要求者，宜选用雌雄动物各半。

1.大鼠、小鼠主要依肛门与生殖孔间的距离区分，间距大者为雄性，小者为雌性。

成年雄鼠卧位可见到睾丸，雌性在腹部可见乳头。

2.豚鼠用在一只手抓住豚鼠颈部，另一只手把开靠近生殖器孔的皮肤，雄性动物在圆孔中露出性器官的突起，雌性动物则显出三角形间隙，成年雌性豚鼠胸部有两个乳头。

3.家兔将家兔头轻轻夹在实验者左腋窝下，左手按住腰背部，右手拉开尾巴并将尾巴夹在中指和无名指中间，然后用拇指和食指稍稍把生殖器附近的皮肤扒开。

雄兔即可见一圆孔中露出圆锥形稍向下弯曲的阴茎（但幼年雄兔看不到明显的阴茎，只能看到圆孔中有凸起物，即是阴茎）。

实验报告一、实验目的1.学习毒理学实验中有关动物实验的基本操作技术2.掌握健康小鼠的外观检查方法、性别鉴定、捉拿和固定方法、小鼠灌胃给药与小鼠腹腔注射给药等技术3.掌握小鼠颈椎脱臼法处死方法、小鼠脏器系数的概念及其测定方法、病理学意义4.熟悉小鼠的标记、小鼠解剖步骤及正常脏器观察5.了解实验动物的被毛去除方法、实验动物粪、尿的收集、小鼠血液样本采集方法二、实验材料和器材1.动物：小鼠2.器材：鼠笼、天平、注射器、灌胃针、止血钳、手术剪、平皿、托盘、烧杯若干。

三、实验方法1.对小鼠进行观察观察的指标主要包括：小鼠的体型、发育情况；毛发是否清洁浓密有光泽，是否顺贴不蓬乱；行动是否迅速，反应是否灵敏；眼睛是否明亮有神，瞳孔是否清晰等圆；天然孔道是否干净、有无分泌物。

2.小鼠的捉拿右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。

此时迅速用左手拇指和食指捏任小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。

3.小鼠性别鉴定主要观察肛门与生殖器之间的距离。

雄性大鼠的距离较大，雌性的距离较小，且成年雄鼠尾部可见睾丸，成年雌鼠可见乳头。

4.小鼠称重打开电子天平，待读数显示稳定后，将平皿置于天平上，去皮；将小鼠置于平皿中，待读数显示稳定后，读数得25.95g。

5.小鼠灌胃1）准备灌胃针头，将注射器针头拔下，更换为灌胃针头；根据小鼠的体重，按0.1ml/10g 灌胃量计算：V=25.950*0.1/10=0.26ml用注射器取0.26ml液体（自来水）；2）按“三-2-1）”的方法抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线；3）灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后即可推注药液，然后原方向将灌胃针抽出。

6. 腹腔注射1）吸取液体（自来水），将针头向上，吸取一段气体后，再缓慢排除气体，以达到取出气泡的效果。

2）按“三-2-1）”的方法捉拿小鼠，并使小鼠腹腔向上；3）事先吸取好液体的注射器针尖平面朝上，平行扎入皮内后，注射器与腹腔呈45度角刺入腹腔，感觉针尖部分可以移动，将注射针向后抽出一点，注射样品。

2015年02月12日 来源：实验动物管理与实用技术手册 作者：徐国景 易工城 唐利军孔利佳 责任编辑：lmjinfo摘要：一般而言,长期毒性试验至少需设高、中、低三个剂量给药组和一个溶媒(或辅料)对照组.必要时还须设立空白对照组或阳性对照组。

一般而言,长期毒性试验至少需设高、中、低三个剂量给药组和一个溶媒(或辅料)对照组.必要时还须设立空白对照组或阳性对照组。

因为理论上群体中毒性反应的发生率随暴露量的增加而增加,所以高剂量原则上应使动物产生明显的毒性反应,甚至出现个别动物死亡现象, 但死亡数不得超过20%以上;为考察毒性反应剂量一反应关系,应在高剂量和低剂量之间设立中剂量。

中剂量组应相当于药效学试验的高剂量,应使实验动物发生轻微或中等程度的毒性反应;低剂量组原则上应高于整体动物最佳药效学试验的有效剂量,并不使动物出现毒性反应;空白对照组应给予溶媒或其他赋形剂;正常对照组应口服等容量蒸馆水,注射给药时则应注射等容量生理盐水。

长期毒性试验的给药周期取决于临床用药时间的长短,这是国际上普遍推行的原则,各国或国际药政管理组织在执行时有所不同(见表 4-5-9)。

对于西药来讲,总的原则是临床给药期的3～4倍。

中国中药毒理学研究指导原则是规定2倍以上,最长不超过半年(见表4-5-10);对于生物制品的试验周期,不仅要参考临床疗程,还要考虑反复给药产生抗体的时间,一旦产生抗体则应停止给药。

长期毒理学试验研究中,剂量设计有多种,主要有半数致死量法、药物代谢动力学法、最大耐受量法、拟用临床剂量法、等效剂量法等。

1.半数致死量法 (LD50 法 )即根据药物急性毒理学试验测定的LD50值决定三个组的剂量。

如果急性毒理与长期毒理试验使用的是同一种实验动物,那么对大鼠而言,高、中、低三个剂量组可使用1/10、1 /50、l/lOO的LD50 值;对犬而言,高、中、低三个剂量组可使用1/20、1/25、1/50的LD5 0值。

实习一毒理学动物实验基础【实验设计的原则】毒理学作为一门动物实验课程，应该遵循动物实验中对照、重复和随机三个基本原则。

【不成文原则】1、保护好自己最重要。

2、经典的步骤只是提供一个符合的大多数人习惯的参考，具体实验时每个人可按照自己的习惯以及现实有的条件来完成操作，只要能够按要求完整地实现相关的操作目的即可。

【实验动物】大鼠（价格低廉，同时相比小鼠，大鼠的生理生化过程与人类较为接近，故在毒理学实验中常用）【大鼠的捕捉及固定】大鼠的门齿很长，在抓取方法不当而受到惊吓或激怒时易将操作者手指咬伤,所以,不要突然袭击式地去抓它，取用时应轻轻抓住其尾巴后提起，置于实验台上，用玻璃钟罩扣住或置于大鼠固定盒内，这样即可进行尾静脉取血或注射。

如要作腹腔注射或灌胃等操作时，实验者应戴上手套(有经验者也可不戴)，右手轻轻抓住大鼠的尾巴向后拉，但要避免抓其尖端，以防尾巴尖端皮肤脱落，左手抓紧鼠两耳和头颈部的皮肤，并将大鼠固定在左手中，右手即可进行操作。

【大鼠性别的鉴定】动物性别不同对毒物的敏感性也不同，因此，要根据实验要求选择性别，一般实验如对性别无特殊要求者，以选用雌雄动物各半。

大鼠、小鼠主要以肛门与生殖空间的距离区分，间距大者为雄性，小者为雌性。

成年雄鼠卧位时可见到睾丸，雌性在腹部可见乳头。

【实验动物的编号及标记方法】好的标记应达到清晰、耐久、简便适用的要求。

常用的方法有化学染色法，耳缘剪口法或打小孔法，挂牌法及烙印法。

1. 化学染色法: 染色标记法是用毛笔或棉签蘸取化学药品，在实验动物体表不同部位涂上斑点，以示不同编号。

常用染色液：3％～5％的苦味酸溶液(染成黄色)；0.5％的中性品红溶液(染成红色)（1）用一种染色剂染动物的不同部位，颜色可标记1～10号（10号不标记）。

如图：（2）若用两种颜色的染液配合使用，其中一种颜色代表个位数，另一种颜色代表十位数，可编到99号。

例如要标记12号，就可以在左前腿涂上红色，左腹部涂上黄色。

5-甲基水杨酸和水杨酸毒理性质研究实验方案一、鱼类急性毒性实验—半数致死浓度（LC50）的测定按照《GB/T 21281-2007 危险化学品鱼类急性毒性分级试验方法》进行1.1实验鱼的选择和驯养1.1.1实验鱼的选择斑马鱼：斑马鱼是一种常见的热带淡水鱼，体型小，在较小空间内就可饲养大量斑马鱼(2L的鱼缸中就可饲养10条左右)。

斑马鱼世代周期短，繁殖率高，饲养管理廉价方便，饲养成本低，对水质的要求不高。

因此斑马鱼长期以来被广泛用于胚胎学、发育生物学、毒理学和分子生物学等研究,被喻为理想的分子生物学和免疫学研究的脊椎动物模型,是四大模式生物之一,也是国际标准化组织(ISO)推荐使用的标准化鱼类毒性实验动物和我国国家环保部、化学农药环境安全评价准则指定的鱼类毒性实验鱼种之一。

拟从较近的位于沪闵路的闵行悠闲水族购得斑马鱼150条。

同批、同种、同龄,大小均匀,体质健壮,个体全长以1.0～6.0 cm为宜,最大个体不可大于最小个体的50%。

1.1.2实验鱼的驯养实验鱼用于试验之前,在与实验用水质、温度和光照相同的水中驯养7 d,以使鱼类适应实验室的生活环境,如水温、水质和光线等,且便于对实验鱼进行健康选择。

驯养期间,应每天换水、喂食1～2次,实验开始前24h停止喂食。

密切检查鱼的健康状况,发现受伤、体色异常、消瘦、离群游泳、行动呆滞和拒食等现象,应及时除去。

驯养开始48 h 后记录死亡率,死亡率小于5%方可用于实验。

1.2实验条件实验用水（稀释水）：自来水，人工曝气或放置3 d以上脱氯。

水的总硬度为10～250 mg/L(以CaCO3计),pH值为6.0～8.5。

实验容器：其他实验室的鱼缸三个，以及2L的烧杯四个，洗净后用曝气后的自来水涮洗。

1.3实验步骤1.3.1方案一：进行预实验后再进行正式实验1.3.1.1预实验：预备实验用于确定正式实验浓度的大致范围,了解实验溶液浓度的稳定性,以及实验过程中pH、溶解氧等变动情况。

毒理学描述性动物毒性实验第五章描述性动物毒性实验描述性动物毒性实验是指通过对环境有害因素特别是外源化学物的毒理学基础研究，包括⼀定程序的实验动物选择、实验模型的制作、数量与剂量确定、染毒⽅法及毒性指标等，观察动物机体所产⽣的总体毒性效应，通过不断反复的资料积累作出毒理学评价并外推⾄⼈类，为防治暴露于环境有害因素的有害作⽤提出综合性措施的过程。

第⼀节急性毒性试验⼀、急性毒性急性毒性(acute toxicity)是指机体(⼈或实验动物)⼀次或24h之内多次接触(染毒)外源化学物之后，在短期内所发⽣的毒性效应，包括引起死亡效应。

实验动物接触外源化学物所引发的急性毒性效应出现的快慢和毒性反应的强度，因外源化学物的性质（主要为化学结构与理化性质）和染毒剂量的⼤⼩⽽有很⼤差别。

有的化学物在实验动物接触致死剂量后，⼏分钟之内即可产⽣中毒症状，甚⾄瞬间死亡，有的化学物则在接触致死剂量⼏天才出现明显的中毒症状或死亡。

所谓“⼀次或24内多次”接触或染毒的时间界定：⼀次是指瞬间染毒，如经⼝染毒、经注射途径染毒，但在经呼吸道与经⽪肤染毒，则是指在⼀个特定的期间内持续地接触化学物的过程，所以“⼀次”含有时间因素。

当外源化学物毒性过低，或⼀次染毒剂量受机体容量限制，需给予实验动物较⼤剂量时，则可在24h内分次染毒，即为“多次”。

“短期内”，⼀般限定为7天内。

⼆、急性毒性试验的⽬的和⽅法（⼀）急性毒性试验的⽬的急性毒性研究的⽬的，主要是探求化学物的致死剂量，以初步评估其对⼈类的可能毒害的危险性。

再者是求该化学物的剂量-反应关系，为其它毒性实验打下选择染毒剂量的基础。

（⼆）实验动物的选择毒理学中研究外源化学物的基础毒性主要是进⾏体内试验，即是以实验动物为研究对象，最终向外源化学物毒害主体—-⼈类外推。

虽然在⼀些国家由于动物保护运动的发展，进⾏整体动物研究受到⼀定限制，⽽促使体外试验的发展，但毕竟⽤离体组织、细胞、亚细胞器为标本时距整体接触化学物的毒性有差距，所以⾄今评价外源化学物基本毒性，还是以整体实验动物体内实验为主。

实验一动物的一般操作技术1. 实验目的和要求*毒理学研究需要用实验动物来进行各种实脸，通过对动物的实验观察和分析来研究毒作用，获得毒物的毒性、剂量-反应关系、毒作用机制等方面的资料，因此动物实验是毒理学研究中重要的手段之一。

通过本次学习毒理学实验中有关动物实验的基本操作技术，掌握实验动物的选择、动物抓取和分组等技术。

2. 实验原理做毒理学实验，首先要了解实验动物选择的要求，实验动物分组、实验样品的采集、实验动物处死方法等。

3. 实验仪器设备:小鼠若干，手套15副，苦味酸酒精饱和液，0.5%中性红或品红溶液，棉签，解剖剪刀10把，感应量为0.1g的天平一台。

4. 实验内容步骚:(一) 健康动物的选择无论选择哪种种属品系的动物进行实验，均要求选择健康的实验动物。

健康动物检查时要求达到：外观体型丰满，被毛浓密有光泽、紧贴体表，眼睛明亮，行动迅速，反应灵活，食欲及营养状况良好。

选择时重点检查以下几项：1. 眼睛明亮，瞳孔双侧等圆，无分泌物2. 耳耳道无分泌物溢出，耳壳无脓疮3. 鼻无喷嚏，无浆性粘液分泌物4. 皮肤无创伤、无脓疮、疥癣、湿疹。

5. 颈部要求颈端端正，如有歪斜提示可能存在内耳疾患，不应选作实验动物。

6. 消化道无呕吐、腹泄，粪便成形，肛门附近被毛洁净。

7. 神经系统无震颤、麻痹。

若动物(大鼠、小鼠)出现圆圈动作或提尾倒置呈圆圈摆动，应放弃该动物。

8. 四波及尾四肢、趾及尾无红肿及溃疡。

(二) 实验动物的性别鉴定小鼠主要依据肛门与生殖孔间的距离区分，间距大者为雄鼠，小者为雌性。

成年雄鼠卧位可见睾丸，雌性在腹部可见乳头。

(三) 抓取方法正确地抓取固定动物，是为了在不损害动物健康、不影响观察指标、并防止被动物咬伤的前提下，确保实验顺利进行。

小鼠的抓取方法先用右手抓取鼠尾提起，置于鼠笼或实验台上向后位，在其向前爬行时，用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部皮肤，将鼠体置于左手心中，把后肢拉直，以无名指按住鼠尾，小指按住后腿即可。

毒理学实验设计的基本原则所有毒理学实验设计都必须符合随机、对照、重复三个基本原则。

(一)随机的原则随机化( randomization)是指在抽样时,使总体中每一个体都有同等的机会被抽取;在分配样本时,确保样本中的每一个体都有同等的机会被分入任何一个组中。

随机化的目的是使样本具有极好的代表性,使一切干扰因素分配到各组时只受纯机遇抽样误差的影响,而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。

在进行毒理学动物实验时,动物必须随机分组,最常用的方法是完全随机或随机区组的方法。

完全随机即将研究对象随机地分配到各个处理组中,可通过随机数字表或抽签的方式进行。

随机区组即将可能影响实验结果的非处理因素均衡地分配到各组,如动物体重、性别等,具体做法是将条件相近的实验对象配成一组(配伍组) ,再将每个配伍组中的实验对象随机分配到各个处理组中。

随机不等于随便、随意,在动物分组时若不采用适当的随机方法,而是抓取动物随意放在各组,不能排除动物机敏性等因素对选择动物的影响,不能满足随机化的要求。

(二)对照的原则对照( contro1)是指在实验时针对实验组设立的可以对比的组。

对照的意义在于通过对照鉴别处理因素与非处理因素的差异及处理因素的效应大小,消除和减少随机化原则所不能控制的抽样误差及实验者操作熟练程度等所造成的差异。

毒理学实验中常用的对照形式有以下几种。

1. 未处理对照(空白对照) :即不施加任何处理措施,用于确定实验对象生物学特征的本底值,进行质量控制。

2. 阴性对照:不给要研究的处理因素,但给以其他的实验因素,以排除这些实验因素的影响。

常用的阴性对照是溶剂/赋形剂对照,以此作为与染毒组比较的基础。

阴性对照除了要研究的因素外,其他处理应和实验组完全相同。

对照组与实验组必须在同时、同地、同条件下进行处理,否则就失去了对照的意义。

3. 阳性对照:用已知的阳性物检测实验体系的有效性。

阳性对照组的实验因素与实验组应尽可能一致,如与受试物采用相同的溶剂、染毒途径及采样时间。