昆仑泌尿外科医院检验科临检室作业指导书文件编号；SZKL-LJ-03 版本/修订号；1/0
主题内容凝血四项操作规程生效日期：20150101 页码；第 1页共5页
凝血四项操作规程
1.目的
规范凝血四项（PT、APTT、TT、FIB）的测定。
2.实验原理
凝固法原理：在确定量的血浆样本经过一定时间的加温后，加入试剂后，采用波长为660nm 的光照射样本。凝血过程（纤维蛋白原转化为纤维蛋白）中血的浑浊度可以通过测量散射光光强度的改变来测定。从散射光光强度的测定，可以做出凝血曲线，通过Percentage Detection Method法求得血液凝固时间。
3.标本要求
3.1.标本准备：采用塑料采血管或硅化玻璃注射器静脉采血，针头必须为21号以上，儿童可用23号。采血技术熟练，采血时止血带不可束缚过紧，并且以1分钟完成为宜，最多不宜超过3分钟以免某些凝血因子及纤溶因子活化。
3.2.抗凝剂选择：以109mmol/L枸椽酸钠溶液为佳，血与抗凝剂按9：1混合。建议用已加有抗凝剂的硅化真空采血管。也可用带盖塑料管或硅化玻璃管，但应保证血与抗凝剂的比例正确。
3.3.收到血标本后应尽快离心分离血浆，并尽快测量，全血储存在4-8℃不应超过2小时，室温下富含血小板血浆可存放3小时，去血小板血浆可存放2小时；4小时内不能测定的血浆应冷藏；不要把血浆置于37℃条件下超过10分钟。应了解不同存放温度和时间对各种凝血因子活性检测的影响。
4.材料
4.1.试剂的选择一方面要根据所用检测仪器，例如：光电检测法的凝血仪不宜用透光度差的试剂；另一方面要根据实验试剂对疾病的敏感性，例如APTT试剂中所用活化剂不同（可用白陶土、硅藻土和鞣花酸），该试剂对肝素、凝血因子Ⅷ和因子Ⅸ缺乏及狼疮样抗凝物敏感性不同，所以需根据检测项目来选择不同活化剂。(例如常用的APTT试剂的活化剂，以白陶土对凝血因子敏感，硅土对因子及肝素均敏感，鞣花酸对狼疮样抗凝物敏感性较强.PT试剂的选择也一样,例如对口服抗凝药物(华法令)检测应选择ISI与1.0接近的PT试剂。)血栓与止血检验应尽可能选用仪器生产厂家推荐的配套试剂，并选择使用与仪器原理相匹配的试剂。
4.2.正常对照血浆：正常对照血浆有商品供应，多为冻干品，也可自制，要求采集20份以上男女各半，年龄在18-25岁之间的健康个体，删除服药者，须在平静状态下采血，血液经抗凝离心后分离血浆。取等量的各份个体血浆进行混匀，然后分装小瓶，冻存于-80℃或冷冻干燥备用。
4.3.参比血浆或称标准血浆（质控血浆）：为了使检测结果在同一实验室的不同时期或不实验室间具有可比性，就要使用标准品。
5.仪器与试剂
5.1仪器：深圳锦瑞CA-54半自动化血凝分析仪。
5.2试剂：上海太阳生物技术有限公司。
5.3仪器安装后应对其主要性能参数进行评价，内容包括精密度、线性范围、可比性、抗干扰试验试验等。评价结果应在仪器说明书标示范围之内。
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5.4 仪器在测定常规标本前应使用配套的校正物建立标准曲线，在更换新批号的试剂或仪器维修后，要重新建立标准曲线。无校正物的测定项目，可伤使用配套的定值质控物进行测定，测定结果应在定值质控物标示的允许范围内。
5.5 每台仪器上使用的凝血活酶试剂应有特定的ISI（国际敏感指数）值，这样才能使患者INR（国际标准化凝血酶原时间）比值的结果有可比性。
自动终点测定目前得到广泛应用，仪器有半自动和全自动两种类型。仪器应用的检测系统有化学的、机械的或电子等，形成凝块所需时间也有差异。对每种方法都应建立自己正常参考范围，一些光学系统进行测定的仪器对血脂高、溶血、黄疸血浆不易得出精确的检测结果。
6.操作步骤
6.1 PT 检测步骤
6.1.1 打开电源开关，仪器自检后进入主菜单页面，然后按“1”进入“测量标本”子菜单。
6.1.2 设置测试项目和病人编号：按”1“键设置测试项目，按“←”“→”选择“PT”，确认请按“确认/ENTER”键，取消请按“菜单/MENU”键。按“2”键设置病人编号，直接输入病人号后，确认请按“确认/ENTER”键，取消请按“菜单/MENU”键。
6.1.3 将PT应用试剂根据测试样本多少取适量于试剂预温位预热至37C
6.1.4 加血浆20ul于空比色杯内（样本应加入杯子底部，不能有气泡），置于测试通道或预温位预温2分钟。
6.1.5 当预温到时后，将已预温的比色杯放入测试通道内，按“通道1”键，屏幕提示“请加入试剂”时，用联机加样枪吸取40ulPT工作试剂加入比色杯中，当加样器按到底后松开时仪器自动开始计时检测，最后显示和打印测量结果。
6.1.6质控品、正常对照血浆：操作方法同样品。
6.1.7关机：按“菜单/MENU”键，退回到主菜单后即可关机。
6.2 APTT检测步骤
6.2.1 打开电源开关，仪器自检后进入主菜单页面，然后按“1”进入“测量标本”子菜单。
6.2.2 设置测试项目和病人编号：方法同6.1.2
6.2.3 加血浆20ul于空比色杯内，再取APTT试剂20ul加入比色杯内，混匀后，置于测试通道或预温位预温3分钟。
6.1.4 当预温到时后，将已预温的比色杯放入测试通道内，按“通道3”键，屏幕提示“请加入试剂”时，用联机加样枪吸取20ul CaCl2（CaCl2预温3分钟）加入比色杯中，当加样器按到底后松开时仪器自动开始计时检测，最后显示和打印测量结果。
6.1.5 质控品、正常对照血浆：操作方法同样品。
6.1.6 关机：按“菜单/MENU”键，退回到主菜单后即可关机。
6.3 TT检测步骤
6.3.1 打开电源开关，仪器自检后进入主菜单页面，然后按“1”进入“测量标本”子菜单。
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6.3.2 设置测试项目和病人编号：方法同6.1.2
6.3.3 加血浆30ul于空比色杯内，置于测试通道或预温位预温2分钟。
6.1.4 当预温到时后，将已预温的比色杯放入测试通道内，按“通道4”键，屏幕提示“请加入试剂”时，用联机加样枪吸取30ul 已预温好的TT试剂加入比色杯中，当加样器按到底后松开时仪器自动开始计时检测，最后显示和打印测量结果。
6.1.5 质控品：操作方法同样品。
6.1.6 关机：按“菜单/MENU”键，退回到主菜单后即可关机。
6.3 FIB检测步骤
6.3.1 打开电源开关，仪器自检后进入主菜单页面，然后按“1”进入“测量标本”子菜单。
6.3.2 设置测试项目和病人编号：方法同6.1.2
6.3.3 加血浆40ul于空比色杯内，置于测试通道或预温位预温3分钟。
6.1.4 当预温到时后，将已预温的比色杯放入测试通道内，按“通道2”键，屏幕提示“请加入试剂”时，用联机加样枪吸取20ul 已预温好的FIB试剂加入比色杯中，当加样器按到底后松开时仪器自动开始计时检测，最后显示和打印测量结果。
6.1.5 质控品：操作方法同样品。
6.1.6 关机：按“菜单/MENU”键，退回到主菜单后即可关机。
7.质量控制
7.1质控品跟随常规标本一起测定，意即质控品必须与患者标本在同样条件下进行检测，建立质控图信息后，以判断结果是否在控。
7.2为了使检测结果在同一实验室的不同时期具有可比性，必须使用标准品或参比血浆进行室内质量控制。
8.参考区间
PT：10-14秒。待检者的测定值较正常对照延长3秒以上有临床意义。
APTT：22-38秒。待检者的测定值较正常对照延长10秒以上有临床意义。
TT：10-16秒
FIB：200-400mg/dl
9.注意事项
9.1血栓与止血实验的质量控制和标准化是实验结果可靠性、可比性的基本保证。其实验项目繁多，现阶段大部分是应用形成可见的纤维蛋白丝为终点。这种方法所采用的均为生物性材料，其凝血活性或抗凝、纤溶活性可随时间、温度、生理变化、个体差异而变化，故其质量控制更为重要。
9.2 要重视检测前的质量控制，包括合理的标本采集和处理；试剂的选择；器材、仪器、质控品、正常对照品的质量保证。
9.3 实验操作时应警惕许多实验误差来源于技术错误。在实验技术、试剂、温度及PH值上微小的变化都有导致试验结果明显的变化。例如，在一期法PT测定时孵育时间和温度应严格控制。血浆绝不能在37℃放置超过10分钟；凝血活酶放置时间也不能超过说明书所规定的期限。
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血浆凝固主要是酶催化的反应。PH环境和溶液离子强度在实验过程中要严格控制，反应混合物PH必须处于7.2-7.4之间.
每次APTT实验时,活化部分凝血活酶试剂和血浆混合物的孵育时间决定了APTT试验中接触活化的量,所以其混合的时间和技术对检测结果影响很大.
9.4 实验前应检查血浆是否有溶血、黄疸、脂血和出现凝块。红细胞膜含有磷脂，溶血标本具有与血小板第3因子（磷脂）相似的凝血活性，能缩短溶血血浆的APTT值。
9.5 标本中如出现凝块，无论多小的凝块均会影响实验结果。
9.6 APTT、TP需去血小板血浆，一般3000r/min离心10min后分离血浆。
10.临床意义：
10.1 PT检测的临床意义
10.1.1 PT延长
a.外源凝血系统的因子Ⅱ、Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ和纤维蛋白原减低，如先天性某因子缺乏症和低（无）纤维蛋白原血症，但均很少见，获得性的见于DIC、原发性纤溶、维生素K缺乏症、肝脏疾病等。
b.血循环中抗凝物质增加，如肝素或FDP增多等。
10.1.2 PT缩短
口服避孕药、高凝状态和血栓性疾病等。
10.1.3 用于香豆素类等口服抗凝剂的监控
10.1.3.1一般认为以维持PT值在参考值的2倍左右（1.3—2.5倍）即25—30s，或PT R为1.3—1.5（最大不超过2）为宜。
10.1.3.2 PT%应控制在40%以上，减低到40%有出血倾向。
10.1.3.3不同情况下口服抗凝药治疗的最佳抗凝强度时INR的范围：
a.术前两周或术中口服抗凝药，INR为1.5—3.0；
b.原发或继发静脉血栓的预防，INR为2—3；
c.活动性静脉血栓、肺梗塞、复发性静脉血栓的预防，INR为2—4；
d.动脉血栓栓塞的预防，心脏换瓣术后，INR为3—4.5。
10.2 APTT检测的临床意义
10.2.1.受检者的测定值较正常对照延长超过10s以上才有病理意义。
10.2.2 对内源凝血途径因子（Ⅷ、Ⅸ、Ⅺ）缺乏较CT敏感（血小板异常不影响APTT）能检出Ⅷ：C小于25%的轻型血友病。对凝血酶原、纤维蛋白原缺乏则不够敏感，故APTT延长的最常见疾病为血友病。此时可进一步做纠正试验，即于患者血浆中加入1/4量的正常新鲜血浆、硫酸钡吸附血浆或正常血清（试剂参见凝血酶原消耗试验的纠正试验），再做APTT，如正常血浆和吸附血浆能纠正延长的结果而血清不能纠正，则为因子Ⅷ缺乏；如吸附血浆不能纠正，其余两者都能纠正，则为因子Ⅸ缺乏；如三者都不能纠正，则为病理性循环抗凝物质。
10.2.3 在使用肝素治疗时，多用APTT监测药物用量，一般以维持结果为基础值的2倍左右
（1.5—3.0倍）为宜（75—100s之间）。但应事先检测所用部分凝血活酶试剂是否对肝素敏感，即向正常人血浆中加入不同量肝素（从每毫升0.1—1.0IU），看其APTT是否相应延长。
10.3 TT检测的临床意义
10.3.1 TT延长：患者血循环中AT-Ⅲ活性明显增高，肝素增多或类肝素抗凝物质存在，如SLE、肝病肾病等，异常纤维蛋白原血症，低（无）纤维蛋白原血症，
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FDP增多（如DIC），异常球蛋白增多（如MM）等。
10.3.2 TT缩短：常见于血样本有微小凝块或钙离子存在时。
10.4 FIB检测的临床意义
10.4.1 FIB减少见于：
先天性低（无）纤维蛋白原血症、严重肝脏疾病、原发性纤维蛋白溶解、DIC、异常纤维蛋白原血症、新生儿及早产儿、某些产科意外、恶性肿瘤等。
10.4.2 FIB增高见于：
各种血栓前状态及血栓栓塞病、月经期及妊娠期、糖尿病、动脉硬化、结缔组织病、手术后、休克、癌肿、骨髓瘤、放射治疗后等。
11.参考文献
中国人民共和国卫生部医政司编.全国临床检验操作规程（第3版）.2006
医院血培养标本采集、运送与报告标准操作规程 一、血培养指征 患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。 二、采血时机 一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。 三、采血流程 (一)消毒 1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。 2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种 成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。 (三)注意事项 1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。 3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。 4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔
凝血四项操作规程 1.目的 规范凝血四项（PT、APTT、TT、FIB）的测定。 2.实验原理 凝固法原理：在确定量的血浆样本经过一定时间的加温后，加入试剂后，采用波长为660nm的光照射样本。凝血过程（纤维蛋白原转化为纤维蛋白）中血的浑浊度可以通过测量散射光光强度的改变来测定。从散射光光强度的测定，可以做出凝血曲线，通过Percentage Detection Method法求得血液凝固时间。 3.标本要求 3.1.标本准备：采用塑料采血管或硅化玻璃注射器静脉采血，针头必须为21号以上，儿童可用23号。采血技术熟练，采血时止血带不可束缚过紧，并且以1分钟完成为宜，最多不宜超过3分钟以免某些凝血因子及纤溶因子活化。 3.2.抗凝剂选择：以109mmol/L枸椽酸钠溶液为佳，血与抗凝剂按9：1混合。建议用已加有抗凝剂的硅化真空采血管。也可用带盖塑料管或硅化玻璃管，但应保证血与抗凝剂的比例正确。 3.3.收到血标本后应尽快离心分离血浆，并尽快测量，全血储存在4-8℃不应超过2小时，室温下富含血小板血浆可存放3小时，去血小板血浆可存放2小时；4小时内不能测定的血浆应冷藏；不要把血浆置于37℃条件下超过10分钟。应了解不同存放温度和时间对各种凝血因子活性检测的影响。 4.材料 4.1.试剂的选择一方面要根据所用检测仪器，例如：光电检测法的凝血仪不宜用透光度差的试剂；另一方面要根据实验试剂对疾病的敏感性，例如APTT试剂中所用活化剂不同（可用白陶土、硅藻土和鞣花酸），该试剂对肝素、凝血因子Ⅷ和因子Ⅸ缺乏及狼疮样抗凝物敏感性不同，所以需根据检测项目来选择不同活化剂。(例如常用的APTT试剂的活化剂，以白陶土对凝血因子敏感，硅土对因子及肝素均敏感，鞣花酸对狼疮样抗凝物敏感性较强.PT试剂的选择也一样,例如对口服抗凝药物(华法令)检测应选择ISI与1.0接近的PT试剂。)血栓与止血检验应尽可能选用仪器生产厂家推荐的配套试剂，并选择使用与仪器原理相匹配的试剂。
静脉采血技术操作规范 一、操作目的为患者采集、留取静脉血标本 二、准备 1、个人准备：着装整齐，洗手，戴口罩 2、用物准备：治疗盘内：治疗盘、碘伏、棉签、止血带、采血针1-2个、真空采血管，污物杯、输液贴、一次性治疗巾，试管架、手消毒凝胶、锐器盒 3、环境准备：洁净，宽敞，光线适宜 三、评估要点 1、询问、了解患者是否按要求进行采血前准备。 2、是否空腹。 3、病情、一时状态、合作程度。 4、局部皮肤及血管情况。 四、操作程序 1、核对医嘱及试管条形码。 2、核对患者姓名、床号、住院号（呼唤患者、核对床头卡及手腕带），评估患者病情、血管情况，向患者解释目的和注意问题、询问患者是否进食 3、一看：初步选择采血静脉，在穿刺部位肢体下放一次性治疗巾、止血带 二扎：在穿刺部位上方（近心端）约6cm处扎止血带，末端向上，嘱患者握拳 三摸：以手指探明所选静脉的走向和深浅 4、以穿刺点为中心常规消毒，待干，消毒直径范围大于5cm 5、再次核对患者检验时间、项目及标本容器是否一致。 6、左手拇指绷紧静脉下端皮肤，使其固定。一手持采血针，针头斜面向上，与皮肤成15~30角自静脉上方或者侧方刺入皮下，再沿静脉走向滑行入静脉，见回血，再顺静脉进针少许，用胶贴固定蝶翼，采血针另一端与真空管相连，当采集到需要量时反折针头，换采血管，采血顺序：血培养--不含添加剂的采血管--凝血标本管--其他标本管 7、松止血带，嘱患者松拳，用干棉签轻压穿刺点上方快速拔出针头，指导患者或家属正确按压。 8、再次核对标本标签条形码内容、床号姓名，撤去治疗巾。 9、协助患者取舒适卧位，予相关知识宣教，整理床单位，处理生物垃圾，洗手。 五、注意事项 1、核对：患者身份：床号、姓名、电子条形码、腕带 2评估：患者病情、意识及合作程度，需空腹采血者了解空腹时间、血管状况和肢体活动度等 3、采集：按无菌操作原则穿刺，见回血后按顺序依次插入采试管中（血培养—红管—蓝管—绿管—紫管—黑管） 4、操作完毕宣教：穿刺部位压迫力度、时间以不出血为宣，禁止局部按摩 5、一般在早晨空腹安静状态下或禁食6h以上采集，输入脂肪乳时应等待8h后采集，否则为脂血 6、禁止从输液测肢体采血，避免用力挤压或指腹按摩取血 7、同时采集多种标本时，根据采血管的要求依次采集 8、尽可能缩短止血带的结扎时间 9、采集时血液速勿过快或过慢，以免引起溶血；血液沿着试管壁流入 10、标本避免过度震荡及禁止旋转在高温、低温的环境中以免溶血 11、注意不同体位采血，检验的结果不同，如：立位比卧位血浆总量少12% 12、及时送检 13如遇多项检验者，应捆绑送检
血培养标本的采集与运送操作规程 1、确保血标本样本培养的准确性。 2、采集血标本做细菌培养。 一次性换药弯盘、碘酊、75%酒精、血培养瓶2套、10ml注射器2支、止血带 1、洗手、戴口罩。 2 至消毒区域直径达5cm30S75%酒精 消毒---碘酊消毒---75%酒精消毒待干。 3 4、外周血标本采集参照护理部静脉血采集法。 5 10ml射器回抽导管5ml10ml注射器采集血样标本后立即注入血培养瓶内。再用10ml无菌生理盐水脉冲式冲洗导管管腔内的残留血后给予封管液3ml 后夹闭导管或继续输液治疗。 6、穿刺取血后排尽针 5分钟。 712小时。 1、检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。 2 3124h后。4 能确定时病原菌。 510：18-10ml2ml。62小时内。血培养瓶送到检验
血液培养标本采集的注意事项 血培养标本采集和运送是血液细菌培养成功的重要环节！但由于标本的采集和运送常有护士或医生完成,所以也是最容易忽视的事情，由于不了解问题所在，引发的主要后果是血培养阳性率下降，这也是目前国内血培养阳性率低的主要原因。因此,临床微生物检验标本采集应规范化。 1、最佳采血时间：尽可能在抗菌药物使用前，尽可能在寒颤和发热初起前30分钟-1小时为好。采血的环境应相对洁净。 2、静脉穿刺消毒：严格按照皮肤消毒步骤操作（建议使用洗必泰）。 血液培养必须特别强调严格消毒，避免皮肤表面或环境细菌造成污染。 皮肤消毒严格执行以下三步法：①70%酒精擦拭静脉穿刺部位30 s以上；②1%~2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3 cm以上；③70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消毒60 s，待酒精挥发干燥后采血。 3、培养瓶的消毒：弃去瓶顶塑料帽,用75%乙醇棉球消毒瓶顶橡皮塞,待干60秒。 培养瓶消毒程序：①70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60 s；②用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精。 4、采得的血首先应注入需氧瓶，然后再注入厌氧培养瓶，有利于更好地分离出真菌、绿脓杆菌和嗜麦芽窄食单胞菌。 血培养次数和采血时间：采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，在24 h内采集2~3次做血培养（一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养）。入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采集2份。可选用能中和或吸附抗菌药物的培养基。对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5~1 h采集血液，或于寒战或发烧后1 h进行 5、采血装置和最小采血量： 成人：10ml/瓶。 新生儿：1～3ml/瓶。 6、常规血培养应该包括至少一个需氧培养瓶和一个厌氧培养瓶，称为“1套血培养”。 7、采集后的转运应≤2 小时，常温转运，禁止冰箱保存。 8、采集频次：应该24小时采3套，以提高阳性率。 9、常见疾病的采血频次和采血量：
凝血四项检测应注意的问题 血浆凝血酶原时间(PT)、活化部分凝血活酶时间(APTT)、凝血酶时间(TT)、纤维蛋白原(FIB)简称凝血四项，是临床常用的血栓与止血筛查试验，它的准确检测对出血性或血栓性疾病初步诊断、指导临床用药、患者术前准备等起到非常重要的作用。但在工作中发现有一些因素常影响到结果的准确性，现总结如下。 1 标本因素 1.1 抗凝剂的选择及其与血液的比例抗凝剂为109 mmol/L的枸橼酸钠，因枸橼酸钠对凝血因子Ⅴ、Ⅷ有保护作用。枸橼酸钠0.2 ml，血液1.8 ml，按1：9比例，当HCT＞55%或HCT＜25%时，应调整抗凝剂用量：抗凝剂量(ml)=(100%-HCT)×血量(ml)×0.001 85［1］。据报道血液量增加0.05 ml可使凝固时间缩短，减少0.5 ml可使凝固时间延长。 1.2 标本采集采血前患者应处于空腹，平静、放松状态，因剧烈运动和情绪激动都会引起因子活性及血小板数量上升，凝血和纤溶活性增强，影响检测结果。采血时止血带不应扎得太紧、时间过长，采血针头不能太细，要一针见血，以防穿刺损伤或组织液混入血液，促使凝血酶形成，加速血液凝固，影响结果。采血后立即将血液和抗凝剂充分混匀，但不要用力过大，以免标本出现凝集或溶血，凝血因子消耗或激活，影响结果。绝对禁止从输液管或输液侧手臂取血，以防药物影响及血液稀释。 1.3 标本的存放与运送标本在正确采集并准确核对后(切忌张冠李戴)，需在室温下立即送检，低温会损伤血小板，活化部分凝血因子，使PT、APTT结果缩短。血液离体后即开始变化，随存放方式和时间的不同，凝血因子逐渐消耗而导致检验结果不同［3］。 2 仪器与试剂 我们使用的是法国STAGO公司生产的全自动血凝仪，仪器状态的好坏直接影响实验的结果，所以环境条件一定要适合仪器的要求，做好仪器的保养与维护，确保仪器的正常运行，不要在仪器附近接打手机。试剂应选择匹配试剂，稀释试剂要用去离子蒸馏水。试剂应放4℃保存，复溶的试剂需新鲜配制，否则复溶时间越长对结果的准确性影响越大。试剂要在有效期内使用，所用计量器具要准确无误，标本经离心机离心后不应升温。 3 实验人员因素 操作人员的能力及责任心对于结果的准确性起至关重要的作用。操作人员必须经过培训、熟悉仪器性能、能处理常见故障方可上机。同时操作人员要具备一定的临床知识，了解影响凝血4项的常见疾病和药物，以免不必要的复查，浪费试剂和时间。操作人员要加强与患者和与临床的沟通，对于一些与临床不符、难
凝血四项内容与正常值及意义 乐安中心卫生院钟恒 一.凝血因子测定： 1活化部分凝血活酶时间（APTT）：秒数:25-37，需与正常对照比较超过10s以上异常 2凝血酶原时间（PT）：秒数:11-14 ，需与正常对照超过3s以上异常。活动度:80-120% INR:0.8-1.2 3纤维蛋白原（FIB）：2-4 g/L 二.纤维蛋白溶解检测： 4凝血酶时间（TT）：秒数:12-16 需与正常对照超过3s以上异常 各项意义： PT：主要反映外源性凝血系统状况，其中INR常用于监测口服抗凝剂。延长见于先天性凝血因子ⅡⅤⅦⅩ缺乏及纤维蛋白原缺乏，后天凝血因子缺乏主要见于维生素K 缺乏、严重的肝脏疾病、纤溶亢进、DIC、口服抗凝剂等；缩短见于血液高凝状态和血栓性疾病等； APTT：主要反映内源性凝血系统状况，常用于监测肝素用量。增高见于血浆因子Ⅷ、因子Ⅸ和因子XI水平减低：如血友病A、血友病B及因子XI缺乏症；降低见于高凝状态：如促凝物质进入血液及凝血因子的活性增高等情况； TT：主要反映纤维蛋白原转为纤维蛋白的时间。增高见于DIC纤溶亢进期，低（无）纤维蛋白原血症，异常血红蛋白血症，雪中纤维蛋白（原）降解产物（FDPs）增高；降低无临床意义。
FIB：主要反映纤维蛋白原的含量。增高见于急性心肌梗死减低见于DIC消耗性低凝溶解期、原发性纤溶症、重症肝炎、肝硬化； 凝血酶原时间（PT）：秒数:11-14 ，需与正常对照超过3s以上异常。活动度:80-120% INR:0.8-1.2 PT:凝血酶原时间是检查外源性凝血因子的一种过筛试验，是用来证实先天性或获得性纤维蛋白原、凝血酶原、和凝血因子Ⅴ、Ⅶ、Ⅹ的缺陷或抑制物的存在，其中INR用于监测口服抗凝剂的用量，是监测口服抗凝剂的首选指标活化部分凝血活酶时间（APTT）：秒数:25-37，需与正常对照比较超过10s以上异常 APTT 检查内源性凝血因子的一/种过筛试验，是用来证实先天性或获得性凝血因子Ⅷ、Ⅸ、Ⅺ的缺陷或是否存在它们相应的抑制物，同时，APTT也可用来凝血因子Ⅻ、激肽释放酶原和高分子量激肽释放酶原是否缺乏，由于APTT的高度敏感性和肝素的作用途径主要是内源性凝血途径，所以APTT成为监测普通肝素首选指标。 凝血酶时间（TT）：秒数:12-16 需与正常对照超过3s 以上异常 TT凝血酶时间测定凝血酶时间延长见于肝素增多或类肝素抗凝物质存在、如SLE、肝病、肾病等，低（无）纤维蛋白血症、异常纤维蛋白原血症、纤维蛋白原降解产物（FDP）增多、如DIC、原发性纤溶等。 纤维蛋白原（FIB）：2-4 g/L FIB纤维蛋白原纤维蛋白原即凝血因子Ⅰ，是凝血过程中的主要蛋白质，FIB 增高除了生理情况下的应激反应和妊娠晚期外，主要出现在急性感染、烧伤、动脉粥样硬化、急性心肌梗死、自身免疫性疾病、多发性骨髓瘤、糖尿病、妊高症及急
静脉血标本采集操作规程 1. 目的 抽取静脉血标本以做各项检验。 2. 适用范围 适用于本科做生化、免疫、血常规等项目所需血液标本的采集。 3. 物品准备：止血带、一次性垫巾、无菌棉签、复合碘消毒液、一 次性采血针、负压真空管（数量和种类根据要求选取后检查灭菌日期、有效期及有无漏气）、试管架、编号笔、口罩。 4. 检验申请单填写要求： 4.1 检验申请单用钢笔填写，使用正楷字，字迹清楚，填写完整。 4.2 填写内容包括：受检者姓名、性别、年龄、临床诊断、送检标本、检验项目、标本采集年月日时、申请医生及采样者签名。 5. 操作步骤： 5.1 查对检验申请单、受检者姓名及是否已按医嘱准备，向受检者解释操作目的，以取得合作。在采血管上贴好与检验申请单相对应的标签。 5.2 选择血管，常用肘窝静脉、肘正中静脉、前臂内侧静脉，小儿可采用颈外静脉、大隐静脉。 5.3 在穿刺部位肢体下放一次性垫巾、止血带。 5.4 用复合碘棉签消毒穿刺部位。
5.5 在静脉穿刺部位上方4-7厘米处扎止血带，嘱受检者握紧拳头，使静脉充盈显露。 5.6 穿刺:推荐使用真空采血技术。摘掉静脉穿刺针上的保护套，进行静脉穿刺，穿刺成功后，用贴好标签的负压真空管采集静脉血，松开止血带，受检者松拳，用棉签压住进针处，拔出针头，嘱采血对象按压2-3分钟。 5.7 为受检者整理衣袖。 5.8 采血完毕后，产生的医疗垃圾按规定分类处理。 6. 注意事项 6.1 采血前应核对好姓名和检验项目，明确标本要求。 6.2抗凝管收集血标本后，立即将试管轻轻颠倒5～6次，使血液与抗凝剂充分混匀。 6.3 一般生化、免疫检验用干燥非抗凝管收集标本，采样量3-5ml。若检验项目较多，应适当增加采样量。 6.4 血常规检验用EDTAK2抗凝管收集标本，采样量0.5-1毫升。 6.5 凝血四项、血红蛋白电泳、3P试验用枸橼酸钠（0.2ml）抗凝管收集标本，采样量必须准确，为1.8ml。血沉用枸橼酸钠0.4ml抗凝，抽血1.6ml。 6.6 高铁血红蛋白还原试验（G6PD）以枸橼酸钠0.2ml抗凝，另加入葡萄糖20mg，抽静脉血1.8ml，混匀。 6.7 糖化血红蛋白测定需用肝素管抗凝。 6.8 血液粘度测定需同时抽取血常规、血沉和肝素抗凝血（5ml）三份样本。 6.9 餐后，血糖、血脂可增加而影响测定结果，故一般应空腹抽血。有些食物成分：高蛋白、高脂及饮食可引起血中蛋白、血脂、尿酸增高；香蕉、咖啡等可引起尿中儿茶酚胺代谢产物的测定等。 6.10 药物影响：如异菸肼、庆大毒素、氨芐青毒素可使谷丙转氨酶活性增高、咖啡因
检验项目标准操作规程（SOP -1 -检验标本的米集 一、标本的正确采集 标本米集必须符合 2个条件，即必须满足检测结果正确性的各项要求和检测结果必须能真实地反映检验对象当前病情，避免干扰因素的存在。 二、标本的贮存 标本采集后尽快送至实验室，若不能及时送检，已采集的标本要按检验规定的贮存条 件，如室温、冰浴、温浴或防腐贮存，将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中， 避免振摇，以免标本遗洒或溶血影响检测结果。 三、标本的运送 必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结 果一致。 四、标本的签收 临床工作人员从口才采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验 室人员接收临床标 本，均应按标准化要求进行，做到认真核对，包括标本来源、标本属
性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等，标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。 五、标本的处理 1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理，否则会影响检测结果的准确 性。 2、如果取血后未尽快转送或分离血清、血浆，血清与血块簪时间接触可发生变化。 3、实验室接收标本后处理应注意事项： （1）、时间：实验室接收标本后应尽快予以分类和离心。①、促凝 标本应尽早处理，可在米血5-15分钟后离心；②抗凝标本可米血后立即离 心；③非抗凝（无促凝）标本采血30-60分钟后离心； ④抗凝全血标本（全血细胞分析、ESF等）不需要离心。 （2）、温度：一般标本为室温（最好是22-25 C）放置；冷藏标本（对温度依赖性分析物）应保持在2-8 C直到温度控制离心。 （3）、采血管放置：应管口（盖管塞）向上，保持垂直立位放置。 （4）、采血管必须封口：管塞移去后会使血PH改变，影响检测结果, 封口可以减少污染、蒸发、喷洒和溢出等。 六、分析前的可变因素 1、生物因素：可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无 关，分为可变的和固定的生物因素。 2、干扰因素：在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。 七、标本采集的基本原则
呼吸科纤维支气管镜操作流程
气管镜室工作检查人员须知 一、严格执行无菌操作规程。 二、气管镜室内勿大声喧哗，手机置于静音状态。 三、检查操作时勿穿隔离衣外出。 四、检查完毕后物归原处（拖鞋等）和按要求将医用、生活垃圾分 类放置。 五、气管镜操作时内禁止会客、饮食、摆放与气管镜检查无关的物 品。
气管镜室医护技工人员岗位职责 1、在科主任的领导下，做好本管理室的各项工作，严格 执行岗位责任制，严格执行各项仪器操作规程。 2、遵守院规、院纪、不迟到、不早退，有事、有病需请假， 得到允许后方可离开。 3、做好气管镜检查病人的预约工作，做好病人的术前解释， 术中配合，术后指导工作，审核患者知情告知书签字情况。 4、严格核查气管镜病人的标本，及时送检、及时分发气管 镜报告并做好登记工作。 5、严格执行操作室的清洁、消毒制度，预防院内感染，严 格执行医疗废物管理条例制度。 6、严格执行气管镜消毒隔离制度实施细则，严格执行气管 镜定期细菌培养与登记制度。 7、做好突发事件、不良事件、院内感染的上报登记工作。 8、保证抢救仪器、物品、药品的完好和备用状态（登记、 更换、补充、整理）。 9、做好仪器设备使用、维修、保养记录（气管镜测漏和登 记）。 10、严格执行呼吸内镜操作准入制度。
气管镜室消毒隔离管理制度 1、病人诊疗室、清洗消毒室、内镜储藏柜、清洗消毒室应保持良 好的通风，诊疗室配空气消毒机，确保室内空气清洁。 2、保持各室的清洁，诊疗室、清洗消毒室操作结束后，吸引器、 吸引管、用含氟消毒剂清洗消毒。 3、从事内镜诊疗时，医护人员需戴好口罩和帽子。 4、工作人员清洗和消毒内镜时，应穿戴必要的防护用品，包括工 作服、口罩、帽子、手套防护眼罩等。 5、活检钳必须一人一用一消毒，供应室高压灭菌。 6、每日诊疗工作开始前，必须对当日拟定使用的消毒内镜进行再 次消毒，消毒时间不少于5分钟，冲洗、干燥后，方可用于病 人诊疗。 7、使用后的内镜及附件应按照《内镜清洗消毒技术操作规范》的 有关隔离要求（水洗—酶洗—清洗—消毒火灭菌—冲洗）。禁止 使用非流动水对内镜进行清洗。内镜及附件的清洗、消毒时间 应使用计时器控制。 8、使用后的气管镜采用邻苯二甲醛浸泡，浸泡时间不少于5分钟； 结核杆菌、其他分支杆菌的的书感染患者使用后的内镜浸泡时 间不少于15分钟，当日不再继续的内镜采用邻苯二甲醛浸泡消 毒5分钟，浸泡消毒后的气管镜用灭菌蒸馏水冲洗。 9、气管镜室应当做好内镜清洗消毒的登记工作（包括患者姓名、 内镜编号、清洗时间、消毒时间、操作者姓名）。
检验技术操作规程 目录 一、全自动血液细胞分析仪操作规程-------------------1 二、尿液分析仪使用规程-----------------------------4 三、自动凝血仪操作规程-----------------------------6 四、半自动生化分析仪操作规程-----------------------8 五、血常规检验操作规程-----------------------------9 六、尿常规检验操作规程----------------------------11 七、肝功能检验操作规程----------------------------12 八、肾功能检验操作规程----------------------------14 九、血脂检验操作规程------------------------------18 十、血液葡萄糖测定技术操作规程--------------------24 十一、凝血四项检验操作规程------------------------26 十二、AB0血型正反血型鉴定技术操作规程-------------28
一、全自动血液细胞分析仪操作规程 1.样品分析前准备 1.开机前的检查准备 2．在开启分析仪电源之前操作者须按以下要求进行检查 3.释液清洗液溶血素是否充足有无过期试剂管路是否弯折连接是否可靠 4.电源线是否正确连接 5.废液桶是否清空 6.UPS电是否足够打印纸安装是否正确是否足够 7.确保键盘正确连接到键盘接口上 8.打开分析仪后面的电源开关电源指示灯亮屏幕上显示Initializing 9.分析仪进行初始化整个初始化过程持续约4～7分钟 10.初始化过程结束后系统自动进入计数界面 2.动物类型选择 1.按[菜单]键移动光标选择动物按[确认]进入动物界面
凝血四项分析的质量控制 核心提示:【摘要】nbsp;nbsp; 目的：探讨影响凝血四项分析质量的主要因素。方法：采用Thromboscreennbsp;400C自动血液凝血分析仪测定。结果：样本量采集过多或过少，样本溶血，有凝块以及离心时间不足都将影响凝血四项结果的准确性。结论：样本的正确采集与检验人员的 作者：李华,顾胜芳,刘静作者单位：(遵义市人民医院,贵州遵义563000) 【摘要】目的：探讨影响凝血四项分析质量的主要因素。方法：采用Thromboscreen 400C自动血液凝血分析仪测定。结果：样本量采集过多或过少，样本溶血，有凝块以及离心时间不足都将影响凝血四项结果的准确性。结论：样本的正确采集与检验人员的规范操作是凝血四项检测结果准确性的保障。 【关键词】凝血四项；分析；质量控制 随着血栓与止血疾病有不断上升的趋势，血栓与止血的检验技术也有新的发展。凝血酶原时间(PT)，活化部分凝血活酶时间(APTT)，凝血酶时间(TT)，纤维蛋白原(FIB)测定是临床上常用的血栓与止血筛查试验，对患者的术前准备，出血性疾病或血栓性疾病的初步诊段和用药疗效的评估与监测有直接指导作用。因此，凝血四项分析的质量控制显得十分重要，无论是分析前患者的准备，样本的采集，运送，保存，试剂的选用，复溶，预温和储存，仪器的选择，保养，监控和校准，检验人员的熟悉程度，操作规范的执行情况，都将影响检测结果的准确性。为了提高血凝的检测质量，本文对我院2005年1月至2008年7月在检测中遇到的影响检测结果的因素作如下报道。 1 材料和方法 1.1 样本来源 2005年1月至2008年7月在我院就诊的门诊和住院病人，收集重新采集复查有问题样本63例。 1.2 仪器和试剂 Thromboscreen 400C自动血液凝血分析仪试剂为上海太阳生物技术公司生产。 1.3 样本采集与检测 使用真空静脉抽血管，抗凝剂为109 mmol/l枸橼酸钠0.2 ml，抽取静脉血1.8 ml，抗凝剂与血的比例应为1:9，3 000 r/min离心15 min，4 h内测定。 1.4 统计方法 采用两样本均数的t检验。 2 结果 2.1 样本采集量对检测结果的影响 (见表1) 无论是血量>1.8 ml，还是<1.8 ml，都将使PT，APTT结果延长。表1 样本采集量对检测结果的影响（略）注：与原检测结果比较P<0.01。
FX400血培养仪操作规程 1．基本原理 培养瓶内的各种营养物质可提供微生物生长的物质基础，而微生物生长过程中的代谢产物之一CO2将激活瓶内底部荧光感应物质而发出荧光，荧光信号变化与CO2变化成正比。仪器瓶位内的探测器探测到该荧光信号的变化并经一组运算公式的运算，得出荧光信号变化的各种参数，从而判断培养瓶内是否有微生物生长。BACTECFX设定瓶位探测器检测与计算时间间隔为每10分钟一次，并根据运算结果提供生长曲线。 2．培养瓶种类
? 树脂对标本内的抗生素有吸附作用，建议对来源于使用过抗生素患者的标本均应采用树脂瓶 ? 标本注入培养瓶后请尽快上机，如因故延迟，则应保证在规定时间之内上机： 各类树脂瓶/儿童瓶/含溶血素厌氧瓶： 35 ℃≤20 小时， 25 ℃≤48小时， 各类标准瓶： 35 ℃≤12小时， 25 ℃≤48小时， ? 对于每一次采样，建议至少同时做一个需氧瓶与一个厌氧瓶，并在不同时间、不同部位做三次采样，以提高阳性检出率。 3．仪器基本状况 主机外部电源开关、指示灯及显示器 1. 电源开关
2.仪器外部指示灯 3.培养箱内培养瓶的状态颜色显示 状态 闪烁 黄（转换） 所有指示灯 BD Bactec TM FX血培养仪器简易操作流程 一、放入培养瓶 1、仪器回到主屏幕 2、打开任一有空位的抽屉 3、扫描培养瓶条形码 4、将培养瓶放入任一空位（亮绿灯的位置），
5、重复3-4动作，直至把所需培养瓶全部放入。关闭抽屉 1、2、3、4、5、 二、取出阳性培养瓶 1、仪器回到主屏幕 2、打开有阳性瓶的抽屉 3、逐个取出阳性培养瓶(红灯闪亮的位置)，并扫描该培养瓶的条形码 4、关闭抽屉 1、2、3、4、 三、取出阴性培养瓶 1、仪器回到主屏幕 2、打开有阴性瓶的抽屉 3、逐个取出阴性培养瓶(绿灯闪亮的位置) 4、关闭抽屉 1、2、3、4、 四、解决匿名瓶 1、仪器回到主屏幕 2、打开有匿名瓶的抽屉 3、取出匿名瓶(黄灯闪亮的位置)，并扫描该培养瓶条形码 4、将培养瓶放回原位或任一亮绿灯的空位 5、重复3-4动作，直至解决所有匿名瓶。关闭抽屉。 1、2、3、4、5、生长曲线查询Plot 注： FX仪器可查找培养瓶从机器取出14天内的生长曲线。
检验项目标准操作 规程
检验标本的采集 一、标本的正确采集 标本采集必须符合2个条件, 即必须满足检测结果正确性的各项要求和检测结果必须能真实地反映检验对象当前病情, 避免干扰因素的存在。 二、标本的贮存 标本采集后尽快送至实验室, 若不能及时送检, 已采集的标本要按检验规定的贮存条件, 如室温、冰浴、温浴或防腐贮存, 将标本直立置于稳定、干燥、避光、密闭的环境中, 避免振摇, 以免标本遗洒或溶血影响检测结果。 三、标本的运送 必须保证运送后标本所分析的结果与刚采集标本后分析的结果一致。 四、标本的签收 临床工作人员从口才采集标本并将标本从临床运送到实验室及实验室人员接收临床标本, 均应按标准化要求进行, 做到认真核对, 包括标原来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等, 标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。 五、标本的处理 1、实验室接收标本后应及时正确地予以处理, 否则会影响检测
结果的准确性。 2、如果取血后未尽快转送或分离血清、血浆, 血清与血块簪时间接触可发生变化。 3、实验室接收标本后处理应注意事项: ( 1) 、时间: 实验室接收标本后应尽快予以分类和离心。 ①、促凝标本应尽早处理, 可在采血5-15分钟后离心; ②抗凝标 本可采血后立即离心; ③非抗凝( 无促凝) 标本采血30-60分钟后离心; ④抗凝全血标本( 全血细胞分析、ESR等) 不需要离心。 ( 2) 、温度: 一般标本为室温( 最好是22-25℃) 放置; 冷藏标本( 对温度依赖性分析物) 应保持在2-8℃直到温度控制离心。 ( 3) 、采血管放置: 应管口( 盖管塞) 向上, 保持垂直立位放置。 ( 4) 、采血管必须封口: 管塞移去后会使血PH改变, 影响检测结果, 封口能够减少污染、蒸发、喷洒和溢出等。 六、分析前的可变因素 1、生物因素: 可引起所检测物质在体内的变化, 此种变化与检测 方法无关, 分为可变的和固定的生物因素。 2、干扰因素: 在收集和分析标本过程中, 干扰因素常导致分析结 果与被测物真实浓度不符。 七、标本采集的基本原则 遵照医嘱采集各种标本均应按医嘱执行。凡对检验申请单有疑问, 应核实清楚后再执行。
Sysmex-CA50凝血四项操作规程 1.目的 规范凝血四项（PT、APTT、TT、FIB）的测定。 2.实验原理 凝固法原理：在确定量的血浆样本经过一定时间的加温后，加入试剂后，采用波长为660nm 的光照射样本。凝血过程（纤维蛋白原转化为纤维蛋白）中血的浑浊度可以通过测量散射光光强度的改变来测定。从散射光光强度的测定，可以做出凝血曲线，求得血液凝固时间。3.标本要求 3.1.标本准备：采用塑料采血管或硅化玻璃注射器静脉采血，针头必须为21号以上，儿童可用23号。采血技术熟练，采血时止血带不可束缚过紧，并且以1分钟完成为宜，最多不宜超过3分钟以免某些凝血因子及纤溶因子活化。 3.2.抗凝剂选择：以109mmol/L枸椽酸钠溶液为佳，血与抗凝剂按9：1混合。建议用已加有抗凝剂的硅化真空采血管。也可用带盖塑料管或硅化玻璃管，但应保证血与抗凝剂的比例正确。 3.3.收到血标本后应尽快离心分离血浆，并尽快测量，全血储存在4-8℃不应超过2小时，室温下富含血小板血浆可存放3小时，去血小板血浆可存放2小时；4小时内不能测定的血浆应冷藏；不要把血浆置于37℃条件下超过10分钟。应了解不同存放温度和时间对各种凝血因子活性检测的影响。 4.材料 4.1.试剂的选择一方面要根据所用检测仪器，例如：光电检测法的凝血仪不宜用透光度差的试剂；另一方面要根据实验试剂对疾病的敏感性，例如APTT试剂中所用活化剂不同（可用白陶土、硅藻土和鞣花酸），该试剂对肝素、凝血因子Ⅷ和因子Ⅸ缺乏及狼疮样抗凝物敏感性不同，所以需根据检测项目来选择不同活化剂。(例如常用的APTT试剂的活化剂，以白陶土对凝血因子敏感，硅土对因子及肝素均敏感，鞣花酸对狼疮样抗凝物敏感性较强.PT试剂的选择也一样,例如对口服抗凝药物(华法令)检测应选择ISI与1.0接近的PT试剂。)血栓与止血检验应尽可能选用仪器生产厂家推荐的配套试剂，并选择使用与仪器原理相匹配的试剂。 4.2.正常对照血浆：正常对照血浆有商品供应，多为冻干品，也可自制，要求采集20份以上男女各半，年龄在18-25岁之间的健康个体，删除服药者，须在平静状态下采血，血液经抗凝离心后分离血浆。取等量的各份个体血浆进行混匀，然后分装小瓶，冻存于-80℃或冷冻干燥备用。 4.3.参比血浆或称标准血浆（质控血浆）：为了使检测结果在同一实验室的不同时期或不实验室间具有可比性，就要使用标准品。 5.仪器与试剂 5.1仪器：sysmex CA-50半自动化血凝分析仪。 5.2试剂：上海太阳生物技术有限公司。 5.3仪器安装后应对其主要性能参数进行评价，内容包括精密度、线性范围、可比性、抗干扰试验试验等。评价结果应在仪器说明书标示范围之内。 5.4 仪器在测定常规标本前应使用配套的校正物建立标准曲线，在更换新批号的试剂或仪器维修后，要重新建立标准曲线。无校正物的测定项目，可伤使用配套的定值质控物进行测定，测定结果应在定值质控物标示的允许范围内。 5.5 每台仪器上使用的凝血活酶试剂应有特定的ISI（国际敏感指数）值，这样才能使患者INR（国际标准化凝血酶原时间）比值的结果有可比性。
血培养标本采集操作流程及要点说明【精华】1 静脉血标本采集操作流 程 ..................................................................... (1) 血液标本的采 集 ..................................................................... .......................................................... 2 鹤壁京立医院血培养标本采集、运送与报告标准操作规程 (SOP) (2) 第六节交叉配血标本的采 集 ..................................................................... .. (4) 静脉血标本采集操作流程 (2012年8月7日第3次修改) 一、准备 即开即采: 核对医嘱、检验单?到床头查对床号、姓名?交流?解释目的、方法?评估患者(病情、观察穿刺部位皮肤和静脉情况、是否需要空腹采血)?评估环境(开灯、开窗等)?操作者自身评估?准备试管及其它采血所需用物、心中明确各试管采血量?在电脑内进行第一次扫码登记 采次晨血:晚班核对晨血交接本与医嘱单?根据医嘱备管?对床号、姓名、检验项目、检验单、试管、电脑(是否已录入及审核)?第一遍扫码?夜班再次查对床号、姓名、检验项目、检验单、试管、电脑(第一遍扫码的准确性:是否试管上A病人的条码扫给了B病人)?进行病人、环境、自身及其它用物评估
二、实施 带用物至床旁(端治疗盘或推治疗车)?对床号、姓名?解释操作目的?结合患者实际情况取所需体位?戴口罩、手套?再次查对标本容器及检验单?在所选静脉上方扎压脉带?嘱患者握拳，常规消毒皮肤待干?左手手指夹住一根干棉签并固定穿刺部位?右手持针穿刺血管?抽吸血液至所需量?松压脉带?松拳?干棉签按压?迅速拔针?移交给患者或家属按压穿刺部位?根据不同检验目的，将血标本注入相应容器中(若是注射器则应取下针头，注入顺序:先培养皿、再抗凝管、后普管)?注射器或采血针头丢入锐器盒?取压脉带、小枕?脱手套、洗手?取口罩?拉下衣袖?再次查对床号、姓名、检验项目、将试管条码贴在相应的检验单上?整理床单位?健康教育并告知获得结果的时间?污物分类处理?在电脑内进行第二遍扫码，即为电脑系统默认标本采样时间?电话通知支持中心送检(并告知是否为急诊标本)?洗手、签字?追踪是否在规定时间内及时送检 注意事项 1、采集血培养时应使患者头偏向操作者对侧，抽血后立即注入血培养瓶并轻轻颠倒混匀，立即送检，不得冷藏。 2、若患者正在静脉输液、输血，不宜在同侧肢体采血。 3、采血后指导患者按压穿刺点5-10分钟，勿揉，凝血机制差的患者适当延长按压时间。 4、急诊标本送检时间必须在30分钟内完成，越快越好。也就是说检验单上出现的采样时间和接受时间间隔不能超过30分钟。 5、若采集血培养用的是注射器则应更换针头后才能将血液注入培养瓶，若是用采血针则不必更换。 血液标本的采集 一、静脉血标本的采集 【护理目标】
动脉采血的操作流程 查看医嘱，二人核对无误 评估：患者的病情、凝血四项及有无吸氧、吸氧的浓度、穿刺处动脉搏动情况，桡动脉采血需做Allen实验，穿刺处皮肤情况。测量患者的体温。 患者准备：解释动脉采血的目的、方法，了解病人的心理、取得合作（急诊抢救例外）。 环境准备：环境清洁，光线明亮，符合操作要求，必要时使用屏风。 护士准备：护士服装整洁、符合要求，洗手、戴口罩。 用物准备：治疗盘，内备：洁尔碘消毒液，无菌棉签，动脉采血器，一次性垫巾、垫枕、弯盘，小冰盒、化验单。（检查有效期） 操作方法：1、携用物至患者床旁，核对、解释，取得配合。取合适体位：穿刺桡动脉，患者体位不受影响，以患者舒适、采血方便为宜。穿刺肱动脉，患者取坐位或平卧位；穿刺股动脉， 患者取平卧位。 3、垫垫巾和垫枕，触摸（桡）动脉搏动最明显处，快速手消洗手。用洁尔碘消毒液消毒穿 刺部位（以动脉搏动最强点为圆心，直径大于5cm）。 4、打开血气针，二次消毒；消毒操作者左手的食指和中指2遍。 5、拿一干棉签，将血气针预抽至1ml。 6、核对 7、用左手食指和中指触摸桡动脉搏动最明显处，右手持注射器与皮肤呈45～60度角穿刺， （若取股动脉穿刺采血则垂直进针）穿刺成功后抽取动脉血约1～2ml,（一次性动脉采 血专用注射器则血液自动流入针管内）。 8、取血后拔针，将针头斜面刺入橡皮塞内，以免空气进入影响结果。 9、无菌棉签压迫穿刺点至少5～10 分钟，勿揉，根据病情适当延长按压时间。 10、将血气针轻轻转动，使血液与肝素充分混合，防止凝血。放入冰盒。 11、核对，洗手，在化验单上签字，写上患者体温及抽血时间、有无吸氧及吸氧浓度。 12、告知注意事项。告知患者穿刺部位应禁止热敷、不要沾水，当日尽量不洗澡，以免引 起局部感染；穿刺部位同侧肢体避免提重物或剧烈运动，以免引起局部肿胀、疼痛， 如果出现肿胀、疼痛等症状要及时通知医护人员。 13、整理床单位，摆舒适体位，感谢配合。 14、及时送检。终末处理，整理用物。 15、流动水下七步洗手法洗手，做好记录。 16、10分钟后去病房观察患者穿刺部位有无出血、血肿、瘀斑等，收回棉签。 Allen试验方法步骤： ①操作者用双手同时按压患者采血侧的桡动脉和尺动脉； ②嘱患者反复用力握拳和张开手指5～7次至手掌变白； ③松开对尺动脉的压迫，继续压迫桡动脉，观察手掌颜色变化。若手掌颜色10s之内迅速变红或恢复正常，表明尺动脉和桡动脉间存在良好的侧支循环，即Allen试验阴性，可以经桡动脉进行穿刺，一旦桡动脉发生闭塞也不会出现缺血；相反，若10s手掌颜色仍为苍白，Allen试验阳性。这表明手掌侧支循环不良，不应选择桡动脉行穿刺。
凝血四项标准操作程序（SOP） 【】PT凝血酶原时间 APTT活化部分凝血活酶时间 FIB纤维蛋白原 TT凝血酶时间 【该SOP变动程序】 本标准操作程序的改动，可由任一使用本SOP的工作人员提出，并报述人员批准签字：专业主管、科主任。 【适用范围】 本产品适用于检测凝血因子。 【操作步骤】 1、使用1：9枸橼酸钠抗凝管采血2ML，离心速度为3000转/分，10 分钟取用上层血浆。 2、用加珠器在每个样品杯中放一粒钢珠，把样本杯置于预温槽内。 3、进入主菜单，用光标键移动光标，选择“测试”，按键“确认”，进 入实验菜单。 4、将试剂放于相应位置，预温孔或室温孔。 5、将标本加入样品杯（PT50ul，APTT50ul,FIB20ul血浆加180ulFIB稀 释液再取100ul，TT100ul）按预温槽相应的A BCD键，计时启动。 6、当达到预温时间时，发出嘟嘟声通知操作者，将样品杯从预温槽中 移至测试槽中，加入试剂（PT100ul，APTT50ul氯化钙，FIB100ul， TT100ul）进行测试。 7、使用联动加样器时，加试剂的同时，仪器自动启动计时器开始计时。 8、实验完成，记下各结果。 【维护与保养】 1，维护和保养方法 1.1保持清洁，特别是测试孔内的清洁尤为重要，严禁有异物进入。防 止受潮，腐蚀，远离强电磁场干扰源。应使用干燥的软布进行仪器表面 的清洁，不得使用强酸或强碱消毒剂擦拭仪器表面。 1.2 仪器应放置在平稳的工作台面上，不得摇晃与振荡。避免阳光直晒， 远离强热物体。 1.3 电源电压：220V,频率：50HZ，如当地电压不稳定，应使用稳压电源。 输入功率：不大于100VA(W),不与大功率电器共线并用。 1.4 熔断器的更换：当用户更换熔断器内的保险管时，应先关闭本系统， 拔下电源线，并严格按熔断器座旁标记的规格型号进行更换（熔断器规 格：2A/250V/20mm） 1.5 仪器内△!标记警告用户：仪器装有加热装置，保持设定的恒温 +-0.2℃，请不要在通电情况下触及。 1.6 加珠器严禁放入搅拌孔内，也不要放入邻近孔内，以免钢珠磁化。
医院检验科检验技术操 作规程 HEN system office room 【HEN16H-HENS2AHENS8Q8-HENH1688】
医院检验科检验技术操作规程 目录 第一节全自动血液细胞分析仪操作规程 第二节尿液分析仪使用规程 第三节自动凝血仪操作规程 第四节半自动生化分析仪操作规程 第五节血常规检验操作规程 第六节尿常规检验操作规程 第七节肝功能检验操作规程 第八节肾功能检验操作规程 第九节血脂检验操作规程 第十节血液葡萄糖测定技术操作规程 第十一节凝血四项检验操作规程 第十二节AB0血型正、反血型鉴定技术操作规程 第一节全自动血液细胞分析仪操作规程 1、样品分析前准备 开机前的检查、准备 在开启分析仪电源之前，操作者须按以下要求进行检查: 电源线是否正确连接。 废液桶是否清空。 UPS电是否足够，打印纸安装是否正确，是否足够。
确保键盘正确连接到键盘接口上。 .开机 打开分析仪后面的电源开关,电源指示灯亮，屏幕上显示“Initializing…”. 分析仪进行初始化，整个初始化过程持续约4～7分钟。 初始化过程结束后，系统自动进入“计数”界面。 动物类型选择 按[菜单]键，移动光标，选择“动物”，按[确认]进入“动物”界面。 操作者根据测量的动物类型，选择需要分析的动物类型。 按[菜单]键，选择“计数”，进入“计数”界面。再按[模式]键，将当前模式设置为“全血”模式。 确认状态指示区的计数状态为“就绪”，工作模式为“全血”。将准备好的全血样本放到采样针下，使采样针可以吸到样本且针头与容器底保持一定距离。 按计数键，启动样本分析过程。此时，状态指示区的计数状态为“运行”。 采样针自动吸取13ul的样本后蜂鸣器响，在采样针抬起后，移开样本。 分析完成后，按[F4]键进入“样本信息编辑”界面。按[F9]键进入汉字状态。在汉字状态下，按[F8]键在全拼和五笔输入法之间进行切换，输入样本信息，输入完成后，点击“确认”，保存输入的内容并返回到“计数”界面。