毛细管电泳又称高效毛细管电泳，是一类以毛细管为分离通道、以高压直流电场为驱动力的新型液相分离技术。实际上包含电泳、色谱及其交叉内容，它使分析化学得以从微升水平进入纳升水平，并使单细胞分析，乃至单分子分析成为可能。长期困扰我们的生物大分子如蛋白质的分离分析也因此有了新的转机。
主要特点
毛细管电泳通常使用内径为25-100 μm 的弹性（聚酰亚胺）涂层熔融石英管。标准毛细管的外径为375 μm，有些管的外径为160 μm。毛细管的特点是：容积小（一根100 cm×75 μm 管子的容积仅4.4 μL）；侧面/截面积比大，因而散热快、可承受高电场（100-1000 V/cm）；可使用自由溶液、凝胶等为支持介质；在溶液介质下能产生平面形状的电渗流。
由此，可使毛细管电泳具备如下优点：
（1）高效。塔板数目在105-106 片/m 间，当采用CGE 时，塔板数目可达107 片/m 以上；
（2）快速。一般在十几分钟内完成分离；
（3）微量。进样所需的样品体积为nL 级；
（4）多模式。可根据需要选用不同的分离模式且仅需一台仪器；
（5）经济。实验消耗不过几毫升缓冲溶液，维持费用很低；
（6）自动。CE是目前自动化程度较高的分离方法。
毛细管电泳的缺点是：
（1）由于进样量少，因而制备能力差；
（2）由于毛细管直径小，使光路太短，用一些检测方法（如紫外吸收光谱法）时，灵敏度较低；
（3）电渗会因样品组成而变化，进而影响分离重现性。
第六章毛细管电泳仪 * 绪言 1、概念：在极细的毛细管内所进行的各种形式的电泳，称为毛细管电泳(capillary electrophoresis，CE)。 2、类型：有毛细管区带电泳，胶束电动力学毛细管色谱、毛细管筛分电泳、毛细管等电聚焦电泳、毛细管等速电泳等。 3、毛细管电泳特点： (1)高效、快速、微量、可全部自动化。 (2)与高效液相色谱(HPLC)相比，毛细管电泳(CE)成本低，选择性大，且几乎不消耗溶剂。 (3)散热效率高，分离质量好。 (4)灵敏度和分辨率高，操作简便，污染小，应用范围广。 4、历史发展： 1967年：最先在3mm直径毛细管中作自由溶液的区带电泳。 1974年：用200～500 m内径的毛细管作电泳分离。 1981年：用75 m内径玻璃毛细管柱，加30kV电压实现电泳。 1984年：引入了胶束毛细管电动力学色谱的方法。 1987年：实现了毛细管等电聚焦及毛细管凝胶电泳。 1988年：首次利用CE作微量物质提取。并把激光引入CE检测器，大大提高了检测灵敏度。 第一节毛细管电泳的工作原理 一、带电粒子的迁移 (一) 偶电层和Zeta势 1、偶电层： 固体与液体接触时，若固体表面由于某种原因带一种电荷，则因静电引力会使其周围液体带有相反电荷，即在液-固界面形成偶电层，两者之间存在电位差，叫Zeta势。 * 毛细管电泳中，带电粒子表面和毛细管壁表面都有偶电层。 2、粒子的Zeta势： 电解质中的任何带电粒子被异性电荷的离子所包围，部分异性离子被吸附到粒子上，部分则游离在附近。被吸附的“固定”离子有一个切平面，和带电粒子间的电势差，称为粒子的Zeta势。 3、管壁的偶电层和Zeta势： (1)偶电层：毛细管一般为石英管，内表面为硅胶表面并带负电(pH>3) 。则管子中溶液的正离子因受静电引力就会聚集紧贴在表面附近，从而形成偶电层。 (2)Stern层：偶电层中由于吸附而紧贴在表面的离子叫Stern层；其它可移动的游离离子为扩散层，游离离子的电荷密度随与表面距离增大而急剧减小。 (3)管壁的Zeta势：Stem层和管壁表面间的电势差称为管壁的Zeta势。 * 偶电层的厚度 ： 管壁的Zeta势随与管壁表面距离增大而按指数规律衰减，使其衰减一个指数单位所需的距离叫偶电层的厚度 。 (二) 恒定场强下带电粒子的迁移 1、带电粒子移动速度v ep：电泳时，v ep为
毛细管电泳的基本原理及应用 摘要：毛细管电泳法是以弹性石英毛细管为分离通道，以高压直流电场为驱动力，依据样品中各组分之间淌度和分配行为上的差异而实现分离的电泳分离分析方法。该技术可分析的成分小至有机离子、大至生物大分子如蛋白质、核酸等。可用于分析多种体液样本如血清或血浆、尿、脑脊液及唾液等，比HPLC 分析高效、快速、微量。 关键词：毛细管电泳原理分离模式应用 1概述 毛细管电泳(Caillary Electrophoresis)简称CE，是一类以毛细管为分离通道，以高压直流场为驱动力的新型液相分离分析技术。CE的历史可以追溯到1967年瑞典Hjerten最先提出在直径为3mm的毛细管中做自由溶液的区带电泳(Capillary Zone Electro-phoresis，CZE)。但他没有完全克服传统电泳的弊端[1]。现在所说的毛细管电泳(CE)是由Jorgenson和Lukacs在1981年首先提出，他们使用了75mm的毛细管柱，用荧光检测器对多种组分实现了分离。1984年Terabe将胶束引入毛细管电泳，开创了毛细管电泳的重要分支: 胶束电动毛细管色谱(MEKC)。1987年Hjerten等把传统的等电聚焦过程转移到毛细管内进行。同年，Cohen 发表了毛细管凝胶电泳的工作。近年来，将液相色谱的固定相引入毛细管电泳中，又发展了电色谱，扩大了电泳的应用范围。 毛细管电泳和高效液相色谱（HPLC）一样，同是液相分离技术，因此在很大程度上HPCE与HPLC可以互为补充，但是无论从效率、速度、样品用量和成本来说，毛细管电泳都显示了一定的优势毛细管电泳（C E）除了比其它色谱分离分析方法具有效率更高、速度更快、样品和试剂耗量更少、应用面同样广泛等优点外，其仪器结构也比高效液相色谱（HPLC）简单。C E只需高压直流电源、进样装置、毛细管和检测器。 毛细管电泳具有分析速度快、分离效率高、试验成本低、消耗少、操作简便等特点，因此广泛应用于分子生物学、医学、药学、材料学以及与化学有关的化工、环保、食品、饮料等各个领域[2]。
除颤仪操作流程 一、准备 1、操作者准备：着装规范 2、评估:病人意识、颈动脉搏动、心电图显示、病人心前区监测电极的 连接情况，解释 3、患者准备：平卧，松开衣服纽扣，检查并除去金属及导电物，暴露 胸部、擦干除颤局部皮肤 4、用物准备：除颤仪（带电极板）、导电糊、电插板、急救用物 二、除颤 1、电极板涂上导电糊 2、按ON键，打开电源开关，选择正确的除颤方式 3、按ENERGYSELECT（能量选择）选择能量： 非同步除颤成人单相：200J-300J-360J 双相：120J-150J-200J 小儿2-5J/kg 同步电复律时：按医嘱进行，最小从50J开始 4、充电：按APEX电极板侧面手柄上的黄色按钮充电键（charge键）， 充电时红色指示灯亮，充满电时仪器会发出声音 5、放电：将电极板紧贴病人胸部，按Shock键，放电时，术者及其他 人员切勿碰到病床、病人或者任何连接到病人身上的设备（避开导电体） 三、观察 1、病人呼吸、心律、血压 2、电极板接触皮肤情况 3、视病情决定是否需要再次除颤 四、整理 1、关机 2、整理床单位 3、协助患者取舒适体位 4、整理用物分类放置
5、洗手、记录 备注： 1、操作时保持手干燥，可戴橡胶手套绝缘。忌空极板对空放电或单相 放电。 2、患者皮肤保持清洁、干燥，电极板必须涂满导电糊（或垫盐水纱布）、 电极板必须紧贴病人皮肤，以免烫伤皮肤。 3、仪器默认状态，为非同步除颤；按SYNC（同步）选择同步除颤。 4、非同步除颤的指征：室颤、室扑。同步除颤指征：房颤、房扑、室 速、室上速。 5、STERNUM电极板放置于右侧：心底部，即右侧锁骨中线2-3肋间； APEX电极板放置于左侧：心尖部，即左侧腋中线第5肋间。 6、整理用物时应擦拭电极板并检查记录纸、导电糊、电极片是否清洁 处理完毕，仪器放回原处并充电，处于备用状态。 除颤仪的维护与保养 1电极板的清洁与擦拭 电极板是Defi-B的组成部分，平时应置于电极板卡槽之中（仪器立放），每次使用结束之后都要及时对其进行清洁与擦拭。清洁与擦拭通过以下3个步骤来完成，即：（1）检查仪器是否关闭，如未关闭则须关闭；（2）沿逆时针方向旋下金属电极板，用湿润的抹布擦净电极板；（3）干燥后，重新旋紧电极板，可靠地置于卡槽中。在对电极板进行清洁与擦拭时，应注意不要损伤电极板。既不能用锐利的金属工具刮除附着的污垢，特别是不能对电极板的金属表面造成划损，也不可使用对电极板有腐蚀作用的酸、碱溶液。 2、电池的充电与更换 电池需要日常或定期的维护与保养。维护与保养有助于延长电池的使用寿命。将电源线插头插入交流电源插座，即为除颤仪电池充电。电量耗尽的电池，3-5h 即可充满。充电时应注意除颤仪对环境温度的要求（一般为0-40℃），尤其是温
毛细管电泳仪分离测定雪碧中苯甲酸钠 实验时间 2015-04-03 前言 实验通过毛细管电泳来分离测定雪碧中苯甲酸钠，用外标法测定含量。毛细管电泳仪分离原理是基于电泳与电渗两者的共同作用。 关键词 毛细管电泳仪电泳电渗外标法 实验原理 电泳指带电粒子在电场作用下作定向运动的现象。电泳有自由电泳和区带电泳两类，区带电泳是将样品加于载体上，并加一个电场。在电场作用下，得到良好的分离。因此，电泳又称电色谱。本实验通过使用毛细管电泳法对饮料中苯甲酸钠含量进行定性定量测量，得出了饮料中苯甲酸钠的含量。 毛细管电泳的特色在于其电泳过程在散热效率极高的毛细管内进行，故能够引入高的电场强度，从而全面改善分离质量。细柱子的最大优点有两个，一是减小电流，因此减少自热。二是增大散热面积（侧面积与截面积之比），加快散热。但也带来了进样和检测等技术方面的困难。 电泳与电渗： 电泳是在电场作用下带电粒子在缓冲溶液中的定向移动。 电渗是一种液体相对于带电的管壁移动的现象。由于毛细管材料通常为熔融硅胶，其中的硅醇基团，是构成氢键吸附并使毛细管内电介质产生电渗流的重要原因。在常用缓冲液pH值下，毛细管壁带负电，于是在贴近管壁的液体表面形成了一个和管壁电荷异号的偶电层。在毛细管电泳中，电渗是指高电场作用下，偶电层中水和阳离子或质子引起流体朝负极方向运动。电渗是毛细管电泳中最重要和最有趣的性质之一。 既然同时存在着泳流和渗流，故粒子在毛细管电介质中的运动速度应当是这两种速度的矢量和，其迁移速率是电泳和电渗力的函数：正离子的运动方向和电渗一致，故它应当最先流出，中性离子的泳流速度为“零”，将随电渗而行。负离子因其运动方向和电渗相反，在电渗速度大于电泳速度时，它将在中性离子之后流出。 电渗流的值是缓冲液pH值的函数，一般随该值的增加而增大。另外，电渗流还和缓冲液的浓度及其添加剂，管子表面的修饰程度有关。 检测电泳毛细管的直径极小，产生的溶质谱带体积也极小。通常采用的检测方法是电泳的柱上检测。此时峰宽对迁移时间将有一定的依赖性。移动较快的组分通过检测窗所需的时间较短，反之则较长。 毛细管电泳的紫外检测属柱上检测，检测点靠近管子的末端。毛细管的外壁通常有一层几微米的聚酰亚胺涂层。使用时需要将一小段管子（小于1cm）的聚酰亚胺涂层去掉，以
使用Pacemadq毛细管电泳测定对苯二甲酸中的4-CBA和P-TOL。与高效液相色谱相比，毛细管电泳简单，快速，准确。在本文中，作者总结了常见的故障，例如测量数据的偏差，进样针筒到达预定位置的故障，制冷剂泄漏故障，并提出了克服不熟悉的仪器维护方法的探索。 1.1毛细管电泳仪在国内外的发展现状 1.1.1国内发展现状 近年来，家用毛细管电泳仪在外部建模，光路系统和测量精度方面取得了长足的进步。家用毛细管电泳仪在测定方法，测定时间，样品含量，整体结构，人机界面等方面都有很大的发展空间。 1.1.2国外毛细管电泳仪器的发展现状 欧美一些发达国家在便携性和稳定性上取得了新的突破，多组分的测量已经摆脱了传统的高效液相色谱法，或者在传统的高效液相色谱法的基础上取得了技术突破，并获得了多项原始专利。 1.1. 2.1中的Pacemadq毛细管电泳仪 美国的Pacemadq毛细管电泳仪，可以测量核酸/核苷酸，蛋白质/多肽，糖/糖蛋白分析，PTA，无机盐酸分析等。 PACE MDQ毛细管电泳仪的维护
Pacemadq毛细管电泳仪提供了人性化的操作流程，最大程度地减少了维护工作。但是，由于样品质量参差不齐，必须定期维护以防止损坏仪器。作者从事该仪器的日常维护和故障排除。项目PTA检测的基本维护方法如下。 2.1冷却液添加 PACE MDQ毛细管电泳仪在运行过程中会损失冷却液，不能完全填充毛细管柱的外壁，影响分离效果，因此必须定期添加冷却液。 ①将制冷剂连接器添加到制冷剂加注口。 ②直到制冷剂窗口的高度达到3/4位置。 ③取下注射器并关闭制冷剂添加门。 2.2更换电极 在PACE MDQ毛细管电泳仪的重复使用过程中，电极需要深入到电解质试剂瓶中。在再次穿透瓶盖的过程中，电极容易弯曲。电极弯曲时，需要更换电极。更换方法如下： ①通过直接控制，托盘移动到装载位置。 ②卸下接口模块的毛细管。
除颤仪操作流程 -标准化文件发布号：（9456-EUATWK-MWUB-WUNN-INNUL-DDQTY-KII
除颤仪操作流程
除颤适应症： 室颤，无脉性室速 非适应症： 停搏，假性电机械分离，室性自主心律，室性逸搏心律，除颤后室性自主心律，过缓无效收缩心律 注意事项： 1.除颤仪到位前，持续有效的CPR。 2.除颤后紧接着5个遁环的CPR，再评估节律，按需要决定是否再除颤。 3.操作者的手应保持干燥，不能用湿手握电极板。 4.放电时在电击板上应施加一定有力量，使电极板与病人皮肤密合，以保证 较低的阻抗，有利于除颤成功，同时也避免烧伤病人的皮肤。 5.导电糊不应涂在两电极板之间的皮肤上，以免除颤无效。 6.胸部有植入性的装置时，电极板应放在距该装置2.5cm的位置，除颤后应 检查其功能。 7.切忌将电极板直接放在治疗性贴片，监护仪贴片，导电线的上面。 8.病人大量出汗，则在除颤前，应迅速将病人的胸部擦干。 维护和保养 1、由正常班护士负责，每日清洁消毒。 2、在除颤开始前要确认日期、时间是否正确，心电纸是否装好。 3、使用湿软巾和含氯消毒剂进行除颤、除颤手柄、除颤板和电缆的清洁和消毒。打印机只能使用湿软巾进行清洁。 4、严禁将除颤仪的任何一部分（包括除颤手柄）浸入液体中。严禁使用粗糙物品擦拭显示屏。除颤仪严禁高压消毒。 5、要特别注意每次使用除颤仪手柄后对手柄的清洁，除产后除颤手柄上积累的导电糊会对心电监护信号有扰，并且有可能使操作者遇到意外电击。保持除颤手柄清洁。 6、及时充电。关闭除颤器进行充电，4小时可以完成对电池的充电，当开启除颤器24小时才能完成充电，尽可能使用充满电的除颤器，否则影响电池使用寿命。 7、检查所有电缆、接头是否良好，电缆有没有划伤、磨损、并且有没有缠绕、打死折。 8、保证除颤器整洁（没有液体水滴）并且上面禁止放置任何物品。
高效毛细管电泳实验 一、实验目的 1. 进一步理解毛细管电泳的基本原理； 2. 熟悉毛细管电泳仪器的构成； 3. 了解影响毛细管电泳分离的主要操作参数。 二、实验原理 1．电泳淌度 毛细管电泳（CE ）是以电渗流 (EOF)为驱动力，以毛细管为分离通道，依据样品中组分之间淌度和分配行为上的差异而实现分离的一种液相微分离技术。离子在自由溶液中的迁移速率可以表示为： ν = μE （1） r 6 q πημ= （2） 式中ν是离子迁移速率，μ为电泳淌度，E 为电场强度。η为介质粘度，r 为离子的流体动力学半径，q 为荷电量。因此，离子的电泳淌度与其荷电量呈正比，与其半径及介质粘度呈反比。 2．电渗流和电渗淌度 电渗流（EOF ）指毛细管内壁表面电荷所引起的管内液体的整体流动，来源于外加电场对管壁溶液双电层的作用。 在水溶液中多数固体表面根据材料性质的不同带有过剩的负电荷或正电荷。就石英毛细管而言，表面的硅羟基在pH 大于3以后就发生明显的解离，使表面带有负电荷。为了达到电荷平衡，溶液中的正离子就会聚集在表面附近，从而形成所谓双电层，如图1所示。这样，双电层与管壁之间就会产生一个电位差，叫做Zeta 电势。但毛细管两端施加一个电压时，组成扩散层的阳离子被吸引而向负极移动。由于这些离子是溶剂化的，故将拖动毛细管中的体相溶液一起向负极运动，这便形成了电渗流。 电渗流的大小可用速率和淌度来表示： ()E EO F ηεξν/= （3） 或者 ηεξμ/=EO F （4） 式中νEOF 为电渗流速率，μEOF 为电渗淌度，ξ为Zeta 电势，ε为介电常数。 3．毛细管电泳的分离模式 CE 有6种常用的分离模式，其中毛细管区带电泳（CZE ）、胶束电动毛细管色谱（MEKC ）和毛细管电色谱（CEC ）最为常用。本实验的内容为CZE 。 4．毛细管电泳的基本参数
第五章高效毛细管电泳分离技术 第一节毛细管电泳技术发展简史及其特点 电泳是指带电粒子在电场作用下向电性相反的方向迁移的现象。据此对某些化学或生物化学组分进行分离的技术称为电泳技术。 从1930年瑞典科学家Arne Tiselius首次提出电泳法至今已有70年的历史。电泳法的发展大致可分为三个阶段。1950年以前属初创阶段，主要是界面移动自由电泳，一般在U型管内进行，无支持物。50年代至80年代中期出现了各种有支持物的电泳方法，如纸电泳、醋酸纤维电泳、琼脂糖电泳、聚丙烯酰胺凝胶电泳等，70年代后实现了仪器的自动化。80年代后期出现了毛细管电泳方法，实现了微型化、自动化、高效、快速分析，毛细管电泳技术已经成为同现代色谱技术相比的分析化学领域中的一个令人瞩目的分支。 毛细管电泳（Capillary Electrophoresis，CE）或高效毛细管电泳（High Performance Capillary Electrophoresis，HPCE）是指以毛细管为分离室、以高压电场为驱动力的一类新型现代电泳技术。毛细管电泳仪的基本结构见图5-1。
HV（0-+30KV） 图1 毛细管电泳仪的结构图 C—毛细管；D—检测器；E—电极槽；HV—直流高压电源；Pt—铂电极；S—样品；DA—数据采集处理系统 完善的毛细管电泳仪应具备（1）有多种施压模式；（2）恒温精度高，恒温范围宽；（3）精确的进样控制；（4）检测器的灵敏度高等条件。 毛细管电泳分离技术用的是内径为5-100μm，外径为370μm，长为10-100cm的弹性熔融石英毛细管，毛细管的特点是（1）体积小；（2）散热快，可承受高电场；（3）可使用自由溶液、凝胶等为支持电解质，在溶液介质下可产生平面形状的电渗流。 毛细管电泳分离技术与传统的平板电泳和现代液相色谱分离技术相比具有很多优点：（1）高效（105-107理论塔板/米）；（2）快速（几十秒至几十分钟）；（3）分离模式多，选择自由度大；（4）分析对象广，从无机离子到整个细胞；（5）高度自动化；
高效毛细管电泳-非接触式电导检测法的应用 ——瓶装矿泉水中Na+、K+、Ca2+、Mg2+的分离检测 摘要本实验采用毛细管电泳–非接触式电导检测法，以8mmol?L-1Tris 和6mmol?L-1酒石酸为电泳运行液，分离电压为+15 kV，采用标准加入法，对瓶装矿泉水中Na+、K+、Ca2+、Mg2+四种阳离子同时进行直接分离和检测。实验测得逸仙泉矿泉水中Na+、K+、Ca2+、Mg2+的含量分别为2.57mg·L1、13.46mg·L-1、4.99mg·L-1、1.82mg·L-1，发现K+、Mg2+含量均大大超出厂家提供的含量范围。 关键词高效毛细管电泳非接触电导检测法中大逸仙泉水分离检测标准加入法 1 引言 Na+、K+、Ca2+、Mg2+是人体内重要的无机阳离子，这些离子含量的高低直接影响人体的生理功能。Mg2+是人体细胞内的主要阳离子，浓集于线粒体中，是体内多种细胞基本生化反应的必需物质，在神经肌肉的机能正常运作、血糖转化等过程中扮演着重要角色。K+在人体内的主要作用是维持酸碱平衡，参与能量代谢以及维持神经肌肉的正常功能。人体中的钙元素主要以羟基磷酸钙晶体的形式存在于骨骼和牙齿中。Na+是细胞外液中带正电的主要离子，参与水的代谢，保证体内水的平衡，调节体内水分与渗透压，此外，糖代谢、氧的利用、维持正常血压也需要钠的参与。矿物质水中这些离子含量的高低决定了水质是否符合标准。因此，研究快速分离测定这些离子的含量很有实际的意义。 由于要同时测量四种离子含量，因此传统的对单一离子测量的方法不能用，毛细管电泳–非接触式电导检测法，可以同时对K+、Na+、Ca2+、Mg2+四种阳离子同时进行直接分离并且检测含量，相比已有的实验方法，本实验具有灵敏度高，操作简便，而且可以同时测定四种不同离子的含量，离子之间不存在相互干扰，极大地提高了实验效率，实验结果令人满意。 高效毛细管电泳的检测器中，非接触式电导检测（Capacitively Coupled Contactless Conductivity Detection, 简称C4D）是近年来发展起来一种新型的电导检测方法。非接触式电导检测法的电极与待测溶液隔离，避免了因电极与溶液接触而造成的诸多问题，有效地消除了电极中毒的问题，电极寿命长，抗干扰能力强，可检测物质的范围广。HPCE–C4D具有通用性好、灵敏高、分析成本低和环境友好的优点，在日常分析中具有广阔的应用前景。 2 实验部分 2.1仪器试剂
毛细管电泳仪 毛细管电泳（capillary electrophoresis，CE）又称高效毛细管电泳（high performance capillary electrophoresis，HPCE），是一类以毛细管为分离通道、以高压直流电场为驱动力的新型液相分离技术。实际上包含电泳、色谱及其交叉内容，它使分析化学得以从微升水平进入纳升水平，并使单细胞分析，乃至单分子分析成为可能。长期困扰我们的生物大分子如蛋白质的分离分析也因此有了新的转机。 毛细管电泳(capillary electrophoresis，CE)又称高效毛细管电泳(high performance capillary electrophoresis，HPCE)，是一类以毛细管为分离通道、以高压直流电场为驱动力的新型液相分离技术。 毛细管电泳实际上包含电泳、色谱及其交叉内容，它使分析化学得以从微升水平进入纳升水平，并使单细胞分析，乃至单分子分析成为可能。长期困扰我们的生物大分子如蛋白质的分离分析也因此有了新的转机。 毛细管电泳(capillary electrophoresis，CE)是20世纪80年代初发展起来的一种新型分离分析技术，乃经典电泳技术和现代微柱分离有机结合的产物，是继高效液相色谱(HPLC)之后，分析科学领域的又一次革命。
毛细管电泳泛指以高压电场为驱动力，以毛细管为分离通道，依据样品中各组分之间淌度和分配行为上的差异而实现分离的一类液相分离技术。毛细管电泳仪的基本结构包括一个高压电源，一根毛细管，一个检测器及两个供毛细管两端插入而又可和电源相连的缓冲液贮瓶。 毛细管电泳仪的工作原理：毛细管电泳所用的石英毛细管柱，在pH>3情况下，其内表面带负电，和溶液接触时形成一双电层。在高电压作用下，双电层中的水合阳离子引起流体整体朝负极方向移动的现象叫电渗。粒子在毛细管内电解质中的迁移速度等于电泳和电渗流(EOF)两种速度的矢量和。正离子的运动方向和电渗流一致，故最先流出；中性粒子的电泳速度为“零”，故其迁移速度相当于电渗流速度；负离子的运动方向与电渗流方向相反，但因电渗流速度一般都大于电泳流速度，故它将在中性粒子之后流出，从而因各种粒子迁移速度不同而实现分离。
电泳仪： 电泳仪是实现电泳分析的仪器。一般由电源、电泳槽、检测单元等组成。所谓电泳，是指带电粒子在电场中的运动，不同物质由于所带电荷及分子量的不同，因此在电场中运动速度不同，据此可以对不同物质进行定性或定量分析，或将一定混合物进行组分分析或单个组分提取制备。 毛细管电泳仪： 毛细管电泳仪以弹性石英毛细管为分离通道，以高压直流电场为驱动力，依据样品中各组分的淌度和分配行为的差异而实现各组分分离。 工作原理： 毛细管电泳柱中装载电解液运行时，由于管壁硅羟基的存在会产生电渗流，电渗流将推动整个毛细管柱内的溶液定向移动。与一般色谱技术的主要区别在于其分离原理不是基于组分在流动相和固定相中分配系数，而是在电场作用下离子迁移速度的不同。 适用领域： 1. 医学及临床检验 毛细管电泳在医学及临床检验中的应用包括患者的病理检测、疾病诊断、疾病机理分析及体内代谢物分析等。分析对象是体液或组织中的药物、疾病相关标志物和离子等。 2.药物及天然产物
CE分析检测药物或天然产物主要包括合成药物、蛋白药物及植物有效成分。 3.食品及农产品 由于食品安全问题越来越受到重视，CE用于食品安全和农产品检测的方法逐年增多。食品安全检测中主要包括食品添加剂、食品中某些组分或有害成分的检测。农产品检测包括农药残留物和农产品有效成分检测。 4.生物分子 CE检测生物大分子如蛋白质、核酸、糖类等具有优势，同时也广泛用于生物小分子或代谢中间产物的检测。 5.手性分析 CE可用于手性拆分，如氨基酸或小分子、药物分子的对映体分离以及手性拆分剂的比较和评价。 6.环境监测 毛细管电泳法可以对未经前处理的污染水体直接进样，从而快速检测水体中的抗生素、激素或药物以及重金属离子。
毛细管电泳仪的使用(原创)*电泳仪的使用方法 毛细管, 电泳仪, 原创 概要：准备工作1.毛细管的制备：①剪略长于需要长度的毛细管(使用专用的裁剪纱布)，断端利用镊子小心移除。②烧窗：从毛细管进液端开始到实验者需要长度的位置烧窗，窗口尽量小，过程中可用防护工具对窗口两端. 准备工作 1.毛细管的制备： ①剪略长于需要长度的毛细管(使用专用的裁剪纱布)。 断端利用镊子小心移除。 ②烧窗：从毛细管进液端开始到实验者需要长度的位置烧窗，窗口尽量小，过程中可用防护工具对窗口两端的毛细管进行防护。 烧好的窗需用粘有酒精的棉花擦拭。 注：检测的有效长度为从毛细管进液端到检测窗之间的距离，这个距离一般根据实验者的需要自己掌握。 ③取出卡槽：打开安放卡槽区域的门。 旋转固定卡槽的杠杆90度，按卡槽中央的释放按钮，握住卡槽的两端向上抽出卡槽。 ④安装毛细管：将进液端的毛细管小心的从卡槽的出口插入。 进入时可轻轻旋转。当窗口到达检测点时停止插入，将游离的进液端毛细管从卡槽的入口引出。 并固定好毛细管外端的橡胶管。 注：插入毛细管时小心操作，窗口位置的毛细管非常容易破裂，需格外谨慎。 过程中切忌使用暴力。 ⑤安放卡槽：用与取出的步骤相反顺序的操作安放卡槽。 2.添加样品，缓冲液及冲洗液： ①为了减少样品及缓冲液的挥发。 在插入加液管前可在加样管固定器的小孔内加入少量的ddH2O。 ②已添加好的加液管，在插入转盘上的固定槽前先离心2min加液时注意加样枪头紧贴管壁，防止气泡的产生。 ③为了减少虹吸作用，需要保持入口处和出口处的running buffer量一致，对于500ul体积的加液管，推荐加入500ul的剂量；对1.5ml体积的加液管，推荐1.3ml的剂量。 ④推荐加入样品的最小剂量为50ul检测需要的最小剂量为15ul。 ⑤在出口处的waste管中加入50ul的ddH2O，可以防止检测端的毛细管被冲洗液的残留污染。 电泳仪的操作 1.插上电源。 检查电泳仪的连接情况。 检查制冷区小槽内水量是否充足，打开电脑，打开电泳仪的开关(两扇门都需要关闭)。 在电脑桌面点开BioFocus的图标。 进入到BioFocus的控制界面。 2.设置程序： ①点击Reagents键，在已有的Reagents Data base中查看是否含有需要使用的配液，有可点击该配液查看。 或使用edit键进行修改；没有则点击add进行编辑添加。添加之后注意命名名称的
高效毛细管电泳色谱仪的介绍 高效毛细管电泳色谱仪（CE）是以毛细管为分离通道，以高压直流电场为驱动力，利用荷电粒子之间的淌度差异和分配系数差异进行分离。由于CE溶质区带的超小体积特性导致光程太短，圆柱形毛细管作为光学表面不够理想，对检测器灵敏度要求相当高。CE常用检测器有紫外检测器、激光诱导荧光检测器、质谱检测器和电化学检测器等。 一、紫外检测器： 紫外检测器是基于物质对紫外吸收进行检测，是成熟的检测器，在CE中应用广。 1、原理： 入射紫外光通过样品时，被吸收的多少符合朗伯－比耳定律。 检测点在毛细管的末端，检测点的毛细管的外涂层要烧掉。 2、检测方法： （1）固定波长： 光源为低紫外氘灯，用滤光片获得固定波长的光。 （2）可变波长： 光源为氘灯或钨灯，用单色器（棱镜或光栅）获得连续可调波长的光。 （3）快速扫描： 1）利用线性二极管阵列快速捕获紫外光。 2）利用硅光电倍增管作快速扫描。 3、特点： （1）通用性好，特别是对蛋白质的适用性很强。 （2）灵敏度不足。 4、提高灵敏度的方法： 由于CE检测池的光路长度为毛细管内径，一般不超过100μm，小内径的毛细管限制了紫外检测器的灵敏度，可采用以下几种方法来提高灵敏度。 （1）优化测定波长： 通过测定不同波长下的信噪比来选择测定波长，以提高灵敏度。
（2）减少检测噪音： 1）提高光源强度。 2）采用聚焦和狭缝等减少背景光的影响。 3）采用良好的信号放大系统。 （3）扩展吸光光路长度： 1）为了克服圆柱形毛细管表面引起的散射、失真等不利的光学特性和增加光路长度，可采用矩形、扁形、Z形和泡型等特殊毛细管。当然柱效会有所下降。 2）对于普通毛细管，可采用轴向照射和多次反射来增加光路长度。 ①轴向照射：将激光光束从毛细管末端沿管轴方向入射，在毛细管侧面进行检测。 ②多次反射：在毛细管壁镀上银，分别开入射窗和出射窗。当入射光以特定角度入射后，在毛细管内反射30～40次后从出射窗口射出。 二、激光诱导荧光检测器： 激光诱导荧光检测器采用激发光源使检测物质产生荧光进行检测。 检测下限为10ˉ12～10ˉ10mol/L。 三、质谱检测器： 在CE－MS联用中，毛细管区带电泳为常用。电子喷雾离子源可检测多种高质量的带电分子，从CE分离出来的分子经过接口后直接进入MS，是MS的离子源。 检测下限为10ˉ9～10ˉ7mol/L，通用性好，可获得溶质的结构信息，但接口复杂。 四、电化学检测器： 电化学检测器可避免光学类检测器遇到的光程太短的问题，是CE中灵敏的检测器之一。 1、电导检测器： 柱上电导检测是在毛细管壁上用激光钻两个孔，插上两根铂电极，再将孔封住进行检测。 检测下限为10ˉ7～10ˉ5mol/L，通用性好，但需专门装置和毛细管处理。 2、安培检测器： CE中微量样品可使库仑效率大大提高，可达40%以上，而在HPLC中很少超过10%。 检测下限为10ˉ9～10ˉ8mol/L，灵敏度高，选择性好，但仅适用于电活性物
毛细管电泳仪 毛细管电泳(capillary electrophoresis，CE)又称高效毛细管电泳(high performance capillary electrophoresis，HPCE)，是一类以毛细管为分离通道、以高压直流电场为驱动力的新型液相分离技术。毛细管电泳实际上包含电泳、色谱及其交叉内容，它使分析化学得以从微升水平进入纳升水平，并使单细胞分析，乃至单分子分析成为可能。长期困扰我们的生物大分子如蛋白质的分离分析也因此有了新的转机。 毛细管电泳-基础理论 1 双电层 双电层是指两相之间的分离表面由相对固定和游离的两部分离子组成的与表面异号的离子层，凡是浸没在液体中的界面都会产生双电层。在毛细管电泳中，无论是带电粒子的表面还是毛细管管壁的表面都有双电层。 2 Zeta 电势 毛细管电泳书籍 电介质溶液中，任何带电粒子都可被看成是一个双电层系统的一部分，
离子自身的电荷被异号的带电离子中和，这些异号离子中有一些被不可逆的吸附到离子上，而另一些则游离在附近，并扩散到电介质中进行离子交换。"固定"离子有一个切平面，它和离得最近的离子之间的电势则被称之为离子的Zeta 电势。 石英材质的毛细管是毛细管电泳中最常使用的毛细管，管子内表面在pH>3 情况下带负电，当其与溶液接触时，会形成紧贴内表面的和游离的两部分离子。这两部分离子组成的与表面电荷异号的离子层，即为双电层，其中第一部分又称之为Stern 层。第二层为扩散层。扩散层中游离部分离子的电荷密度随着和表面距离的增大而急剧减小。在Stern 层和双电层的游离部分的起点的边界层之间的电势称之为管壁的Zeta 电势。典型值大体在0-100 mV 之间，Zeta 电势的值随距离增大按指数衰减，使其衰减一个指数单位所需的距离称之为双电层的厚度(δ)。熔硅表面的Zeta 电势与它表面上的电荷数及双电层厚度有关，而这些又受到离子的性质、缓冲溶液pH 值、缓冲溶液中阳离子和熔硅表面间的平衡等因素的影响。 3 淌度、绝对淌度和有效淌度 带电粒子在直流电场作用下于一定介质(溶剂)中所发生的定向运动称为电泳。单位电场下的电泳速度称为淌度。在无限稀释溶液中(稀溶液数据外推)测得的淌度称为绝对淌度。
Beckman P/ACE?MDQ毛细管电泳仪使用注意事项 本使用注意事项仅适用于BECKMAN COULTER P/ACE?MDQ型号毛细管电泳仪，其他P/ACE系列毛细管电泳仪用户请斟酌使用。建议使用BECKMAN COULTERP/ACE?MDQ前请务必仔细阅读本使用注意事项、32 Karat软件使用手册及安装维护指南，以确保仪器的安全稳定运行。 1.毛细管及卡盒部件 1.1.向卡盒内装毛细管时，要把远离窗口的毛细管一端穿入卡盒 1.2.切割毛细管时不可用刀片把毛细管压断，也不可以来回划割毛细管，正确方法应是：刀片与 桌面有一个角度（45度左右），切割一次即可 1.3.拆毛细管时，要从近窗口的一端把毛细管拉出 1.4.毛细管的长度调节通过调节冷却软管长度来实现，更换新冷却软管的时候一定要注意两端的O 形垫圈不要漏垫，深蓝色的Ferrule安装方向要注意，如图所示。浅蓝色的Tubing Nut不可旋得过紧 1.5.检测窗口的安装应该是在将毛细管两端卡好并切割完毕以后；PDA检测器只可使用标识为8 的窗口，UV检测器8和2的标识窗口都可以使用。 1.6.UV及DAD检测窗口由卡盒的背面向正面插入，且不可插错方向。检测窗口安装之前一定要 确保其内没有保留有未取出的黑色O形垫圈 1.7.UV及DAD检测窗口安装后一定要将O形垫圈装入
2.样品瓶及托盘 2.1.三种标准配置的缓冲溶液及样品瓶各有其相对应颜色的瓶盖，不可混用 2.2.2mL缓冲溶液瓶的液面高度不得低于1/2，也不可超过瓶颈，标准的液面高度如下图示： 2.3.2mL缓冲溶液瓶瓶口和瓶颈内部不得沾有液体，如果有液体存在，要将瓶口和瓶颈内壁的液 体擦干再盖瓶盖。否则瓶盖易滑出，从而导致毛细管及电极的折断。瓶盖上的液体残留可能会导致漏电现象发生 2.4.当发现缓冲溶液瓶盖上有液体时一定要立即擦干或更换 2.5.缓冲溶液瓶盖及样品瓶盖均不可用洗涤剂长时间浸泡或放入烘箱烘干，会导致瓶盖的老化2.6.用于装废液的样品瓶要及时清理，不可过满，过高的废液量既会污染毛细管，也会造成气路 的阻塞 2.7.仪器运行期间不得打开Sample Cover，只有托盘在Load状态才可以打开Sample Cover和 Cartridge Cover。在直接控制面板和程序冲洗过程中可打开Sample Cover，可利用检查毛细管工作状态。 3.涂层毛细管及试剂盒的使用 涂层毛细管不得使用氢氧化钠溶液冲洗 涂层毛细管不可用火焰烧制窗口 涂层毛细管使用结束后应用纯水冲洗干净，然后从仪器上拆下，连带卡盒放入卡盒盒中，两端浸泡在事先装满水的2ml缓冲溶液瓶中。最后整个盒子放入4℃冰箱保存 在使用任何试剂盒之前必须仔细阅读试剂盒的使用手册，不清楚的地方要与工程师联系以免操作失误造成损失 在使用试剂盒进行用户方样品分析之前，请用试剂盒中的标准试剂测试毛细管等部件，确保能得到与参考谱图类似的结果 4.冷却液系统及电极 4.1.冷却液只需要罐装到3/4的高度 4.2.补充冷却液时要注意：先将注射器活塞拔除，在将注射器与软管相连，再将软管连接至注入 口，冷却液由注射器推进口倒入，提起注射器后冷却液会自动流入，残留的液体可用活塞压入 4.3.电极应定期清洁（per month），先采用湿水绵擦拭，再用酒精面擦拭以确保其导电性 4.4.在仪器使用完毕后，让样品盘在Load状态下关闭主机。（要先将留在卡盒中的冷却液回流才 能关闭主机） 4.5.当灯箱部分和卡盒冷却液管出现黑色脏迹后可用酒精棉擦拭清除，注意：Interface Block下面 处于两电极之间的部分也要用酒精棉擦拭，以去除灰尘，防止漏电Current Leakage 5.检测器及部件 5.1.检测器UV/DAD/LIF不用时，应该放入干燥箱中保存。 5.2.各检测器的连接光纤在不使用时，必须用塑料帽盖好放置，光纤不可折压.
高效毛细管电泳的发展及应用 摘要：高效毛细管电泳（即HPCE）是在传统电泳基础上继现代高效液相色谱技术之后发展起来的一种新型高效分离技术，由于效率更高、速度更快、样品和试剂消耗量特少的特性，逐渐受到越来越多科学家们的青睐。本文结合HPCE的发展史、基本原理、分离模式以及在现实中的实际应用，对毛细管电泳做了系统的分析，并提出合理的展望。 关键字：毛细管电泳；发展史；原理；分离模式；应用 高效毛细管电泳（即HPCE）是在传统电泳基础上继现代高效液相色谱技术之后发展起来的一种新型高效分离技术，它是在熔融的石英毛细管（内径为25～100μm）中进行电泳，其管内填充缓冲液或凝胶，是近年来进展最快的分析方法之一。 毛细管电泳可以说是电泳技术和现代微柱分离相结合的产物，它具有效率更高、速度更快、样品和试剂消耗量特少的特性，因而也受到越来越多科学家们的青睐。 一、毛细管电泳的发展史 1967年在高电场作用下，以3mm直径的毛细管内进行自由溶液的区带电泳，1974年报道了以200-500μm内径玻璃毛细管内进行的区带电泳分析，早期的研究受当时检测灵敏度的影响，未获预期的高效分离效率，但为毛细管电泳分离的发展奠定了基础。 1981年人们第一次展示了毛细管区带电泳，使用75微米内径的玻璃毛细管和荧光检测器进行在线检测，在30KV电压下，分离了氨基酸和多肽类物质，塔板数高达40万，这一工作被认为是现代毛细管电泳发展的里程碑。1983年将聚胶柱制备困难的缺点。1984年使用含有表面活性剂的背景电解质，开辟了毛细管电泳另一个重要分支——胶束毛细管电动力学色谱。1987年又结合传统的等电聚焦电泳和凝胶电泳原理，并移到毛细管内进行电泳，1988年实现了微量制备的可能性，提取和分离了50μmol的蛋白质、肽和寡核苷酸等。80年代未，
除颤仪的维护与保养1电极板的清洁与擦拭 电极板是Defi-B的组成部分,平时应置于电极板卡槽之中(仪器立放),每次使用结束之后都要及时对其进行清洁与擦拭。清洁与擦拭通过以下3个步骤来完成,即:(1)检查仪器是否关闭,如未关闭则须关闭;(2)沿逆时针方向旋下金属电极板,用湿润的抹布擦净电极板;(3)干燥后,重新旋紧电极板,可靠地置于卡槽中。在对电极板进行清洁与擦拭时,应注意不要损伤电极板。既不能用锐利的金属工具刮除附着的污垢,特别是不能对电极板的金属表面造成划损,也不可使用对电极板有腐蚀作用的酸、碱溶液。 2电池的充电与更换 电池需要日常或定期的维护与保养。维护与保养有助于延长电池的使用寿命。将电源线插头插入交流电源插座,即为除颤仪电池充电。电量耗尽的电池,即可充满。充电时应注意除颤仪对环境温度的要求(一般为0~40℃),尤其是温度过低将影响电池充电。可通过观察绿色LED电池充电指示灯判断电池的充电情况,绿色LED电池充电指示灯闪烁,表示电池处于接受充电状态;持续亮起,表示电池已经充满,除颤仪随时可供使用;该灯不亮,则表示外部条件(环境温度和充电电压)超过除颤仪技术参数所规定的临界值,电池不能接受充电。 3仪器工作状态的判断 将仪器与交流电源断开,打开仪器开关,在仪器完成自检后,即可判断仪器的工作状态。Defi-B有4种工作状态:(1)可工作状态:绿色LED电池指示灯亮起,并伴有短暂的鸣叫声,表示仪器处于可工作状态;(2)递减工作状
态:红色LED电池指示灯亮起,表示电池只储存360J、放电10~20次的电量。(3) 有条件工作状态:红色LED电池指示灯闪烁,表示电池只储存360J、至多放电10次的电量,应立即给除颤仪充电;(4)不可工作状态:如果红色LED警告指示灯亮起,并伴有短暂的鸣叫声,则表示仪器自检发现系统错误或存在故障,不能使用。这时,可按下除颤仪的充电键,能量等级LED指示灯将依次重复闪烁, 再次按下充电键,确认错误或故障是否排除。如果仍未排除,则应与维修中心 联系。 4电容维护 Defi-B的电路结构包括充电电路、放电电路及其控制电路,电容是电路的重要组成部分。在按下仪器的除颤充电键后,大量的电能在数秒内即可储存于电容,放电时向人体心脏释放强大的电脉冲。在使用频次较低的情况下,电容需要定期的维护,即每3个月对Defi-B进行电容维护1次。电容维护的方法是, 由低到高选择2~4个能量值进行充电和放电试验。
南昌大学第二附属医院 CAPILLARYS电泳仪操作维护规程 1. 仪器简介 CAPILLAYRS 是运用液相电泳技术，8条石英毛细管，8通道同时电泳,快速电泳分离的全自动，多任务处理的毛细管电泳系统。 CAPILLARYS从原试管连续进样到最后电泳结果剖析全过程:标本的识别，标本的稀释，毛细管的清洁，标本进样，电泳，检测，结果处理和网络传输等，全自动完成。 2. 工作原理 2.1具有条形码阅读器自动识别原试管中的标本. 2.2使用一次性的稀释杯对原管中的标本进行稀释. 2.3使用CAPILLARYS 试剂舱中不同的溶液（CAPILLARYS清洗液,冲洗液,缓冲液）,通过高压循环对毛细管进行清洗. 2.4通过每条毛细管末端下降直接接触稀释后的标本,上升前吸取微量的标本来完成毛细管的进样. 2.5通过Peltier元件对泳动过程进行温度控制. 2.6具有PHORESIS软件: 可对结果进行处理.自动识别片段,直观分析电泳剖象并 标示出任何的异常. 2.7显示系统的操作状态以及当前分析到的结果. 2.8通过调制解调器将结果传输到外部。
3. 仪器运行环境 尺寸L. 95 cm x H. 39 cm x D. 63 cm 重量50 kg 功率300VA 外接电源115-230 V, 50/60 Hz 温度在15℃和30℃之间 相对湿度 5 % 到85 %（不冷凝） 4. 授权操作人 经培训合格人员 5. 每日开关机程序 5.1 准备工作： 5.1.1检查机器内安放的缓冲液，清洗液，净化水是否够用，排空废液桶。 5.1.2机器内试管架是否全部取出。 5.1.3检查样本，尽量不采用溶血标本。血清量应多于200μL。 5.2 操作步骤 5.2.1打开毛细管电泳仪电源开关，打开电脑开关，待系统启动结束后启动“PHORESYS”软件。在电脑提示下输入用户名(ADM)和密码（46448630）后，按确定（电脑自动向其加载和交换信息，并运行自检，初始化程序。）---连机成功, 进入待工作状态，显示(Ready)。可开始电泳操作。 1）在仪器提示（或点击试剂更换按钮），按其要求填写试剂有效期、代码（冲洗液的有关信息在75mL浓缩试剂瓶标签上可以查到），并调整图象中液位高度。2）在屏幕右上角检查或选择电泳项目“PROTEIN（E）6 ”。
毛细管电泳实验报告 高乃群S080601018 实验目的 1.了解毛细管电泳实验的原理 2.掌握毛细管电泳仪的操作方法,并设计样品组分的分析过程. 3.学会处理实验数据,分析实验结果. 实验原理C E所用的石英毛细管柱, 在pH>3情况下, 其内表面带负电, 和溶液接触时形成了一双电层。在高电压作用下, 双电层中的水合阳离子引起流体整体地朝负极方向移动的现象叫电渗, 粒子在毛细管内电解质中的迁移速度等于电泳和电渗流(EOF)两种速度的矢量和, 正离子的运动方向和电渗流一致, 故最先流出；中性粒子的电泳流速度为“零”，故其迁移速度相当于电渗流速度；负离子的运动方向和电渗流方向相反, 但因电渗流速度一般都大于电泳流速度, 故它将在中性粒子之后流出, 从而因各种粒子迁移速度不同而实现分离。 电渗是CE中推动流体前进的驱动力, 它使整个流体像一个塞子一样以均匀速度向前运动, 使整个流型呈近似扁平型的“塞式流”。它使溶质区带在毛细管内原则上不会扩张。 一般来说温度每提高1℃, 将使淌度增加2% (所谓淌度, 即指溶质在单位时间间隔内和单位电场上移动的距离)。降低缓冲液浓度可降低电流强度, 使温差变化减小。高离子强度缓冲液可阻止蛋白质吸附于管壁, 并可产生柱上浓度聚焦效应, 防止峰扩张, 改善峰形。减小管径在一定程度上缓解了由高电场引起的热量积聚, 但细管径使进样量减少, 造成进样、检测等技术上的困难。因此, 加快散热是减小自热引起的温差的重要途径。 实验设备：电泳仪。 仪器及试剂： 缓冲溶液(buffer)：20 mmol/L Na2B4O7缓冲溶液。1mol/L NaOH溶液，二次去离子水。未知样饮料（雪碧和醒目） 1．实验步骤仪器的预热和毛细管的冲洗：打开仪器和配套的工作站。工作温度设置为30℃，不加电压，冲洗毛细管，顺序依次是：1 mol/L NaOH溶液5 min，二次水5 min，10 mmol/L NaH2PO4-Na2HPO4 1:1缓冲溶液5 min，冲洗过程中出