应用聚合酶链反应（PCR）技术测定临床标本中的病原体核酸成分，是一种高度敏感，且最为直接的检测手段。由于临床标本中含有蛋白质、脂类等物质，可干扰PCR反应，故在做PCR反应前必须进行核酸提取。
由于样本的处理及保存对DNA和RNA（尤其是RNA）的影响较大，因此在核酸测定时标本的处理及适当保存对测定结果的准确有效非常重要。
临床标本的处理
血清（浆）标本
应注意避免溶血，如为血浆标本注意抗凝剂的选择，一般用EDTA-Na2或枸橼酸纳，
不可使用肝素。标本为全血时，及时分离出血浆，提取病毒DNA进行检测。
由于RNA极易降解，标本的制备和保存方式往往可以影响测定结果。若用血浆标本，应使用EDTA抗凝。严禁使用肝素，因其对PCR扩增有抑制作用, 且无法在核酸提取过程中去除。抗凝后6小时内分离血浆。
如用血清标本，则应尽快（2小时内）分离血清进行检测，或-20oC保存。
全血标本
通常用来提取外周血单个核细胞核酸：如基因组DNA、线粒体DNA、总RNA等。
抗凝剂：一般使用EDTA-Na2、枸橼酸纳，不使用肝素。
7．组织
组织有新鲜组织和石蜡切片。
新鲜组织的处理步骤：
先用生理盐水洗二次，然后将其捣碎或剪碎（用眼科剪），加蛋白酶K消化后提取核酸
石蜡切片用于核酸提取，需先用二甲苯脱蜡，再用蛋白酶K消化后进行DNA提取。
标本的保存
血清（浆）
分离出的血清（浆）如不立即提取核酸，保存于-20℃待检。
尽快分离血清(浆), 如不立即提取RNA，保存于-20℃待检。
长期保存：吸取200μl血清，加20u RNasin（RNA酶抑制剂），保存于-70℃。
已发出结果报告的标本应及时转移至冰箱保存，并由专人负责管理，保存1-2周（时间长短根据报告单上的承诺而定）。
全血标本
全血标本如用于DNA提取，可4℃下短期保存（数天），时间长易降解，
如用于RNA检测，应在取血后尽快提取RNA。
最好将DNA或RNA提取后，置-70℃保存。
组织
新鲜组织最好保存于50%乙醇中，具体方法：先用生理盐水将组织洗一次，切成小块，加入适量生理盐水，然后边摇边加入无水乙醇至终浓度为50%，这样固定的组织标本室温下可保存数日，4℃可保存6年。
总而言之，标本的保存及适当的预处理对核酸模板的成功提取具有决定性作用。要强调的是，所有用于上述处理的容器如试管或离心管，均应在使用前压灭菌。
核酸的提取
用10μl DEPC水溶解RNA，并加2u RNasin
↓
-20℃保存备用
RNA若要长期保存,需沉淀下来后置于无水乙醇冻在-70度,用的时候再离心下来除去无水乙醇,用DEPC水溶解
RNA若要长期保存,需沉淀下来后置于无水乙醇冻在-70度,用的时候再离心下来除去无水乙醇,用DEPC水溶解
有下面这种说法：
保存RNA应该尽量低温。为了防止痕量RNase的污染，从富含RNase的样品（如胰脏、肝脏）中分离到的RNA需要贮存在甲醛中以保存高质量的RNA，对于长期贮存更是如此。从大鼠肝脏中提取的RNA，在水中贮存一个星期就基本降解了，而从大鼠脾脏中提取的RNA，在水中保存3年仍保持稳定。另外，长度大于4kb 的转录本对于痕量RNase的降解比小转录本更敏感。为了增加贮存RNA样品的稳定性，可以将RNA溶解在去离子的甲酰胺中，存于-70℃。用于保存RNA的甲酰胺一定不能含有降解RNA的杂物。来源于胰脏的RNA 至少可以在甲酰胺中保存一年。当准备使用RNA时，可以使用下列方法沉淀RNA：加入NaAc至0.3M，12,000×g离心5分钟。
我想请教一下，用无水乙醇冻在-70度保存能保存多久时间？保存质量如何？与上述方法比较如何？
昆虫标本的采集、制作及保存方法（全） 采集、制作及保存昆虫标本是从事农林昆虫学研究的基本技术。由于自然界的各种昆虫生活方式和环境各异，其活动能力和行为千差万别，有的昆虫形态也常模拟环境，因而必需有丰富的生物学和有关的采集知识，才能采得完好的所需标本。采集和制作大量标本后，还必须有科学的保管方法，使标本经久不坏。 第一节昆虫标本的采集方法 一、采集用具的构造和使用 （一）捕虫网是采集昆虫最常用的工具，按结构和用途不同，可分为以下四种类型。 1. 空网（图1） 用来采集蝴蝶、蜂类、蜻蜓等善飞的昆虫。网圈用粗铁丝弯成，直径约33cm，两端长出的末端弯成小钩，固定在网柄上。为了携带方便也可作成对折形。网柄长约1m，用木棍、竹竿制成。网袋用透气、坚韧、淡色的尼龙纱、珠罗纱、纱布等制成。网的长度应超过网圈直径的一倍。袋底略圆，以利于将捕获的昆虫装进毒瓶。袋口用布镶边，内穿网圈。 图1 捕虫网 1. 空网的装置 2. 网圈连接网柄的方法 3. 网袋的裁制 4. 可拆卸、折叠的网圈 2. 扫网制作方法与空网相同。但因用来扫捕树丛、杂草丛中隐蔽的昆虫，因而要用较结实的白布或亚麻布制作网袋，网框、网柄都要选择坚固的材料，以承受网扫时较大阻力。扫网的网底也可做成开口式，用时将网底扎住，网扫后打开网底，可将昆虫直接倒入容器或毒瓶。 3. 刮网（图2）在树皮上采集昆虫时，可用粗铝丝作架，前面连接上一段有弹性的钢条，缝上白布的网袋，底端可捆扎上个小瓶，以便接虫。 4. 水网（图3）用来采集水生昆虫。根据水域深浅，河、溪的宽狭，水草的稀密及所采的昆虫种类来选择网的规格和种类。作水网的材料要坚固耐用，用
尿液标本的收集、保存与处理 一、尿液标本收集 为保证尿液检查结果的准确性，必须正确留取标本。收集容器要求：①清洁、干燥、一次性使用，有较大开口便于收集；②避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染；③无干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入；④有明显标记的如病人姓名、病历号、收集日期等，并必须粘贴在容器上；⑤能收集足够尿液，最少12ml，最好超过50ml，如收集定时尿，容器应足够大，并加盖，必要时加防腐剂；⑥如需培养应在无菌条件下，用无菌容器收集中段尿液。 尿标本收集后应及时送检及检查，以免发生细菌繁殖、蛋白变性、细胞溶解等。尿标本也应避免强光照射，以免尿胆原等物质因光照分解或氧化而减少。 二、尿标本种类 按检查目的，常可采用下列标本： 1．晨尿即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好，也便于对比。适用于可疑或已知泌尿系疾病的动态观察及早期妊娠试验等。但由于晨尿在傍胱内停留时间过长易发生变化。因此有人推荐用清晨第二次尿标本检查来取代晨尿。 2．随机尿（随意一次尿）即留取任何时间的尿液，适用于门诊、急诊患者。本法留取尿液方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可致使浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。 3．餐后尿通常于午餐后2小时收集患者尿液，此标本对病理性糖尿和蛋白悄快活的检查出更为敏感，因餐后增加了负载，使已降低阈值的肾不能承受。此外由于餐后肝分泌旺盛，促进尿胆原的肠肝循环，而餐后机体出现的碱潮状态也有利于尿胆原的排出。因此，餐后尿适用于尿糖、尿蛋白、尿胆原等检查。 4．3h尿收集上午3小时尿液，测定尿液有形成分，如白细胞排出率等。 5．12h尿晚8时排空傍胱并弃去此次的尿液后，留取至次日晨8时夜尿，作为12小时尿有形成分计数，如Addis计数。 6．24h尿尿液中的一些溶质（肌酐、总蛋白质、糖、尿素、电解质及激素等）在一天的不同时间内其排泄浓度不同，为了准确定量，必须收集24小时尿液。于第一天晨8时排空膀胱，弃去此次尿液，再收集至次日晨8时全部尿液，用于化学分的定量。 7．其它包括中段尿、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。后两种方法尽量不用，以免发生继发感染。尿标本收集的类型、分析项目、应用理由及注意见表5-1。
读《先进的昆虫学技术》和《收集和保存昆虫的技术与方法》有感阅读了这两篇关于昆虫采集和保存的文章后确实获益匪浅。多数人会采集他们所能见到的一些昆虫，而作为高校大学生的我们一般要求采集尽可能多的种群。面对如此多样的采集对象和如此繁杂的采集工具和方法，应该用什么采集？怎么采集呢？一般说来，标本采集的时间、地点、数量以及龄期等都需要按照采集目的确定。现将采集昆虫时涉及较多的基本工具和方法简要介绍如下： 一捕虫工具 1.1 捕虫网 目前利用较多的采虫工具是捕虫网，由于采集的对象和目的不同, 捕虫网又可分成捕网（主要捕捉空中飞行或悬停在枝叶端的昆虫,如蝴蝶、蜂和蜻蜓）、扫网（用于捕捉杂草、灌丛中隐蔽不易发现的各种昆虫, 如甲虫）、水网（用于采集水面及水中昆虫）和刮网（用于采集树干、树皮下的昆虫）等。由于实验中捕网应用较广，下面就将捕网的制作方法简要介绍如下： 捕网由网袋、网圈和网柄三部分组成。网袋一般做成直径30-38cm的圆锥形体，网袋除了必须通风、阻力小以外, 还要保证材料轻便、柔软、耐用和颜色较浅。网圈一般用8号铅丝、铜丝、钢丝或纲条弯成直径80cm的圆形,一端留出12cm, 另一端留出10cm的长度, 分别相向折成直角。两端的终端2cm处再弯成直角, 以便插人网柄。为便于携带可把网圈截成2-3段,接处用铆钉或铁箍箍住,制成折叠式。网柄以松木、竹等轻体材料制成。一般直径19mm,长度105-140cm为适宜, 表面饰漆, 以防虫蛀及干裂。另外由于捕捉不同的昆虫, 捕网构造也可改变。如捕捉蝴蝶的网圈口径要再大些, 网柄要长些。 1.2 毒瓶 采到昆虫后，有时需要及时放入毒瓶内杀死。常用的毒瓶一般选用质量较好的磨砂广口瓶，瓶口一定要严紧且瓶盖不易脱落，这样毒气才不致外溢，才能保证使用安全。另外也可以利用罐头玻璃瓶加配塑料盖来制作毒瓶。一般毒瓶的制作有两种方法：专业采集用的毒瓶，常使用氰化钾做毒剂，这种毒瓶的毒力特别强，昆虫入瓶后即可迅速致死。由于该种毒剂有剧毒，所以在制作、使用以及保管等方面要特别注意安全。例如，在瓶外连同瓶底加粘一层胶布或透明胶带防护，可以更加安全耐用。为携带方便，常在毒瓶体外配装背带。 一般采集昆虫用的毒瓶，其毒剂是多种多样的，有用脱脂棉蘸上适量乙醚或醋酸乙烷作毒剂，放在瓶底，上面盖一块硬纸板或薄塑料板，板上穿些小孔，使用起来也有毒效。适于
精心整理 : 系统逐个扫 并按检验项 然后 1.2、验证：进入各实验室的样本在进行操作前,工作人员应再次认真查对姓名,联号,住院号,病区床号,项目等对不符合要求者应作记录,并及时通知采样科室,正确及时地补采样,以免延误病人的检测结果报告,对书写不清楚的申请单,当事者要及时与病房联系(可电话),明确受检者姓名,住院号,性别,年龄,病区,床号和检验项目等。
1.3、转送：在查对过程中一旦发现有其他实验室(包括病理科)或本科各实验室的样本,要提高责任性,及时地转送(可电话通知)有关实验室(尤其是争论急诊项目)切勿延搁样本,延误检测,影响检验结果和报告时间,对人为造成的样本遗失,漏检和由之延误检测违反承诺限时报告引起病人纠纷和投诉,将追究当事者和当事实验室责任。 急诊标本及各病房零散标本：由采血室人员登记并转送相关实验室 1.4、外单位送检：外单位送检的样本,一律登记后,再转交各实验室检测,报告结果由检测者传真发 出或由服务台人员转发。 1.5 收集,对超时样本要求(急诊样本除外), 1.6 ,对采样 困难者要主动跟踪样本, 1.7,要随时登记和交班,以免漏检,遗失和 延误检验,,一律追究责任。对特殊样本或 ,所谓特殊样本是指难于采集的样本,以及特殊病人的样本一律实行"首接"(包括进修生和实习生,违者根据实际情况分别追查当事者或带教老师责任)一旦收到样本后,均须负其责任,不得以任何借口推托,及时和正确保管和转送样本到有关实验室或有关人员,同时作交班记录和双签名。 2、样品使用 2.1.将当天送来的标本，根据编号的基本原则，给当天的标本编好号，每个样本的每个检测项目对应一个唯一的编号。 2.2.每张单和对应的样品管上条码号标记相同。
检验标本采集和送检的基本要求 一、分析前阶段质量保证工作的内容及重要性 分析前阶段又称检验前过程。按CNAS-CL02：2008《医学实验室质量和能力有专用要求》的定义：分析前阶段按时间顺序，该阶段始于来自临床医师的申请、患者准备、原始样本采集、运送到检验科并在实验室内部的传递，至检验分析过程开始时结束。 根据此定义，分析前阶段质量保证的主要内容为：保证检验项目申请的科学性、合理性；根据临床医师的检验要求，患者的病情正确准备；原始样本的正确采集及运送。 这一阶段质量保证的重要性在于保证所提供的检验信息对临床医师用于患者诊断、治疗时的有效性、可靠性。也就是说这一阶段质量保证工作是为保证检验结果能真实、客观地反映患者当前病情或健康状态所应采取的必要保证措施。如一个溶血的血清标本，即使用最好的方法、技术熟练的人员去检测，其钾的测定值一定是增高的。对该标本来说，此结果是准确的，因他反映了血清中钾的真实含量，但对患者来说，此信息是无效的，因为此结果并不反映患者当前病情变化，因为血钾增高是由溶血引起，而并不是病情变化引起的。 所以分析前阶段质量保证是临床实验室质量保证体系中最重要、最关键的环节之一，是保证检验信息正确、有效的先决条件，而检验信息的有效性是检验工作的目的，也是检验质量重要内涵之一。检验信息的不正确、不可靠，不仅会造成人力、物力的浪费，还可能对临床诊治产生误导，延误对患者及时治疗。 二、检验项目的正确选择 检验项目选择是否正确，是检验信息是否有用的前提。临床实验室向临床提供的信息如下： 1、诊断信息。 2、治疗信息。 3、患者病情转归的信息。 4、预防信息。 5、人体健康状况评估的信息。 6、其他。
检验标本采集要求 一、病人准备 1．病人状态 一般需在安静状态下采集标本，因运动能影响许多项目的测定结果。活动的影响可分暂时和持续性两类。暂时性影响如使血浆脂肪酸含量减少；丙氨酸、乳酸含量增高。持续性影响，如激烈运动后使CK、LDH、ALT、AST和GLU等的测定值升高，有些恢复较慢，如ALT在停止运动1h后测定，其值仍可偏高30％～50％。 2．饮食 多数试验要求在采血前禁食12h，因为饮食中的不同成分可直接影响实验结果。 (1) 餐后血液中ALT、GLU、BNU、Na等均可升高，但空腹达24h以上，可出现低血糖，血中TG、游离甘油及脂肪酸可增高。 (2) 高脂餐后2～4h采血，多数人ALP含量增高，主要来自肠源性同工酶，且与血型有密切关系，O型或B型兼为Le+分泌型者增高更为明显。 (3) 高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加，但不影响肌酐含量。 (4) 高比例不饱脂肪酸食物，可减低胆固醇含量；香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍。 (5) 含咖啡因饮料，可使血浆游离脂肪酸增加，并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。 食物如含有动物血液，可引起粪隐血假阳性。 (7) 饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、乙醛、乙酸等增加，长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶亦较不饮酒的病人为高，甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。 吸烟：瘾大者血液一氧化碳血红蛋白含量可达8％，而不吸烟者含量在1％以下。此外，儿茶酚胺、血清可的松亦较不吸烟者为高，血液学方面亦有变化，白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、血红蛋白偏高、平均红细胞体积偏高。吸烟组血浆硫氰酸盐浓度明显高于非吸烟组。 3．药物 药物对检验的影响非常复杂，在采样检查之前，以暂停各种药物为宜，如某种药物不可停用，则应了解可能对检验结果产生的影响。 4．体位 体位影响血液循环，由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变，则细胞成分和大分子物质的改变较为明显，例如由卧位改为站位，血浆ALB、TP、酶、Ca、胆红素、Tch及TG等浓度增高；Hb、HCT、RBC等亦可增加。由于体位的因素，在确立参考值时，应考虑门诊和住院病人可能存在的结果差异，故采集标本时要注意保持正确的体位和保持体位的一致性。 5．时间 病人准备还应考虑病人的生物钟规律，特别是激素水平分析，如女性生殖激素与月经周期密切相关；胆固醇则在经前期最高，排卵时最低；纤维蛋白原在经前期最高，血浆蛋白则在排卵时减少。生长激素于入睡后会出现短时高峰。胆红素、血清铁以清晨最高；血浆蛋白在夜间降低；血Ca往往在中午出现最低值。故采血时间应在相同时间进行。 二、标本采集
生物化学检验室标本处理与保存 一、ISO15189相关条款： 5.4 检验前程序 5.4.5 原始样品应可追溯到具体的个体（通常由检验申请表）。实验室不应接受或处理缺乏正确标识的原始样品。 若原始样品识别方式不确定或原始样品中的被分析物不稳定（如脑脊液、活检标本等），及原始样品不可替代或很关键，实验室可选择先处理样品，待申请医师或采集原始样品者承担识别和接受样品的责任和/或提供适当的信息后再发布结果。这种情况下，负责识别原始样品者宜在申请表上签字或可被追溯至申请表。无论何种原因，若在无法满足上述要求的情况下进行了检验，宜在报告上明确责任人。留待进一步检验（如病毒抗体，与临床症状有关的代谢产物）的样品也宜同样标识。 5.4.6 实验室应监控样品运送到实验室的过程，样品运送应符合如下要求： a) 根据申请检验项目的性质和实验室相关规定在一定时间内运达； b) 在原始样品采集手册规定的温度范围内运送并使用指定的保存剂以保证样品的完整性； c) 应以确保对运送者、公众及接收实验室安全的方式运送，并应遵守国家、区域和地方法规的要求。 5.4.7 应在接收记录簿、工作记录单、计算机或其他类似系统中对收到的所有原始样品进行记录。应记录收到样品的日期和时间，同时应记录样品接收者的标识。 5.4.8 应制定有关接受或拒收原始样品的标准并文件化。如果接受了不合格原始样品，应在最终报告中说明问题的性质，如果适用，在解释结果时也应说明。 5.4.9 实验室应定期评审静脉穿刺取血（及取其他样品如脑脊液）所需的样品量，以保证采样量既不会不足也不会过多。 5.4.10 被授权者应对申请和样品系统地评审，并决定所做检验项目及所用检验方法。 5.4.11 如适用，实验室应对接收、标记、处理和报告其所收到的有特殊紧急标记的原始样品的程序文件化。程序应包括对申请表和原始样品上所有特殊标记的详细说明、原始样品送达实验室检验区的机制、应用的所有快速处理模式和所有应遵循的特殊报告标准。 5.4.12 取自原始样品的部分样品应可追溯至最初的原始样品。 5.4.13 实验室应有针对口头申请检验的书面政策。 5.4.14 样品应于规定的一定时间内在保证其性状稳定的条件下保存，以能在出具结果报告后复检或做附加检验。 二、程序文件 JY/CX/022 样本管理程序 【标本的接收和拒收】 4.6 合格标本 4.6.1 合格标本条件包括但不限于以下方面：①检验申请明确，内容完整：检验申请必须符合JY/CX/020《检验申请单管理程序》要求，同时必须有采样者签名。②标识清楚正确：有双标识及采样时间；标识粘贴端正；标本标识内容与申请单符合。③标本送达时间：采样后在规定时间内送检，采样后必须立即送检的常规项目：血氨、血气分析、乳酸以及各种细菌培养；采样后0.5小时内送检的常规项目：血糖、电解质、血液细胞学、凝血试验、体液细胞学、涂片找细菌、真菌、疟原虫检查等。
标本采集和送检原则集团企业公司编码：（LL3698-KKI1269-TM2483-LUI12689-ITT289-
正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键！其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。采样时机 抗生素使用前（停用抗生素3至5天或下次用药前）采样 采样方法 采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。 采样容器 专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。 送检 尽快送检，一般不超过2小时。 若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。 当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。 微生物检查的标本采集和运送原则 1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。 2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。 4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。 5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。 6.采用专用无菌容器收集标本。容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂。 7.采样后应立即送检，最好在2h内。如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。 8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。 9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。（要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等） 10.同一天同一检测目的、相同标本（血液标本除外）一般只需送检一次（份）。涂片检查最好和细菌培养同时做！
微生物标本采集、送检及处理原则 一、标本采集的一般原则： 1、病程早期、急性期或症状典型时，使用抗生素前。 2、无菌采集应无污染，严格进行无菌操作。 3、根据目的菌的特性用不同的方法采集适量标本，采集量不应过少。 4、注意在不同病程采集不同部位标本。 5、采集标本时要防止传播和自身感染。 二、标本的处理： 1、标本保存在4℃环境中，在2h之内送检。脑脊液则要在25 ℃保存，用于细菌培养的标本保存时间不应超过24h。对环境敏感的细菌应保温并立即送检。 2、标本中可能含有致病菌，必须注意安全防护。切勿污染环境。对于烈性传染病标本运送时更要由专人运送，严格按规定包装。 3、厌氧性标本应放在专门的运送瓶或试管内运送，有时可直接用抽取标本的注射器运送。 Ⅰ血液及骨髓标本： 血液标本的细菌培养是诊断菌血症或败血症的基本方法。如从患者血液中检出细菌，一般应视为病原菌。 常见的病原菌主要有金黄色或表皮葡萄球菌、链球菌（A、B群、肺炎链球菌等）、肠球菌、产单核细胞李斯特菌、脑膜炎奈瑟菌、伤
寒及副伤寒沙门菌和厌氧菌等。 1、采血时间及次数 2、抽血部位及抽血量 3、报告方式：培养5d无菌生长者报告“培养5d无菌生长”。 查见细菌报告菌名和药敏结果。 4、菌血症、败血症的诊断标准：1）两次培养均出现同一种细菌（可排除污染）； 2）发病星期后血中抗体滴度上升。 Ⅱ脑脊液标本： 脑脊液的细菌学检查对于细菌性脑膜炎的诊断有重要价值。正常人的脑脊液是无菌的，检出细菌提示有细菌性（急性化脓性、结核性等）脑膜炎。 常见的病原菌主要有脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、链球菌（A、B群和肺炎链球菌）、葡萄球菌、产单核细胞李斯特菌、结核分枝杆菌等。 1、涂片检查： (1) 一般细菌涂片检查：例如：革兰阴性、凹面相对的球菌，可能是脑膜炎奈瑟菌；链状排列的革兰阳性球菌；长丝状等多形态性的革兰阴性杆菌，可能是流感嗜血杆菌。 (2)结核分枝杆菌涂片检查 (3)新生隐球菌涂片检查
干制标本制作 干制标本是指以干燥方法制成的标本，其优点是制做简单，勿须其它溶液或容器保存，但干制标本由于脱水容易收缩变形，且容易虫蛀霉变。现以昆虫成虫为例对干制标本加以说明。 （一）采集昆虫 1.使用工具 捕虫网：活泼的昆虫一般适宜用网来捕捉。所以采集昆虫必须要有捕网、扫网及水网。捕网通常用纹帐或白尼龙纱制成网圈，用粗铁丝制成环形，直径约30厘米左右，底袋呈圆锥形。网柄长约1米左右。扫网主要适于在草丛中捕捉昆虫。可用麻布或亚麻布制成，比捕网略小一些。网柄要短（长约一尺半左右）而粗，网要坚固。此外，扫网是网底开。水网和捕网大致相同，但是用细布制成，并且网比较浅，而网柄较长。 毒瓶：采集时，一般应带两个毒瓶，一个瓶毒杀蝴蝶及蛾类昆虫，另一瓶毒杀其它类的昆虫。毒瓶可用直筒形瓶制成，也可用广口瓶或平底试管等制成。毒杀剂可采用氰化钠或氰化钾等，也可用敌敌畏、氨水、乙醚等。 三角纸包：外出采集，采到昆虫不能立即做成标本，可先用三角纸包包好，编号记载后，带回驻地或学校制做。三角纸包的大小可由昆虫的大小决定。取较柔软难透水的纸一张折成三角袋。 采集箱：野外采集时，有些标本需要当时就进行针插，所以要有一个放标本的盒子。一般用保存针插标本的木标本盒就可以，另外也可以用轻的木料作成采集箱（见图7）。箱盖和箱底高度一样（约4厘米），都贴上软木板便于插标本。箱的大小关系不大，也可分为几格放其它物品，除针插标本外，可把纸三角袋和纸包标本放在箱内，以免压坏。 2.采集昆虫的方法 网捕：网捕主要用来捕捉会飞的昆虫，或停在植物上的昆虫。网捕的方法如下：当昆虫飞来，迎面用网捕捉，当虫子入网后，使网底向上甩，连虫子同网底一齐翻到上面来，然后再用手或试管伸入网内将虫子取出来。 扫捕：此法主要用在大片的草丛和茂密的灌木中。当采集者走到茂密的藏有虫子的草丛中时，用扫网在上面左右摆动，一面扫一面前进，将有许多小虫子集中到网底，或者被甩入网底，连接着胶管中。尤其在途中采集而时间仓促的时候，边扫边走也可以得到许多标本。 灯光诱集：夜间，灯下会有许多昆虫飞来，停在窗上，墙上，或绕灯而飞，所以在灯下常常能采到许多昆虫标本。方法如下：野外采集可以临时拉线挂一盏200瓦电灯或点一盏汽油灯，在灯的后面张开一块白布，下面用石头压住。这样可以诱来非常多的各种昆虫，最多的是大小不一的蛾类，它们多停在白布上。这时，只要多备几个毒瓶就可以大量收集昆虫。 （二）制作标本 1.标本制作前需要准备的工具
标本采集、送检、运送、接收、处理、保存和销毁 规程 1、目的 保证标本采集到贮存过程符合本实验室检测及法律法规的要求,保证标本质量。 2、适用范围 本站血液检测标本、检测留样标本及临床送检标本。 3、职责 采血人员或相关工作人员负责标本的采集、送检、运送和交接;血库工作人员负责血液检测样本的临时接收和暂存;检验人员负责标本的接收、处理、保存和销毁;办公室负责组织检验科业务人员对标本采集人员进行相关培训。 4、作业步骤 4.1样本采集要求: 4.1.1:知情同意:标本采集应征得献血者知情同意,内容包括:告知采集(留取)标本量,以及用途(仅用于本站血液检测)。 4.1.2:采集: a.初筛检测样本:采集前严格核对献血者和登记表,抽取1-2ml 的献血者血液于含饱和EDTA-Na2 /K2抗凝剂50ul的普通塑料试管中或含有抗凝剂的真空管中。贴好与献血者登记表一致的献血序列码。 b.献血后血液检测样本:
(1)留取要求:献血者献血后采集人员从血袋/留样袋中留取双份 血样用于实验室的一检和二检,两支血样试管,一支为含分离胶的促 凝真空管(黄盖),应先留取(不能混入血袋中保养液),另一支为EDTAK2抗凝真空管(紫盖),每支试管留取3-5ml血液,留取后立即轻轻上下颠倒至少3次与抗凝剂/促凝剂充分混匀,贴上与献血登记表、血袋标识条码一致校验码为07的献血序列码。 (2)序列码粘贴要求:序列码粘贴不歪斜、无褶皱,沿负压管盖下竖直粘贴,血型标识向上,条码清晰; (3)校对要求:一次只对一袋血液和同源样本进行贴签留样;所留 标本必须按规程进行操作,并经过Spring采血管理模块对采血袋、登记表和标本管三个序列号一致后方可进入下一流程。 (4)临时储存:血液标本留取结束后及时放在2-10℃环境中保存。 c.临床送检标本要求: (1)疑难血型鉴定及交叉配血:使用一次性真空采血管采集受检者血样6-10ml,一支EDTA-K2抗凝,另一支未抗凝,每支3-5ml。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床诊断,病史及检测项目等信息,48h内采集。 (2)新生儿溶血病检查样本:使用一次性真空采血管采集母亲和新生儿血样各1-2ml,EDTA-K2抗凝(紫盖)。标识清楚,贴有与申请单一致的序列码,申请单注明被检者姓名、性别、年龄、临床印象及住院号床号等信息。于4℃保存72小时内检测。 4.2运输要求:
标本采集、运送、保存成序 1.目的 规范标本采集程序，保证实验室检测前标本质量。 2. 范围 微生物标本。 3. 职责 3.1 医护人员和检验人员负责指导病人如何正确留取标本。 3.2 标本运输人员负责收取标本和运输标本至微生物室。 4. 程序 4.1 采集标本前，采样人员根据检验申请单检验项目的要求，确认采样计划并进行适当的准备工作，包括核对遗嘱、打印条形码、选择合适的标本容器、粘贴条形码及指导病人做好采样前的准备工作等。 4.2 认真核对病人、标本容器和检验申请单是否一致，严防差错。 4.3 标本送到微生物室，标本运输人员必须与微生物室标本接收人员对标本进行核收登记并签名 4.4 所有标本必须记录采样时间并立即送检，一般不得超过2h. 5 采集方法 5.1 血液及骨髓 5.1.1 血液 5.1.1.1采血时间：①在抗菌药物治疗前；②尽可能在患者寒战开始时、发热高峰前30-60分钟内采血；③如患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前采血培养；④同时或短时间内完成几套血
培养采集，除非怀疑存在持续性菌血症时（如亚急性感染性心内膜炎1-2小时从不同部位采集3套标本） 5.1.1.2采血量：成人一次采血5～10ml,儿童2～5 ml婴幼儿为1～2ml。（附注：儿童的采血量不能超过其总血容量的1%）。 5.1.1.3采血方法：①成年病人，推荐同时在不同部位采集2～3套（每套包括一瓶需氧瓶、一瓶厌氧瓶）；对于感染性心内膜炎和真菌血症则应多次采集；对于婴幼儿病人，推荐同时在不同部位采集2～3瓶。因为儿童患者很少见厌氧菌感染，因此推荐仅使用需氧瓶而不常规推荐同时做厌氧培养。②采血量充足时，应先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶；采血量不足时，应先注入需氧瓶，后注入厌氧瓶。 5.1.2 骨髓标本用骨髓穿刺针从髂骨采集。 5.1.3 标本保存：采集标本后立即送到实验室，不能及时送检可置于室温，切勿放入冰箱。冬季血培养瓶在送检过程中应采取一定的保暖措施。 5.2 脑脊液标本：由临床医师以无菌要求做腰椎穿刺，抽取脑脊液2～3ml,盛于无菌容器中送检。脑膜炎奈瑟菌离体后能产生自酶，会迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌离体后也易死亡，因此，脑脊液无论图片或培养，必须于采集后立即送检。 5.3 上呼吸道标本 5.3.1 鼻咽标本：将鼻咽拭子缓缓地伸进鼻孔直至鼻咽喉部（注意：不可用力），轻轻转动，并于该深度停留20～30s,然后迅速地抽出（注意：避免受口或咽部中细菌的污染）。
微生物标本采集及保存要求 一、总则：用于培养的标本在收集时应注意严格无菌操作和及时送检，检测后标本应妥善保存。 二、临床标本的采集 （一）下呼吸道分泌物（痰液） 令患者早上起床后用清水濑口，不要刷牙，立即从下部呼吸道咳出第一口痰，吐在无菌塑料痰盒中，及时送检。 （二）、尿液（中段尿） 护理人员协助采取中段尿约3ml入无菌试管中，及时送检。 （三）、粪便：取有粘液、脓血部分的粪便置玻璃大便专用管中，如为稀水便，可直接收集于玻璃管中，及时送检。 （四）、眼、耳、鼻、喉拭子：将棉拭子沾取少许无菌生理盐水（如沾取的太多，可在无菌生理盐水瓶壁上挤去多余的水份），然后采取可疑部位的分泌物，倒悬于无菌试管内,及时送检。 （五）、脓液：用沾有生理盐水的棉拭子沾取脓液，要尽量多取一些，然后将棉拭置于无菌试管中，及时送检。 （六）、： 1、凡怀疑菌血症和败血病的患者，采血培养时，应尽量在未使用抗菌素前采血，如已使用抗菌素，应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血，应在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。当然在病人发热或寒颤时采集也可。 2、成人每次采血5—10ml，小儿采血2—3ml； 3、严格消毒病人采血部位和血培养瓶口，抽一定量血液后，无菌注入血培养瓶内，轻轻摇匀， 4、从抽血到接种入瓶，动作要快，防止血液凝固，同时要及时送检。 （七）、穿刺液：胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液： 严格无菌抽取后，注入含肝素抗凝的无菌试管中，轻轻颠倒试管10余次，使肝素与穿刺液混匀达到抗凝的目的，或直接无菌注入血培养瓶内及时送检。 （八）、胆汁：由专科医生以无菌方法取引流液10ml注入无菌试管。 （九）、脑脊液：以无菌方法取脑脊液3-5ml，置无菌试管内，常温保存送检，如只做培养可直接无菌注入血培养瓶内，及时送检。 （十）、生殖器官标本：阴道、子宫颈及前列腺等分泌物应由医师采集，收集于无菌试管内送检。如疑为淋病奈瑟菌感染，做培养检查时，采集的标本应床旁接种并及时放入孵箱培养。（十一）、烧伤标本：以无菌棉拭子直接采取多个部位创面的脓汁分泌物放入无菌试管中. （十二）、支原体（解脲、人型）培养+药敏的标本采集 1、支原体对干、热抵抗力差，标本采集后应尽快接种支原体运送培养基送检。 2、男性：用细的无菌棉拭子沾取无菌盐水少许深入尿道口内2.5-3cm。 三、临床标本的保存 细菌室标本原则上要求及时送检、及时处理，不得保存。
第四章植物标本的采集、制作和保存 植物标本包含着一个物种的大量信息，诸如形态特征、地理分布、生态环境和物候期等，是植物分类和植物区系研究必不可少的科学依据，也是植物资源调查、开发利用和保护的重要资料。在自然界，植物的生长、发育，有它的季节性以及分布地区的局限性。为了不受季节或地区的限制，有效地进行学习交流和教学活动，也有必要采集和保存植物标本 “没有植物标本，也就没有植物分类学”。由此可见，掌握植物标本的采集、制作和保存的一整套工作方法，对一个植物学工作者和教师来讲，是极为重要的。 植物标本因保存方式的不同可分许多种，有腊叶标本、液浸标本、浇制标本、玻片标本、果实和种子标本等。本书介绍最常用的腊叶标本和液浸标本的制作方法。 一．腊叶标本的制作 将植物全株或部分（通常带有花或果等繁殖器官）干燥后并装订在台纸上予以永久保存的标本称为腊叶标本。这种标本制作方法最早于16世纪初由意大利人卢卡·吉尼（Luca Ghini）发明的，世界上第一个植物标本室建于1545年的意大利帕多瓦大学。一份合格的标本应该是：(1)种子植物标本要带有花或果(种子)，蕨类植物要有孢子囊群，苔藓植物要有孢蒴，以及其它有重要形态鉴别特征的部分，如竹类植物要有几片箨叶、一段竹竿及地下茎。(2)标本上挂有号牌，号牌上写明采集人、采集号码、采集地点和采集时间4项内容，据此可以按号码查到采集记录。(3)附有一份详细的采集记录，记录内容包括采集日期、地点、生境、性状等，并有与号牌相对应的采集人和采集号。 （一）、标本采集用具 1．标本夹：是压制标本的主要用具之一。一般长约43cm，宽30cm，以宽3cm，厚约5~7mm的小木条，横直每隔3~4厘米，用小钉钉牢，四周用较厚的木条(约2cm)嵌实。它的作用是将吸湿草和标本置于其内压紧，使花叶不致皱缩凋落，而使枝叶平坦，容易装订于台。 2．枝剪或剪刀：用以剪断木本或有刺植物。 3．高枝剪：用以采集徒手不能采集到的乔木上的枝条或陡险处的植物。 4．采集箱、采集袋或背篓：用以临时收藏采集品用，过去是用铁皮制成
临床常见的标本有血清（浆）、全血、分泌物、棉拭子、脓液、体液、新鲜组织、石蜡切片等，这些临床标本的处理和保存方法各有不同。 临床标本的处理 血清（浆）标本 一些病原体，如乙肝病毒（HBV）、丙肝病毒（HCV）、人类免疫缺陷病毒（HIV）等的PCR检测常采用血清或血浆标本。 HBV： 标本通常由医护人员采集，应注意避免溶血，如为血浆标本注意抗凝剂的选择，一般用EDTA-Na2或枸橼酸纳，不可使用肝素。标本为全血时，及时分离出血浆，提取病毒DNA进行检测。 HCV： 检测RNA病毒。由于RNA极易降解，标本的制备和保存方式往往可以影响测定结果。若用血浆标本，应使用EDTA抗凝。严禁使用肝素，因其对PCR扩增有抑制作用,且无法在核酸提取过程中去除。抗凝后6小时内分离血浆。如用血清标本，则应尽快（2小时内）分离血清进行检测，或-20oC保存。 全血标本 通常用来提取外周血单个核细胞核酸： 如基因组DN A、线粒体DN A、总RNA等。 抗凝剂： 一般使用EDTA-Na 2、枸橼酸xx，不使用肝素。
1）加适量的红细胞裂解液（破膜液），裂解全血中的红细胞。 2）再加适量的细胞核裂液（破核液），裂解白细胞中的细胞核，使核内DNA释放出来。 3）然后再加SDS（十二烷基硫酸钠）等去污剂，溶解脂蛋白，解聚核蛋白。 SDS可与蛋白质结成复合物，使蛋白质变性沉淀，但SDS在以后的核酸提取过程中必须除去。 痰标本 痰属于分泌物，临床上常用作结核杆菌DNA测定样本，由于痰标本中含大量粘蛋白和杂质，故在核酸提取时，一定要对标本进行前处理，即用4%NaOH 液化，去除粘蛋白，然后用煮沸或蛋白酶、酚/氯仿等经典法提取DNA。 具体方法： 用无菌平皿取患者肺深部咳出的痰液1-3ml，↓加入4倍体积4%NaOH，摇匀，室温下放置30分钟左右液化↓取 1.5ml EP管，加 0.5ml液化痰液，再加 0.5ml 4%NaOH室温放10分钟↓ 12000 rpm，离心15分钟↓弃上清，加无菌生理盐水1 ml，混匀，12000rpm离心5分钟↓弃上清，沉淀物用于DNA提取 棉拭子 用PCR方法检测性病病原体时（衣原体、支原体、淋球菌、梅毒螺旋体、人乳头状瘤病毒等），临床标本一般为棉拭子。标本取材是关键，衣原体等病原体感染上皮细胞，因此取材一定要取到细胞。
检验标本的采集、储存、转运和处理制度 检验标本的采集 一、血液标本的采集 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 （一）静脉采血法 1?．采血步骤 采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。 2?．注意事项 （ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。 （ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。 （ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。 （ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5 ％～ 15 ％。因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。 （ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。 （二）动脉采血法 肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成 60 °角刺入，血液将自动进入注射器内。采血注意事项见血气分析部分。 （三）真空采血法 双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本
血液标本采集、送检、留样保存管理制度 1、病人血液标本采集由两名护士共同配合采集静脉采血 5ml,血清和血浆都可以用于交叉实验和抗体检测，最好是血清标本，标本使用限制在3 天内含有肝素等抗凝标本可以用凝血酶或硫酸鱼精蛋白处理使其凝集析出血清。 2、允许通过静脉输液口采集标本，但必须丢弃受残留静脉输液影响的 5ml 标本。 3、一般不允许使用溶血标本，对急性溶血性贫血和烧伤病人的溶血标本，在实验前后必须做溶血程度的比较。 4、标本和输血申请单上的所有资料必须填写清楚 5、确定输血后，护士输血申请单和贴好标签的试管，当面对患者姓名，性别，年龄，病案号，病室/门急诊、床号、血型和诊断，同时采血样。 6、由护士及时将受血者血样与输血申请单送配血室，双方进行逐项核对。 7、患者标本管上必须有标签，收到标本时应当面与医护人员核对血样标签与输血申请单是否相符，即双方逐项核对患者姓名、病案号、病室/门急诊、床号、血型和采血日期等，并检查送检标本的质量是否与申请项目的要求相符，不符合要求的样本一律退回，并进行书面记录。收到标有“急”字样的标本应及时处理。 8、配血室科工作人员应复核受血者（患者）ABO血型、Rh血型、抗体筛查后按科室分类保存在4℃冰箱备用。对中心血站提供的全血及红细胞悬液血液制品也应核对ABO血型后按血型分类保存在4℃冰箱备用。 9、预约输血患者的血样在4℃冰箱保存不能超过48小时，逾期应重新抽取血样。对反复输血的患者更应注意抽取新的标本做不规则抗体筛查及交叉配血，以避免患者体内因回忆反应而产生抗体。
10、确定输血后，输血科工作人员对患者的血样在交叉配血之前，应再次认真查对病人姓名、性别、年龄、住院号、病区床号及血型。交叉配血时要严格按照规程进行。 11、血液发出后，受血者和供血者的血样按日期的先后保存于2－6℃冰箱，至少7天，以便对输血不良反应追查原因。逾期的血样应按医疗废物处理原则处理，并做好登记工作。 12、血液标本留样保存冰箱的温度要定期监控记录，如发生故障要立即检查原因，及时解决并记录。 （注：专业文档是经验性极强的领域，无法思考和涵盖全面，素材和资料部分来自网络，供参考。可复制、编制，期待你的好评与关注）
植物标本的采集、制作与保存方法（全） 植物标本包含着一个物种的大量信息，诸如形态特征、地理分布、生态环境和物候期等，是植物分类和植物区系研究必不可少的科学依据，也是植物资源调查、开发利用和保护的重要资料。在自然界，植物的生长、发育，有它的季节性以及分布地区的局限性。为了不受季节或地区的限制，有效地进行学习交流和教学活动，也有必要采集和保存植物标本。 第一节国内外主要植物标本馆简介 据不完全统计，目前世界上约有大小植物标本馆（室）2639个，共收藏标本近3亿份。这些标本的76%保存在15个国家内，其中美国占22.1%，法国占7.4%，原苏联占6.6%，英国占5.7%，德国占5.6%，中国占3.7%。世界上馆藏100万份以上的标本馆有55个，其中500万份以上的标本馆有7个。这55个标本馆分布在22个国家，其中美国最多有12个，其次是英国、瑞典、德国和原苏联各4个，再次是法国、瑞士、日本各3个。上述数据表明植物标本收藏数量与国家的发达程度成正相关，不仅发达国家标本搜集起步早、搜集范围广，而且近年来增长速度也是最快的。如瑞典自然博物馆以每年16万份的速度增长；美国不仅大标本馆最多、占世界标本总数的比例最高，标本增加速度也最快，5年增加490万，占同期世界增长量的27.7%。 一、世界最大的10个植物标本馆 二、亚洲最大的5个植物标本馆
三、中国最大的6个植物标本馆 第二节腊叶标本的制作方法 植物标本因保存方式的不同可分许多种，有腊叶标本、液浸标本、浇制标本、玻片标本、果实和种子标本等。本书介绍最常用的腊叶标本和液浸标本的制作方法。 将植物全株或部分（通常带有花或果等繁殖器官）干燥后并装订在台纸上予以永久保存的标本称为腊叶标本。这种标本制作方法最早于16世纪初由意大利人卢卡·吉尼（Luca Ghini）发明的，世界上第一个植物标本室建于1545年的意大利帕多瓦大学。一份合格的标本应该是：(1)种子植物标本要带有花或果(种子)，蕨类植物要有孢子囊群，苔藓植物要有孢蒴，以及其它有重要形态鉴别特征的部分，如竹类植物要有几片箨叶、一段竹竿及地下茎。(2)标本上挂有号牌，号牌上写明采集人、采集号码、采集地点和采集时间4项内容，据此可以按号码查到采集记录。(3)附有一份详细的采集记录，记录内容包括采集日期、地点、生境、性状等，并有与号牌相对应的采集人和采集号。 一、标本采集用具 1. 标本夹是压制标本的主要用具之一。它的作用是将吸湿草和标本置于其内压紧，使花叶不致皱缩凋落，而使枝叶平坦，容易装订于台纸上。标本夹用坚韧的木材为材料，一般长约43cm，宽30cm，以宽3cm，厚约5~7mm的小木条，横直每隔3~4厘米，用小钉钉牢，四周用较厚的木条(约2cm)嵌实。 2. 枝剪或剪刀用以剪断木本或有刺植物。 3. 高枝剪用以采集徒手不能采集到的乔木上的枝条或陡险处的植物。
临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理 正确的标本采集、运送、保存和处理对于保证临床细菌室的工作质量非常重要，应予高度重视。实验室有责任将标本选择（包括时间和解剖部位）、收集、保管、运送、接受和安全等 关键性信息，用户里手册的形式提供给各临床部门参考。 一、标本管理的安全警示 1．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染的原则下认真进行。 2．已采集原始标本都应置于防漏、密封的无菌容器中运送。 3．带针头的注射器运送标本时用无菌试管或防护装置套住注射针，再置于防漏塑料袋中运送至检验科。 4．采集足够量标本，材料不足可能导致假阴性。 5．每份标本都应标记患者姓名、送检号码、标本来源、具体部位、日期、时间及相关临床信息。 6．常规性细菌学检验的标本，采集后不能超过１小时送至检验科，4℃保存也不能超过24小时，怀疑厌氧菌感染的标本应在半小时内送至检验科（不能及时运送组织标本必须在 厌氧环境中25℃不超过24小时）。 7．脑脊髓液、生殖道、眼睛、内耳标本应立即送检，绝不可冷藏。 二、标本的处理和要求 1．血液和骨髓： 1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎、肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养，分别接种于各种培养瓶中 立即送检置于孵箱内培养 2）疑似心内膜炎患者：急性病例在抗生素治疗或更换前1—2小时，从不同部位采集血液标本，做3次血液培养 3）亚急性病例：第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血液做培养，若24—48小时全部阴性，再采集2—3次血液做培养 4）若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液做培养 5）严格无菌技术采集血液血培养瓶后立即送检，切不可放冰箱暂存。 2．脑脊液： 脑脊液采集后，置于无菌试管中，15分钟内送检，绝不可冷藏。每种检验最小需 要量：细菌培养≥1ml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml. 3．尿液： 1）中段尿采集：清洁外阴及尿道口周围，自然排尿，让尿流不间断，截留中段尿，，置于无菌尿杯中立即送检。尿量不少于1ml. 2）直接插导管采尿：一般插入导管后先让尿流弃15ml再留取培养标本。尽量不采用此法，极易将尿道细菌丛进入膀胱增加医源性感染危险。 3）滞留导管采集尿：用75%酒精消毒导管口，用针筒抽取5—10ml尿置于无菌容器中立即送检，滞留导管会使膀胱带有细菌，尽可能不采用。 4）尿液采集后2小时内必须送检，立即处理。规定每日一次。 5）若同一份标本检到3种以上不同细菌则认为标本污染。一般认为革兰氏阴性杆菌菌落计数大于105cfu/ml,革兰氏阳性球菌菌落计数大于104cfu/ml,方有诊断意义。 4．痰液： 1）先用冷开水漱口清洗咽喉，用力咳出痰液置于无菌容器中立即送检，2小时内接种。 2）符合要求的痰液应在低倍镜视野中鳞状上皮≤10个，白细胞≥25个。