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实验-植物根系活力的测定

实验-植物根系活力的测定
实验-植物根系活力的测定

实验植物根系活力的测定

植物根系是活跃的吸收器官和合成器官,根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。本实验学习测定根系吸收面积和活力的方法。

一、根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定

【原理】

根据植物矿质吸收的理论,植物对溶质的最初吸收具有吸附的特性,并假定这时在根系表面均匀地覆盖了一层被吸附物质的单分子层,因此可以根据根系对某种物质的吸附量来测定根的吸收面积。常用甲烯蓝作为被吸附物质,它的被吸附量可以根据供试液浓度的变化用比色法准确地测出。已知1mg甲烯蓝成单分子层时所占面积为,据此即可求出根系的总吸收面积。当根系在甲烯蓝溶液中已达到吸附饱和而仍留在溶液中时,根系的活跃部分能把原来吸附的物质吸收到细胞中去,因而继续吸附甲烯蓝。从后一吸附量求出活跃吸收面积,可作为根系活力指标。

【仪器与用具】

分光光度计1台;100ml烧杯3只;50或100ml量筒1个(依根系大小而定);吸量管1ml 1支,10ml 1支;试管(15×150mm)10支;容量瓶1000ml 1个,100ml 1个;吸水纸适量;试管架1个。

【试剂】

L甲烯蓝溶液:精确称取甲烯蓝(C16H18N3SCl·3H2O),加水溶解,定容至1000ml。此溶液每ml含甲烯蓝。

ml的甲烯蓝溶液:用刻度吸管吸取L甲烯蓝定容至100ml,摇匀即成。

【方法】

1.植物材料的准备本实验最好采用水培或砂培植物,以获得完整而无损伤的根系。玉米根系发达,是较好的材料。如无水培、砂培试材,也可用盆栽植物,用水将盆土仔细冲净后使用。田间栽培的材料因不可能无损地挖出全部根系,最好避免在正式试验中使用。

2.甲烯蓝溶液标准曲线的制作取试管7支编号,按表14-1次序加入各溶液,即成甲烯蓝系列标准液。

表14-1 各试剂加入顺序

试管号 1 2 3 4 5 6 7

ml甲烯蓝溶液(ml) 蒸馏水(ml)

甲烯蓝浓度mg/ml 0

10

1

9

2

8

4

6

6

4

8

2

10

以第1管(水)为参比在分光光度计下比色,取波长660nm,读出光密度,以甲烯蓝浓度为横坐标,光密度为纵坐标绘成标准曲线。

3.取待测植物根系用滤纸将水吸干再用排水法在量杯或量筒中测定其根系体积。把L 甲烯蓝溶液分别倒在三个编号的小烧杯里,每杯中溶液量约10倍于根的体积,准确记下每

杯的溶液用量。

4.取根系,用吸水纸小心吸干数次,慎勿伤根,然后顺次浸入盛有甲烯蓝溶液的烧杯中,每杯中浸。注意每次取出时都要使甲烯蓝溶液能从根上流回到原烧杯中。

植物名称

杯中甲烯蓝溶液量(ml)

开始时甲烯蓝浓度(mg/ml)

浸根后 溶液浓度 (mg/ml) 烧杯1 烧杯2 烧杯3 被吸收的 甲烯蓝量 (mg)

烧杯1 烧杯2 烧杯1+2 烧杯3

根体积(ml)

根吸收 面积m 2

总的

活跃的 活跃/总的(%)

比表面

总的

活跃的

5.从三个烧杯中各取1ml 溶液加入试管,均稀释10倍,测得其光密度,查标准曲线,求出每杯浸入根系后溶液中剩下的甲烯蓝毫克数。

6.把结果记入表14-2,并以下式求出根的吸收面积: 总吸收面积(m 2)= [(C 1-C 1ˊ)×V 1] + [(C 2-C 2ˊ)×V 2]× 活跃吸收面积(m 2)= [(C 3-C 3ˊ)×V 3]×

活跃吸收面积(%)=活跃吸收面积/总吸收面积×100 比表面=根的总吸收面积/根的体积 式中 C —溶液原来的浓度mg/ml ; C ˊ—浸提后的浓度mg/ml ; 1,2,3—烧杯编号。

二、氯化三苯基四氮唑(TTC)法测定根系活力

【原理】

氯化三苯基四氮唑(TTC )是标准氧化还原电位为80mV 的氧化还原物质,溶于水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯基甲 (TTF ),如下式:

(TTC)

(TTF)

+

Cl

+C

N N N

N +2H

C

N N N

N

H

HCl

生成的TTF比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体,植物根所引起的TTC还原,可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强,而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC还原量能表示脱氢酶活性,并作为根系活力的指标。

【仪器与用具】

分光光度计;分析天平(感量);恒温箱1台;研钵1套;100ml三角瓶;漏斗;移液管10ml 1支、2ml 1支、1支;20ml刻度试管;10ml容量瓶;小培养皿;试管架,药匙;石英砂适量。

【试剂】

乙酸乙酯;

连二亚硫酸钠(Na2S2O4,为强还原剂,俗称保险粉);

1%TTC溶液:准确称取TTC ,溶于少量蒸馏水中,定容至100ml;

%TTC溶液:准确称取TTC ,溶于少量蒸馏水中,定容至100ml;

磷酸缓冲液(1/15mol/L,);

1mol/L硫酸:用量筒量取比重的浓硫酸55ml,边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中,冷却后稀释至1000ml;

L琥珀酸钠:称取琥珀酸钠(含6个结晶水),溶于蒸馏水中,定容至100ml。

【方法】

1.定性测定

(1)配置反应液把1%TTC溶液,L琥珀酸钠和磷酸缓冲液按1︰5︰4比例混合。

(2)把根仔细洗净,把地上部分从茎基切除,将根放入三角瓶中,倒入反应液,以浸没根为度,置37℃左右暗处放1h,以观察着色情况,新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色,表明该处有脱氢酶存在。

2.定量测定

(1)TTC标准曲线的制作吸取%TTC溶液放入10ml容量瓶,加少许Na2S2O4粉末,摇匀后立即产生红色的TTF。再用乙酸乙酯定容至刻度,摇匀。然后分别取此液、、、、置10ml 容量瓶中,用乙酸乙酯定容至刻度,即得到含TTF25μg、50μg、100μg、150μg、200μg 的标准比色系列,以空白作参比,在485nm波长下测定光密度,绘制标准曲线。

(2)称取根样品,放入小培养皿(空白试验先加硫酸再加入根样品,其他操作相同),加入%TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液10ml,把根充分浸没在溶液内,在37℃下暗处保温1h,此后加入1mol/L硫酸2ml,以停止反应。

(3)把根取出,吸干水分后与乙酸乙酯3~4ml和少量石英砂一起磨碎,以提出TTF。把红色提出液移入试管,用少量乙酸乙酯把残渣洗涤二至三次,皆移入试管,最后加乙酸乙酯使总量为10ml,用分光光度计在485nm下比色,以空白作参比读出光密度,查标准曲线,求出四氮唑还原量。

(4)计算将所得数据带入下式,求出四氮唑还强度。

四氮唑还原强度=

)h(

)g(

)g

(

时间根重

四氮唑还原量

?

μ

【思考题】

不同类型(如草本和木本)植物中,根的表面积和地上部表面积的比例有何不同

7、根系活力的测定TTC法

华南农业大学实验报告 专业班次11农学1班组别201130010110 题目根系活力的测定姓名梁志雄日期2012-11-21 一、实验原理 氯化三苯基四氮唑(TTC )是标准氧化电位为80 mV 的氧化还原色素,溶于水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲(TTF )生成的三苯甲(TTF )比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,所以TTC 被广泛用作酶试验的氢受体,植物根系中脱氢酶会引起的TTC 还原。所以TTC 还原量能表示脱氢酶活性,并作为根系活力的指标。根系的活力越高,产生的NAD(P)H+H+等还原物质越多,则生成红色的TTF越多。TTF 溶于乙酸乙酯,并在波长485nm处有最高吸收峰,因此,可用分光光度法定量测定。 二、实验材料与实验器材 蒜根、分光光度计、分析天平、恒温水浴锅、研钵、漏斗个、移液管、比色管、10ml容量瓶、50ml烧杯 三、实验试剂 乙酸乙酯、石英砂、硫代硫酸钠粉末、1%TTC、1/15mol/LpH7.0磷酸缓冲液、1mol/L硫酸 四、实验步骤 1、称取根尖样品0.5 g ,放入小烧杯中,加入0.4 %TTC 溶液和磷酸缓冲液(pH7.0 ) 各 5 mL ,使根充分浸没在溶液内,在37 ℃下暗保温1 h ,此后立即加入1 mol/L 硫酸 2 mL ,以停止反应。(与此同时做一空白实验,先加硫酸,再加根样品,37 ℃下暗保温后不加硫酸,其溶液浓度、操作步骤同上)

2、把根取出,用滤纸吸干水分,放入研钵中,加乙酸乙酯3 ~4 mL ,充分研磨,以提 出TTF 。把红色提取液移入刻度试管,并用少量乙酸乙酯把残渣洗涤2 ~3 次,皆移入刻度试管,最后加乙酸乙酯使总量为10 mL ,用分光光度计在波长485 nm 下比色,以空白试验作参比测出吸光度,查标准曲线,即可求出TTC 还原量。 TTC还原量=从标准曲线查出的TTC浓度*提取液总体积*稀释倍数 五、数据记录记录 根重(g)反应起始时间反应终止时间稀释倍数OD485 未煮沸根系0.5 8:35 9:35 1 0.245 死根系0.5 8:35 9:35 1 0.000 从标准曲线上查出TTC的浓度为0.00142(ug/ml) 故可以知道TTC的还原强度为0.00142*10*1/0.5=0.0248 六、实验总结 本实验严格按照实验步骤进行,利用根系生长发育过程中所产生的还原物质,把TTC还原为红色的TTF,再利用TTF溶于乙酸乙酯从而把它提取出来,在485nm的波长下测定其吸光度,从而计算出TTC的还原量,以此来表现根系活力的大小,本实验测得的数据为0.0248,从网上查出的一个数据位0.01844,所以总体上数据还是比较合理的。在分光光度法实验中,样品和表样都加了处理剂,处理剂可能会含有被测物质,使用空白对照就是我去掉被测物质外所带来的结果误差,进行对照,可以清晰检验出结果。

植物根系活力的测定方法

实验 5 植物根系活力的测定( TTC 法) 植物根系是活跃的吸收器官和合成器官,根的生长情况和活力水平直接影响地上部的营养状况及产量水平。本实验练习测定根系活力的方法,为植物营养研究提供依据。 一、原理 氯化三苯基四氮唑( TTC )是标准氧化电位为 80 mV 的氧化还原色素,溶于水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲( TTF ), 生成的三苯甲( TTF )比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,所以 TTC 被广泛用作酶试验的氢受体,植物根系中脱氢酶所引起的 TTC 还原,可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强,而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以 TTC 还原量能表示脱氢酶活性,并作为根系活力的指标。 二、实验材料、试剂与仪器设备 (一)实验材料 水培或砂培小麦、玉米等植物根系。 (二)试剂 1. 乙酸乙酯(分析纯)。 2. 次硫酸钠( Na 2 S 2 O 4 ,分析纯),粉末。 3. 1 % TTC 溶液:准确称取 TTC g ,溶于少量水中,定容到 100 mL 。用时稀释至需要的浓度。 4. 磷酸缓冲液( 1/15 mol/L ,)。 5. 1 mol/L 硫酸:用量筒取比重的浓硫酸 55 mL ,边搅拌边加入盛有 500 mL 蒸馏水的烧杯中,冷却后稀释至 1000 mL 。 6. 0.4 mol/L 琥珀酸:称取琥珀酸 g ,溶于水中,定容至 100 mL 即成。(三)仪器设备 小烧杯 3 个,研钵 1 个,移液管: mL 1 支、 10 mL 1 支、 5 mL 3 支,刻度试管 6 支,分光光度计,分析天平(感量 mg ),电子顶载天平(感量 g ),温箱,试管架,药勺,石英砂适量,滤纸。 三、实验步骤 1. 定性测定 ( 1 )配制反应液把 1 % TTC 溶液、 mol / L 的琥珀酸和磷酸缓冲液按1:5:4 比例混合。 ( 2 )把根仔细洗净,把地上部分从茎基部切除。将根放入三角瓶中,倒入反应液,以浸没根为度,置 37 ℃左右暗处放 1 ~ 3 h ,以观察着色情况,新根尖端几毫米以及细侧根都明显地变成红色,表明该处有脱氢酶存在。 2. 定量测定 ( 1 ) TTC 标准曲线的制作取% TTC 溶液 mL 放入大试管中,加 mL 乙酸乙酯,再加少许 Na 2 S 2 O 4 粉末摇匀,则立即产生红色的 TTF 。此溶液浓度为每毫升含有 TTF 80 μg 。分别取此溶液 mL 、 mL 、 mL 、 mL 、mL 置 10 mL 刻度试管中,用乙酸乙酯定容至刻度,即得到含 TTF 20 μg 、 40 μg 、 80 μg 、 120 μg 、 160 μg 的系列标准溶液,以乙酸乙酯作参比,在 485 nm 波长下测定吸光度,绘制标准曲线。 ( 2 )称取根尖样品 g ,放入小烧杯中,加入% TTC 溶液和磷酸缓冲液()各 5 mL ,使根充分浸没在溶液内,在 37 ℃下暗保温 1 ~ 2 h ,此后立即加入 1 mol/L 硫酸 2 mL ,以停止反应。(与此同时做一空白实验,先

植物生理学实验课程

《植物生理学实验》课程大纲 一、课程概述 课程名称(中文):植物生理学实验 (英文):Plant Physiology Experiments 课程编号:18241054 课程学分:0.8 课程总学时:24 课程性质:专业基础课 前修课程:植物学、生物化学、植物生理学 二、课程内容简介 植物生理学是农林院校各相关专业的重要学科基础课,是学习相关后续课程的必要前提,也是进行农业科学研究和指导农业生产的重要手段和依据。本实验课程紧密结合理论课学习内容,加深学生对理论知识的理解。掌握植物生理学的实验技术、基本原理以及研究过程对了解植物生理学的基本理论是非常重要的。本大纲体现了植物生理学最实用的技术方法。实验内容上和农业生产实践相结合,加强学生服务三农的能力。实验手段和方法上,注重传统、经典技术理论与现代新兴技术的结合,提高学生对新技术、新知识的理解和应用能力。 三、实验目标与要求 植物生理学实验的基本目标旨在培养各专业、各层次学生有关植物生理学方面的基本研究方法和技能,包括基本操作技能的训练、独立工作能力的培养、实事求是的科学工作态度和严谨的工作作风的建立。开设植物生理学实验课程,不仅可以使学生加深对植物生理学基本原理、基础知识的理解,而且对培养学生分析问题、解决问题的能力和严谨的科学态度以及提高科研能力等都具有十分重要的作用。 要求学生实验前必须预习实验指导和有关理论,明确实验目的、原理、预期结果,操作关键步骤及注意事项;实验时要严肃认真专心操作,注意观察实验过程中出现的现象和结果;及时将实验结果如实记录下来;实验结束后,根据实验结果进行科学分析,完成实验报告。 四、学时分配 植物生理学实验课学时分配 实验项目名称学时实验类别备注 植物组织水势的测定3学时验证性 叶绿体色素的提取及定量测定3学时验证性 植物的溶液培养及缺素症状观察3学时验证性 植物呼吸强度的测定3学时设计性 红外CO2分析仪法测定植物呼吸速率3学时设计性选修 植物生长物质生理效应的测定3学时验证性 植物种子生活力的快速测定3学时验证性

试验一植物根系活力的测定

植物生理学实验指导书 指导老师马红亮 福建师范大学地理科学学院生态系

实验一植物根系活力的测定(α-萘胺氧化法) 植物根系的作用,主要有(1)对地上部的支持和固定;(2)物质的贮藏;(3)对水分和盐类的吸收;(4)合成氨基酸、激素等物质。因此根系的活力是植物生长的重要生理指标之一。 一、实验目的 通过实验,掌握用α-萘胺法测定植物根系活力的原理和技术。 二、实验原理 植物的根系能氧化吸附在根表面的α─萘胺,生成红色的α—羟基—1—萘胺,沉淀于有氧化力的根表面,使这部分根染成红色,其反应如下: 根对α-萘胺的氧化能力与其呼吸强度有密切关系。日本人相见、松中等认为α-萘胺氧化的本质就是过氧化物酶的催化作用,该酶的活力愈强,对α—萘胺的氧化力也愈强,染色也愈深。所以,可根据染色深浅定性地判断根的活力;也可测定溶液中未被氧化的α-萘胺量,计算已被氧化的α-萘胺量确定根系活力的大小。

在酸性环境中对氨基苯磺酸与亚硝酸盐先反应,再和α-萘胺作用生成红色的偶氮染料,可在510nm比色测定α-萘胺含量。其反应如上。 三、实验仪器药品 分光光度计,分析天平,烘箱,三角烧瓶,量筒,移液管,刻度试管 Α-萘胺溶液:称10mg α-萘胺,先用2ml左右的95%酒精溶解,然后加水到200ml,成50μg/ml的溶液。 0.1mol/L磷酸缓冲液,pH7.0(见附表2) A液:0.2mol/L磷酸二氢钠(NaH2PO4·2H2O 27. 8g配成1000ml)。 B液:0.2mol/L磷酸氢二钠(Na2HPO4·7H2O53.65g或Na2HPO4·12H2O71.7g 配成1000ml)。 用时取A液39ml,B液61ml混合,稀释至200ml即成。 1%对氨基苯磺酸:将1g对氨基苯磺酸溶解于100ml 30%的醋酸溶液中。 亚硝酸钠溶液:称10mg亚硝酸钠溶于100ml水中。 四、实验操作步骤 定量测定 (1) 挖出水稻植株,并用水洗净根系上的泥土,剪下它的根系,再用水洗,待洗净后用滤纸吸去根表面的水分,称根 称2g根放在100ml三角烧瓶中。然后加50μg/ml的α—萘胺溶液与磷酸缓冲液(pH7.0)等量混合液50ml,轻轻振荡,并用玻璃棒将根全部浸入溶液中,静置10分钟。吸取2ml溶液,测定α—萘胺含量[测定方法见下面(2)],用为试验开始时的数值。再将三角烧瓶加塞,放在25℃恒温箱中,经一定时间后,再进行测定。另外,还要用一只三角烧瓶置同样数量的溶液,但不放根,作为α—萘胺自动氧化的空白,也同样测定,求它自动氧化量的数值。 (2) α-萘胺含量的测定 吸取2ml溶液,加入约10ml蒸馏水,再在其中加入1%对氨基苯磺酸溶液1ml和亚硝酸钠溶液1ml,在室温中放置5分钟,待混合液变成红色,再用蒸馏水定容到20ml。在20─60分钟内进行比色。选用波长510nm,读取吸光度,查对标准曲线得相应的α─萘胺浓度。

植物激素调节实验设计专题

植物激素调节实验设计专题 班级:_________ 姓名:_________ 一、实验题 1.已知大麦在萌发过程中可以产生α-淀粉酶,用GA(赤霉素)溶液处理大麦可使其不用发芽 (1)α-淀粉酶催化________水解可生成二糖,该二糖是______________。 (2)综合分析试管1和2的实验结果,可以判断反应后试管1溶液中的淀粉量比试管2中的______________。这两支试管中淀粉量不同的原因是______________。 (3)综合分析试管2、3和5的实验结果,说明在该实验中GA的作用是_______________。(4)综合分析试管2、3和4的实验结果,说明________________。 2.桃果实成熟后,如果软化快,耐贮运性就会差。下图表示常温下A、B两个品种桃果实成熟后硬度等变化的试验结果。据图回答:

(1)该实验结果显示桃果实成熟后硬度降低,其硬度降低与细胞壁中的________降解由关,该物质的降解与_________的活性变化有关:也与细胞壁中的__________降解有关,该物质的降解与__________的活性变化有关。 (2)A、B品种中耐贮运的品种是__________。 (3)依据该实验结果推测,桃果实采摘后减缓变软的保存办法应该是_________,因为 ____________________。 (4)采摘后若要促使果实提前成熟,可选用的方法由___________和__________________。(5)一般来说,果实成熟过程中还伴随着绿色变浅,其原因是__ __________。 3.某生物兴趣小组调查发现,在黄瓜幼苗期喷洒一次乙烯利溶液(100-200mg·L-1),可能促进多开雌花,提高黄瓜产量。但乙烯利浓度低于或高于这个范围时,其作用效果尚不清楚。请设计实验,探究乙烯利浓度对黄瓜开雌花数量的影响。 材料用具:2~3片真叶的分栽黄瓜幼苗若干、乙烯利溶液(300mg·L-1)、蒸馏水、喷壶… 方法步骤: (1)将黄瓜幼苗平均分成A、B、C、D四组。 (2)____________________________________ (3)____________________________________ (4)连续观察6周,记录并统计____________。 实验结果预测:(请在图中将预测的结果以折线的形式表示) 5. 为了探究6-BA和IAA对某菊花品种茎尖外植体再生丛芽的影响,某研究小组在MS培养基中加入6-BA和IAA,配制成四种培养基(见下表),灭菌后分别接种数量相同、生长状态一致、消毒后的茎尖外植体,在适宜条件下培养一段时间后,统计再生丛芽外植体的比率(m),以及再生丛芽外植体上的丛芽平均数(n),结果如下表。 回答下列问题: (1)按照植物的需求量,培养基中无机盐的元素可分为和两类。上述培养基中,6-BA属于类生长调节剂。 (2)在该实验中,自变量是,因变量是,自变量的取值范围是。 (3)从实验结果可知,诱导丛芽总数最少的培养基是号培养基。 (4)为了诱导该菊花试管苗生根,培养基中一般不加入(填“6-BA”或“IAA”)。 6.在验证生长素类似物A对小麦胚芽鞘(幼苗)伸长影响的实验中,将如图1所示取得的切段浸入蒸馏水中1小时后,再分别转入5种浓度的A溶液(实验组)和含糖的磷酸盐缓冲液(对照组)中。在23℃的条件下,避光振荡培养24小时后,逐一测量切段长度(取每组平均值),实验进行两次,结果见图2。

植物生理学实验报告

首都师范大学生命科学学院实验报告 课程名称植物生理学实验成绩 姓名苗雪鹏班级 1班学号 1080800021 实验题目实验三植物体中N、P、K主要养分的速测 【实验目的】 1.了解植物体内N、P、K测定的意义和方法 2.掌握如何测定植物体中N、P、K的实验技能 【实验原理】 植物体主要由C、H、O、N、P、K、Ca、Mg、S、Fe等十几种元素组成,除 此以外还包括Ca、Zn、Mn、B、Mo,但需要量较少。 在通常条件下,植物利用太阳光能,从空气中获得C,从水中获得氢和氧, 而N、P、K等元素则是来源土壤肥力。在栽培过程中,能够知道植物的需要和 土壤内N、P、K变动的情况,对考虑施肥措施是有帮助的,因此测定土壤及植 物体内的N、P、K是很重要的。 硝态N测定:硝态N是硝酸的阴离子(NO 3 -),它是强氧化剂,所以鉴定N- 离子几乎都用氧化反应,用二苯胺(C 6H 5 ) 2 NH的方法,这个方法的原理是在NO 3 - 存在时二苯胺被硝酸氧化而显蓝色。 有效P和无机P测定:P与钼酸铵反应生成磷钼酸铵,然后以氧化亚锡作为还原剂时,使磷钼酸铵还原为“磷钼兰”(低价钼化合物混合物)溶液呈兰色。此法能测土壤有效P,过磷酸钙中有效P和植物体内的无机磷。 速效K的测定:四苯硼钠〔NaB(C 6H 5 ) 4 〕与钾离子生成白色沉淀为四苯硼酸 钾〔KB(C 6H 5 ) 4 〕 【实验材料和试剂】 在完全培养液、缺乏N、P、K、Fe的营养液中培养四周的玉米苗 硝态氮试剂、磷试剂Ⅰ、磷试剂Ⅱ、K试剂、标准溶液1、5、10、20、40ppm 【实验方法】 1.植物组织浸提液制备 将植物剪成小块,称取1g,迅速倒入已沸腾的蒸馏水(约10ml)烧杯中,用毛细玻璃棒经常搅动,小火煮十分钟,煮液倒入10ml容量瓶中,另加少量蒸馏水,继续小火煮植物材料5分钟,浸提液倒入上述容量瓶内,再以少量蒸馏水洗植物材料,使最后容量为10ml。 植物组织在计算含量时要乘以10,因每克鲜组织稀释了10倍。 2.硝态N测定 在白瓷板的凹内分别滴入1、5、10、20、40ppm的混合标准液1滴,然后将待测液(植物浸提液)分别滴入其他凹内,最后每个凹内各加5滴二苯胺硫酸溶

植物激素调节试题及答案.doc

植物激素调节试题及答案 xx生物《植物的激素调节》测试题 ( 时间: 90 分钟满分: 100 分) 一、选择题 ( 每小题 2 分,共 50 分) 1.科研人员为研究生长素(IAA) 对根尖生长的影响,以xx 块和水稻根尖为材料进行了如表所示实验,则选项中分析不正确的是( ) 组别对根尖的处理方式生长状况垂 直生长① 黑暗背光弯曲生长②单侧光照射 1 - 8-mol ·L(黑暗一侧贴含10 向贴琼脂块一侧生长③的琼脂块的IAA A.①组与②组实验说明单侧光照射引起根尖生长素分布不均匀 B.②组与③组实验说明“较高浓度”的生长素对根尖生长有抑制作 用 C.①组与②组实验表明单侧光照越强,根尖背光侧生长含量越多D.若在黑暗中根尖一侧贴含10-6 mol·L-1 的 IAAxx 块,它会“向贴 xx 块一侧生长” 2.果实生长发育和成熟受多种激素调节。下列叙述正确的是( ) A.细胞分裂素在果实生长中起促进作用 B.生长素对果实的发育和成熟没有影响

植物激素调节试题及答案 C.乙烯在果实生长和成熟中起抑制作用 D.脱落酸在果实成熟中促进细胞分裂和果实脱落 3.某裸子植物的种子具有坚硬的种皮,萌发率很低。某生物兴趣小组的同学探究“ 2,4-D 能否提高该种子的萌发率” ,用 4 种不同浓度 的 2,4-D 溶液处理两组种子,实验结果如图。对此实验的评价和分析合理的是 () A .该实验的对照设置不全面.浓度范围设置合理 B .两线交点对应的是处理种子的最适浓度 C .砸裂种皮导致全部种子失活 D幼苗 xxxx生长素浓度与作用的关系;乙图表示将一株 4.甲图表示胚芽鞘。有 xx 水平放置,培养一段时间后的生长状况;丙图表示) 关叙述正确的是 (

植物根系活力的测定

实验三植物根系活力的测定——TTC法植物根系是活跃的吸收器官和合成器官,跟的生长情况的活力水平直接影响地上部分的生长和营养状况及产量水平。本实验练习测定根系活力的方法,为植物营养研究提供依据 一、原理: 氧化三苯基四氮唑(TTC)是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素,溶于水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲腙,生成的三苯甲腙比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,所以TTC被广泛地用作酶试验的氢受体,植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原,可因加入琥珀酸,延胡索酸,苹果酸得到加强,而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。 二、植物材料、仪器设备及试剂配制: (一)植物材料:完全液和铅溶液培养的黄瓜苗根系 (二)仪器设备:电子天平、生化培养箱、分光光度计、剪刀、镊子、10mL离心管、10mL具塞刻度试管、研钵、漏斗、移液管或移液枪、滴管、小烧杯、玻璃棒等。 (三)配置试剂: 1、乙酸乙酯(分析纯) 2、次硫酸钠(Na2S2O4) 3、1%TTC溶液:标准称TTC1.00g,溶于少量去离子水中,定容到100mL,用时稀释。 4、硫酸缓冲液(1/15mol/L,pH7) 5、1mol/L硫酸:量取比重1.84的浓硫酸55mL,边搅拌边加入盛有500mL去离子水的 烧杯中,冷却后稀释至1000mL 三、实验步骤: 1.TTC标准曲线的制作:取0.4%TTC溶液0.2mL放入10mL量瓶中,加少许Na2S2O4 粉末摇匀后立即产生红色的甲月替,再用乙酸乙酯定容至刻度,摇匀。然后分别取此液0.25mL、0.50mL、1.00mL、1.50mL、 2.00mL置于10mL刻度试管中,用乙酸乙酯定容至刻度,即得到甲月替25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的标准比色系列,以空白作参比,在485nm波长下测定吸光度,绘制标准曲线。 2.称取新鲜根尖0.5g,放入10mL离心管中,加入0.4%TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液5mL,把根充分浸没在溶液内,在37℃下暗保温1h,此后加入1mol/L硫酸1ml,以终止反应。(与此同时做一空白实验,先加硫酸,再加新鲜根,其他操作同上)。 3.把根取出,吸干水分后与乙酸乙酯3~4mL和少量石英砂一起在研钵内磨成浆,以提出甲月替。红色提取液移入10mL刻度试管中,并用少量乙酸乙酯把残渣洗涤二、三次,皆移入刻度试管,最后用乙酸乙酯定容至10mL,摇均匀,用分光光度计在波长485nm下比色,以空白试验作参比测出吸光度,查标准曲线,即可求出四氮唑还原量。 四、结果计算: 四氮唑还原强度(mg/g(根鲜重)/h)=四氮唑还原量(mg)/[根重(g)×时间(h)] 五、注意事项: 1.要剪取根尖作为测量材料 2.测定的同时要做空白对照 3.TTC容易氧化,要现用现配,避光保存 4.反应结束后,根系要吸干水分后研磨,否则溶液容易浑浊 5.要用少量多次的乙酸乙酯把残渣中的红色苯三甲腙洗涤干净

2012高三生物二轮复习植物激素调节相关实验设计与分析题的答题技巧

2012高三生物二轮复习植物激素调节相关实验设计与分析题 的答题技巧 一、命题角度 近年高考对植物激素调节的考查主要涉及实验设计与分析,命题形式可分为:①考查实验目的和实验步骤的设计;②预测实验的结果、总结实验结仑;③考查实验原理和实验假设; ④分析实验过程、比较实验数据、关注可能出现的误差及原因等。 二、应对策略 (1)熟悉教材中的经典实验:对实验选材、实验条件的控制、对照实验的设计、实验结果的分析验证等做深入剖析,树立正确的科学思想并掌握科学的思维方法,迁移应用。(2)掌握正确的解题思路:①明确实验目的和要求:实验目的—般都能直接从题干中读取,也可间接通过实验步骤、实验变量,总结得出。②明确设计实验的原理:一般在题干中能找到实验原理,即使在题干中找不到,它也是教材中最基本的生物学知识和生物学原理。③正确选择材料和用具:目前,实验所给材料和用具都必须使用,此点可作为验证你的实验设计是否合理的依据之一(题目已经给出)。④合理安排实验步骤:根据实验目的,明确实验设计的方向,确定实验变量,设计对照实验,在遵循相关原则的基础上理清实验步骤;此外,要加强训练,提高能力。⑤对实验结果做出预测和分析:要分清实验类型。验证性实验,预测的实验结果应与实验的假设相一致;探究性实验是对未知事物进行探索,其结果往往有多种可能,且一个结果对应一个相应的结论。⑥得出科学的结论:关键是找到实验中隐藏的因果(逻辑)关系。此外,还要多关注以识图分析题的出现的有关植物激素的试题,此类试题多以生产、生活为主要背景。 三、典题例证I 例许多实验研究生长素(IAA)对植物生长的影响模式,如用玉米胚芽鞘作为实验材料: 实验1:将切除的胚芽鞘尖端放于琼脂块上(图1),移去尖端后,将琼脂切成体积相等的若干个方块,将方块不对称地放在除去尖端的胚芽鞘上,实验保持在完全黑暗处进行12h,每个胚芽鞘弯曲的角度以图2的方法测量,并计算平均值。每次放入等面积、等体积琼脂块中的胚芽鞘尖端数量不同,这样重复上述过程。 实验2:用含有不同浓度IAA的琼脂块代替胚芽鞘尖端进以步实验。

根系活力测定方法

植物根系活力的测定(甲烯蓝法) 植物根系是活跃的吸收器官和合成器官,根的生长情况和活力水平直接影响地上部的营养状况及产量水平。本实验学习测定根系活力的甲烯蓝法。 【原理】根据沙比宁等的理论,植物对溶质的吸收具有表面吸附的特性,并假定被吸附物质在根系表面形成一层均匀的单分子层;当根系对溶质的吸附达到饱和后,根系的活跃部分能将吸附着的物质进一步转移到细胞中去,并继续产生吸附作用。在测定根系活力时常用甲烯蓝作为吸附物质,其被吸附量可以根据吸附前后甲烯蓝浓度的改变算出,甲烯蓝浓度可用比色法测定。已知1mg甲烯蓝形成单分子层时覆盖的面积为1.1m2,据此可算出根系的总吸收面积。从吸附饱和后再吸附的甲烯蓝的量,可算出根系的活跃吸收表面积,作为根系吸收活力的指标。 【材料、仪器与试剂】1.材料:植物根系。2.仪器及用具:分光光度计;移液管;烧杯;比色管。3.试剂:0.01 mg?mL-1甲烯蓝溶液;0.0002 mol?L-1(0.075 mg?mL-1)甲烯蓝溶液。 【方法与步骤】 1. 甲烯蓝标准曲线的制作按表2-1用0.01 mg?mL-1甲烯蓝溶液配制系列标准溶液,于660 nm处测定吸光度,以甲烯蓝浓度为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线。 表2-1 甲烯蓝系列标准溶液的配制

2. 将待测的植物根系洗净沥干,浸在装有一定量水的量筒中,用排水法测定根系的体积(或用体积计测定)。 3. 将0.0002 mol?L-1的甲烯蓝溶液(每毫升溶液中应含0.075 mg甲烯蓝,为消除溶液配制和比色误差,其含量需要重新进行比色,查标准曲线确定)分别倒入3个小烧杯中,编号,每个烧杯中溶液体积约10倍于根系的体积。准确记下每个烧杯中的溶液量。 4. 将洗净的待测根系,用吸水纸小心吸干,然后依次浸入盛有甲烯蓝溶液的烧杯中,每杯中浸1.5 min,注意每次取出时,都要使根上的甲烯蓝溶液流回到原杯中去。 5. 从3个小烧杯中各吸取甲烯蓝溶液1 mL,用去离子水稀释10倍后,于660 nm处测定吸光度,根据标准曲线,查得各杯浸根后甲烯蓝的浓度。【结果与计算】 (1)总吸收面积(m2)=[(c1—c1’)×v1+(c2—c2’)×v2]×1.1(2)活跃吸收面积(m2)= [(c3—c3’)×v3]×1.1 (3)活跃吸收面积%=根系活跃吸收面积(m2)/根系总吸收面积(m2)×100%(4)比表面积(cm2·cm-3)= 根系总吸收面积(cm2)/根体积(cm3) 式中c:各杯未浸泡根系前的甲烯蓝浓度(mg?mL-1);

实验3 根系活力的测定(TTC法)

实验3 根系活力的测定(TTC法) 植物根系是活跃的吸收器官和合成器官,根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水本。本实验练习测定根系活力的方法,为植物营养研究提供依据。 一、实验目的 熟悉测定根系活力的方法和原理 二、原理 氯化三苯基四氮唑(TTC)是标准氧化电位为80mV的氧化还原色素,溶于水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲腙,生成的三苯甲腙比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,所以TTC 被广泛地用作酶试验的氢受体,植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原,可因加入琥珀酸,延胡索酸,苹果酸得到增强,而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC还原量能表示脱氢酶活性并作为根系活力的指标。 三、材料、设备仪器及试剂 1、材料:水培或砂培小麦、玉米等植物根系。 2、仪器设备:分光光度计;分析天平(感量0.1mg);电子顶载天平(感量0.1g);温箱;研钵;三角瓶50ml;. 漏斗;. 量筒100ml;吸量管10ml;. 刻度试管10ml;. 试管架;容量瓶10ml;. 药勺;. 石英砂适量;. 烧杯10ml、1000ml。 3、试剂:乙酸乙酯(分析纯)。次硫酸钠(Na2S2O4),分析纯,粉末。.1%TTC溶液准确称取TTC1.0g,溶于少量水中。定容到100ml。用时稀释至各需要的浓度。磷酸缓冲液(1/15mol/L,pH7)。. 1mol/L硫酸用量筒取比重1.84的浓硫酸55ml,边搅拌边加入盛有500ml蒸馏水的烧杯中,冷却后稀释至1000ml。. 0.4mol/L琥珀酸称取琥珀酸4.72g,溶于水中,定容至100ml即成。 四、实验步骤 1、TTC标准曲线的制作取0.4%TTC溶液0.2ml放入10ml量瓶中,加少许Na2S2O4粉摇匀后立即产生红色的甲月替。再用乙酸乙酯定容至刻度,摇匀。然后分别取此液0.25ml、0.50ml、1.00ml、1.50ml、2.00ml 置10ml容量瓶中,用乙酸乙酯定容至刻度,即得到含甲月替25μg、50μg、100μg、150μg、200μg的标准比色系列,以空白作参比,在485nm波长下测定吸光度,绘制标准曲线。 2、称取根尖样品0.5g,放入10ml烧杯中,加入0.4%TTC溶液和磷酸缓冲液的等量混合液10ml,把根充分浸没在溶液内,在37℃下暗保温1~3h,此后加入1mol/L硫酸2ml,以停止反应。(与此同时做一空白实验,先加硫酸,再加根样品,其他操作同上)。 3、把根取出,吸干水分后与乙酸乙酯3~4ml和少量石英砂一起在研钵内磨碎,以提出甲月替。红色提取液移入试管,并用少量乙酸乙酯把残渣洗涤二、三次,皆移入试管,最后加乙酸乙酯使总量为10ml,用分光光度计在波长485nm下比色,以空白试验作参比测出吸光度,查标准曲线,即可求出四氮唑还原量。五、结果计算 四氮唑还原强度(mg/g(根鲜重)/h)=四氮唑还原量(mg)/[根重(g)×时间(h)] 六、实验作业 七实验总结及思考

TTC根系活力测定方法

TTC溶液的配制:取3g TTC溶于1L蒸馏水或冷开水中,配制成0 1%的TTC溶液。药液PH应在6 5~7 5,以PH试纸试之(如不易溶解,可先加少量酒精,使其溶解后再加水)。 【方法】 1 将玉米、小麦等作物的新种子、陈种子或死种子,用温水(30℃)浸泡2~6H,使种子充分吸胀。 2 随机取种子2份,每份50粒,沿种胚中央准确切开,取每粒种子的一半备用。 3 把切好的种子分别放在培养皿中,加TTC溶液,以浸没种子为度。 4 放入30~35℃的恒温箱内保温30Min。也可在20℃左右的室温下放置40~60Min。 5 保温后,倾出药液,用自来水冲洗2~3次,立即观察种胚着色情况,判断种子有无生活力 植物根系活力的测定(TTC法) 一、原理 氯化三苯基四氮唑(TTC)是标准氧化电位为80 mV的氧化还原色素,溶于水中成为无色溶液,但还原后即生成红色而不溶于水的三苯甲(TTF),如下式: 生成的三苯甲(TTF)比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,所以TTC被广泛用作酶试验的氢受体,植物根系中脱氢酶所引起的TTC还原,可因加入琥珀酸、延胡索酸、苹果酸得到增强,而被丙二酸、碘乙酸所抑制。所以TTC还原量能表示脱氢酶活性,并作为根系活力的指标。 二、实验材料、试剂与仪器设备 (一)实验材料 水培或砂培小麦、玉米等植物根系。 (二)试剂 1. 乙酸乙酯(分析纯)。 2. 次硫酸钠(Na2S2O4,分析纯),粉末。 3. 1%TTC溶液:准确称取TTC 1.0 g,溶于少量水中,定容到100 mL。用时稀释至需要的浓度。 4. 磷酸缓冲液(1/15 mol/L,pH7.0)。 5. 1 mol/L硫酸:用量筒取比重1.84的浓硫酸55 mL,边搅拌边加入盛有500 mL蒸馏水的烧杯中,冷却后稀释至1000 mL。 6. 0.4 mol/L琥珀酸:称取琥珀酸4.72 g,溶于水中,定容至100 mL即成。 (三)仪器设备 小烧杯3个,研钵1个,移液管:0.5 mL 1支、10 mL 1支、5 mL 3支,刻度试管6支,分光光度计,分析天平(感量0.1 mg),电子顶载天平(感量0.1 g),温箱,试管架,药勺,石英砂适量,滤纸。 三、实验步骤

植物生理学实验指导

植物生理学实验指导 主编张立军 参编(按姓氏汉语拚音) 樊金娟郝建军 刘延吉阮燕晔 朱延姝

沈阳农业大学植物生理学教研室 2004年1 月 序 实验课是提高学生动手能力,提高分析问题和解决问题能力的重要途径。植物生理学教研室的全体教师和实验技术人员经过多年的教改探索,认为实验课教学要注意基本实验技能的训练、要有助于提高学生的动手能力,有助于使学生熟悉实验工作;实验内容要有挑战性,能够吸引学生的兴趣。为此,我们在借鉴国外高校和国内其他高校的先进教学经验的基础上,提出了一系列提高实验课教学质量的改革措施,这些措施涉及到实验内容的设置、实验的设计、实验报告的写作,以及实验指导书的编写等多个方面。本学期的实验教学是我们实验教学改革探索的一部分。所有的实验都设计成研究型的,有适当的处理,并尽可能的设置重复。同学们能够通过实验解释一个理论或实际问题。在本次编写的实验指导中我们给出了大量的思考题,有的涉及实验中应注意的问题,有的涉及实验技术的应用,有的涉及实验方法的应用扩展;此外,我们还要求实验报告的形式类似于正式发表的科研报告,并附有写作说明,这有利于培养学生写作科研论文的能力。为了培养良好的科研习惯,对每个实验还都给出相应的记录方式。 本学期是我们教研室首次按这项教学改革研究成果组织教学,希望广大同学配合,也希望相关专业老师、相关部门的领导及广大同学提出宝贵意见、以便使植物生理学实验教学改革更加完善。 张立军 2004 年1月30日 2014年12月29日 1

附:参加教学改革人员: 刘延吉郝建军樊金娟朱延姝阮燕晔康宗利付淑杰于洋 目录 Section 1(1h) 植物生理学实验课简介 1.教学目的 2.教学要求和考核 3.实验内容介绍 4.实验室安全要求 Section 2(6h) 一、植物的光合速率测定-----改良半叶法 二、植物叶绿素素含量测定----丙酮提取法 Section 3(6h) 三、植物组织水势测定----小液流法 四、植物根系活力测定----甲烯蓝法 Section 4(6h) 五、植物抗逆性鉴定----电导率仪法 六、植物组织丙二醛含量测定 Section 5(4h) 七、植物组织硝态氮含量的测定 Section 6(4h) 八、植物呼吸酶活性测定 2

高三生物植物激素调节练习题及答案

植物激素调节 一、单选题 1.将切下的燕麦胚芽鞘顶部移到切口一侧,置于黑暗条件下,胚芽鞘的生长情况如右图。这个实验能够证明( ) A.顶端在光下产生某种“影响物” B.“影响物”具有促进胚芽鞘生长的效能 C.合成“影响物”不需要光 D.背光一侧“影响物”分布多 2.用燕麦胚芽鞘及幼苗⑦⑧进行如下实验,一段时间后,会引起弯曲现象的是(→表示单侧光)() … A.②⑤⑦B.①②③⑤⑧C.①③④⑥⑦D.②⑤⑧ 3.将植物横放,测量根和茎生长素浓度与其生长状况的关系如甲图所示。则曲线上P点最可能对应于乙图中的位置是() A.a B.b C.c D.d \ 4.松树主干长得粗壮,侧枝细弱,树冠呈“宝塔型”;而丁香却没有明显的主干与侧枝,树冠也不呈“宝塔型”,这是由于() A.松树是阳生植物,具有顶端优势;丁香是阴生植物,不具有顶端优势 B.松树是阴生植物,具有顶端优势;丁香是阳生植物,不具有顶端优势 C.松树和丁香均具有顶端优势,但松树的顶端优势较丁香显着 D.松树和丁香均具有顶端优势,由于丁香开花后顶端枯死,顶端优势随之解除 5.某兴趣小组将生物园里的二倍体黄瓜的雌花分四组,处理方法如下表。其中最可能获得二倍体无籽黄瓜的处理() 组别甲· 乙 丙丁 处理自然 状态 开花后,用适 宜浓度的生长 素处理柱头。 开花前套上纸袋,开花 后,用适宜浓度的生长素 处理柱头,然后再套上纸 袋。 | 开花前套上纸袋,开花 后,用适宜浓度的秋水 仙素处理柱头,然后再 套上纸袋。 注:黄瓜是雌雄异花植物 6.用一定浓度的植物生长素类似物可以作为除草剂除去单子叶农作物田间的双子叶杂草,

主要是由于() A.植物生长素类似物对双子叶植物不起作用 B.生长素类似物能够强烈促进单子叶农作物的生长 C.不同的植物对生长素的敏感度不同,双子叶植物比单子叶植物对生长素更敏感 D.同一株植物的不同器官对生长素浓度的反应不一样 ` 7.向日葵主要收获种子,番茄主要收获果实。上述两种植物在开花期间,遇到连续的阴雨天,影响了植物的传粉,管理人员及时喷洒了一定浓度的生长素。下列关于采取这一措施产生的结果的叙述中,正确的是() A.两种植物都能形成无籽果实,产量未受影响 B.两种植物都能形成无籽果实,向日葵的产量下降 C.两种植物都能形成无籽果实,产量下降 D.番茄形成有籽果实,产量上升;向日葵不能形成无籽果实 8.某高三某同学从生物学资料得知:“植株上的幼叶能合成生长素防止叶柄脱落”。为了验证这一结论;该同学利用如图所示的植株进行实验,实验中所需要的步骤是() ①选取同种生长状况相同的植株3株分别编号为甲株、乙株、丙株;②将3株全部去掉顶芽; ③将3株全部保顶芽:④将甲、乙两株去掉叶片,保留叶柄,并将甲株的叶柄横断面均涂上一定浓度的生长素,丙株保留幼叶;⑤将去掉叶片的甲、乙两株横断面均涂上一定浓度的生长素;⑥观察三株叶柄脱落情况。 A.①③④⑥B.①②④⑥ # C.①③⑤⑥D.①②⑤⑥ 9.下列农业生产措施中,与激素作用无关的是() A.带芽的枝条扦插易生根B.阉割猪以利于育肥 C.无籽西瓜的培育D.无籽番茄的培育 10.一般在幼果生长时期,含量最低的植物激素是() A.生长素B.赤霉素C.乙烯D.细胞分裂素 11.植物的果实从开始发育到完全成熟的过程中,主要由下列哪些激素共同起作用()①萘乙酸②生长素③2,4—D ④细胞分裂素⑤乙烯 ~ A.②④⑤B.②③④C.②③⑤D.①②⑤ 12.下表为用不同浓度的2,4—D(生长素类似物)溶液处理茄子的花蕾以后植株的结实情况。下列叙述错误的是

根系活力测定

实验14 植物根系活力的测定 植物根系是活跃的吸收器官和合成器官,根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长和营养状况及产量水平。本实验学习测定根系吸收面积和活力的方法。 一、根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定 【原理】 根据植物矿质吸收的理论,植物对溶质的最初吸收具有吸附的特性,并假定这时在根系表面均匀地覆盖了一层被吸附物质的单分子层,因此可以根据根系对某种物质的吸附量来测定根的吸收面积。常用甲烯蓝作为被吸附物质,它的被吸附量可以根据供试液浓度的变化用比色法准确地测出。已知1mg甲烯蓝成单分子层时所占面积为1.1m2,据此即可求出根系的总吸收面积。当根系在甲烯蓝溶液中已达到吸附饱和而仍留在溶液中时,根系的活跃部分能把原来吸附的物质吸收到细胞中去,因而继续吸附甲烯蓝。从后一吸附量求出活跃吸收面积,可作为根系活力指标。 【仪器与用具】 分光光度计1台;100ml烧杯3只;50或100ml量筒1个(依根系大小而定);吸量管1ml 1支,10ml 1支;试管(15×150mm)10支;容量瓶1000ml 1个,100ml 1个;吸水纸适量;试管架1个。 【试剂】 0.0002mol/L甲烯蓝溶液:精确称取74.8mg甲烯蓝(C16H18N3SCl·3H2O),加水溶解,定容至1000ml。此溶液每ml含甲烯蓝0.0748mg。 0.010mg/ml的甲烯蓝溶液:用刻度吸管吸取0.0002mol/L甲烯蓝13.37ml定容至100ml,摇匀即成。 【方法】 1.植物材料的准备本实验最好采用水培或砂培植物,以获得完整而无损伤的根系。玉米根系发达,是较好的材料。如无水培、砂培试材,也可用盆栽植物,用水将盆土仔细冲净后使用。田间栽培的材料因不可能无损地挖出全部根系,最好避免在正式试验中使用。 2.甲烯蓝溶液标准曲线的制作取试管7支编号,按表14-1次序加入各溶液,即成甲烯蓝系列标准液。 表14-1 各试剂加入顺序 试管号 1 2 3 4 5 6 7 0.01mg/ml甲烯蓝溶液(ml) 蒸馏水(ml) 甲烯蓝浓度mg/ml 0 10 1 9 0.001 2 8 0.002 4 6 0.004 6 4 0.006 8 2 0.008 10 0.01 以第1管(水)为参比在分光光度计下比色,取波长660nm,读出光密度,以甲烯蓝浓度为横坐标,光密度为纵坐标绘成标准曲线。 3.取待测植物根系用滤纸将水吸干再用排水法在量杯或量筒中测定其根系体积。把

植物生理学实验指导

实验一小液流法测植物组织水势 一、目的 学会用小液流法和质壁分离法测植物组织水势和渗透势。 二、材料用具及仪器药品 马铃薯、刀片、移液管、培养皿、蔗糖溶液(1mol/L),显微镜 三、原理 1、小液流法测植物组织水势 植物细胞是一个渗透系统,若将植物细胞放在各种不同浓度的蔗糖溶液中时,由于细胞液的浓度与外界溶液的浓度(或水势)的差异。两者便会发生水分的交换。 当ψ cell外>ψw cell时,细胞则吸水,细胞外溶液的浓度↑,细胞外溶液的比重↑。 当ψ cell外=ψw cell时,细胞液与细胞外溶液水分平衡,细胞外溶液的浓度不变,细胞外溶液的比重不变。 当ψ cell外<ψw cell时,细胞则失水,细胞外溶液的浓度↓,细胞外溶液的比重↓。 本实验是以有色液滴的比重变化确定等渗浓度。根据公式,即可计算出外溶液的ψs,即ψs= - CiRT[i:离解系数,蔗糖等于1;c:等渗浓度;R:气体常数,0.0083 MPa·L/mol·K;T表示绝对温度,即273+t(实验时溶液的温度)]。 2、质壁分离法测渗透势 ψw=ψp+ψs。 当ψ cell外>ψw cell时,细胞则吸水。 当ψ cell外<ψw cell时,细胞则失水,发生质壁分离。 当发生初始质壁分离时,ψp=0 ,ψw=ψs=ψ cell外= - CiRT 四、方法步骤 小液流法测植物组织水势 1.按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液(母液)分别配成0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L蔗糖溶液各10ml。分别置于5支大试管中,编号作为实验组。 2.另取5支小试管对应于实验组编号,从实验组取2ml蔗糖溶液作为观察组。 3.切约2mm左右见方的马铃薯片。 4.把马铃薯片放入实验组,每组20片,20分钟后,加一点点亚甲基蓝粉末,摇匀。 5.用吸管吸蓝色液,伸入对应观察组中部,轻轻挤出一滴液滴,轻轻取出吸量管,观察液滴移动方向。 6.根据公式ψs=-CiRT,计算出所测材料的ψ cell 质壁分离法测渗透势 1、按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液(母液)分别配成0.1、0. 2、0. 3、0.5、0.6 mol/L 蔗糖溶液各2ml。 2、材料处理:用刀片在蚕豆叶表皮划一方格,用镊子撕下表皮,迅速投入每梯度溶液。 3、镜检确定等渗溶液:视野中1/2细胞在角隅处发生轻度质壁分离的溶液为等渗溶液。 4、计算渗透势。

高中生物《植物的激素调节》教学设计

高中生物《植物的激素调节》教学设计 知识目标: 通过教学活动使学生知道植物感性运动和向性运动的现象;知道科学家研究认识生长素的过程;知道生长素的生理作用及其在农业生产上的应用;理解植物向光生长的机理;通过了解其他植物激素的作用,理解植物激素对植物生命活动调节的基本原理。 能力目标: 通过引导学生设计实验,进行实验观察,培养学生投身科学实验的参与精神;通过组织学生活动,培养学生发现问题、分析问题和解决问题的能力;培养学生的创新精神,训练学生细致观察的能力和动手操作能力。 态度情感目标: 通过教学和实验、实习活动,培养学生“科学为社会、科学为大众”的意识;培养学生的探究意识;使学生养成“由表及里、从现象到本质”分析问题的思维习惯和认真的工作态度。 教学建议 教材分析 “能够适应环境”是生物的一个基本特征。但对“生物如何适应环境?”,特别是“植物如何适应环境?”这些问题学生过去很少接触。本节内容沿着科学家的足迹向学生逐一介绍了一种植物激素——生长素的合成部位、产生影响的部位、在植物体内运输的规律、化学性质、生理作用以及在生产实践中的应用等多方面的知识。 有关生长素的合成部位、在植物体内运输规律以及生长素生理作用的知识,能够使学生能够从化合物、细胞的角度理解植物产生向性运动的原因,了解有关生长素的知识在生产实践中的应用,因而成为本节的重点知识。 由于不同植物器官要求的最适生长素浓度不同,植物产生“向地性”与产生“向光性”、“背地性”的机理并不完全相同,如果在教师在讲述的过程中未能给予明确的区分,将会造成学生理解上的混乱,而成为学生学习上的一个难点。 在介绍主干知识的同时,教材并没有把学生的眼光局限在知识本身,局限在对某一种激素的认识上,而是及时介绍了科学研究成果怎样应用于农业生产实践,以及与植物产生向光性有关的

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