功能学实验家兔高钾血症实验报告
一．实验目的
学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法，观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化，了解和实践高钾血症的抢救措施，最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。
二．实验动物
未知种属家兔（实验室提供）一只，体重为2.00 kg。
三．实验过程
1. 取一只家兔，称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉（家兔体重
2.00 kg，故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉），然后固定四肢和头部。
2. 气管插管：剪除颈部毛发，依次切开皮肤和组织暴露气管，于恰当位置剪出T形切口，插入气管插管并固定。
3. 颈动脉插管：于气管旁暴露并分离颈动脉，结扎颈动脉头端，动脉夹夹住近心端。分离3-4cm长度的颈动脉，穿过一根线用于颈动脉插管固定。颈动脉下垫着镊子，剪开管径一半，插入颈动脉插管，固定，后接充满生理盐水的注射器。
4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml，静置。
5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下，连接生物信号处理系统，在MFLab上记录心电图波形。
6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min，用4% KCl溶液
从耳缘静脉滴注，观察并记录心电图变化。待出现P波低平，QRS波压低增宽，T波高尖现象时即停止滴注，第二次采集血液。
7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液，观察并记录心电图变化。待出现室扑时立即停止滴注，从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml，观察心电图并在滴注后第三次采集血液。
8. 然后开胸观察心跳，于颈动脉推注20 ml KCl溶液，观察心脏停搏状态。从心室第四次抽取血液。
9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min，取血清100 ul，混合蒸馏水9.9 ml稀释，送火焰光度计测量血清钾浓度。四．实验器材及注意事项
实验器材：
肢体导联，生物信号处理系统，火焰光度计，10ml刻度离心管，塑料试管，哺乳动物手术器械一套，塑料三通阀两个，Y形气管插管，动脉夹，20ml、10ml、5ml注射器，头皮针三支，输液装置一套，心电针型电极
注意事项：
1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时，在家兔皮肤处涂抹适量局麻药，稍后进行头皮针插入动作，防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。插入位点应尽量选择耳缘静脉远心端，防止因先前的注射失败而导致无合适的再次进针位点。
2. 心电图电极插入应严格的插入四肢皮下，切勿插入肌肉组织
中，测量心电图时应关闭附近的电灯，防止肌电和其他外部电场对心电图测量造成影响，产生误差。
3. 蠕动泵的滴速应严格调整好，滴速会影响心电图的变化时间以及抢救成功率。使用生理盐水调整时使用的EP管之后应进行蒸馏水的清洗，以免对之后血清的测量产生误差。
4. 血液样本应避免放置过久，若其中的血细胞因放置过久而破裂，细胞内的K离子溢出会使得之后血清K离子浓度测量出现较大误差。
五．实验结果
1. 家兔在KCl溶液滴注前后心电图的变化：
[1].在4% KCl溶液滴注之前，第一次颈动脉插管出现插入后导管
脱落，颈动脉大量出血，因动脉夹止血及时，损失的血量大
约在20 ml左右。后观察心电图，心电图出现了较大杂音干
扰，但是各波形尚能分辩：P波高耸，QRS波明显，T波较不
明显但能与杂音区别。R波幅度最高，P波幅度约为R波一半。
[2].KCl溶液开始滴注，30s内心电图变化不甚明显。30s过后开
始出现P波低平增宽，再过10s QRS波开始出现低平。约2min
后T波逐渐隆起，明显，幅度增长到R波的一半左右。此时
停止滴注进行第二次采血。
[3].继续滴注KCl溶液，T波群继续高耸，QRS波群继续压低增宽，
QS波逐渐分辨不清，R波和T波幅度相近，在干扰下能清楚
分辩出正弦图形，此时停止滴注并推注葡萄糖酸钙，之后第
三次取血。
[4].推注葡萄糖酸钙过程中，T波逐渐低平，偶尔出现正常相QRS
波。之后正常的QRS波增多，但P波仍然不是很明显。推注
后4-5min，正常心电活动减少，家兔出现室颤波形，胸外心
脏按压效果不是很理想，最后心脏停搏，抢救宣告失败
[5].开胸暴露心脏，从颈动脉推注KCl溶液20ml后第四次采血。
2. 采血样本血清K例子浓度检测：
四管血液经凝固离心后，取血清稀释后送检得到结果如下：
第一次采血：25.2 mmol/L 第二次采血：5.6 mmol/L
第三次采血：6.9 mmol/L 第四次采血：11.1 mmol/L 六．讨论
1. 高钾血症对家兔心电图的影响：
总体影响为P波低平增宽，QRS波群压低变宽，T波高耸。随着K离子浓度进一步提高，P波消失，T波抬高，形成M形心电图，最后呈正弦图样室扑心电图。
高钾血症对心肌的影响一般为兴奋性先增加后下降，传导性下降，收缩性下降，自律性下降。
[1].兴奋性：在血清钾浓度迅速轻度升高时，心肌细胞静息电位
（绝对值）轻度减小，距离阈电位的距离缩短，阈刺激减小
即心肌的兴奋性增高。当血清钾浓度迅速显著升高时，由于
静息电位过小，与阈电位距离过近，从而使得电压依赖性的
钠离子通道（快钠通道）处于备用状态的数量明显减少乃至
失活，从而使得兴奋性降低。
[2].传导性：由于心肌细胞静息电位绝对值变小，与阈电位接近，
0期钠通道不易开放，使去极化的速度减慢、幅度变小，因
此心肌传导的速度减慢。严重的高钾血症时，可因严重的传
导阻滞和心肌兴奋性消失而发生心脏骤停。
[3].收缩性：高钾血症时，细胞外液K离子浓度过高抑制了复极
化2期的钙离子内流，使心肌细胞内钙离子浓度降低，因此
心肌收缩性减弱。
[4].自律性：高钾血症时，细胞膜对K离子的通透性增高，复极
化4期K离子外流增加而Na离子内流相对缓慢，自律细胞如
浦肯野细胞的自动去极化减慢，因此引起心肌的自律性降低。
2. 血清K离子浓度分析
正常血钾浓度在血清中应为3.5-5.5 mmol/L。
第一次采血是在未注射KCl溶液时，检测结果明显偏高，分析是因为当时调整滴注速度时，用了采血的EP管接取KCl溶液，之后忘记清洗了直接进行了血清稀释的操作，此为人为的实验错误造成的。另一个原因有可能为第一次采血，从采血完成到进行离心等操作有一段较长的时间间隔，导致血液中血细胞大量的破裂，K离子溢出，导致血清K离子浓度检测结果偏高。
第二次采血是在滴注KCl溶液观察到T波高耸时进行的。此时K离子浓度略高于正常值。由心电图可知该K离子浓度已经影响到了心肌细胞的正常除极化、复极化以及传导过程。第二次采血血清K离
子浓度测量值较为合理。
第三次采血是在观察到室扑后进行推注葡萄糖酸钙抢救之后进行的。推注葡萄糖酸钙对于血钾浓度影响不大，故于抢救后采血并不会对血钾浓度造成较大误差。此时的血钾浓度已经高于正常值，属于血钾浓度严重偏高情况，已经严重的破坏了心肌细胞的正常电生理现象，兴奋性、传导性、收缩性和自律性都严重降低，导致出现室扑。若不及时抢救降低血钾浓度，可出现心脏停搏和多器官不可逆损伤。
第四次采血为颈动脉推注KCl溶液之后，家兔死亡后进行的。在此浓度下心肌细胞的电生理活动完全抑制，心脏停搏，家兔死亡。
第二次、第三次、第四次采血测得的K离子浓度均在实验结果可接受范围之内，且三次的数据梯度性良好，认为该次实验结果较为成功。第一次采血测得数据有较大误差，存在人为失误造成的可能，以后需要我们小组共同的监督和进步。
3. 葡萄糖酸钙抢救机制：
之前的讨论有提到高钾血症影响心肌的收缩性。具体来讲，高钾血症会影响细胞的兴奋-收缩耦联。故在高钾血症时迅速注射葡萄糖酸钙进行抢救是由于葡萄糖酸钙能够置换过多的钾离子，提高细胞内钙离子的浓度，进而使得兴奋-收缩耦联得到恢复，而使得心脏的收缩性得到增加。同时钙离子也能够通过提高阈电位进而降低高钾对心脏的影响。
临床上抢救高钾血症时通常还要注射钠制剂：高浓度的NaHCO3溶液。HCO3-能中和因高血钾导致的细胞外液升高的H+，使钾离子进入细胞
内；Na+在细胞外液增加，从而导致肾远由小管Na+浓度上升，进而增加了Na+、K+的交换，使大量的钾离子随尿排出从而降低血液中的钾离子浓度。
七．实验结论
高钾血症能影响家兔心肌的电生理活动，高浓度的K离子能降低心肌细胞的兴奋性、传导性、收缩性和自律性。本组实验表明，血钾浓度为5.6 mmol/L时家兔心肌电生理出现异常，血钾浓度为6.9 mmol/L 时出现室扑，血钾浓度为11.1 mmol/L时家兔心肌电生理活动消失而死亡。推注葡萄糖酸钙抢救失败，未观察到明显的推注葡萄糖酸钙缓解高钾血症的现象。
（学习的目的是增长知识，提高能力，相信一分耕耘一分收获，努力就一定可以获得应有的回报）
机能学实验报告 实验日期：2015年6月10日 带教教师： 小组成员： 专业班级：预防医学一大班 一、实验目的 1、掌握家兔正常心电图波形的生理意义 2、掌握家兔高钾血症模型的复制方法 3、观察家兔高钾血症心电图波形变化特征 4、掌握高钾血症治疗的方法（4%碳酸氢钠或极化液） 二、实验原理 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症（正常值：3.5～5.5mmol/L）。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏，可使心肌动作电位和有效不应期缩短，传导性、自律性、收缩性降低，兴奋性则呈双相变化：轻 度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降
低甚至消失，心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS 波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波；②T波高尖：高钾血症早期即可出现，严重高钾血症时可出现正弦波,此时，已迫近室颤或心室停搏；③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾的心肌毒性；②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定血钾浓度，了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集处理系统、离子分析仪、大动物手术器械、气管插管、动脉套管、注射器、头皮针、取血器、电解质测定仪 四、实验方法与步骤 1.称重、麻醉和固定动物：家兔称重后，用3%注射用戊巴比妥钠， 按1ml/kg从耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态，当兔子角膜反射敏感度，肌肉紧张性明显降低，立即停止给药。麻醉后，将动物仰卧位固定在实验台上， ２手术与血管插管：颈部剪毛，在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm，分离颈前肌肉暴露气管，做气管插管，并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉，插入连接三通管的颈静脉插管以备输液，缓慢注入生理盐水（5-10滴/min）以保持管道通畅。在左侧肌肉深部分离出颈总动脉，插入连接三通管的总动脉插管。
家兔高钾血症及抢救 【实验目的】 掌握家兔高钾血症模型的复制及抢救的方法。 观察高钾血症及抢救后的心电图变化。 分析高血钾引起心电异常的机制 【实验原理】 钾离子是人体内重要的电解质之一，是维持细胞内外酸碱平衡、渗透压平衡和神经肌肉电生理特性的重要离子。正常血清钾离子浓度保持在3.5mmol/L~5.5mmol/L的范围内，当家离子浓度大于5.5mmol/L时称为高钾血症。以下是高血钾对心肌功能的影响及其基本机制： 心急兴奋性降低：当血钾浓度迅速轻度升高时，心肌细胞静息电位也轻度减小，引起兴奋所需的阈刺激也较小，即心肌兴奋性增高。当血钾浓度迅速显著升高时，由于静息电位过小，心急兴奋性也将降低甚至消失。 高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性明显增高，故钾外流速加快，复极化（3期）加速。因此，动作电位时间和有效不应期均缩短，但由于细胞外高钾抑制钙离子在复极化2期内流，故2期有所延长，心电图上显示T波狭窄高尖，Q-T间期缩短。 心肌传导性降低：高钾血症时，由于静息电位减小，故动作电位0期，即去极化的幅度变小，速度减慢，因而兴奋的扩布减慢，即传导性降低。心房内、房室间或心室内均可发生传导延缓或阻滞。心电图上显示P波压低、增宽或消失；P-R间期延长，ST段压低，QRS综合波增宽’S波加深。 心肌自律性降低：高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性增高，故在到达最大复极电位后，细胞内钾的外流比正常时加快而钠内流相对减慢，因而自动去极化减慢，自律性降低。 心肌收缩性降低：高钾血症抑制钙内流，使心肌收缩性降低。 综上，高钾血症时，心电图显示特点为：T波高尖，Q-T间期缩短，P-R间期延长，ST段压低，QRS波增宽，S波加深。 应用钙剂可拮抗高钾血症的心急毒性作用，期机制为：Ca2+一方面能促使阈电位上移，使Em-Et间距离增加，回复心肌的兴奋性‘另一方面使复极化2期Ca2+竞争性内流增加，提高心肌的收缩性。本实验通过静脉注射氯化钙溶液可纠正家兔高钾血症，心电图恢复正常。 【实验材料】 家兔1只，兔手术台，婴儿秤，手术器械，BL-420生物信号采集系统，心电记录电极，5ml、10ml注射器各一个、静脉输液装置一套，小儿头皮针，静脉导管、气管插管各1套，3%戊巴比妥钠溶液，4%氯化钾溶液，10%氯化钙溶液。【实验步骤】 1.麻醉 取家兔称重，耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠1.0ml/kg麻醉，仰卧位固定于手术台，分离气管和右侧颈外静脉并进行插管，颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置，以备滴注氯化钾溶液用。 2.将针形电极分别插图家兔四至皮下，并连接BL=420生物机能实验系统，红色连右前肢，黑色连右后，绿色连左后，描述正常心电图。 3.耳缘静脉插入头皮针固定以备抢救注射氯化钙用。
实验六家兔高钾血症 一、实验目的 1．复制家兔高钾血症的动物模型。 2．了解动物高钾血症时心电图变化的特征，并设计抢救和治疗方案。 二、实验内容 1．家兔高钾血症动物模型的复制。 2．观察动物高钾血症时心电图变化的特征， 3．设计动物高钾血症的抢救和治疗方案。 三、实验准备 【实验动物】家兔 【仪器设备】计算机生物信号采集处理系统、心电电极输入线、兔手术台、哺乳类动物手术器械、三通管、双凹夹、铁支架、注射器（1ml，5ml，10ml）、输液装置、小儿头皮针等。 【药品试剂】1.5%戊巴比妥钠溶液、2%、5%、10%氯化钾生理盐水溶液、10%氯化钙溶液、5%碳酸氢钠溶液、葡萄糖-胰岛素溶液（50%葡萄糖4ml加1单位胰岛素）、生理盐水。 四、实验方法 1．动物称重、麻醉和固定家兔称重后，用1.5%戊巴比妥钠溶液（2ml/kg）从耳缘静脉缓慢注入。待动物自然倒下，将动物仰卧固定在实验台上，并保持耳缘静脉通畅。 2．心电图描记 （1）将心电电极输入端插头插入计算机生物信号处理系统插口。 （2）将针型电极分别插入动物四肢踝部皮下，心电导联线按右前支（红）、左前支（黄）、右后支（黑）、左后支（绿）的顺序联接。或变换心电输入线的三个端点可以测出标准I、II、III导联心电信号。 （3）用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形，方法是选择心电图的I导联，将右前肢电极插在下颏部皮下，左前肢的电极插在胸壁，相当于心尖部位的皮下。这样高血钾的异常波形出现早而清楚。 （4）开机启动计算机生物信号采集处理系统，设置心电图描记参数：低通滤波：上限频率40HZ。在MedLab中依次选择“实验/常用生理学实验”→“心电图测量”。MedLab放大器和采样参数设置如下：
机能学实验报告 实验日期： 带教教师： 小组成员： 专业班级： 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 2、探讨家兔高钾血症时ECG变化的特点以及帐篷“T”的机制。 3、比较碳酸氢钠溶液或极化液治疗高钾血症的作用。 二、实验原理 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症（正常值：3.5～5.5mmol/L）。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏，可使心肌动作电位和有效不期缩短，传导性、自律性、收缩
降低，兴奋性则呈双相变化：轻度高钾血症使心肌兴奋性增高，急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失，心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为： (1)T波高尖，基底部较窄，形如帐篷。高钾血症早期即可出现，严重高钾血症时可出现正弦波，此时，已迫近室颤或心室停搏。 (2)P波减低，最后可消失。乃因心房肌麻痹、心房静止所致。如此时窦房结激动尚能通过结间传导束下传至心室，则可形成“窦-室传导”，困此心室律还比较整齐 (3)S-T段压低与T波呈一斜线。或出现由Q R S波与S T-T相融合的双相波。S-T段也可抬高。（4）Q R S时间加宽，R波低小。 (5)严重时可产生传导阻滞、阵发性室性心动过速、心室颤动或心脏停搏。高钾血症的抢救可采用:一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10％氯化钙2m1/kg，或4％碳酸氢钠5m1／kg，或葡萄糖—胰岛素溶液7m1/kg)。本实验通过静脉推注氯化钾使血钾浓度短时间内大量升高形成急性高钾血症，观察心电图变化，了解高钾血症对心脏的毒性作用，以及对高钾血症的急救措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集整理系统、离子分析仪、大动物手术器械(手术剪、眼科剪、小镊子、止血钳、玻璃分针、动脉夹、注射器等)、气管插管、动脉套管、注射用乌拉坦溶液、3%氯化钾溶液、4%碳酸氢钠溶液、极化液、生理盐水。 四、实验方法与步骤 1.家兔的称重、麻醉和固定：家兔称重后，用注射用乌拉坦溶液，按4ml/kg从耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态。麻醉的深浅，可根据兔子呼吸的深度和速度、角膜反射
高血钾对家兔的毒性作用表现及其 解救实验 组别：9 组长：白晓阳11202170578 组员：杨小容11202170572 黎艳11202170573 陈欣欣11202170574 林春玲11202170575 李雪梅11202170576
高血钾对家兔的毒性作用表现及其 解救实验 【前期汇总】 高钾血症是临床上多种疾病所并发的一种常见病理生理过程，是最易危及生命的水、电解质紊乱性疾病之一，在临床上属于急症范畴，主要表现为对心肌、骨骼肌和酸碱平衡的影响。 当血清钾为5~7mmol/L时，心肌细胞静息电位轻度减小，引起兴奋所需的阈刺激也减小，心肌兴奋性增高，导致室颤的发生；当血清钾>7mmol/L时，使心肌细胞产生去极化阻滞，静息电位低于阈电位，兴奋性、传导性、自律性、收缩性均降低，导致心率减慢甚至心搏停止。轻度高钾血症时，患者可有手足感觉异常、疼痛、肌肉轻度震颤等症状；严重高钾血症则可导致四肢软弱无力、腱反射消失甚至驰缓性麻痹。同时，高钾血症可导致代谢性酸中毒，表现为尿液呈碱性。[1] 对于高钾血症，最简便、最有效、最快捷的检查方法就是心电图检查，因为此病在临床症状表现不明显时，心电图就早已出现了显著的改变。不同程度的高血钾在心电图上有不同的特征表现，表现为P 波低平或消失、T波高尖和QRS波群增宽。[2]所以，心电图检查是临床诊断高钾血症的最具重要价值的检查方法，且具有对假性高血钾
的判别作用。它比血清钾的测定更为准确、便捷、无创，且可重复监测。 在高钾血症的治疗中，葡萄糖酸钙被用作心脏保护剂。虽然它并不能影响血液中钾离子的浓度，但它能够降低心肌细胞的兴奋度，从而降低发生心律失常的可能性。 【实验目的】 学习用家兔建立高钾血症模型，使用MedLab生物信号采集处理系统监测家兔正常时、高血钾时以及给予解救药后的心电变化并采集心电图，观察高钾血症时家兔的病理生理学表现。 【实验材料】 1、实验动物：家兔一只 2、实验器材：兔手术台，手术器械1套，心电针形电极，MedLab 生物信息采集处理系统。 3、实验药品：20%乌拉坦、l0％氯化钾溶液、10％葡萄糖酸钙溶液 【实验步骤】 1、取家兔1只，称重并记录下体重。用20%乌拉坦按2ml/kg进行麻醉；然后进行气管插管保持呼吸通畅，颈外静脉插管，开通颈外静脉
功能学实验家兔高钾血症实验报告 一．实验目的 学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法，观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化，了解和实践高钾血症的抢救措施，最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。 二．实验动物 未知种属家兔（实验室提供）一只，体重为2.00kg。 三．实验过程 1.取一只家兔，称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉（家兔体重 2.00kg，故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉），然后固定四肢和头部。 2.气管插管：剪除颈部毛发，依次切开皮肤和组织暴露气管，于恰当位置剪出T形切口，插入气管插管并固定。 3.颈动脉插管：于气管旁暴露并分离颈动脉，结扎颈动脉头端，动脉夹夹住近心端。分离3-4cm 长度的颈动脉，穿过一根线用于颈动脉插管固定。颈动脉下垫着镊子，剪开管径一半，插入颈动脉插管，固定，后接充满生理盐水的注射器。 4.于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml，静置。 5.将心电图电极依次插入四肢关节处皮下，连接生物信号处理系统，在MFLab上记录心电图波形。 6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min，用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注，观察并记录心电图变化。待出现P波低平，QRS波压低增宽，T波高尖现象时即停止滴注，第二次采集血液。 7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液，观察并记录心电图变化。待出现室扑时立即停止滴注，从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml，观察心电图并在滴注后第三次采集血液。 8. 然后开胸观察心跳，于颈动脉推注20 ml KCl溶液，观察心脏停搏状态。从心室第四次抽取血液。 9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min，取血清100ul，混合蒸馏水9.9 ml 稀释，送火焰光度计测量血清钾浓度。 四．实验器材及注意事项 实验器材： 肢体导联，生物信号处理系统，火焰光度计，10ml刻度离心管，塑料试管，哺乳动物手术器械一套，塑料三通阀两个，Y形气管插管，动脉夹，20ml、10ml、5ml注射器，头皮针三支，输液装置一套，心电针型电极 注意事项： 1.耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时，在家兔皮肤处涂抹适量局麻药，稍后进行头皮针插入动作，防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。插入位点应尽量选择耳缘静脉远心端，防止因先前的注射失败而导致无合适的再次进针位点。 2. 心电图电极插入应严格的插入四肢皮下，切勿插入肌肉组织中，测量心电图时应关闭
昆明医科大学机能学实验报告 实验日期：2015年6月18日 带教教师：王老师 小组成员：付书谞、蒋菊会、和秋芳、李红屏、刘兴忠、杨冬雨 专业班级：护理专业2013级二大班 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1.掌握高钾血症时心电图的变化特点。 2.掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 3.比较碳酸氢钠溶液和极化液治疗高钾血症的作用。 二、实验原理 血清高于5.5mmol/L为高钾血症（正常值为3.5—5.5mmol/L）高钾血症对机体的影响主要在心脏，可使心脏动作电位和有效不应期缩短。传导性、自律性、收缩性降低，兴奋性先上升后下降；高钾血症心电图表现为：①P波和QRS波波幅降低，间期增宽，可出现宽而深的S 波。②T波高尖。③多种类型的心律失常。 三、实验仪器设备 生物信号采集处理系统、离子分析仪、大动物手术器械、气管插管、动脉套管、3%注射用戊巴比妥钠溶液、3%氯化钾溶液、4%碳酸氢钠溶液、极化液、生理盐水 四、实验方法与步骤 1.抓取家兔一只，称重。 2.以4.2ml/100g的剂量通过耳缘静脉为家兔注射25％乌拉坦，将其麻醉。 3.固定。 4.颈正中剪毛，切口，做气管插管。 5.一侧颈静脉插管，连接三通管。另一侧颈总动脉插管（颈总动脉插管前去生理盐水排气备用）。 6.取血测正常血钾浓度。 7.以右前肢（红）左前肢（黄）左后脂（绿）右后肢（黑）的顺序连接心电图导线，通过计算机描绘家兔正常心电图。 8.通过颈外静脉输液装置静脉滴注3%氯化钾（18—20滴/min）维持30min，当心电图出现典型“M”波并持续5min后取血测定其血钾浓度。 9.颈外静脉注射极化液或4%碳酸氢钠溶液抢救家兔，至心电图回复至复制模型前水平再取血检验血钾浓度。
实验一家兔高钾血症及抢救 实验一家兔高钾血症及抢救 一、实验目的 （1）掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 （2）观察高钾血症叫家兔心电图变化的特征。 （3）自行设计和实施抢救治疗方案。 （4）了解血钾升高后，对心肌细胞的毒性作用。 二、实验动物、药品与器材 1．动物家兔，雌雄不拘，体重2.0～3.0 kg。 2．药品2.5 %戊巴比妥钠溶液，肝素生理盐水溶液（125U肝素／ml生理盐水），2 %、 5 %、10 %氯化钾生理盐水溶液，10%氯化钙溶液，4 %碳酸氢钠溶液，葡萄糖胰岛素溶液（每4 ml的%葡萄糖加1U胰岛素）。 3．器材计算机实验系统，心电记录与转换设备，一般手术器械，静脉输液装置，5 ml、l0 ml、20ml注射器，小儿头皮针，抗凝试管。 三、观察指标 精神神经状态（是否兴奋、躁动、昏迷、痉挛），呼吸频率、深度和节律，心电图变化，血浆钾浓度。 四、方法与步骤 1．动物的麻醉与手术动物称重后，用2.5 %戊巴比妥钠，按1.0 ml／kg剂量给药， 由耳缘静脉缓慢注入。注射期间注意观察动物肌张力、呼吸频率和角膜反射的变化，防止麻醉过深。麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。 颈部剪毛，沿甲状软骨下正中切开皮肤约 6 cm，分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉并插管。颈动脉导管用于取血；颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置，缓慢输入生理盐水（5～10滴／min），以保持管道通畅。 2．测血钾用抗凝试管通过颈总动脉取血l ml，用电解质测量仪测
置动物实验前的血浆钾浓度。 3．心电描记将针型电极分别插入四肢踝部皮下。导联线按右前肢（红）、左前肢（黄）、 左后肢（蓝）、右后肢（黑）的顺序连接，通过计算机和心电记录系统描记实验前的心电图波形。 用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。方法是将胸导联电极插入胸部皮下，将头部导联电极插入下颏部皮下，将心电转换盒上的导联旋钮旋到头胸导联位置。这样记录的心电图高大清晰，高血钾的异常心电图波形出现早而清晰。 4．高钾血症的复制通过颈外静脉和输液装置，缓慢滴注2%的氰化钾生理盐水溶液， 同时密切观察和记录心电图变化。出现P波低平、增宽，QRS波群低压变宽和高尖T波后，立即取血1 ml作血钾测定，并开始实施抢救。 如果用2%的氯化钾住理盐水溶液滴注不出现典型心电图改变，可改用5%的氯化钾生理盐水溶液滴注，并密切观察，及时记录。 5．高钾血症的抢救在滴注氯化钾生理盐水溶液之前，必须选择准备好抢救药物（10% 氯化钙2 ml／kg或4 %碳酸氯钠5ml／kg，或葡萄糖胰岛素溶液7ml／kg），并用头皮针准备好耳缘静脉输注通道。在心电图出现典型高血钾改变后立即实施抢救，通过耳缘静脉快速推注抢救药物。如果10s内无法输入抢救药物，救治效果欠佳。 待心电图基本恢复正常时再次由颈总动脉采血1 ml，测定救治后的血浆钾浓度。 最后，注入致死计量的10 %氯化钾（8 ml/kg），开胸观察心肌纤颤及心脏停搏时的状态。 五、注意事项 （1）动物麻醉深浅要适度，麻醉过深易抑制呼吸，过浅时动物疼痛则易引起肌肉颤动，对心电图记录造成干扰。 （2）保持动、静脉导管的通畅，确保各种液体能及时、准确地输
高钾血症对家兔机体酸碱平衡的影响 设计者： 专业、班别： 指导老师： 一、实验目的 1、掌握动物高钾血症模型的制备方法 2、观察高钾血症的一般症状和心电图变化特征 3、检测高钾血症对家兔血、尿酸碱度的影响 4、熟悉Medlab系统的使用和基本手术操作 二、立题依据 1、心电图的变化：传导性降低，心房去极化的P波压低、增 宽或消失；房室传导的P-R间期延长；心室去极化的R波降低；心室内传导的QRS综合波增宽。由于复极化3期钾外流加速，使3期复极时间和有效不应期缩短，反映复极化3期的T波狭窄高耸，心室动作电位时间的Q-T间歇轻度缩短。（金惠铭、王建枝，病理生理学，第7版，人民卫生出版社，2010．P34-35）
2、酸碱平衡：①高钾血症时，细胞外液钾离子升高，此时细 胞外液钾离子内移，而细胞内氢离子外出，引起细胞外液 酸中毒；②肾小管上皮细胞内钾离子浓度升高，氢离子浓 度降低，造成肾小管H+—Na+交换减弱，而K+—Na+交换 增强，尿排钾增多，排H+减少，加重代谢性酸中毒，且尿 呈碱性，称反常性碱性尿。（金惠铭、王建枝，病理生理学，第7版，人民卫生出版社，2010．P34-35） 3、钙和钾对心肌的对抗作用：Ca2+一方面能促使Et上移， 使Em-Et间距离增加甚至恢复正常，恢复心肌的兴奋性； 另一方面使复极化2期Ca2+竞争性地同流增加，提高心肌 的收缩性。 4、5﹪碳酸氢钠溶液高渗碱性钠盐可扩充血容量，以稀释血清钾 浓度，使钾离子移入细胞内，纠正酸中毒以降低血清钾浓度， 同时细胞外液钠浓度增多，使0期去极化时Na+内流增加，0 期上升的速度加快、幅度增大，心肌传导性得以改善。5、Medlab系统的操作使用，基本的手术操作。（朱健平，生 理科学实验教程，科学出版社，2009，P23、40） 三、实验方案 1、实验材料 实验用家兔，手术器械，离心管、试管若干支，试管架，注射器2支，洗耳球，兔手术台，头皮针，气管插管，动脉插管，输尿管插管2个，Medlab生物信号采集处理仪，20﹪乌拉圭溶液，2
家兔高钾血症实验报告
家兔高钾血症实验报告 正常家兔瞳孔大小 高钾血症时，心电图可见家兔心律失常，并且T波高耸，Q—T间期缩短；并且可见家兔呼吸缓慢，瞳孔放大，眼球突出，紫绀等现象。用葡萄糖、NaHCO3均抢救成功，而用胰岛素+葡萄糖、NaCL均抢救失败。 急性低钾血症和急性重度高钾血症时均可出现肌肉无力，其发生机制有何异同？相同：骨骼肌兴奋性降低。 不同：低钾血症时出现超极化阻滞：即血清钾↓→细胞内外浓度差↑→静息电位负值增大→与阈电位差距增大→兴奋性降低。 严重高钾血症时出现除极化阻滞，即血清钾↑→细胞内外[K+]比值↓→静息电位太小（负值小）→钠通道失活→动作电位形成障碍→兴奋性降低。 高钾血症和低钾血症对心肌兴奋性各有何影响?阐明其机理？ 钾对心肌是麻痹性离子。高钾血症时心肌的兴奋性先升高后降低，低钾血症时心肌的兴奋性升高。急性低钾血症时，尽管细胞内外液中钾离子浓度差变大，但由于此时心肌细胞膜的钾电导降低，细胞内钾外流反而减少，导致静息电位负值变小，静息电位与阈电位的距离亦变小，兴奋所需的阈刺激也变小，故心肌兴奋性增强。高钾血症时，虽然心肌细胞膜对钾的通透性增高，但细胞内外液中钾离子浓度差变小，细胞内钾外流减少而导致静息电位负值变小，静息电位与阈电位的距离变小，使心肌兴奋性增强；但当严重高钾血症时，由于静息电位太小，钠通道失活，发生去极化阻滞，导致心肌兴奋性降低或消失。 急性肾衰引起高钾血症的机制 急性肾衰竭时，肾小球滤过率的迅速下降导致钾离子的排泄减少 急性肾衰出现高钾血症应如何处理 钠型离子交换树脂15～30g口服，每日3～4次。此外，高钾血症病人禁用库存血，限制摄入含钾高的食物，停用含钾药物，并及时纠正酸中毒。 试述创伤性休克引起高钾血症的机制。
功能学实验家兔高钾血症实验报告 一.实验目的 学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法，观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化, 了解和实践高钾血症的抢救措施，最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。 二.实验动物 未知种属家兔（实验室提供）一只，体重为2.00 kg。 三.实验过程 1. 取一只家兔，称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉（家兔体重 2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉），然后固定四肢和头部。 2. 气管插管：剪除颈部毛发，依次切开皮肤和组织暴露气管，于恰当位置剪出T形切口，插入气管插管并固定。 3. 颈动脉插管：于气管旁暴露并分离颈动脉，结扎颈动脉头端，动脉夹夹住近心端。分离3-4cm长度的颈动脉，穿过一根线用于颈动脉插管固定。颈动脉下垫着银子，剪开管径一半，插入颈动脉插管，固定，后接充满生理盐水的注射器。 4. 于未滴注KCI之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。 5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮卞，连接生物信号处理系统，在MFLab±记录心电图波形。 6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCI溶液从耳缘静脉滴注，观察并记录心电图变化。待出现P波低平，QRS波压低增宽，T波高尖现彖时即停止滴注，第二次采集血液。
7.继续以相同滴速滴注KCI溶液，观察并记录心电图变化。待出现室扑时立即停止滴注，从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。 &然后开胸观察心跳，于颈动脉推注20 ml KCI溶液，观察心脏停搏状态。从心室第四次捕取血液。 9.待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸懈水9. 9 ml桶释，送火焰光度计测量血清钾浓度。 四.实验器材及注意事项 实验器材： 肢体导联，生物信号处理系统，火焰光度计，10ml刻度离心管，塑料试管，哺乳动物手术器械一套，塑料三通阀两个，Y形气管插管，动脉夹，20ml、10ml. 5ml注射器，头皮针三支，输液装置一套，心电针型电极 注意事项： 1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时，在家兔皮肤处涂抹适量局麻药，稍后进行头皮针插入动作，防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。插入位点应尽屋选择耳缘静脉远心端，防止因先前的注射失败而导致无合适的再次进针位点。 2. 心电图电极插入应严格的插入四肢皮下，切勿插入肌肉组织中，测量心电图时应关闭附近的电灯，防止肌电和其他外部电场对心电图测量造成影响，产生误差。 3. 蠕动泵的滴速应严格调整好，滴速会影响心电图的变化时间以及抢救成功率。使用生理盐水调整时使用的EP管之后应进行蒸馆水的清洗，以免对之后血清的测量产生误差。 4. 血液样本应避免放置过久，若其中的血细胞因放置过久而破裂，细胞内的K离子溢出会使得之后血清K离子浓度测量出现较大误差。 五.实验结果 1. 家兔在KCI溶液滴注前后心电图的变化： [1]. [2].在4% KCI溶液滴注之前，第一次颈动脉插管出现插入后导管脱落，颈动脉人量出血，因动脉夹止血及时，损失的血量人约在20 ml左右。后观察心电图，心电图出现了较人杂音干扰，
机能实验报告-高血钾
机能学实验报告 实验日期：2015年6月10日 带教教师： 小组成员： 专业班级：预防医学一大班 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1、掌握家兔正常心电图波形的生理意义 2、掌握家兔高钾血症模型的复制方法 3、观察家兔高钾血症心电图波形变化特征 4、掌握高钾血症治疗的方法（4%碳酸氢钠或极化液） 二、实验原理 血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症（正常值：3.5～5.5mmol/L）。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏，可使心肌动作电位和有效不应期缩短，传导
性、自律性、收缩性降低，兴奋性则呈双相变化：轻度高钾血症使心肌兴奋性增高,急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失，心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为:①P波和QRS波波幅降低,间期增宽,可出现宽而深的S波；②T 波高尖：高钾血症早期即可出现，严重高钾血症时可出现正弦波,此时，已迫近室颤或心室停搏；③多种类型的心律失常。高钾血症的抢救可采用:①注射Na+,Ca2+溶液对抗高血钾的心肌毒性；②注射胰岛素、葡萄糖,以促进K+移入细胞。本实验通过静脉滴注氯化钾,使血钾浓度短时间内快速升高造成急性高钾血症,观察心电图变化,测定血钾浓度，了解高钾血症对心脏的毒性作用以及对高钾血症的抢救治疗措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集处理系统、离子分析仪、大动物手术器械、气管插管、动脉套管、注射器、头皮针、取血器、电解质测定仪 四、实验方法与步骤 1.称重、麻醉和固定动物：家兔称重后，用3%注射用戊巴比妥钠，按1ml/kg从 耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态，当兔子角膜反射敏感度，肌肉紧张性明显降低，立即停止给药。麻醉后，将动物仰卧位固定在实验台上， ２手术与血管插管：颈部剪毛，在喉头下缘沿颈中线切开皮肤4-5cm，分离颈前肌肉暴露气管，做气管插管，并用丝线固定。在右侧按家兔血管常规分离方法分离颈外静脉，插入连接三通管的颈静脉插管以备输液，缓慢注入生理盐水（5-10滴/min）以保持管道通畅。在左侧肌肉深部分离出颈总动脉，插入连接三通管的总动脉插管。 3. 测正常血钾浓度：用EP管通过颈总动脉取血0.5ml，用电解质测量仪测量动物给予钾溶液前的血浆钾度。 4.描记心电图：将针型电极分别插入家兔四肢皮下。导联线按右前肢(红)，左前肢(黄)，左后肢(绿) ，右后肢(黑)的顺序连接，依生物机能实验系统使用方法描记实验前兔子的正常心电图波形。 5.复制高钾血症动物模型：通过输液装置，经颈外动脉从慢到快调滴速滴注3％的KCl溶液6滴/第1min，10滴/第2min，16滴/第3min及以后（不超20滴/min），密切观察和记录出现高钾时典型的心电图变化，一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融合时，立即调慢静脉滴注Kcl的速度，维持在6滴/minde,等待，当心电图出现典型高钾血症表现是，经颈外动脉取血0.5ml 作血钾测定。 6.高钾血症的抢救：在心电图出现典型高钾血症改变时，立即对家兔实施抢救。
高钾血症实验
机能学实验报告 实验日期： 带教教师： 小组成员： 专业班级： 家兔正常心电图及高钾血症的实验治疗 一、实验目的 1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 2、探讨家兔高钾血症时ECG变化的特点以及帐篷“T”的机制。 3、比较碳酸氢钠溶液或极化液治疗高钾血症的作用。 二、实验原理
血清钾高于5.5mmol/L为高钾血症（正常值：3.5～5.5mmol/L）。高钾血症对机体的危害主要表现在心脏，可使心肌动作电位和有效不期缩短，传导性、自律性、收缩降低，兴奋性则呈双相变化：轻度高钾血症使心肌兴奋性增高，急性重度高钾血症可使心肌兴奋性降低甚至消失，心脏停搏。高钾血症时的心电图表现为： (1)T波高尖，基底部较窄，形如帐篷。高钾血症早期即可出现，严重高钾血症时可出现正弦波，此时，已迫近室颤或心室停搏。 (2)P波减低，最后可消失。乃因心房肌麻痹、心房静止所致。如此时窦房结激动尚能通过结间传导束下传至心室，则可形成“窦-室传导”，困此心室律还比较整齐 (3)S-T段压低与T波呈一斜线。或出现由QRS 波与ST-T 相融合的双相波。S-T段也可抬高。（4）QRS时间加宽，R波低小。 (5)严重时可产生传导阻滞、阵发性室性心动过速、心室颤动或心脏停搏。高钾血症的抢救可采用:一侧耳缘静脉注入已预先准备好的抢救药物(10％氯化钙2m1/kg，或4％碳酸氢钠
5m1／kg，或葡萄糖—胰岛素溶液7m1/kg)。本实验通过静脉推注氯化钾使血钾浓度短时间内大量升高形成急性高钾血症，观察心电图变化，了解高钾血症对心脏的毒性作用，以及对高钾血症的急救措施。 三、实验仪器设备 生物信号采集整理系统、离子分析仪、大动物手术器械(手术剪、眼科剪、小镊子、止血钳、玻璃分针、动脉夹、注射器等)、气管插管、动脉套管、注射用乌拉坦溶液、3%氯化钾溶液、4%碳酸氢钠溶液、极化液、生理盐水。 四、实验方法与步骤 1.家兔的称重、麻醉和固定：家兔称重后，用注射用乌拉坦溶液，按4ml/kg从耳缘静脉缓慢注入。麻醉时密切注意兔子的状态。麻醉的深浅，可根据兔子呼吸的深度和速度、角膜反射的有无和敏感度，四肢和腹壁肌肉的紧张性，以及趾缝、皮肤夹捏反应等进行判断。当上述活动或反应明显减弱或消失时，立即停止给药。在采用静脉注射时，速度应当缓慢，注射过快，易