失血性休克模型的复制及解救

失血性休克及其抢救（浙江中医药大学第一临床医学院）【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。

观察兔在失血性休克的表现，探讨失血性休克的发生机制。

了解失血性休克的抢救。

方法：用右颈总动脉放血，左颈总动脉用以测量血压，右颈总静脉输血、输液进行抢救。

结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（50ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。

结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。

【关键词】失血性休克抢救1 实验材料血压换能器，RM6240系统，1ml，10ml，50ml注射器，止血钳，剪刀，眼科剪，动脉夹，棉线，氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素等。

2 实验对象家兔3 实验步骤3.1实验系统连接及参数设置：血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。

压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。

3.2手术准备3.2.1 麻醉固定取家兔一只，称重2kg；用20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg沿耳缘静脉缓慢注射，用量10ml后麻醉不成功，又注射了3ml，共注射13ml，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为至。

背位固定。

3.2.2 颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。

用玻璃分针分离两侧颈总动脉，穿两根线备用。

分离右侧颈外静脉，穿两根线备用。

3.2.3 颈总动脉插管1）在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用。

用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。

打开动脉夹。

2）稍稍提起颈静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口，将插管向心方向插入颈静脉内，扎紧固定。

3）右颈总动脉连接已肝素化的50ml注射器，内含3ml肝素。

休克的药物急救—呼吸实验目的1.学会复制失血性休克的模型；2.了解抢救休克时扩容及应用血管活性药物的意义。

实验原理根据微循环学说，休克定义为各种原因引起有效循环血量减少，微循环灌流障碍，引起重要生命器官血液灌注不足，从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。

休克的病因有多种，本实验采用颈动脉放血的方法，直接减少有效循环血量，复制低血容量性休克模型。

由于放血一定程度后可使循环血量不足，静脉回心血量减少，血压下降，通过压力感受器反射，引起交感神经兴奋，外周血管收缩，组织灌流量急剧减少，导致失血性休克。

失血后呼吸加快。

休克时，呼吸会停止。

通过输液，补充血容量及药物，抢救休克。

器材药品动物：家兔，生物呼吸实验系统，压力换能器，动物实验手术器械一套，动脉插管，静脉输液装置一套，气管插管，动脉夹，结扎线，纱布，注射器，兔台，秤。

20%乌拉坦溶液，生理盐水， 0.2%肝素生理盐水，去甲基肾上腺素，烧杯。

实验步骤1.称重：从耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦5ml/kg.2.固定3.剪毛：手术部位是颈部和一侧腹股沟，把这两个部位的毛剪干净。

剪毛的时候，用左手把皮肤绷紧，右手用粗剪刀贴近皮肤剪毛。

4分离血管：（1）颈外静脉--输血输液，作为抢救的通路颈外静脉位于颈部两侧皮下，很容易分辨。

它的特点是壁薄，粗大，色暗，没有明显的搏动,分离尽量游离得长一些，下面穿两根线备用。

（2）颈动脉--放血。

颈部做长4-6cm的皮肤切口，逐层钝性分离皮下组织，暴露出气管，分离气管，翻开肌肉层，就可以看到颈总动脉，颈总动脉的特点是搏动明显、粉红色、壁韧，很容易分辨。

把颈总动脉小心分离出来，尽量游离得长一些，下面穿两根线备用。

5.插管：（1）气管插管，连张力换能器，记录呼吸.（2）静脉插管：颈外静脉插管，一定要避免进去气泡，防止发生气栓，所以静脉插管要事先通满生理盐水，排净里面的气泡。

先夹闭近心端，再结扎远心端，。

在靠近远心端剪口，插入静脉插管以后，可以松开动脉夹，向静脉内送入一段，然后结扎。

失血性休克及其抢救模拟实验【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。

观察兔在失血性休克时的表现及循环变化，探讨失血性休克的发生机制及救治方法。

了解失血性休克抢救。

方法：第二章微机生物信号采集处理系统，第四章动物实验技术。

结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（45ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。

结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。

【关键词】休克；失血性休克；微循环【Abstract】To copy rabbit model of hemorrhagic shock. Rabbits in hemorrhagic shock performance and cycle time, and to explore the mechanism of hemorrhagic shock. Understanding of hemorrhagic shock treatment. Methods Chapter biological signal acquisition and processing computer system, Chapter animal technology. The results of a small amount of bleeding, therabbits decreased blood pressure and breathing, but recovered in a short time; when a large number of blood (45ml), blood pressure, breathing down faster and lower self-recovery capability; for blood transfusion and other treatment measures, generally back to normal. Conclusion small loss of blood, the body's own compensatory role can make blood pressure returned to normal; loss of blood, the role of local experience decompensation occurred; by blood transfusion and other treatment, blood pressure was normal resume【Keywords】Shock; hemorrhagic shock; microcirculation【引言】家兔的生理构造与人相似，而我们总好奇什么时候我们会发生失血性休克并如何抢救，所以我们将利用家兔来探讨发生失血性休克的原因和具体抢救方法。

【摘要】1.目的：复制兔失血性休克模型；观察兔在失血性休克时的表现及循环变化；探讨失血性休克的发生机制及救治方法；了解失血性休克抢救。

2.方法：第二章微机生物信号采集处理系统，第四章动物实验技术。

3.结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（45ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。

4.结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。

【关键词】休克；失血性休克；微循环【Abstract】1. Purpose: copy rabbit uncontrolled hemorrhagic shock model; Observe the rabbit uncontrolled hemorrhagic shock performance and circulation of change; Discusses the uncontrolled hemorrhagic shock the pathogenesis and treatment methods; Understand the rescue uncontrolled hemorrhagic shock. 2. Methods: the second chapter microcomputer biological signal acquisition and processing system, the fourth chapter animal experiment technology. 3. The result: a few bloodletting, blood pressure and breath of decline, but in a short time, rebounded, A large bloodletting (45 ml), blood pressure, respiratory decline faster and self recover capacity reduction; Intravenous treatment measures for a blood transfusion, roughly returned to normal. 4. Conclusion: a small amount of blood, the body's own compensatory function can make blood pressure returned to normal; Excessive blood loss, the body will happen decompensated role; The blood transfusion intravenous treatment, blood pressure may restore basic normal.【Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhagic shock; microcirculation1实验材料对象：家兔；实验试剂：氨基甲酸乙酯，肝素，生理盐水；实验仪器：铁架台，婴儿秤，RM6240生物信号采集系统，手术剪1把，止血钳，镊子，兔手术台，注射器及针头，血管插管，动脉夹，血压换能器，输液装置，照明灯，棉线若干，纱布；2实验方法实验装置与连接：①将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。

失血性休克与抢救一、实验目的1.学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用。

2.复制家兔失血性休克模型，观察兔在失血性休克时的表现与循环变化,探讨失血性休克的发病机理并分析学习实施抢救措施。

二、实验材料与方法[动物]：家兔，雄性，体重2.73kg[药品]：20%乌拉坦、1%普鲁卡因、0.9%氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、7.5%高渗盐水、5%葡萄糖、低分子量右旋糖苷、氨茶碱、去甲肾上腺素、乙酰胆碱、地塞米松、多巴胺、酚妥拉明、肾上腺素、异丙肾上腺素、10%氯化钙溶液、4% NaHCO3。

[器材]：手术器械、注射器（1ml, 5ml,10ml）、动脉插管、血压换能器、试管、离心管、头皮针、针头（9号、16号）、兔手术台、细绳若干、听诊器、RM6240多道生理信号采集处理系统、WZ-50G恒量进样器、微循环观察装置。

[实验方法]：1. 家兔称重，为2.73kg。

2. 按5ml/kg经耳缘静脉先快后慢推注20%乌拉坦13.65ml。

3. 待家兔结膜、疼痛反射消失，确认麻醉完全并且呼吸心跳等体征正常时将其于仰卧位固定在兔手术台上，固定四肢，棉绳钩住门齿并拉紧固定于兔台铁柱上。

4. 手术局部剪毛，再进行局部麻醉（颈前正中注射1%普鲁卡因0.4ml），颈前正中切开皮肤并用止血钳钝性分离软组织与颈部肌肉，暴露左侧颈总动脉和迷走神经，用玻璃分针仔细分离血管与神经。

5. 在电脑软件中找到循环系统，进入系统实验信号记录状态，调节仪器参数。

将压力换能器固定于铁支架上，使换能器的位置尽量与实验家兔的心脏在同一水平面上。

然后将换能器输入至RM6240生物信号采集系统一通道。

压力换能器的另一端与三通管相连。

三通管的一个接头将与动脉插管相连。

在将动脉插管插入左颈总动脉前，先用盛有肝素的注射器与三通管另一接头相连，旋动三通管上的开关，使动脉插管与注射器相通，推动注射器，排空动脉插管中的气体，使动脉插管内充满肝素溶液，然后关闭三通管。

南京大学医学院机能综合实验报告实验二题目失血性休克及抢救一、实验目的1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机理。

3.分析失血性休克的抢救措施。

二、实验材料及药品材料：家兔，动物手术器械（包括手术刀、粗剪、组织剪、眼科剪、止血钳），动脉夹，动脉插管，血压换能器，HX200型呼吸流量换能器，气管插管，铁支架，玻璃分针，结扎线，注射器，烧杯，生物信号采集处理系统。

药品：生理盐水，20%乌拉坦，1%利多卡因，125U/ml肝素，地塞米松，7.5%氯化钠，低分子右旋糖酐。

三、实验方法及现象1.打开电脑实验软件，调节仪器参数。

2.将血压换能器固定于铁架台，并连接生物信号采集处理系统。

3.从动物房取家兔一只，称重。

本实验家兔体重为1.982kg。

4.用20%乌拉坦对家兔于耳缘静脉注射麻醉。

观察动物结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等。

5.将家兔固定于手术台，颈前正中切开皮肤6—8cm，用止血钳钝性分离组织及颈部肌肉。

暴露气管、颈总动脉、颈静脉和迷走神经。

过程中，有轻微出血，可用棉球擦净。

分离两侧颈总动脉、颈静脉，气管。

各穿一线备用。

6.腹侧剪毛，观察肠系膜血管。

做气管插管、颈动脉插管、静脉插管。

7.记录一段正常血压、呼吸心电图波动曲线。

从颈总动脉放血（约40ml），直至血压降低并维持在40mmHg，观察并记录上述指标的变化。

8.做血气检查。

9.抢救药品及顺序如下：药品剂量（ml）高渗液 6全血 15右旋糖酐 15地塞米松 1四、实验结果（一）血压分析图1，为实验过程中记录下来的所有血压变化图图1由图1，我们可以大体看出家兔血压变化。

给家兔放血后，家兔血压快速下降，在抢救前，家兔血压有一定代偿性升高。

注射高渗液后，家兔血压明显上升。

注入全血、右旋糖酐、地塞米松后，家兔血液维持在正常水平。

以上是从图中直接反应出来的，下面进行统计分析通道收缩压舒张压平均压脉压差心率号(mmHg) (mmHg) (mmHg) (mmHg) (次/分)正常114.25 86.82 98.63 27.42 321抽血后65.33 34.76 47.01 30.57 282高渗后102.02 71.61 83.09 30.41 236全血111.68 80.36 94.61 31.31 275 右旋糖酐109.53 78.07 91.84 31.46 282地塞米松114 80.12 95.74 31.88 290表1动脉血压图2由统计分析可以看出，家兔失血后，血压降低。

失血性休克及抢救实验报告失血性休克及抢救[目的]1．学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用；2．复制家兔失血性休克模型，探讨失血性休克的发病机理并分析抢救措施。

[动物] 家兔，体重2.5~3.5kg，性别不拘。

[药品] 20%乌拉坦、1%普鲁卡因、0.9％氯化钠注射液、125U/ml 肝素溶液、7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、低分子量右旋糖苷、氨茶碱、去甲肾上腺素、乙酰胆碱、地塞米松、多巴胺、酚妥拉明、肾上腺素、异丙肾上腺素。

[器材] 手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml），动脉插管，压力换能器、生物信号采集处理系统、呼吸机。

针头（9 号、16 号）、头皮针、动脉导管、气管插管、兔手术台、听诊器、压力换能器、HX200 型呼吸流量换能器、RM6240 多道生理信号采集处理系统、输血输液装置、微循环观察装置。

[方法]1. 仪器安装、调试将压力换能器固定于铁支架上，其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面，输出线连接生物信号采集系统。

在电脑的实验软件中找到循环系统，进入系统的实验信号记录状态，调节仪器参数。

2．家兔麻醉及实验前准备家兔称重后耳缘静脉缓慢推注20%乌拉坦5ml/kg 体重。

静推麻醉药品速度不要太快，同时观察家兔的结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。

待动物麻醉后，将其仰卧固定于手术台上，固定四肢，用棉绳钩住门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁柱上。

①分离颈总动、静脉及颈部神经：手术局部剪毛，颈前正中切开皮肤6-8cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管、颈总动脉、颈静脉、迷走神经，用玻璃分针仔细分离右侧神经，穿细线。

②分离股动脉：剪去腹股沟内侧被毛，分离一侧股动脉，做动脉插管，以备放血用。

③分离气管：分离气管，做气管插管，插管一端连接呼吸流量换能器。

④暴露小肠襻：在腹部左侧距中线5cm 处剪毛，做长度约6cm 的纵行切口，打开腹腔。

将小肠襻置于微循环观察盒内，利用医学图象分析系统，打开微循环测量项，通过计算机采集图象，观察失血前后微循环变化。

失血性休克模型制备及其抢救【实验目的】复制家兔失血性休克模型，在次过程中观察失血性休克动物的皮肤黏膜颜色、平均动脉压、呼吸、中心静脉压、尿量等指标的变化，分析失血性休克发生的机制及抢救措施。

【实验材料】1.实验动物：家兔6只，健康状况良好、雄性、体重2~3kg；2.实验仪器：BL-420E+生物信号描计系统、婴儿秤；3.实验药品：25%乌拉坦溶液、肝素、生理盐水、去甲肾上腺素、阿托品；4.实验器械：剪毛剪刀、手术刀、组织剪、眼科剪、镊子、止血钳、气管插管、动（静）脉插管、动脉夹、注射器、细线。

【实验步骤】1.取成年雄性家兔，称重；耳缘静脉注射乌拉坦4ml/kg；待麻醉后背位固定动物。

2.备皮减去颈部及右侧腹股沟处的毛。

3.由甲状软骨下1cm处切开颈正中皮肤5~6cm，逐层分离并剪开皮下组织及颈前肌肉，分离气管,并做气管插管。

分离左侧颈总动脉及右侧颈总静脉。

4.由耳缘静脉注入肝素1ml/kg，做颈总动脉插管以描计血压；将静脉插管从右侧颈总静脉插入5~6cm以描计中心静脉压；做股动脉插管，保持动脉夹夹闭状态，以备放血用。

在插管前，先充满生理盐水并夹闭，测压或放血时再打开。

5.插入导尿管以记录尿量。

6.在剑突处皮肤上缝一针，用线连接张力换能器以描记呼吸。

7.观察放血前观察动物的一般情况及各项生理指标：皮肤黏膜颜色、血压、呼吸、心率、中心静脉压、尿量。

8.放血预先在500 ml烧杯中加入肝素2 mg，用于收集所放血液。

打开股动脉上的动脉夹，快速放血，在15 min内使平均动脉血压降至40 mmHg，通过调节放血量，维持平均动脉压于40 mmHg，20min，并观察失血期间家兔各项生理指标的改变。

9.抢救第1、2小组将放出的血液快速输回，然后用生理盐水进行抢救；第3、4小组将放出的血液快速输回，然后用生理盐水进行抢救，并静脉推注去甲肾上腺素（缩血管类药物）；第5、6小组将放出的血液快速输回，然后用生理盐水进行抢救，并静脉推注阿托品（扩血管类药物）。

失血性休克及其抢救1实验目的复制兔失血性休克模型。

观察兔在失血性休克时的表现，探讨失血性休克的发生机制。

了解失血性休克的抢救。

2实验材料家兔、兔台、氨基甲酸乙酯、RM6240微机生物信号采集处理系统、血压换能器、止血钳、玻璃分针、棉线、剪刀、注射器、插管、生理盐水、肝素。

3实验方法3．1系统连接3．2手术准备3．3麻醉手术家兔称重，按5ml/Kg体重剂量于耳缘静脉缓慢注射200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。

将麻醉的家兔仰卧位固定在兔台上。

行左侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管术。

输液瓶充灌一定量的生理盐水，静脉插管接输液装置，调节输液量至5-6滴/min。

3．4 50ml的注射器进行肝素化3．5复制失血性休克模型（1）少量放血放血至60mmHg，观察5min的心率、血压变化。

（2）大量放血放血至40mmHg，观察20min的心率、血压变化。

（3）失血性休克抢救将注射器内的血液从颈外静脉输回原血。

输血后，观察血压变化。

然后再输入生理盐水（60滴/min以上），直至血压恢复正常。

3．6实验观察（1）观察放血前家兔的血压、心率。

（2）观察少量放血时的5min内血压。

（3）观察大量放血时的20min内血压。

（4）观察输血、输液后血压。

4实验结果本组实验结果数据收缩压舒张压平均压脉压差心率少量放血74.00±0.54 58.73±1.39 62.07±2.49 17.65±2.12 142.33±84.48 大量放血35.66±2.04 21.94±2.17 24.21±0.41 11.67±1.30 232.00±18.25 输血84.19±7.11 59.95±5.62 67.06±6.35 29.24±5.83 189.17±20.08在少量放血之后，血压迅速下降，但在代偿作用下，血压缓慢升高；大量放血之后，血压也迅速下降，但在机体作用下，血压缓慢略有升高；输血过程中，血压持续升高，输血结束后，血压基本与正常是血压相一致。

实验失血性休克前言：这次实验课的内容是休克。

首先，我们来简单复习一下休克的基本内容。

首先要知道什麽是休克？休克就是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。

我们今天实验课复制的家兔休克模型是属于失血性休克。

休克发生的机制是什麽呢？目前公认的是微循环障碍学说，根据休克过程中微循环的改变，把休克分为三期：休克早期（微循环缺血期、缺血性缺氧期）；休克期（微循环淤血期、淤血性缺氧期）；休克晚期（DIC或多器官功能衰竭）。

同学们在实验过程中要思考一下我们复制的休克模型处在哪一期？除了观察血压以外，你能不能提出一些观测的指标，来说明家兔处在休克的哪一期？不管是哪一种类型的休克，到了休克期，都存在有效循环血容量的严重不足和微循环功能的障碍，而且这两者可以相互促进，形成恶性循环。

所以在抢救休克时，首先要扩充血容量，在此基础上改善微循环的状态。

主要措施包括：充分补充血容量和适当选用血管活性药物。

在这次实验里，扩容的方法是：回输血液和生理盐水；观察了两种血管活性药物：多巴胺（普萘洛尔）和阿拉明（间羟胺）。

同学们回忆一下这两种药物各自属于哪一类的受体激动剂，用于抢救休克的机理是什麽？实验目的：1.学会复制失血性休克的模型；2.了解抢救休克时扩容及应用血管活性药物的意义。

实验步骤：1.称重：2.固定：背位交叉固定先用塑料绳系4个活扣，分别套在家兔的四肢上，上肢套在腕关节以上，下肢套在踝关节以上。

2个同学，1个抓住两上肢，1个抓住两下肢，把兔子翻过来，使它腹面朝上，先把下肢固定在兔台底端的金属框上，再把捆绑两前肢的塑料绳在背位交叉后分别压住对侧的前肢，然后固定在兔台两侧的金属框上，最后用兔头固定器固定头部，适当调整一下固定器的高度，使家兔的颈部保持平直，有利于手术操作。

以下步骤中，3、4、5步是同时进行的。

3.剪毛：手术部位是颈部和一侧腹股沟，把这两个部位的毛剪干净。

失血性休克实验实验性失血性休克【目的】了解失血性休克动物模型的复制方法；观察失血性休克时的主要体征及血流动力学变化特点；探讨失血性休克的发病机理及救治措施。

【原理】根据微循环学说，休克定义为各种原因引起有效循环血量减少，微循环灌流障碍，引起重要生命器官血液灌注不足，从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。

休克的病因有多种，本实验采用颈动脉放血的方法，直接减少有效循环血量，复制低血容量性休克模型。

由于放血一定程度后可使循环血量不足，静脉回心血量减少，血压下降，通过压力感受器反射，引起交感神经兴奋，外周血管收缩，组织灌流量急剧减少，导致失血性休克。

通过输液，补充血容量，抢救休克，同时使用不同血管活性药物，比较其疗效，分析它们在失血性休克治疗中的作用。

【器材】BL-420生物机能实验系统，压力换能器两套，张力换能器一套，动物实验手术器械一套，静脉输液装置一套，尿量测定装置一套，10ml量筒一个，注射器（2ml、5ml、10ml、30ml），兔台，婴儿秤。

【药品】20%乌拉坦溶液，0.9%生理盐水，1%肝素生理盐水，1%去甲基肾上腺素，10%葡萄糖水注射液。

【动物】家兔。

【观察指标】动脉血压（Bp，mmHg）、中心静脉压（CVP ，mmHg）、呼吸（频率、深度）、尿量。

【方法】1.手术操作(1)家兔称重后，腹腔注射20%乌拉坦(5ml/kg)进行麻醉，将动物仰卧固定在实验台上，颈部和腹部剪毛备皮；(2)从甲状软骨至胸骨切迹之间切开颈部正中皮肤，切口长度约5cm；(3)翻开右侧皮肤，见颜色暗红且较粗大的颈外静脉。

由于静脉血管壁很薄且不易与筋膜区分，应使用血管钳沿血管走行方向小心钝性分离，将血管外层筋膜分离干净。

分离出约2～3cm左右的右侧颈外静脉后，穿双线备用。

(4)在气管左侧胸骨舌骨肌和胸锁乳突肌之间钝性分离，其深层即可见颈动脉鞘，触之有明显搏动感。

以血管钳仔细分离出左侧颈总动脉(注意：勿损伤迷走神经)，穿双线备用(图 1 )。