2020年(生物科技行业)分子生物学检验技术实验指导

  • 格式:doc
  • 大小:1.01 MB
  • 文档页数:12

下载文档原格式

  / 12
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

(生物科技行业)分子生物学检验技术实验指

实验壹小鼠肝组织DNA的提取及鉴定

【实验目的】

1、掌握动物组织DNA提取的方法;

2、掌握紫外分光光度法检测、鉴定DNA浓度和纯度的方法。

【实验原理】

获得相当纯度和完整性的基因组DNA,可用于DNA酶切图谱、多态性分析、基因诊断、构建基因组文库等。因此,DNA样品质量的好坏将直接关系到实验的成败。较理想的DNA样品应达到以下三点要求:①不应存在对酶有抑制作用的有机溶剂和过高浓度的金属离子;②最大程度地降低蛋白质、多糖和脂类分子的污染;

③排除RNA分子的污染和干扰。

DNA以核蛋白形式存在于细胞中,提取DNA的原则是即要将DNA和蛋白质、脂类和糖类等成分分离,又要保持DNA分子的完整。本实验中,用阴离子去垢剂十二烷基磺酸钠(SDS)消化破裂细胞膜、核膜,且使组织蛋白变性沉淀,DNA 从核蛋白中游离分开;为控制组织中脱氧核糖核酸酶(DNase)对DNA的降解,加入柠檬酸钠或乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Na2)以除去激动该酶的金属离子,SDS也能使DNase变性失活;蛋白酶K可水解蛋白质,消化DNA酶;分离后的DNA用饱和酚/氯仿抽提除去蛋白质,接着用氯仿抽提以除去DNA溶液中微量酚的污染;最后用无水乙醇沉淀DNA,得到欲提取的基因组DNA。

260nm处DNA有最大吸收峰,测DNA的A260,可计算其浓度。而蛋白质在280nm处有最大吸收峰,可测定A260nm/A280nm比值,检测DNA的纯度,该比值介于1.8~2.0之间。

【实验器材和试剂】

1、动物

小白鼠

2、设备

移液器、台式离心机、水浴箱、陶瓷研钵等;751紫外分光光度计、石英比色皿、洗瓶、滤纸等。

3、试剂

(1)基因组DNA提取试剂盒(北京康为世纪生物科技X公司):包括BufferCL、

BufferPP、BufferGE、RNaseA、ProteinaseK

(7)生理盐水,4℃贮存

(8)无水乙醇、70%乙醇

【操作步骤】

1、制备肝匀浆

迅速处死小白鼠,称取新鲜肝脏组织50mg,用预冷生理盐水洗去血液,滤纸吸干后剪碎组织,将剪碎组织放于组织匀浆器或研钵中研磨,同时加入300μl BufferCL。将肝匀浆液放入EP管,加入1.5μl蛋白酶K,漩涡震荡10s,55℃孵育直到组织溶解(约1小时)。

2、提取DNA

(1)加入1.5μl RNaseA,颠倒混匀,37℃孵育15-60min。

(2)冰上孵育1分钟使样品迅速冷却。

(3)加入1/3体积的BufferPP,涡旋震荡20s,12000rpm离心3min。

(4)将上清转移到—个新的离心管中,加入等体积异丙醇,轻轻颠倒混匀,可见絮状沉淀(纤维状DNA)从溶液中析出。12000rpm离心1min,弃上清。

(5)加入300μl70%乙醇,颠倒数次以洗涤DNA沉淀。12000rpm离心1min,弃上清,室温干燥15min。

(6)加入50μlBufferGE溶解DNA(如果DNA的量比较大,能够65℃孵育以促进DNA的溶解),室温保存待测。

3、DNA浓度和纯度的测定

取0.1mlDNA样品,加蒸馏水至1ml,在751紫外分光光度计上测A260值和A280值。

计算:DNA浓度(μg/ml)=A260×50×10(请问系数50、10是如何得来的?)DNA纯度=A260nm/A280nm

【注意事项】

(1)由于DNA主要存在于细胞核内,为便于提取DNA,肝脏的破碎要严格控制好。即要尽可能的将细胞膜破碎,又要尽可能多保留完整的细胞核,以保留60~70%的完整细胞核为宜。为避免DNA过度断裂,不宜用电动研磨器制备匀浆。

在提取过程中,染色体会发生机械断裂,产生大小不同的片段,因此分离基因

组DNA时应尽量在温和的条件下操作,如尽量减少酚/氯仿抽提,混匀过程要轻缓,以保证得到较长的DNA。

(2)用氯仿除去组织蛋白,要不断振荡使蛋白质变性。如要得到高纯度DNA,可加入蛋白酶K降解蛋白质。

(3)酚和氯仿均有很强的腐蚀性,操作时应避免接触皮肤。

(4)室温下干燥时尽可能使残留的乙醇挥发掉(DNA中残留的乙醇会影响内切酶的活性或电泳时DNA不下沉),但不要让DNA完全干燥,否则极难溶解,DNA溶解过程通常需要12-24hr。

(5)提取过程应尽量保持低温。

(6)在波长260nm紫外线下,1OD的光密度值相当于双链DNA浓度为50μg/ml;单链DNA或RNA为40μg/ml;单链寡核苷酸为20μg/ml。据此来计算核酸样品的浓度。紫外分光光度法只用于测定浓度>0.25μg/ml的核酸溶液。

(7)A260nm/A280nm比值应介于1.8~2.0之间,若比值>2表示DNA样品中含有较多的RNA,如比值<1.8表明样品中有蛋白质污染。应根据后续实验要求,采取不同的方法纯化。当然也会出现DNA溶液中既含蛋白质又含RNA,其比值介于1.8~2.0的情况,所以有必要结合凝胶电泳等方法鉴定有无RNA,或用测定蛋白质的方法检测是否存在蛋白质。

【结果】

1、A260= ,A280= 。

2、小鼠肝组织中DNA浓度是μg/ml。

3、小鼠肝组织中DNA的A260nm/A280nm比值是。

【思考题】

1、提取和纯化的真核组织DNA有何用途?

2、你的A260nm/A280nm比值结果是否介于1.8~2.0之间?有何意义?

3、请结合你的实验结果和操作步骤,分析如何检测和保证DNA的质量?

实验二聚合酶链反应

【实验目的】

采用聚合酶链式反应技术扩增小鼠肝组织平滑肌收缩蛋白(SM22α)基因

【实验原理】

聚合酶链式反应(polymerasechainreaction,PCR)用于体外扩增位于俩段已知序列之间的DNA区段(靶序列)。其原理是通过耐热DNA聚合酶催化的DNA 合成反应达到对靶序列的扩增。反应中使用俩条化学合成的寡核苷酸作为引物,分别和模板DNA俩条单链互补,待扩增序列片段位于俩条引物之问。PCR扩增包括3个步骤,即变性、退火和延伸。反应需要模板、引物、DNA聚合酶和脱氧核糖三磷酸(dNTP)等的参和。反应混合液被加热以使模板DNA双链变性成为二条单链,随后将反应混合液冷却至引物的熔点温度(Tm)以下,使引物能和靶序列形成杂交双链(退火)。当温度升至72℃左右时,反应体系中的DNA聚合酶按照模板链的序列以碱基互补方式依次把dNTP加至引物的3’端,使互补链从5‘向3’方向不断延伸,直至形成新的DNA双链。通过变性、退火和延伸的壹个循环能够使靶序列的分子拷贝数增加壹倍。由于每次扩增的产物又作为下壹次扩增的模板,因此反应产物的量以指数形式增长,壹个分子的模板经过n个循环可得2n个分子拷贝产物。

本实验扩增的是小鼠肝组织平滑肌收缩蛋白(SM22α)基因,扩增产物片段大小为541bp。扩增所用的上游引物序列为:5’-AGTTATATTAATTTTGCATAGTGCCTGGTTG-3’,下游引物序列为:5’-GCGCTAGCTACAAGGCTTGGTCGTTTG-3’。

【实验器材和试剂】

1、设备

PCR仪、0.2mlPCR反应管、1.5ml离心管、移液器、吸嘴、旋涡混合器。

2、试剂(20μl体系)

PCR试剂盒(北京康为世纪生物科技X公司)

【操作步骤】

1、分别在PCR反应管中加入2×PCRmix10μl、上游和下游引物各2μl、

DNA2μl和H2O4μl。

2、把PCR反应管放人PCR仪,按仪器操作要求启动扩增程序。本实验的扩

增程序为:94℃预变性5分钟后进入循环扩增,即94℃变性30s,58℃

退火30s,72℃延伸1min。重复35个循环后,于72℃再延伸10min,

最后4℃保温。