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百合属植物资源的保存与开发利用一、我国百合属植物资源概况1．中国是百合属植物自然分布中心全世界百合属植物约100种，其中中国原产43种以上，种类丰富，特有种多。
北起黑龙江有毛百合，西至新疆有新疆百合，东南至台湾有台湾百合，其中如野百合、岷江百合、宜昌百合、通江百合、渥丹、紫花百合、玫红百合、蒜头百合、大理百合、湖北百合、南川百合、宝兴百合、川百合、乳头百合、绿花百合、乡城百合等均为我国原产特有种，尤以西南和华中为多。
2．许多特有种分布范围广，生物多样性资源丰富广阔的分布区，千变万化的自然生境，为物种的多样性提供了有利的形成条件。
许多百合种在其分布区内自然变种与生态型很多，是重要的遗传育种亲本材料。
滇百合分布在云南西北部和四川西部，在分布区内就有自然变种4个。
野百合分布于河北、山西、河南、陕西、湖北、湖南、江西、安徽和浙江等地。
条叶百合产台湾、广东、山西、陕西和吉林，自然界有变种5个。
毛百合产于黑龙江、吉林、辽宁、内蒙古与河北等地。
国外利用它与L．maculatum 杂交获得的杂种系，产生了许多优良的花坛用与切花用杂种系，有些品种还具有耐轻石灰质土壤的适应性。
川百合产云南、四川、陕西、甘肃、河南、山西和湖北，现已广泛栽培。
除我国食用变种兰州百合与威氏百合外，本种在栽培条件下，经自然杂交或实生苗优选，培育出一些栽培品种，如…伯奈女士‟、…大花川‟、…夏洛蒂皇后‟等。
湖北百合产湖北、江西和贵州。
本种与野百合、淡黄花百合、紫脊百合、鹿子百合、通江百合等种杂交，获得了许多美丽的著名杂交种。
例如，至今盛名不衰的…黑美人‟，即它与鹿子百合的杂种。
卷丹是我国百合属中分布最广，适应性最强的自然3倍体，用一些亚洲百合种授粉，都有种间亲和性。
例如至今在切花栽培中仍负盛名的…魅丽‟与…康涅狄格王子‟均由卷丹、毛百合与荷兰杂种百合等杂交获得的中世纪杂种系中的品种。
小百合产我国西藏南部和东南部，云南西北部和西部，四川西部，尼泊尔、锡金、不丹也有。
黄山百合科野生药用植物资源及其利用
方建新;汪立祥
【期刊名称】《资源开发与市场》
【年(卷),期】2007(023)007
【摘要】论述了安徽省黄山市分布的百合科野生药用植物的种质资源、地理分布、药用部位,为进一步开发利用提供依据.
【总页数】3页(P614-615,655)
【作者】方建新;汪立祥
【作者单位】黄山学院,生命与环境学院,安徽,黄山,245041;黄山学院,生命与环境学院,安徽,黄山,245041
【正文语种】中文
【中图分类】Q949.71+8.230.8
【相关文献】
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江苏农业学报(ＪｉａｎｇｓｕＪ.ｏｆＡｇｒ.Ｓｃｉ.)ꎬ２０２２ꎬ３８(４):１０７８￣１０８４ｈｔｔｐ://ｊｓｎｙｘｂ.ｊａａｓ.ａｃ.ｃｎ张铭芳ꎬ李㊀卉ꎬ韩东洋ꎬ等.不同百合种质资源对灰霉病的抗性[Ｊ].江苏农业学报ꎬ２０２２ꎬ３８(４):１０７８￣１０８４.ｄｏｉ:１０.３９６９/ｊ.ｉｓｓｎ.１０００￣４４４０.２０２２.０４.０２６不同百合种质资源对灰霉病的抗性张铭芳１ꎬ㊀李㊀卉２ꎬ㊀韩东洋１ꎬ㊀杜运鹏１ꎬ㊀薛㊀静１ꎬ㊀高俊莲１ꎬ㊀张秀海１(１.北京市农林科学院草业花卉与景观生态研究所ꎬ农业农村部华北都市农业重点实验室ꎬ北京１０００９７ꎻ２.北京林业大学园林学院ꎬ北京１０００８３)收稿日期:２０２１￣１２￣０７基金项目:北京市农林科学院科技创新能力建设专项(ＫＪＣＸ２０２￣００１０３)ꎻ国家重点研发计划项目(２０２０ＹＦＤ１０００４００)ꎻ北京市农林科学院青年基金项目(ＱＮＪＪ２０１９１０)作者简介:张铭芳(１９８７－)ꎬ女ꎬ湖南溆浦人ꎬ博士ꎬ助理研究员ꎬ主要从事百合分子育种研究ꎮ(Ｅ￣ｍａｉｌ)ｑｉｏｋｉ１９８７＠１６３.ｃｏｍ通讯作者:张秀海ꎬ(Ｅ￣ｍａｉｌ)ｚｈａｎｇｘｉｕｈａｉ＠ｂａａｆｓ.ｎｅｔ.ｃｎ㊀㊀摘要:㊀灰霉病是百合的主要病害之一ꎬ严重影响百合生产ꎬ筛选高抗种质资源是百合抗病育种的重要途径之一ꎮ本研究对不同百合种质资源叶片进行离体接种ꎬ结合扫描电镜观察ꎬ并进行活性氧㊁相关酶活性的测定ꎮ结果表明ꎬ卷丹百合属于高感(ＨＳ)种质ꎬ岷江百合￣１㊁岷江百合￣２㊁杂交种２０６５￣１属于中抗(Ｒ)种质ꎬ宜昌百合㊁湖北百合㊁ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓ㊁雷林石㊁ＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓ㊁红唇㊁杂交种２０６５￣２２属于高抗(ＨＲ)种质ꎮ接种灰霉菌后ꎬ高抗种质湖北百合叶片中过氧化氢含量变化更为剧烈ꎬ同时超氧阴离子含量会出现２次峰值ꎬ而高感种质卷丹百合则只有１次峰值ꎮ接种灰霉菌后ꎬ百合叶片中超氧化物歧化酶(ＳＯＤ)活性与百合抗病性具有相关性ꎮ关键词:㊀百合ꎻ灰霉菌ꎻ抗病性ꎻ活性氧ꎻ防御酶中图分类号:㊀Ｓ６８２.２㊀㊀㊀文献标识码:㊀Ａ㊀㊀㊀文章编号:㊀１０００￣４４４０(２０２２)０４￣１０７８￣０７ＲｅｓｉｓｔａｎｃｅｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓｔｏＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａＺＨＡＮＧＭｉｎｇ￣ｆａｎｇ１ꎬ㊀ＬＩＨｕｉ２ꎬ㊀ＨＡＮＤｏｎｇ￣ｙａｎｇ１ꎬ㊀ＤＵＹｕｎ￣ｐｅｎｇ１ꎬ㊀ＸＵＥＪｉｎｇ１ꎬ㊀ＧＡＯＪｕｎ￣ｌｉａｎ１ꎬ㊀ＺＨＡＮＧＸｉｕ￣ｈａｉ１(１.ＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＧｒａｓｓｌａｎｄꎬＦｌｏｗｅｒｓａｎｄＥｃｏｌｏｇｙꎬＢｅｉｊｉｎｇＡｃａｄｅｍｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅａｎｄＦｏｒｅｓｔｒｙＳｃｉｅｎｃｅｓꎬＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＵｒｂａｎＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ(ＮｏｒｔｈＣｈｉ￣ｎａ)ꎬＭｉｎｉｓｔｒｙｏｆＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅａｎｄＲｕｒａｌＡｆｆａｉｒｓꎬＢｅｉｊｉｎｇ１０００９７ꎬＣｈｉｎａꎻ２.ＳｃｈｏｏｌｏｆＬａｎｄｓｃａｐｅＡｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅꎬＢｅｉｊｉｎｇＦｏｒｅｓｔｒｙＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬＢｅｉｊｉｎｇ１０００８３ꎬＣｈｉｎａ)㊀㊀Ａｂｓｔｒａｃｔ:㊀Ｇｒｅｙｍｏｌｄｉｓｏｎｅｏｆｔｈｅｍａｉｎｄｉｓｅａｓｅｓｏｆｌｉｌｙꎬｗｈｉｃｈｓｅｒｉｏｕｓｌｙａｆｆｅｃｔｓｌｉｌｙｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ.Ｔｈｕｓꎬｓｃｒｅｅｎｉｎｇｏｆｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｉｓａｎｉｍｐｏｒｔａｎｔａｓｐｅｃｔｏｆｌｉｌｙｄｉｓｅａｓｅ￣ｒｅｓｉｓｔａｎｔｂｒｅｅｄｉｎｇ.Ｉｎｔｈｉｓｓｔｕｄｙꎬｔｈｅｌｅａｖｅｓｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓｗｅｒｅｉｎｏｃｕｌａｔｅｄｉｎｖｉｔｒｏꎬｌｅａｆｓｔｒｕｃｔｕｒｅａｎｄｃｏｎｉｄｉａｇｒｏｗｔｈｃｏｎｄｉｔｉｏｎｗｅｒｅｏｂｓｅｒｖｅｄｔｈｒｏｕｇｈｓｃａｎ￣ｎｉｎｇｅｌｅｃｔｒｏｎｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙꎬａｎｄｒｅａｃｔｉｖｅｏｘｙｇｅｎｓｐｅｃｉｅｓ(ＲＯＳ)ａｎｄｔｈｅｒｅｌａｔｅｄｅｎｚｙｍｅａｃｔｉｖｉｔｉｅｓｗｅｒｅｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ.Ｔｈｅｒｅ￣ｓｕｌｔｓｉｎｄｉｃａｔｅｄｔｈａｔＬｉｌｉｕｍｌａｎｃｉｆｏｌｉｕｍｂｅｌｏｎｇｅｄｔｏｔｈｅｈｉｇｈ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ(ＨＳ)ｇｅｒｍｐｌａｓｍ.Ｌｉｌｉｕｍｒｅｇａｌｅ￣１ꎬＬｉｌｉｕｍｒｅｇａｌｅ￣２ａｎｄｔｈｅｈｙｂｒｉｄ２０６５￣１ｂｅｌｏｎｇｅｄｔｏｔｈｅｍｉｄｄｌｅｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ(Ｒ)ｇｅｒｍｐｌａｓｍｓ.ＬｉｌｉｕｍｌｅｕｃａｎｔｈｕｍꎬＬｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉꎬＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓꎬＬｅｌｌｉｎＳｔｏｎｅꎬＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓꎬＲｅｄＬｉｐｓꎬｈｙｂｒｉｄ２０６５￣２２ｂｅｌｏｎｇｅｄｔｏｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ(ＨＲ)ｇｅｒｍｐｌａｓｍｓ.ＡｆｔｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａꎬｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｏｆＨ２Ｏ２ｉｎｌｅａｖｅｓｏｆｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｔｇｅｒｍｐｌａｓｍＬｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉｃｈａｎｇｅｄｄｒａ￣ｍａｔｉｃａｌｌｙꎬａｎｄｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｏｆｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅａｎｉｏｎｓｈｏｗｅｄｔｗｏｐｅａｋｓꎬｗｈｉｌｅｏｎｌｙｏｎｅｐｅａｋｗａｓｆｏｕｎｄｉｎＬｉｌｉｕｍｌａｎｃｉｆｏｌｉｕｍ.Ａｆ￣ｔｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａꎬｔｈｅａｃｔｉｖｉｔｙｏｆｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅｄｉｓｍｕｔａｓｅ(ＳＯＤ)ｉｎｌｉｌｙｌｅａｖｅｓｗａｓｃｏｒｒｅｌａｔｅｄｗｉｔｈｔｈｅｄｉｓ￣ｅａｓｅｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ.Ｋｅｙｗｏｒｄｓ:㊀Ｌｉｌｉｕｍｓｐｐ.ꎻＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａꎻｄｉｓｅａｓｅｒｅｓｉｓｔａｎｃｅꎻｒｅａｃｔｉｖｅｏｘｙｇｅｎｓｐｅｃｉｅｓ(ＲＯＳ)ꎻｄｅｆｅｎｓｅｅｎ￣ｚｙｍｅ㊀㊀百合(Ｌｉｌｉｕｍｓｐｐ.)属于百合科(Ｌｉｌｉａｃｅａｅ)百合属(Ｌｉｌｉｕｍ)ꎬ为多年生球根花卉ꎬ具有重要的观赏㊁８７０１食用㊁药用价值[１]ꎮ然而ꎬ在百合的栽培过程中均容易发生病害[２]ꎮ其中ꎬ灰霉病是百合的主要病害之一ꎬ百合感染灰霉病后主要危害叶片ꎬ也会危害花蕾㊁芽ꎮ初期在叶片形成椭圆形斑块ꎬ后期布满浅褐色灰霉状物ꎬ使叶片腐烂ꎬ花朵腐烂凋萎ꎮ灰霉病会造成百合年产量损失２０％~３０％ꎬ严重流行时可造成失收[３]ꎮ然而ꎬ目前针对百合不同种质资源的灰霉病抗性评价系统在灰霉病抗性育种方面的利用还较少ꎮ灰霉病主要是由半知菌葡萄孢属菌侵染所引起的一类植物病害的总称ꎬ其中灰葡萄孢(Ｂｏｔｒｙｔｉｓｃｉ￣ｎｅｒｅａ)危害最大ꎬ寄主范围最广ꎮ对于不同百合品种灰霉病抗性的鉴定ꎬ一般采用离体叶片菌丝块接种法和田间孢子喷雾法２种方法ꎬ统计相对病情指数ꎬ采用相对抗病性方法将百合对于灰霉病的抗性分为免疫㊁高抗㊁中抗㊁中感㊁高感５个等级[４￣５]ꎮ灰霉菌能够引起寄主程序性细胞死亡[６]ꎬ具有复杂的代谢系统ꎬ可产生毒素[７]㊁细胞壁降解酶㊁脱落酸[８]㊁多糖[９]㊁漆酶[１０]等多种代谢产物ꎮ活性氧(ＲＯＳ)是植物体内正常代谢的信号小分子ꎬ具有很强的氧化能力ꎬ参与植物和细胞内的分子㊁生化㊁生理反应ꎬ在植物的防卫反应和细胞程序性死亡过程中具有重要作用ꎮ植物叶片中的超氧化物歧化酶(ＳＯＤ)㊁过氧化氢酶(ＣＡＴ)与植物抗病性有紧密的联系ꎬ被认为是植物抗病反应中的关键性酶ꎮ因此ꎬ本研究拟对不同百合种质资源的灰霉病抗性进行系统评价ꎬ并结合形态学观察㊁ＲＯＳ及酶活性测定ꎬ探讨其生理生化方面的抗病机制ꎬ以期为培育高抗病百合新优种质奠定基础ꎮ１㊀材料与方法１.１㊀试验材料本研究的试验材料为１１份百合种质资源(表１)ꎮ品种的种球从荷兰进口ꎬ野生种采集于中国百合不同分布区ꎬ种植于北京市农林科学院温室ꎬ给予适宜的日常养护管理ꎮ１.２㊀百合叶片表面结构及病原菌生长进程电镜观察㊀㊀选取健康的百合叶片ꎬ在扫描电镜下观察叶片正面㊁背面的细胞形态㊁气孔密度以及气孔大小ꎮ购买灰葡萄孢(Ｂｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ)菌株(ＡＣＣＣ３７２６３)ꎬＰＤＡ(Ｐｏｔａｔｏｄｅｘｔｒｏｓｅａｇａｒ)培养基２８ħ活化培养ꎬ并在扫描电镜下观察病原菌不同生长时期的生长情况㊁菌丝结构㊁孢子形态以及孢子数量ꎮ表１㊀１１份百合种质资源Ｔａｂｌｅ１㊀Ｅｌｅｖｅｎｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓ序号种质㊀㊀㊀㊀拉丁名㊀㊀㊀㊀㊀类型种源地１岷江百合￣１Ｌｉｌｉｕｍｒｅｇａｌｅ￣１野生种四川２岷江百合￣２Ｌｉｌｉｕｍｒｅｇａｌｅ￣２野生种云南３湖北百合Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ野生种四川４宜昌百合Ｌｉｌｉｕｍｌｅｕｃａｎｔｈｕｍ野生种四川５卷丹百合Ｌｉｌｉｕｍｌａｎｃｉｆｏｌｉｕｍ野生种湖南６红唇Ｌｉｌｉｕｍ Ｒｅｄｌｉｐ 品种荷兰７ＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓＬｉｌｉｕｍ ＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓ 品种荷兰８ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓＬｉｌｉｕｍ ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓ 品种荷兰９雷林石Ｌｉｌｉｕｍ ＬｅｌｌｉｎＳｔｏｎｅ 品种荷兰１０２０６５￣１Ｌｉｌｉｕｍ ２０６５￣１ 杂种单株自育杂种１１２０６５￣２２Ｌｉｌｉｕｍ ２０６５￣２２ 杂种单株自育杂种１.３㊀不同百合种质资源的灰霉病抗病性鉴定本研究采用叶片离体接种的方法来鉴定不同百合种质资源对于灰霉病的抗病性ꎮ选取百合植株中部㊁上部健康叶片ꎬ将活化后菌板用５ｍｍ的打孔器打成菌块ꎬ分别接种在叶片背面ꎬ放置在相对湿度为９０％以上的恒温培养箱中培养ꎬ对照组为不接种ꎮ统计不同百合种质资源的发病情况ꎬ并对百合灰霉病进行分级[１１]ꎬ具体标准见表２及表３ꎮ病斑率＝病斑面积叶片面积ˑ１００％病情指数＝ð(各级病叶数ˑ各级代表值)调查总叶数ˑ最高级代表值ˑ１００％表２㊀百合灰霉病叶部病斑分级标准Ｔａｂｌｅ２㊀ＧｒａｄｅｓｔａｎｄａｒｄｆｏｒｌｅａｆｐａｔｃｈｅｓｏｆｌｉｌｙｉｎｆｅｃｔｅｄｗｉｔｈＢｏｔｒｙ￣ｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ病级数分级标准㊀㊀㊀㊀㊀㊀０无病斑１病斑较少ꎬ病斑率<５％３病斑较少ꎬ病斑率为６％~１５％５病斑较多ꎬ病斑率为１６％~２５％７病斑较多ꎬ病斑率为２６％~５０％９病斑很多或融合成大斑ꎬ病斑率>５０％９７０１张铭芳等:不同百合种质资源对灰霉病的抗性表３㊀百合抗灰霉病抗性水平分级标准Ｔａｂｌｅ３㊀Ｇｒａｄｉｎｇｓｔａｎｄａｒｄｆｏｒｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｌｅｖｅｌｏｆｌｉｌｙｔｏｇｒｅｙｍｏｌｄ(Ｂｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ)抗性水平㊀㊀㊀㊀病情指数㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀高抗(ＨＲ)病情指数ɤ３０％中抗(Ｒ)病情指数３１％~６０％中感(Ｓ)病情指数６１％~８０％高感(ＨＳ)病情指数８１％~１００％１.４㊀过氧化氢(Ｈ２Ｏ２)㊁超氧阴离子(Ｏ２ －)含量的测定㊀㊀选择高抗(ＨＲ)㊁高感(ＨＳ)材料ꎬ在百合叶片表面喷洒浓度为１ｍｌ５ˑ１０４个孢子的灰霉菌孢子液ꎬ对照组喷洒蒸馏水ꎮ扫描电镜下观察分生孢子在叶片上２ｈ㊁４ｈ㊁６ｈ㊁８ｈ㊁１２ｈ㊁２４ｈ㊁３６ｈ㊁４８ｈ㊁７２ｈ时的生长㊁侵染情况ꎬ并按照时间节点取材ꎬ液氮速冻后置于－８０ħ冰箱贮藏ꎬ用于后续试验ꎮ采用碘化钾分光光度法测定过氧化氢含量ꎮ先制作过氧化氢的标准曲线ꎮ然后在４ħ条件下ꎬ称取０ ２ｇ百合叶片ꎬ放入３ ０ｍｌ０ １％三氯乙醇溶液(ＴＣＡ)中ꎬ１２０００ｒ/ｍｉｎ离心１５ｍｉｎꎬ取０ ５ｍｌ上清液ꎬ与０ ５ｍｌ１０ｍｍｏｌ/Ｌ磷酸缓冲液(ＰＢＳꎬｐＨ＝７ ０)和１ ０ｍｌ的１ｍｏｌ/Ｌ碘化钾(ＫＩ)溶液混合ꎬ暗反应１ｈ后ꎬ在分光光度计３９０ｎｍ波长下检测ꎬ根据回归方程计算过氧化氢的含量[１２]ꎮ采用羟氨氧化法测定超氧阴离子含量ꎮ先制作超氧阴离子标准曲线ꎮ然后在４ħ条件下ꎬ称取０ ２ｇ百合叶片ꎬ与３ ０ｍｌ５０ｍｍｏｌ/ＬＰＢＳ(ｐＨ＝７ ８)混合ꎬ１２０００ｒ/ｍｉｎ离心１５ｍｉｎꎬ取１ ０ｍｌ的上清液ꎬ与０ ９ｍｌＰＢＳ和０ １ｍｌ１０ｍｍｏｌ/Ｌ盐酸羟胺混合ꎬ２５ħ条件下反应１ｈꎬ之后试管内按顺序分别加入１ ０ｍｌ１７ｍｍｏｌ/Ｌ对氨基苯磺酸以及１ ０ｍｌ１ｍｍｏｌ/Ｌα￣萘胺ꎬ在２５ħ条件下继续反应２０ｍｉｎꎬ最后在波长为５３０ｎｍ分光光度计下检测ꎬ根据回归方程计算其含量[１３]ꎮ１.５㊀超氧化物歧化酶(ＳＯＤ)㊁过氧化氢酶(ＣＡＴ)活性的测定㊀㊀在４ħ条件下称取０.５ｇ百合叶片ꎬ加入１０ｍｌｐＨ为７ ８的缓冲液(１ｍｍｏｌ/Ｌ乙二胺四乙酸ꎬ２ｍｍｏｌ/Ｌ盐酸羟胺和１％可溶聚乙烯吡咯烷酮的５０ｍｍｏｌ/ＬＰＢＳ)混合ꎬ１２０００ｒ/ｍｉｎ离心１５ｍｉｎꎬ上清液就是抗氧化酶的提取物ꎮ采用氯化硝基四氮唑蓝(ＮＢＴ)光还原法测定超氧化物歧化酶活性[１４]ꎬ通过２４０ｎｍ处由于过氧化氢分解而导致的吸光度降低来测定过氧化氢酶的活性[１５]ꎮ１.６㊀数据统计所有试验设３个重复ꎬ数据通过ＭｉｃｒｏｓｏｆｔＥｘｃｅｌ２０１０和ＳＰＳＳ软件进行统计分析ꎮ２㊀结果与分析２.１㊀叶片结构不同百合种质资源的叶片气孔(ˑ２５０显微镜下观察)及表面附属物观察结果(表４)显示ꎬ气孔密度最大的为卷丹百合ꎬ气孔密度最小的则是２０６５￣１ꎮ气孔最大的为２０６５￣１ꎬ气孔最小的是岷江百合￣１ꎮ表４㊀不同百合种质叶片气孔密度㊁大小及表面附属物对比Ｔａｂｌｅ４㊀Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｌｅａｆｓｔｏｍａｔａｌｄｅｎｓｉｔｙꎬｓｉｚｅａｎｄｓｕｒｆａｃｅａｐ￣ｐｅｎｄａｇｅｓａｍｏｎｇｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓ种质㊀㊀㊀气孔密度(个)气孔大小(μｍ)蜡质颗粒岷江百合￣１１０.５ʃ０.２ｅ５７６ʃ１５ａｂ分布在叶正面岷江百合￣２７.２ʃ０.１ｃｄ８８５ʃ６ｄ㊀无卷丹百合１２.６ʃ０.３ｆ７５０ʃ８ｂｃ㊀两面均有湖北百合６.４ʃ０.５ａｂ６５０ʃ８ａｂ两面均有宜昌百合７.６ʃ０.２ｃｄ７７０ʃ９ｂｃ两面均有雷林石６.４ʃ０.４ａｂ９２０ʃ２ｅ无红唇７.１ʃ０.２ｃ８８５ʃ１１ｄ无ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓ５.９ʃ０.１ｂｃ８６０ʃ８ｄ分布在叶正面ＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓ６.９ʃ０.３ｂｃ９６０ʃ７ｅ分布在叶正面２０６５￣１５.６ʃ０.３ｂ１０００ʃ１３ｆ㊀无２０６５￣２２９.１ʃ０.６ｅ６００ʃ１２ａｂ无㊀㊀部分百合叶片有蜡质层(图１)ꎬ但是蜡质颗粒的大小㊁数量㊁分布均不同ꎮ叶片存在蜡质层的有:湖北百合㊁宜昌百合㊁卷丹百合㊁岷江百合￣１㊁Ｃｒａ￣ｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓ㊁ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓꎮ其中湖北百合叶片的蜡质颗粒最多ꎬ叶正面以及叶背面均有分布ꎮ宜昌百合叶背面的蜡质颗粒分布少ꎬ主要集中在气孔周围ꎬ而岷江百合￣１㊁ＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓ㊁ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓ的蜡质颗粒只分布在叶正面ꎬ叶背面并未发现蜡质颗粒(图２)ꎮ２.２㊀百合种质资源的抗病性离体接种后ꎬ划分不同百合种质资源的抗病性等级(图３)ꎬ统计结果如表５显示ꎮ野生种卷丹百０８０１江苏农业学报㊀２０２２年第３８卷第４期ａ:湖北百合叶面ꎻｂ:卷丹百合叶面ꎮ图１㊀不同百合种质叶片表面结构对比Ｆｉｇ.１㊀Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｌｅａｆｓｕｒｆａｃｅｓｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓａ:宜昌百合叶背面ꎻｂ:岷江百合￣１叶背面ꎮ图２㊀不同百合种质叶背面气孔周围蜡质颗粒分布对比Ｆｉｇ.２㊀Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｗａｘｐａｒｔｉｃｌｅｓｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎａｒｏｕｎｄｓｔｏｍａｂｅｔｗｅｅｎｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓ合属于高感(ＨＳ)种质ꎻ野生种岷江百合￣１㊁岷江百合￣２㊁杂交种２０６５￣１属于中抗(Ｒ)种质ꎻ野生种宜昌百合㊁湖北百合㊁杂交种２０６５￣２２以及品种ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓ㊁雷林石㊁ＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓ㊁红唇属于高抗(ＨＲ)种质(图４)ꎮ其中ꎬ湖北百合抗性最强ꎬ卷丹百合抗性最弱ꎬ接种后第９ｄ时ꎬ叶片病情指数达到１００％ꎮ０~９为病级数ꎬ具体见表２ꎮ图３㊀百合灰霉病叶部病斑分级标准Ｆｉｇ.３㊀ＧｒａｄｅｓｔａｎｄａｒｄｆｏｒｌｅａｆｐａｔｃｈｅｓｏｆｌｉｌｙｉｎｆｅｃｔｅｄｗｉｔｈＢｏｔ￣ｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ２.３㊀灰霉菌孢子侵染百合叶片进程观察在扫描电镜下观察可见ꎬ孢子溶液喷洒后２ｈꎬ分生孢子已经开始萌发ꎬ最大能长至５００μｍꎬ整体呈棒状ꎮ１２ｈ时ꎬ部分分生孢子已经从侧面分生出第二条菌丝ꎬ但也有部分孢子停止生长ꎮ２４ｈ后ꎬ高抗百合叶片上留存的分生孢子数量较少ꎬ而高感百合叶片上留存的分生孢子数量较多ꎮ７２ｈ时ꎬ高抗㊁高感百合叶片上均产生新的分生孢子ꎮ随着接种时间的延长ꎬ湖北百合叶片上的孢子数量逐渐变少ꎬ且菌丝的生长速度明显慢于卷丹百合叶片上的菌丝(图５)ꎮＡ:ＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓꎻＢ:红唇ꎻＣ:湖北百合ꎻＤ:岷江百合￣２ꎻＥ:ＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓꎻＦ:宜昌百合ꎻＧ:岷江百合￣１ꎻＨ:２０６５￣２２ꎻＩ:２０６５￣１ꎻＪ:卷丹百合ꎻＫ:雷林石ꎮ图４㊀百合不同种质接种灰霉菌后的叶斑情况Ｆｉｇ.４㊀ＬｅａｆｐａｔｃｈｅｓｏｆｌｉｌｙａｆｔｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ表５㊀不同百合种质的抗病性Ｔａｂｌｅ５㊀Ｄｉｓｅａｓｅｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｏｆｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓ种质㊀㊀㊀㊀１５ｄ平均病斑率(％)病情指数(％)抗性等级岷江百合￣１９２.５ʃ０.７ｄ３５.８ʃ０.４ｃＲ岷江百合￣２１００.０ʃ０.２ｄ３３.３ʃ０.２ｃＲ宜昌百合１００.０ʃ０.５ｄ２０.５ʃ０.１ａＨＲ卷丹百合１００.０ʃ０.８ｄ１００.０ʃ０.８ｅＨＳ湖北百合７６.５ʃ０.８ｃ１８.５ʃ０.３ａＨＲ雷林石１３.８ʃ０.３ａ２７.２ʃ０.５ｂｃＨＲ２０６５￣１３２.０ʃ０.２ａｂ５５.６ʃ０.６ｄＲＣｈａｍｐｉｏｎＤｉａｍｏｎｄｓ６２.３ʃ０.８ｃ２３.５ʃ０.４ａｂＨＲ红唇３２.６ʃ０.６ａｂ２１.０ʃ０.３ａＨＲＣｒａｍｉｎｇＤｉａｍｏｎｄｓ３０.０ʃ０.１ａｂ２９.６ʃ０.９ｂｃＨＲ２０６５￣２２２２.８ʃ０.４ａ２９.６ʃ０.２ｂｃＨＲＨＳ:高感ꎻＲ:中抗ꎻＨＲ:高抗ꎮ２.４㊀高抗㊁高感百合叶片中过氧化氢(Ｈ２Ｏ２)㊁超氧阴离子(Ｏ２ －)含量的变化㊀㊀测定湖北百合㊁卷丹百合接种灰霉菌后叶片中过氧化氢含量ꎬ结果(图６)显示ꎬ与不接种灰霉菌对照组相比ꎬ接种灰霉菌试验组的反应更为迅速ꎬ接种１８０１张铭芳等:不同百合种质资源对灰霉病的抗性２ｈ时ꎬ试验组的过氧化氢含量就已经下降ꎬ而对照组则是在４ｈ时才开始下降ꎮ对比卷丹百合和湖北百合叶片内过氧化氢含量的变化趋势ꎬ发现湖北百合的波动较卷丹百合更为剧烈ꎬ而卷丹百合中会积累更多的过氧化氢ꎮａ:高抗种质湖北百合叶面ꎻｂ:高感种质卷丹百合叶面ꎮ图５㊀高抗㊁高感百合叶片上分生孢子萌发及菌丝生长情况对比Ｆｉｇ.５㊀Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｃｏｎｉｄｉａｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎａｎｄｍｙｃｅｌｉａｌｇｒｏｗｔｈｉｎｔｈｅｌｅａｖｅｓｏｆｌｉｌｙｗｉｔｈｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｃｅａｎｄｈｉｇｈｓｕｓｃｅｐ￣ｔｉｂｉｌｉｔｙｔｏＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ㊀㊀测定湖北百合㊁卷丹百合接种灰霉菌后叶片中超氧阴离子含量ꎬ结果(图７)显示ꎬ接种灰霉菌后ꎬ卷丹百合叶片中超氧阴离子的含量总体趋向减少ꎬ且波动剧烈ꎬ而湖北百合叶片中超氧阴离子的含量则总体趋向增多ꎮ从整体上看ꎬ与不接种灰霉菌对照组相比ꎬ接种灰霉菌试验组百合体内超氧阴离子含量变化与百合灰霉病的抗病性可能存在一定的相关性ꎮ与对照组相比ꎬ试验组的高抗种质湖北百合叶片中超氧阴离子含量在接种灰霉菌２４ｈ内ꎬ出现了２次峰值(接种后２ｈ㊁１２ｈ)ꎬ而高感种质卷丹百合叶片中超氧阴离子含量只出现１次峰值(接种后８ｈ)ꎮ接种２４ｈ后ꎬ随着时间的推移ꎬ超氧阴离子含量变化逐渐平缓ꎮ本研究结果与前人报道的研究结果[２０]类似ꎬ即抗病性强的植物体内活性氧含量会出现２次突增期ꎮａ:高抗种质湖北百合ꎻｂ:高感种质卷丹百合ꎮ试验组:接种灰霉菌ꎻ对照组:不接种灰霉菌ꎮ图６㊀接种灰霉菌后高抗㊁高感百合叶片中过氧化氢含量对比Ｆｉｇ.６㊀ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｈｙｄｒｏｇｅｎｐｅｒｏｘｉｄｅｃｏｎｔｅｎｔｂｅｔｗｅｅｎｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｔａｎｄｈｉｇｈｓｅｎｓｉｔｉｖｅｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓａｆｔｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉ￣ｎｅｒｅａａ:高抗种质湖北百合ꎻｂ:高感种质卷丹百合ꎮ试验组:接种灰霉菌ꎻ对照组:不接种灰霉菌ꎮ图７㊀接种灰霉菌后高抗㊁高感百合叶片中超氧阴离子含量对比Ｆｉｇ.７㊀ＣｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆＯ２ －ｃｏｎｔｅｎｔｂｅｔｗｅｅｎｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｔａｎｄｈｉｇｈｓｅｎｓｉｔｉｖｅｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓａｆｔｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ２.５㊀高感㊁高抗百合叶片中抗氧化酶活性的变化㊀㊀测定湖北百合㊁卷丹百合接种灰霉菌后叶片中超氧化物歧化酶(ＳＯＤ)活性ꎬ结果(图８)表明ꎬ从叶片中超氧化物歧化酶活性的变化趋势上看ꎬ卷丹百合接种灰霉菌试验组与不接种灰霉菌对照组大致相同ꎬ湖北百合的对照组与试验组则有明显的差别ꎬ对２８０１江苏农业学报㊀２０２２年第３８卷第４期照组整体变化趋势平缓ꎬ而试验组则出现了明显变化ꎬ在接种后２ｈ时超氧化物歧化酶活性明显降低ꎬ在２４ｈ后超氧化物歧化酶活性持续变强ꎬ而卷丹百合中并未出现这种现象ꎮ测定湖北百合及卷丹百合接种灰霉菌后叶片中过氧化氢酶(ＣＡＴ)活性ꎬ结果(图９)表明ꎬ湖北百合不接种灰霉菌对照组无明显变化ꎬ接种灰霉菌试验组略有波动ꎬ但与对照组未产生显著差异ꎻ卷丹百合叶片中ＣＡＴ活性变化趋势与湖北百合类似ꎮａ:高抗种质湖北百合ꎻｂ:高感种质卷丹百合ꎮ试验组:接种灰霉菌ꎻ对照组:不接种灰霉菌ꎮ图８㊀接种灰霉菌后高抗㊁高感百合种质叶片中超氧化物歧化酶(ＳＯＤ)活性对比Ｆｉｇ.８㊀Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｓｕｐｅｒｏｘｉｄｅｄｉｓｍｕｔａｓｅ(ＳＯＤ)ａｃｔｉｖｉｔｙｉｎｌｅａｖｅｓｏｆｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｔａｎｄｈｉｇｈｓｅｎｓｉｔｉｖｅｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓａｆｔｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａａ:高抗种质湖北百合ꎻｂ:高感种质卷丹百合ꎮ试验组:接种灰霉菌ꎻ对照组:不接种灰霉菌ꎮ图９㊀接种灰霉菌后高抗㊁高感百合种质叶片中过氧化氢酶(ＣＡＴ)活性对比Ｆｉｇ.９㊀Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｃａｔａｌａｓｅ(ＣＡＴ)ａｃｔｉｖｉｔｙｉｎｌｅａｖｅｓｏｆｈｉｇｈｒｅｓｉｓｔａｎｔａｎｄｈｉｇｈｓｅｎｓｉｔｉｖｅｌｉｌｙｇｅｒｍｐｌａｓｍｓａｆｔｅｒｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ３㊀讨论抗灰霉病一直是百合抗病育种的主要目标之一ꎬ但灰霉病菌传播媒介多ꎬ寄主范围广ꎬ因此鉴定㊁应用新的抗病种质资源ꎬ培育高抗灰霉病品种是最有效的方法ꎮ中国是百合野生资源的重要分布中心ꎬ但目前依然缺乏对其抗灰霉病特性的系统评价ꎮ１１份不同百合种质资源的叶片形态观察及抗病性评价结果表明ꎬ百合的抗病性可能与叶片表面蜡质结构具有一定的相关性ꎮ康立功等[１６]在研究番茄时也发现蜡质的抗性作用主要是从物理性上阻止病原菌的穿透ꎮ此外ꎬ气孔是病原菌侵入植物体内的重要途径之一ꎬ气孔密度㊁气孔大小与植物的抗病性有一定的相关性ꎮ本研究结果表明ꎬ百合灰霉病的抗病性与气孔大小㊁密度没有显著的相关性ꎮ植物受到伤害ꎬ最先引发体内活性氧的增加ꎬ在植物体内的保护酶系统中ꎬ超氧化物歧化酶能够消除超氧阴离子ꎬ而过氧化氢酶则能分解过氧化氢ꎬ通过协同作用清除活性氧[１７￣２１]ꎮ高抗种质湖北百合在接种病原菌后ꎬ其叶片中超氧阴离子含量出现２次峰值(接种后２ｈ㊁１２ｈ)ꎬ而高感种质卷丹百合只出现１次峰值(接种后８ｈ)ꎬ此结果与稻瘟菌侵染水稻幼苗前后活性氧变化情况的试验结果[２２]相似ꎮ本研究发现ꎬ高抗种质的ＳＯＤ活性在接种２４ｈ后持续增高ꎬ与抗病性具有相关性ꎮ前人在观察葡萄品种资源叶片与灰霉病的关系中发现ꎬ葡萄品种的抗３８０１张铭芳等:不同百合种质资源对灰霉病的抗性病性与过氧化氢酶㊁抗坏血酸过氧化酶的活性呈正相关[２３]ꎮ参考文献:[１]㊀蒋㊀瑶ꎬ陈文波ꎬ蒋炷宇.亚洲百合不定芽的诱导及再生植株的建立[Ｊ].江苏农业科学ꎬ２０１７ꎬ４５(１２):３５￣３８. [２]㊀刘高峰ꎬ巨秀婷ꎬ唐㊀楠ꎬ等.不同培养基质和肥力水平对兰州百合小鳞茎生长的影响[Ｊ].江苏农业学报ꎬ２０２１ꎬ３７(３):７１８￣７２３.[３]㊀徐㊀琼ꎬ徐秉良ꎬ王㊀芳.观赏百合叶枯病症状类型与病原菌鉴定[Ｊ].植物保护ꎬ２００６ꎬ３２(５):６１￣６４.[４]㊀朱丽梅ꎬ罗凤霞ꎬ李明凤ꎬ等.底特律等８个百合品种对百合灰霉病的抗病性鉴定[Ｊ].江苏农业科学ꎬ２０１２ꎬ４０(５):８１￣８３. [５]㊀朱丽梅ꎬ胡凤荣ꎬ罗凤霞.不同百合品种对百合灰霉病的抗病性鉴定[Ｊ].植物保护ꎬ２０１０ꎬ３６(３):１４８￣１５１.[６]㊀ＷＩＬＬＩＡＭＳＯＮＢꎬＴＵＤＺＹＮＳＫＩＢꎬＴＵＤＺＹＮＳＫＩＰꎬｅｔａｌ.Ｂｏｔｒｙ￣ｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ:ｔｈｅｃａｕｓｅｏｆｇｒｅｙｍｏｌｄｄｉｓｅａｓｅ[Ｊ].ＭｏｌｅｃｕｌａｒＰｌａｎｔＰａ￣ｔｈｏｌｏｇｙꎬ２００７ꎬ８(５):５６１￣５８０.[７]㊀ＣＯＬＬＡＤＯＩＧꎬＧＡＬÁＮＲＨꎬＰＡＴＲＯＮＲＤꎬｅｔａｌ.ＭｅｔａｂｏｌｉｔｅｓｆｒｏｍａｓｈａｋｅｃｕｌｔｕｒｅｏｆＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ[Ｊ].Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ１９９５ꎬ３８(３):６４７￣６５０.[８]㊀ＭＡＲＵＭＯＳꎬＫＡＴＡＹＡＭＡＭꎬＫＯＭＯＲＩＥꎬｅｔａｌ.Ｍｉｃｒｏｂｉａｌｐｒｏ￣ｄｕｃｔｉｏｎｏｆａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄｂｙＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ[Ｊ].ＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌａｎｄＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ１９８２ꎬ４６(７):１９６７￣１９６８.[９]㊀ＣＵＴＬＥＲＨＧꎬＪＡＣＹＮＯＪＭꎬＨＡＲＷＯＯＤＪＳꎬｅｔａｌ.Ｂｏｔｃｉｎｏｌ￣ｉｄｅ:ａｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｌｙａｃｔｉｖｅｎａｔｕｒａｌｐｒｏｄｕｃｔｆｒｏｍＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａ[Ｊ].ＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅꎬＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬａｎｄＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ１９９３ꎬ５７(１１):１９８０￣１９８２.[１０]ＭＯＹＡＨＥＤＩＳꎬＨＥＡＬＥＪＢ.Ｔｈｅｒｏｌｅｓｏｆａｓｐａｒｔｉｃｐｒｏｔｅｉｎａｓｅａｎｄｅｎｄｏ￣ｐｅｃｔｉｎｌｙａｓｅｅｎｚｙｍｅｓｉｎｔｈｅｐｒｉｍａｒｙｓｔａｇｅｓｏｆｉｎｆｅｃｔｉｏｎａｎｄｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓｏｆｖａｒｉｏｕｓｈｏｓｔｔｉｓｓｕｅｓｂｙｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉｓｏｌａｔｅｓｏｆＢｏｔｒｙｔｉｓｃｉｎｅｒｅａＰｅｒｓｅｘ.Ｐｅｒｓ.[Ｊ].ＰｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌａｎｄＭｏｌｅｃｕｌａｒＰｌａｎｔＰａ￣ｔｈｏｌｏｇｙꎬ１９９０ꎬ３６(４):３０３￣３２４.[１１]ＺＨＵＬꎬＨＵＦꎬＬＵＯＦ.ＩｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｄｉｓｅａｓｅｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｏｆＬｉｌｉ￣ｕｍｓｐｅｃｉｅｓｔｏｌｉｌｙｇｒａｙｍｏｕｌｄ[Ｊ].ＰｌａｎｔＰｒｏｔｅｃｔｉｏｎꎬ２０１１ꎬ３６(３):１４８￣１５１.[１２]ＪＩＡＭꎬＤＩＷꎬＬＩＵＹꎬｅｔａｌ.ＲＯＳ￣ｉｎｄｕｃｅｄｏｘｉｄａｔｉｖｅｓｔｒｅｓｓｉｎｎｏｂｉ￣ｌｅ￣ｔｙｐｅｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍｐｒｏｔｏｃｏｒｍ￣ｌｉｋｅｂｏｄｉｅｓ(ｐｌｂｓ)ｄｕｒｉｎｇｖｅｒｉｆｉｃａ￣ｔｉｏｎ[Ｊ].Ｃｒｙｏ￣Ｌｅｔｔｅｒｓꎬ２０１６ꎬ３７(４):２５３￣２６３.[１３]ＹＩＮＨꎬＣＨＥＮＱꎬＹＩＭ.Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｓｈｏｒｔ￣ｔｅｒｍｈｅａｔｓｔｒｅｓｓｏｎｏｘｉ￣ｄａｔｉｖｅｄａｍａｇｅａｎｄｒｅｓｐｏｎｓｅｓｏｆａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔｓｙｓｔｅｍｉｎＬｉｌｉｕｍｌｏｎｇｉ￣ｆｌｏｒｕｍ[Ｊ].ＰｌａｎｔＧｒｏｗｔｈＲｅｇｕｌａｔｉｏｎꎬ２００８ꎬ５４:４５￣５４. [１４]ＬＩＨＳ.Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓａｎｄｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓｏｆｐｌａｎｔｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌｂｉｏｃｈｅｍｉ￣ｃａｌｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ[Ｍ].Ｂｅｉｊｉｎｇ:ＨｉｇｈｅｒＥｄｕｃａｔｉｏｎＰｒｅｓｓꎬ２０００:１２０￣１２２.[１５]ＣＡＯＪꎬＪＩＡＮＧＷꎬＺＨＡＯＹ.Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｇｕｉｄａｎｃｅｏｆｐｏｓｔｈａｒｖｅｓｔｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙａｎｄｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙｏｆｆｒｕｉｔｓａｎｄｖｅｇｅｔａｂｌｅｓ[Ｍ].Ｂｅｉｊｉｎｇ:ＣｈｉｎｅｓｅＬｉｇｈｔＩｎｄｕｓｔｒｙＰｒｅｓｓꎬ２００７:１１８￣１２０.[１６]康立功ꎬ齐凤坤ꎬ许向阳ꎬ等.番茄叶片蜡质和角质层与芝麻斑病菌侵染的关系[Ｊ].中国蔬菜ꎬ２０１０(１８):４７￣５０.[１７]ＫＥＰＰＬＥＲＤꎬＢＡＫＥＲＣＪ.Ｏ２ －￣ｉｎｉｔｉａｔｅｄｌｉｐｉｄｐｅｒｏｘｉｄａｔｉｏｎｉｎａｂａｃｔｅｒｉａ￣ｉｎｄｕｃｅｄｈｙｐｅｒｓｅｎｓｉｔｉｖｅｒｅａｃｔｉｏｎｉｎｔｏｂａｃｃｏｃｅｌｌｓｕｓｐｅｎ￣ｓｉｏｎｓ[Ｊ].Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙꎬ１９８９ꎬ７９(５):５５５￣５６２.[１８]陶宗娅ꎬ田小凤ꎬ向述莲ꎬ等.赤霉菌粗毒素对小麦幼苗活性氧代谢的影响[Ｊ].西南农业大学学报(自然科学版)ꎬ２００５ꎬ２７(６):８５１￣８５６.[１９]赵㊀嫚ꎬ陈仕勇ꎬ李亚萍ꎬ等.外源ＧＡＢＡ对盐胁迫下金花菜种子萌发及幼苗抗氧化能力的影响[Ｊ].江苏农业学报ꎬ２０２１ꎬ３７(２):３１０￣３１６.[２０]里程辉ꎬ于㊀辉ꎬ刘㊀志ꎬ等.淹水胁迫下不同中间砧对苹果岳冠叶片和根系抗氧化酶和非酶类抗氧化物活性的影响[Ｊ].江苏农业科学ꎬ２０２１ꎬ４９(３):１２１￣１２５.[２１]高㊀芬ꎬ褚建梅ꎬ李静虹ꎬ等.植物病原真菌致病机理研究进展[Ｊ].江苏农业学报ꎬ２０１４ꎬ３０(５):１１７４￣１１７９.[２２]葛秀春ꎬ宋凤鸣ꎬ郑㊀重.稻瘟菌侵染后水稻幼苗活性氧的产生与抗病性的关系[Ｊ].植物生理学报ꎬ２０００ꎬ２６(３):２２７￣２３１. [２３]刘丽婷.葡萄品种资源叶片白腐病和灰霉病的抗病鉴定及评价[Ｄ].沈阳:沈阳农业大学ꎬ２０１８.(责任编辑:王㊀妮)４８０１江苏农业学报㊀２０２２年第３８卷第４期。
村乡科技XIANGCUN KEJI52XIANGCUN KEJI 2020年12月（中）百合科植物的应用及价值段芳瑶向骞沈达理（湖南农业大学风景园林与艺术设计学院，湖南长沙410128）［摘要］百合科（Liliaceae ），通常为多年生草本，较少为亚灌木、灌木或乔木状，名花良药众多，环境适应性强，观赏价值高，株型种类多样，园林用途广泛，为丰富园林景观起到了重要作用。
近年来，百合科植物的其他应用价值也在慢慢呈现。
本文将从百合科植物的植物资源概况、繁殖技术、化学成分、观赏应用、药用价值及其他应用研究等方面探讨百合科植物的应用，以期为今后百合科植物的研究应用提供参考依据。
［关键词］百合科植物；资源概况；繁殖技术；观赏应用［中图分类号］Q949.9［文献标识码］A［文章编号］1674-7909（2020）35-52-21百合科植物资源概况我国作为百合科植物原产国，其植物资源丰富多样，分布范围广，观赏性状多样。
近年来，百合科植物的药用价值、经济价值和工业价值等隐藏价值也开始慢慢呈现出来，在资源开发及研究应用上有着广阔的发展前景，且国内外专家学者对百合科植物的关注度也越来越高。
据文献记载，广义百合科植物约有280属4000种，在世界范围内广泛分布，目前主要分布在温带地区以及亚热带地区，我国产62属约600种，遍及全国各个区域［1］。
我国常见的有百合属、沿阶草属、黄精属、天门冬属、葱属、贝母属及菝葜属等，特有的有知母属、白穗花属、鹭鸶兰属等。
2百合科植物繁殖技术百合科植物的繁殖方式主要是扦插、分株和分球等无性繁殖方法，但长期的无性繁殖会在植物体内积累大量的病毒，引发病毒病，降低观赏性能。
而利用植物组织培养技术可以生产无毒幼苗，提高幼苗质量。
如今，许多百合科植物的组培快繁技术已趋于成熟，在新品种选育、良种繁育、次生代谢产物生产、种质资源创新和保存以及理论研究上的应用均取得了显著进展。
目前，研究主要集中在露地栽培技术、组织快繁、脱毒苗生产和引种驯化等方面，在工厂化育苗、已有品种特征特性的描述以及新品种特殊养护要求等方面尚缺乏系统的研究和介绍［2］。
