反刍动物肠道微生物多样性的研究
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反刍的知识点总结一、反刍的定义和过程反刍是一种特殊的消化过程,发生在反刍动物的胃部。
它是一种多次咀嚼食物的过程,通过这种过程,反刍动物能够更充分地利用植物纤维和细胞壁,从而提高食物的消化率和吸收率。
反刍的过程可以简单描述为以下几个步骤:首先,反刍动物将食物咽下到第一胃中,经过初步的消化。
然后,食物会在第一胃中分解成较小的颗粒,然后这些颗粒将被送到第二胃中。
在第二胃中,食物会被反刍动物反刍出来,进行多次的咀嚼和混合。
最后,经过反刍的食物会再次吞咽,进入第三胃和第四胃进行最终的消化吸收。
总的来说,反刍的过程是一种多次咀嚼和混合的过程,通过这种过程,反刍动物能够更充分地利用植物纤维和细胞壁,从而提高食物的消化率和吸收率。
二、反刍的作用反刍的作用主要有以下几个方面:1. 提高食物的消化率和吸收率。
通过多次的反刍和咀嚼,反刍动物能够更充分地利用植物纤维和细胞壁,从而提高食物的消化率和吸收率。
2. 减少食物中的抗营养因子。
通过反刍的过程,反刍动物能够将食物中的抗营养因子如纤维和细胞壁等物质降解和去除,从而提高食物中营养物质的利用率。
3. 促进消化酶的作用。
通过多次的反刍和咀嚼,反刍动物能够促进体内消化酶的作用,从而提高食物的消化和吸收。
总的来说,反刍的作用是提高食物的消化率和吸收率,减少食物中的抗营养因子,促进消化酶的作用。
三、反刍动物的消化系统特点反刍动物的消化系统具有以下几个特点:1. 多室的胃。
反刍动物的胃被分为了多个部分,通常包括第一胃、第二胃、第三胃和第四胃,每个部分都有其特定的消化功能。
2. 特殊的食物分解和吸收过程。
反刍动物通过多次的反刍和咀嚼,能够更充分地利用植物纤维和细胞壁,从而提高食物的消化率和吸收3. 发达的菌群。
反刍动物的胃肠道内寄生着各种各样的微生物,这些微生物能够协助反刍动物完成食物的消化过程。
4. 特殊的排泄物。
反刍动物的粪便通常比较粗糙,因为它们消化的是纤维素多的植物,在排泄物中残留的植物细胞壁在其它动物中已经在体内被消化分解。
瘤胃微生物群落与反刍动物消化生理的关系研究反刍动物是通过不同温度下的瘤胃微生物群落来消化食物。
在这个特殊的消化系统中,瘤胃内的微生物能分解大量的纤维素,从而将草地上生长的植物转化为有用的营养物质。
瘤胃内的微生物群落是由许多不同类型的细菌、真菌和原生动物构成的。
这些微生物与宿主的关系非常复杂,微生物的种类和数量会受到宿主饲食、生态系统环境、年龄和性别等因素的影响,同时宿主的健康状况也会对瘤胃微生物群落产生影响。
瘤胃内的微生物群落在营养方面起着非常重要的作用。
例如,某些细菌可以分解纤维素,并产生酸性物质,这可以帮助预消化食物,使其更容易被宿主消化。
此外,瘤胃内的微生物还可以产生大量的Vitamin K,这对于维持动物正常的凝血系统和血液功能至关重要。
另外,瘤胃微生物群落还可以帮助宿主消除有害菌的侵入。
例如,在瘤胃内生活的某些细菌可以产生抗生素和其他抗微生物物质,这可以帮助宿主对抗有害微生物的感染。
然而,由于瘤胃内的微生物种类和数量的复杂性,这个研究领域还有很多未解决的问题。
例如,我们目前还不能准确地预测不同饲养条件下宿主瘤胃微生物群落的变化,也无法完全理解微生物群落如何响应外界环境的变化。
目前,人类已经开始致力于瘤胃微生物群落的研究。
通过对野外反刍动物瘤胃内微生物的分析与总体基因组的挖掘研究,研究人员可以进一步理解瘤胃微生物群落是如何与宿主反刍动物协同演化的。
此外,我们现在也可以通过某些DNA分析技术来研究动物的消化系统。
通过提取反刍动物瘤胃内的DNA并进行实验测序,我们可以知道这些动物瘤胃内微生物的数量、种类和结构。
这些研究结果可以延伸到人类自身的健康问题上。
对于减肥或胃肠问题的人,可以通过分析胃肠道微生物来解决问题。
总之,瘤胃微生物群落与反刍动物消化生理的关系是一个非常复杂的研究课题,但这个领域的研究现在已经迈入了全新的阶段。
通过更加深入的研究,我们可以进一步了解它们与人类健康之间的关系,从而创造更好的生活方式。
反刍动物瘤胃微生物及其作用微生物是动物消化道内不可缺少的重要组成成分。
初生幼畜的消化道是无菌的,数小时后随着吮乳、采食等过程,在消化道内即出现了微生物,其中如大肠杆菌(Escherichia coli)便从此在动物肠道内与寄主共处终生。
1 反刍动物消化的主要特征反刍动物是哺乳动物中比较特别的一个类群,他们的日粮主要由植物材料组成。
反刍动物即使在不进食时也频繁地咀嚼,这一咀嚼活动称为“反刍”。
反刍是反刍动物从植物细胞壁(即纤维)中获得能量过程的一个步骤。
反刍减小了纤维颗粒的尺寸,暴露出糖以供微生物发酵;另外,唾液中缓冲物质(碳酸盐和磷酸盐)中和了微生物发酵产生的酸,以便维持一个有利于纤维降解和瘤胃微生物生长的中性偏酸的环境。
与单胃动物不同,反刍动物的胃由4部分组成,即网胃、瘤胃、瓣胃、真胃。
瘤胃是反刍动物特有的消化器官,它是反刍动物体内的饲料处理工厂,饲料中约有70,85%可消化物质和50%粗纤维在瘤胃内消化,因此,瘤胃(包括网胃)消化在反刍动物整个消化过程中占有特别重要的地位。
瘤胃和网胃是位于反刍动物消化道最前端的2个胃,网胃内含物几乎持续地与瘤胃内含物相混合(每分钟混合1次),这两个胃常又称为网-瘤胃,他们共同具有高密度的微生物群系(细菌、原生动物、真菌)。
瓣胃是个具有极大吸收能力的小器官,水和矿物质如钠和磷在瓣胃中吸收,经唾液重回到瘤胃中。
由于瘤胃和真胃的消化方式有极大的不同,瓣胃是一个连接瘤胃和真胃的过渡器官。
真胃相当于非反刍动物的胃,分泌强酸和许多消化酶。
非反刍动物摄取的食物首先在胃中被消化,但是进入反刍动物真胃中的食糜主要由未被发酵的饲料颗粒、一些微生物发酵终产物以及生长在瘤胃中的微生物有机体本身所构成。
反刍动物与非反刍动物另一个重要区别是反刍动物能大量利用纤维或半纤维并消化吸收,而非反刍动物在这方面的能力很有限(盲肠等器官可消化分解部分纤维)。
存在于植物细胞壁中的复杂糖(纤维或半纤维)不能被非反刍动物利用,相反,在瘤胃和网胃中生活的微生物群系则可使反刍动物从纤维中获得能量。
动物营养学报2020,32(11):5013⁃5022ChineseJournalofAnimalNutrition㊀doi:10.3969/j.issn.1006⁃267x.2020.11.005反刍动物瘤胃甲烷生成相关研究进展王㊀坤1㊀南雪梅1㊀熊本海1∗㊀蒋林树2(1.中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,动物营养学国家重点实验室,北京100193;2.北京农学院奶牛营养学北京市重点实验室,北京102206)摘㊀要:反刍动物能将人类不能直接利用的纤维性植物原料转化成肉和奶等优质的畜产品,然而反刍动物每年向环境中排放甲烷约1亿t,不但加剧全球温室效应,而且降低饲料利用率㊂本文详细综述了近年来瘤胃甲烷生成机制㊁瘤胃甲烷生成相关微生物㊁瘤胃甲烷测定方法及瘤胃甲烷排放调控措施等方面的相关研究进展,以期为调控反刍动物瘤胃甲烷排放研究提供参考㊂关键词:反刍动物;瘤胃;甲烷生成;产甲烷古菌中图分类号:S811.6㊀㊀㊀㊀文献标识码:A㊀㊀㊀㊀文章编号:1006⁃267X(2020)11⁃5013⁃10收稿日期:2020-03-30基金项目:国家 十三五 重大专项课题(2017YFD0701604)作者简介:王㊀坤(1990 ),男,山东烟台人,博士研究生,研究方向为反刍动物营养与饲料科学㊂E⁃mail:cang327@163.com∗通信作者:熊本海,研究员,博士生导师,E⁃mail:xiongbenhai@caas.cn㊀㊀反刍动物能将人类不能直接利用的纤维性植物原料转化成肉和奶等优质的畜产品,对人类社会发展具有重要意义㊂随着世界人口的增长以及居民生活水平的提高,人类社会对优质畜产品的需求越来越多,反刍动物生产的重要性也越来越大㊂然而,反刍动物在消化植物纤维的同时会向环境中排放甲烷等温室气体,反刍动物每年向环境中排放甲烷约1亿t,约占全球每年甲烷排放总量的20%[1]㊂甲烷的温室效应约为二氧化碳的25倍,反刍动物生产对环境的影响引起了越来越多的关注,各国科学家围绕反刍动物瘤胃甲烷排放展开了大量研究,通过适当的措施调控反刍动物瘤胃甲烷排放具有重要意义㊂1 甲烷生成机制㊀㊀甲烷生成通常被认为是产甲烷古菌在严格厌氧的条件下独有的生命现象㊂但有研究报道,除产甲烷古菌外,蓝藻细菌和真核生物也具有产生甲烷的能力,甚至可以在有氧的情况下产生甲烷[2-4]㊂产甲烷古菌是一种生态多样性的微生物,广泛存在于多种陆生及水生厌氧环境中,包括湿地㊁海洋沉积物㊁淡水沉积物以及动物胃肠道等㊂甲烷是产甲烷菌厌氧呼吸的终产物[5],作为主要的甲烷产生源头,大气中70%的甲烷是由产甲烷菌产生的[6]㊂㊀㊀甲烷生成是生物质厌氧降解的终端过程,通常发生在氧㊁硝酸盐㊁Fe3+及硫酸盐等末端电子受体不足或快速耗尽的环境中[5-6]㊂甲烷生成的底物主要有二氧化碳㊁乙酸盐和甲基化合物㊂根据反应底物的不同,甲烷生成可分为3条途径:二氧化碳还原途径㊁解乙酸途径和甲基营养途径㊂3条途径的最后1步反应均为甲基辅酶M被甲基辅酶M还原酶还原生成甲烷㊂氢气是二氧化碳还原途径的主要电子供体,因此该途径也被称为氢营养途径,此外,甲酸㊁甲醇及一氧化碳也可作为该途径的电子供体[5]㊂氢营养途径是最常见的甲烷生成途径,甲烷杆菌目(Methanobacteriales)㊁甲烷球菌目(Methanococcales)㊁甲烷微菌目(Methanomi⁃crobiales)㊁甲烷八叠球菌目(Methanosarcinales)㊁甲烷火菌目(Methanopyrales)及甲烷胞菌目(Methanocellales)的产甲烷菌均可通过该途径生成甲烷㊂在解乙酸途径中,乙酸裂解为羧基和甲基,羧基被氧化为二氧化碳,甲基被还原为甲烷㊂作为最不常见的途径,仅存在于Methanosarcina⁃㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报32卷les,但由解乙酸途径生成的甲烷约占全球生物甲烷总量的2/3[5]㊂在甲基营养途径中,甲醇㊁甲胺及甲基硫化物等甲基化合物的甲基团传递给辅酶M,生成的甲基辅酶M最终被甲基辅酶M还原酶还原生成甲烷㊂对于常见的甲基营养型甲烷菌(主要来自Methanosarcinales),甲基还原所需的电子是通过额外的甲基被氧化成二氧化碳得到,但是Methanomicrococcusblatticola和Methanospha⁃era的甲基营养型甲烷菌以氢气作为电子供体[5-7]㊂最近研究发现,Methanomassiliicoccales的甲烷菌也以氢气作为电子供体,其甲烷生成途径属于氢气依赖型甲基营养途径[8]㊂甲基营养型甲烷菌主要存在于海洋沉积物中,以及动物胃肠道和一些极端环境中[5]㊂2㊀反刍动物瘤胃甲烷生成㊀㊀反刍动物瘤胃微生物发酵碳水化合物产生甲烷,不但加剧全球温室效应,而且降低饲料利用率㊂反刍动物以甲烷形式所损失的能量占饲料总能的2% 12%[9]㊂研究人员围绕甲烷生成及其调控措施展开了大量研究,然而瘤胃微生物发酵碳水化合物生成挥发性脂肪酸的过程部分依赖于可排出代谢氢的甲烷生成过程,因此单纯抑制瘤胃甲烷生成的调控措施往往不能起到长期调控的目的[10-11]㊂产乙酸作用和丙酸生成等一些瘤胃内可与甲烷生成途径竞争代谢氢的内在代谢过程,在瘤胃甲烷调控方面的潜在作用越来越多的引起了公众的关注[12-13]㊂一方面,这些代谢过程通过与甲烷生成途径竞争代谢氢来抑制甲烷生成,不会因为瘤胃中的氢无法被及时排出而影响发酵;另一方面,乙酸和作为瘤胃葡萄糖前体物的丙酸均为反刍动物的能量来源物质,通过增加乙酸和丙酸的产量来竞争性抑制瘤胃甲烷生成可提高饲料能量的利用率㊂㊀㊀碳水化合物是反刍动物主要的能量来源,纤维素㊁半纤维素和淀粉等多糖首先在瘤胃内水解为葡萄糖等单糖㊂各种单糖在瘤胃微生物的作用下进一步代谢为挥发性脂肪酸㊁二氧化碳及氢气㊂氢气是瘤胃发酵过程中重要的中间产物,在葡萄糖分解为丙酮酸以及丙酮酸氧化脱羧生成乙酰辅酶A的过程中产生(图1)㊂为了保证瘤胃发酵的正常进行,产生的氢气需要被及时从瘤胃排出[10]㊂甲烷生成是瘤胃主要的排出氢气的途径,细菌㊁原虫以及真菌产生的氢气被传递给产甲烷古菌通过氢营养途径还原二氧化碳生成甲烷㊂瘤胃产甲烷古菌在数量和多样性上不如瘤胃细菌丰富,且在全世界范围内的反刍动物中高度保守[14]㊂Hen⁃derson等[14]对来自35个国家的瘤胃和前肠样品(379头牛㊁106头绵羊㊁59头鹿㊁52头山羊和72头其他物种)的微生物群落组成进行了全面的全球普查㊂研究发现,尽管样品的来源千差万别,但主要的古菌群体却惊人地相似㊂Methanobrevi⁃bactergottschalkii和Methanobrevibacterruminanti⁃um出现在所有样品中,且占比高达74%㊂Metha⁃nosphaera和Methanomassiliicoccaceae的2个古菌群体占比也比较高,这5个主要的产甲烷古菌群体约占整个古菌群落的90%㊂瘤胃中大约78%的产甲烷古菌通过氢营养途径产生甲烷,22%的产甲烷古菌通过甲基营养途径产生甲烷,解乙酸途径在瘤胃中较为少见[15]㊂甲烷短杆菌(Methanobre⁃vibacter)是瘤胃中主要氢营养型甲烷菌[16],Meth⁃anosphaera㊁Methanimicrococcus和甲烷细菌属(Methanobacterium)也是瘤胃中重要氢营养型甲烷菌属[13]㊂瘤胃中的甲基营养型甲烷菌主要包括Methanosarcinales㊁Methanosphaera和Methanomas⁃siliicoccaceae[5]㊂㊀㊀除甲烷生成外,瘤胃中的丙酸生成过程以及由氢气和二氧化碳生成乙酸的过程都可消耗氢气㊂硝酸盐和硫酸盐等一些无机盐也可作为电子受体消耗氢气,但是这些物质在瘤胃中的含量通常不多[17-19],而且含量过多可能会增加反刍动物中毒的风险[20]㊂3㊀反刍动物瘤胃甲烷生成相关微生物㊀㊀瘤胃甲烷的生成是瘤胃内各种微生物共同作用的结果,产甲烷古菌是直接的甲烷产生微生物,而原虫㊁细菌及真菌等其他微生物也在瘤胃甲烷生成过程中发挥着重要作用㊂㊀㊀瘤胃原虫根据其结构和活性不同,主要有2种类型:Holotrich原虫,具有完全被纤毛覆盖的柔性表膜,主要消化可溶性底物;Entodiniomorphid原虫,具有坚硬的表膜,纤毛仅位于口部附近区域,能够消化微粒状物质[22]㊂尽管瘤胃原虫不能产生甲烷,但其可通过自身的氢化酶产生大量氢气供氢营养型产甲烷古菌使用,因此在瘤胃甲烷生成中发挥重要作用㊂此外,原虫的表面和体内附着410511期王㊀坤等:反刍动物瘤胃甲烷生成相关研究进展以及寄生有产甲烷古菌,这种共生关系也使原虫成为瘤胃甲烷生成重要的参与者[22]㊂Methano⁃brevibacter和Methanomicrobium被认为是最主要的2个与原虫具有共生关系的产甲烷古菌属[23-24]㊂尽管原虫在瘤胃中普遍存在,但原虫对于瘤胃并不重要,且驱除原虫可以降低9% 37%的甲烷排放[25-26]㊂然而,也有一些研究表明,驱除原虫对瘤胃甲烷产生的影响并不明显[27-28]㊂Newbold等[29]通过Meta分析研究发现,通过驱除原虫平均可降低11%的甲烷产量,然而产甲烷古菌的丰度并没有显著降低㊂图1 瘤胃发酵及甲烷生成途径Fig.1㊀Rumenfermentationandpathwaysofmethanogenesis[13,19,21]㊀㊀同原虫类似,真菌通过产生大量氢气参与瘤胃甲烷生成,此外真菌发酵也可产生二氧化碳㊁甲酸和乙酸等代谢终产物[30]㊂目前已知的瘤胃中的真菌属有6个,Neocallimastix㊁Caecomyces㊁Piromy⁃ces㊁Anaeromyces㊁Orpinomyces和Cyllamyces[31]㊂一些产甲烷古菌可能也与真菌有共生关系,然而这种关系并没有得到证实[32]㊂由于真菌能产生氢气,通常认为真菌的丰度可能与甲烷生成有关,但Kittelmann等[33]研究发现,绵羊瘤胃甲烷排放与真菌群落结构没有相关性㊂Newbold等[29]通过Meta分析研究发现,驱除原虫虽然对产甲烷古菌的丰度没有影响,但降低了真菌的丰度,而真菌丰度的降低是否与甲烷产量的降低有关尚不清楚㊂㊀㊀细菌是瘤胃内最多样化的微生物类群,能分解纤维㊁淀粉㊁蛋白质和糖等多种物质,瘤胃中最丰富的3个细菌门是厚壁菌门(Firmicutes)㊁拟杆菌门(Bacteroidetes)和变形菌门(Proteobacte⁃ria)[14]㊂属于Firmicutes的纤维分解菌瘤胃球菌属(Ruminococcus)和优杆菌属(Eubacterium)能够产生氢气,纤维杆菌属(Fibrobacter)不产生氢气,而Bacteroidetes是纯粹的氢气消耗菌[34]㊂Kittel⁃mann等[33]通过分析236份来自于118头不同甲烷排放量绵羊的瘤胃液样品,发现瘤胃微生物的群落结构与绵羊甲烷排放水平相关㊂一种类型的低甲烷排放量绵羊瘤胃中具有较高含量的丙酸生成菌Quinellaovalis;另一种类型的低甲烷排放量绵羊瘤胃中具有较高含量的乳酸和琥珀酸生成菌,包括Fibrobacterspp.㊁Kandleriavitulina㊁Olsenellaspp.㊁Prevotellabryantii和Sharpeaaza⁃buensis;高甲烷排放量绵羊的瘤胃中具有较高含量属于瘤胃球菌属(Ruminococcus)的一些菌种,以及瘤胃球菌科(Ruminococcaceae)㊁毛螺旋菌科(Lachnospiraceae)㊁Catabacteriaceae㊁粪球菌属(Coprococcus)和普雷沃菌属(Prevotella)等㊂Danielsson等[35]和Wallace等[36]均研究发现,高甲烷排放动物个体的瘤胃中Proteobacteria的含量较少㊂琥珀酸弧菌科(Succinivibrionaceae)是Pro⁃teobacteria的优势科,有研究发现肠道中较高含量5105㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报32卷的Succinivibrionaceae是导致Tammar袋鼠相比反刍动物甲烷生成效率低的原因[37]㊂Prevotella是一种多功能的菌属,该属的部分菌种在高甲烷排放个体中含量较高,而部分菌种又在低甲烷排放个体中含量较高[16,35]㊂通常情况下,高甲烷排放的动物个体肠道中有更多的氢气产生菌,而低甲烷排放的动物个体肠道中有更多的氢气消耗菌㊂4㊀反刍动物瘤胃甲烷测定方法㊀㊀准确测定反刍动物甲烷排放量对于研究甲烷生成机制及其减排措施具有重要意义㊂呼吸舱法以其高的准确性及可重复性被认为是甲烷测定的 金标 方法,但由于其成本高㊁技术要求严格且对动物应激较大,因此限制了该方法的广泛使用[38]㊂六氟化硫示踪法相比于呼吸舱法,可直接在生产条件下对动物的甲烷排放进行测定,但该方法的准确性受当地天气变化影响较大且存在残留问题,因此该方法的广泛使用亦受到限制[39]㊂此外,直接测定法还包括头箱法㊁面罩法㊁便携式收集舱法㊁甲烷/二氧化碳比例法㊁GreenFeed体系法㊁嗅探器法㊁甲烷激光探测器等短期测定方法,以及适用于大群体测定的塑料大棚法和微气象法[40]㊂直接测定法虽然设备成本高㊁技术要求苛刻且操作难度大,但直接测定法是研究甲烷排放的基础方法,是其他方法参考和对比的标准㊂㊀㊀间接测定甲烷产量的方法主要有体外法和统计模型法㊂体外法通过模拟体内瘤胃环境来研究气体生成,故而其影响因素较多[41]㊂统计模型法通常根据营养物质或能量摄入量建立线性或非线性模型估测甲烷排放量,实用性强㊂国家水平以及全球水平甲烷排放量的测定均采用统计模型法估测[40]㊂随着技术水平的不断改进,模型法预测的准确性越来越高,并且发展了针对不同种类反刍动物的专用模型(表1)㊂此外,间接测定法还包括根据乳中特定脂肪酸的浓度预测甲烷产量的方法以及乳中红外光谱法[42]㊂统计模型法是一种非常有效的甲烷估测方法,但代表性强的统计模型需要以直接测定法为基础㊂表1㊀甲烷产量预测模型Table1㊀ModelsusedtopredictCH4production动物Animals方程式EquationRMSER2RMSPE/%绵羊Sheep[20]方程1Eq.1CH4(MJ/d)=0.208(ʃ0.040)+0.049(ʃ0.0039)ˑGEI(MJ/d)0.240.8622.7方程2Eq.2CH4(MJ/d)=0.550(ʃ0.172)+1.299(ʃ0.126)ˑDMI(kg/d)-0.266(ʃ0.053)ˑFL-0.00093(ʃ0.00042)ˑNDF(g/kg)0.220.9222.4方程3Eq.3CH4(MJ/d)=-0.784(ʃ0.269)+0.138(ʃ0.0084)ˑME(MJ/d)-0.378(ʃ0.062)ˑFL+0.00294(ʃ0.00046)ˑOMDm(g/kg)-1.943(ʃ0.381)ˑmetabolizability0.210.9424.5方程4Eq.4CH4(MJ/d)=5.699(ʃ1.94)-[5.699(ʃ1.94)-0.133(ʃ0.047)]ˑexp[-0.021(ʃ0.0071)ˑME(MJ/d)]0.140.9120.7山羊Goat[43]方程5Eq.5CH4(MJ/d)=0.242(ʃ0.073)+0.0511(ʃ0.0073)ˑDEI(MJ/d)0.310.8330.3方程6Eq.6CH4(MJ/d)=-1.042(ʃ0.271)+2.205(ʃ0.395)ˑNDFI(kg/d)-2.417(ʃ1.102)ˑEEI(kg/d)+1.456(ʃ0.323)ˑNFC(kg/d)+0.0208(ʃ0.0039)ˑOMDm(g/kg)-0.513(ʃ0.137)ˑFL0.140.8230.3方程7Eq.7CH4(MJ/d)=0.885(ʃ0.154)+0.809(ʃ0.0867)ˑDMI(kg/d)-0.397(ʃ0.0494)ˑFL+0.0198(ʃ0.0022)ˑOMDm(g/kg)+2.04(ʃ0.234)ˑADFI(kg/d)-8.54(ʃ0.548)ˑEEI(kg/d)0.240.8836.6方程8Eq.8CH4(MJ/d)=1.721(ʃ0.151)ˑ{1-exp[-0.0721(ʃ0.0092)ˑMEI(MJ/d)]}0.170.7938.0水牛Buffalo[44]方程9Eq.9CH4(MJ/d)=1.29(ʃ0.576)+0.788(ʃ0.099)ˑDMI(kg/d)0.8119.4610511期王㊀坤等:反刍动物瘤胃甲烷生成相关研究进展续表1动物Animals方程式EquationRMSER2RMSPE/%方程10Eq.10CH4(MJ/d)=-0.436(ʃ0.665)+0.678(ʃ0.184)ˑDMI(kg/d)+0.697(ʃ0.347)ˑNDFI(kg/d)0.8516.1方程11Eq.11CH4(MJ/d)=21.71(ʃ3.84)-[21.71(ʃ3.84)-0.732(ʃ0.637)]-exp[-0.0485(ʃ0.0094)ˑDMI(kg/d)]0.7921.2牛Cattle[45]方程12Eq.12CH4(MJ/d)=9.311(ʃ1.060)+0.042(ʃ0.001)ˑGEI(MJ/d)+0.094(ʃ0.014)ˑNDF(%)-0.381(ʃ0.092)ˑEE(%)+0.008(ʃ0.001)ˑBW(kg)+1.621(ʃ0.119)ˑMF(%)2.59 15.6方程13Eq.13CH4(MJ/d)=2.880(ʃ0.200)+0.053(ʃ0.001)ˑGEI(MJ/d)-0.190(ʃ0.049)ˑEE(%)1.29 14.4方程14Eq.14CH4(MJ/d)=1.487(ʃ0.318)+0.046(ʃ0.001)ˑGEI(MJ/d)+0.032(ʃ0.005)ˑNDF(%)+0.006(ʃ0.0007)ˑBW(kg)1.23 18.6方程15Eq.15CH4(MJ/d)=0.221(ʃ0.151)+0.048(ʃ0.001)ˑGEI(MJ/d)+0.005(ʃ0.0005)ˑBW(kg)0.9215.1热带牛Tropicalcattle[46]方程16Eq.16CH4(MJ/d)=1.29(ʃ0.906)+0.878(ʃ0.125)ˑDMI(kg/d)5.490.7031.0方程17Eq.17CH4(MJ/d)=0.910(ʃ0.746)+1.472(ʃ0.154)ˑDMI(kg/d)-1.388(ʃ0.451)ˑFL-0.669(ʃ0.338)ˑADFI(kg/d)4.220.8422.2方程18Eq.18CH4(MJ/d)=71.47(ʃ22.14)ˑ[1-exp(-0.0156(ʃ0.0051)ˑDMI(kg/d))]3.560.8330.3㊀㊀GEI:总能采食量grossenergyintake;DEI:消化能采食量digestibleenergyintake;DMI:干物质采食量drymatterintake;NDF(I):中性洗涤纤维含量或采食量neutraldetergentfibercontentorintake;FL:饲喂水平feedinglevel;ADFI:酸性洗涤纤维采食量aciddetergentfiberintake;MEI:代谢能采食量metabolizableenergyintake;EE(I):粗脂肪含量或采食量etherex⁃tractcontentorintake;NFCI:非纤维性碳水化合物采食量non⁃fibercarbohydrateintake;OMDm:采食维持水平有机物消化率organicmatterdigestibilityatmaintenanceleveloffeedintake;MF:乳脂肪含量milkfatcontent;BW:体重bodyweight;RMSE:均方根误差rootmeanssquareerror;RMSPE:均方根预测误差rootmeansquarepredictionerror㊂5 反刍动物瘤胃甲烷排放调控措施㊀㊀瘤胃甲烷产量受动物个体㊁饲粮组成㊁瘤胃发酵模式㊁瘤胃微生物组成及活性等多种因素影响㊂研究人员围绕反刍动物瘤胃甲烷调控展开了大量研究,主要的调控措施包括:调整饲粮结构,改变瘤胃发酵模式;使用甲烷抑制剂,抑制甲烷生成途径及甲烷生成相关微生物活性;增加其他电子受体,竞争性抑制甲烷产生㊂此外,提高动物的生长性能,优化畜群结构减少非生产动物的数量,以及选育低甲烷排放品种等也是调控瘤胃甲烷排放的有效措施(图2)㊂通常情况下,不同调控措施之间可相互影响,共同发挥调控作用㊂㊀㊀调整饲粮结构,改善瘤胃发酵模式和瘤胃微生物组成及活性进而调控瘤胃甲烷排放㊂饲粮组成对瘤胃甲烷生成具有重要影响㊂随饲粮精料比例的增加,瘤胃中乙酸比例降低,丙酸比例升高,瘤胃发酵模式以丙酸型发酵为主,而丙酸是瘤胃中仅次于甲烷的氢利用物质,可竞争性抑制瘤胃甲烷产生[10]㊂高精料饲粮会降低瘤胃pH,抑制产甲烷古菌及原虫活性进而降低甲烷产量[47]㊂然而,增加饲粮精料比例不但增加了饲养成本,而且易引起亚急性或急性瘤胃酸中毒㊁蹄叶炎等营养代谢病㊂Meale等[48]通过体外法研究发现,墨西哥丁香(Gliricidiasepium)和臂形草(Brachiariaruziziensis)具有降低甲烷排放的潜力㊂Machado等[49]通过体外法研究了多种海藻类植物发现,钥形毛藻(Asparagopsis)和鞘藻(Oedogonium)具有显著降低甲烷排放的作用㊂Wang等[12]研究发现,增加饲粮中非粗料来源纤维的含量,有降低体外甲烷产量的趋势,并增加了发酵液中丙酸的比例㊂因此,开发利用新型优质饲料比单纯增加饲粮精料水平更有应用前景㊂㊀㊀使用甲烷抑制剂,抑制甲烷生成途径及甲烷7105㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报32卷生成相关微生物活性㊂甲烷抑制剂主要包括植物次级代谢物㊁脂类㊁卤代物㊁离子载体及硝基物等㊂单宁等植物次级代谢物一方面可抑制产甲烷古菌活性抑制甲烷生成,另一方面可减少原虫数量抑制甲烷生成[50]㊂脂类可通过抑制产甲烷古菌活性抑制甲烷生成,且不饱和脂肪酸还可通过生物氢化作用竞争性抑制甲烷生成[51]㊂卤代物和离子载体对甲烷的抑制作用主要是通过毒害产甲烷古菌直接降低甲烷产量[52-53]㊂离子载体还可刺激产琥珀酸菌和丙酸菌生长,通过增加丙酸产量从而竞争性抑制甲烷生成[40]㊂3-硝基丙醇可在不损害动物生产性能和健康的情况下持续降低甲烷产量并增加丙酸产量[54],被认为是目前最有潜力及应用价值的甲烷抑制剂㊂此外,科学家通过免疫法使用产甲烷古菌疫苗抑制瘤胃甲烷产生[55],但由于大部分瘤胃产甲烷菌无法纯培养,因而利用纯培养产甲烷古菌开发的疫苗可能导致瘤胃未培养产甲烷菌数量增加㊂甲烷抑制剂普遍存在成本高㊁毒副作用及生物残留等诸多弊端,且抑制剂可使产甲烷古菌产生抗性,因此甲烷抑制剂长期作用效果有待观察㊂图2㊀反刍动物瘤胃甲烷排放调控措施Fig.2㊀StrategiestomitigateCH4emissioninrumen[40]㊀㊀增加其他电子受体,竞争性抑制甲烷生成㊂硝酸盐在瘤胃中对氢的亲和力大于二氧化碳,可通过与产甲烷古菌竞争氢进而减少瘤胃甲烷生成[49],硝酸盐自身被还原为亚硝酸盐,进一步生成氨㊂Lee等[56]研究发现,饲粮中添加硝酸盐能降低肉牛12%的甲烷排放㊂VanZijderveld等[57]在奶牛饲粮中添加硝酸盐,降低了16%的甲烷排放㊂硝酸盐和亚硝酸盐具有一定的毒性,饲喂硝酸盐会增加其在组织和奶中的残留[58-59]㊂此外,饲粮中添加延胡索酸和苹果酸等丙酸前体物,可通过增加丙酸生成竞争性抑制甲烷生成[60]㊂6㊀小㊀结㊀㊀消耗氢气生成甲烷从而促进碳水化合物的降解吸收是反刍动物在物种进化过程中形成的正常生理机制,各种直接抑制甲烷生成的调控措施在瘤胃微生物复杂的自我调节下很难长期发挥作用㊂丙酸生成是瘤胃内可与甲烷生成途径竞争代谢氢的内在代谢过程,通过竞争性抑制甲烷产生从而增加丙酸产量,不会因为瘤胃中的氢无法被及时排出而影响发酵,同时作为瘤胃葡萄糖前体物的丙酸是反刍动物重要的能量来源物质㊂因此,竞争性抑制甲烷生成,在调控甲烷生成的同时提高饲料能量利用率是一种具有应用前景的甲烷调控模式㊂810511期王㊀坤等:反刍动物瘤胃甲烷生成相关研究进展参考文献:[1]㊀CONRADR.Theglobalmethanecycle:recentad⁃vancesinunderstandingthemicrobialprocessesin⁃volved[J].EnvironmentalMicrobiologyReports,2009,1(5):285-292.[2]㊀LENHARTK,BUNGEM,RATERINGS,etal.Evi⁃denceformethaneproductionbysaprotrophicfungi[J].NatureCommunications,2012,3:1046.[3]㊀LIUJG,CHENH,ZHUQA,etal.Anovelpathwayofdirectmethaneproductionandemissionbyeu⁃karyotesincludingplants,animalsandfungi:anover⁃view[J].AtmosphericEnvironment,2015,115:26-35.[4]㊀BIZ㊅ICᶄM,KLINTZSCHT,IONESCUD,etal.Cya⁃nobacteria,themostancientandabundantphotoau⁃totrophsonearthproducethegreenhousegasmethaneduringphotosynthesis[J].BioRxiv,2019:398958.[5]㊀LIUYC,WHITMANWB.Metabolic,phylogenetic,andecologicaldiversityofthemethanogenicarchaea[J].AnnalsoftheNewYorkAcademyofSciences,,2008,1125(1):171-189.[6]㊀LYUZ,SHAONN,AKINYEMIT,etal.Methano⁃genesis[J].CurrentBiology,2018,28(13):R727-R732.[7]㊀THAUERRK,KASTERAK,SEEDORFH,etal.Methanogenicarchaea:ecologicallyrelevantdiffer⁃encesinenergyconservation[J].NatureReviewsMi⁃crobiology,2008,6(8):579-591.[8]㊀SÖLLINGERA,URICHT.Methylotrophicmethano⁃genseverywhere⁃physiologyandecologyofnovelplayersinglobalmethanecycling[J].BiochemicalSo⁃cietyTransaction,2019,47(6):1895-1907.[9]㊀JOHNSONKA,JOHNSONDE.Methaneemissionsfromcattle[J].JournalofAnimalScience,1995,73(8):2483-2492.[10]㊀MCALLISTERTA,NEWBOLDCJ.Redirectingru⁃menfermentationtoreducemethanogenesis[J].Aus⁃tralianJournalofExperimentalAgriculture,2008,48(2):7-13.[11]㊀DENMANSE,FERNANDEZGM,SHINKAIT,etal.Metagenomicanalysisoftherumenmicrobialcom⁃munityfollowinginhibitionofmethaneformationbyahalogenatedmethaneanalog[J].FrontiersinMicrobi⁃ology,2015,6:1087.[12]㊀WANGK,NANXM,CHUKK,etal.Shiftsofhy⁃drogenmetabolismfrommethanogenesistopropionateproductioninresponsetoreplacementofforagefiberwithnon⁃foragefibersourcesindietsinvitro[J].FrontiersinMicrobiology,2018,9:2764.[13]㊀LANW,YANGCL.Ruminalmethaneproduction:associatedmicroorganismsandthepotentialofapply⁃inghydrogen⁃utilizingbacteriaformitigation[J].Sci⁃enceoftheTotalEnvironment,2019,654:1270-1283.[14]㊀HENDERSONG,COXF,GANESHS,etal.Rumenmicrobialcommunitycompositionvarieswithdietandhost,butacoremicrobiomeisfoundacrossawidege⁃ographicalrange[J].ScientificReports,2015,5:14567.[15]㊀SESHADRIR,LEAHYSC,ATTWOODGT,etal.CultivationandsequencingofrumenmicrobiomemembersfromtheHungate1000collection[J].NatureBiotechnology,2018,36(4):359-367.[16]㊀KITTELMANNS,SEEDORFH,WALTERSWA,etal.Simultaneousampliconsequencingtoexploreco⁃occurrencepatternsofbacterial,archaealandeukaryot⁃icmicroorganismsinrumenmicrobialcommunities[J].PLoSOne,2013,8(2):e47879.[17]㊀NEWBOLDCJ,LÓPEZS,NELSONN,etal.Propio⁃nateprecursorsandothermetabolicintermediatesaspossiblealternativeelectronacceptorstomethanogene⁃sisinruminalfermentationinvitro[J].BritishJournalofNutrition,2005,94(1):27-35.[18]㊀VANZIJDERVELDSM,GERRITSWJJ,APA⁃JALAHTIJA,etal.Nitrateandsulfate:effectivealter⁃nativehydrogensinksformitigationofruminalmeth⁃aneproductioninsheep[J].JournalofDairyScience,2010,93(12):5856-5866.[19]㊀BEAUCHEMINKA,UNGERFELDEM,ECKARDRJ,etal.Review:fiftyyearsofresearchonrumenmethanogenesis:lessonslearnedandfuturechallengesformitigation[J].Animal,2020,14(Suppl.1):S2-S16.[20]㊀PATRAAK.Predictionofentericmethaneemissionfrombuffaloes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tutilizedirectlyintomeatandmilkproducts.However,ruminantsemitabout100milliontonsofmethaneintotheenvironmenteveryyear,whichnotonlyexacerbatestheglobalgreenhouseeffects,butalsoreducesfeedutilization.Thisarticlereviewedtherecentre⁃searchprogressinmethanogenesisintherumen,rumenmicroorganismsassociatedwithmethaneemissions,measurementmethodsandstrategiesinmitigatingmethaneemissionsinordertoprovideareferenceforstudiesofruminantmethaneemissions.[ChineseJournalofAnimalNutrition,2020,32(11):5013⁃5022]Keywords:ruminants;rumen;methanogenesis;methanogens2205。
动物营养学报2019,31(9):3927⁃3935ChineseJournalofAnimalNutrition㊀doi:10.3969/j.issn.1006⁃267x.2019.09.002反刍动物瘤胃优势产甲烷菌菌群结构及多样性研究进展董利锋1㊀付㊀敏2㊀陈天宝2㊀刁其玉1∗(1.中国农业科学院饲料研究所,农业部饲料生物技术重点实验室/奶牛营养学北京市重点实验室/反刍动物及其幼畜营养代谢中美联合研究中心,北京100081;2.四川省畜牧科学研究院,动物遗传育种四川省重点实验室,成都610066)摘㊀要:甲烷是反刍动物瘤胃产甲烷菌分解饲粮有机物的最终产物,它不仅是一种造成极端气候变化的重要温室气体,而且也难以被动物利用,造成能量损失和养殖效率降低㊂瘤胃产甲烷菌还原二氧化碳生成甲烷的过程受到动物品种㊁遗传背景㊁生理阶段以及地理背景等诸多因素的影响㊂本文重点总结了国内外典型反刍动物瘤胃内产甲烷菌菌群的组成和多样性特征,以期明确瘤胃甲烷排放机理,为进一步研究产甲烷菌的基因功能和代谢途径以及探索反刍动物瘤胃甲烷减排和调控机制提供参考㊂关键词:反刍动物;瘤胃产甲烷菌菌群组成和多样性;温室气体减排中图分类号:S811.6㊀㊀㊀㊀文献标识码:A㊀㊀㊀㊀文章编号:1006⁃267X(2019)09⁃3927⁃09收稿日期:2019-01-31基金项目:国家重点研发计划(2017YFF0211702,2016YFE0109000);青年科学基金项目(31802085);中国科协青年托举人才工程(2017⁃2019);四川省科技计划国际合作项目(2017HH0090)作者简介:董利锋(1985 ),男,河南巩义人,助理研究员,博士,主要从事反刍动物营养与温室气体调控的研究㊂E⁃mail:donglifeng@caas.cn∗通信作者:刁其玉,研究员,博士生导师,E⁃mail:diaoqiyu@caas.cn㊀㊀由于温室气体排放造成全球性极端气候变化和生态环境危机是人类迄今面临的最复杂的挑战之一㊂自1750年起的工业化时代以来,快速增长的人口数量㊁大规模的密集型农业活动㊁加速的工业化进程及化石燃料源的能源消耗促使了大气中温室气体含量的持续增加[1]㊂甲烷(CH4)是一种比二氧化碳(CO2)危害更大的温室气体,在大气中存留时间超过10年,增温潜势是CO2的28倍[2]㊂㊀㊀反刍动物养殖业是现代畜牧业生产中一个重要的组成部分,其绿色高效和可持续发展对于改善我国城乡居民的膳食结构㊁促进农村产业结构调整和带动国民经济产业发展具有重要意义[3]㊂我国是牛肉和乳制品生产和消费大国,2016年底中国奶牛和肉牛存栏量分别为1507万和7373万头,牛肉产量仅次于美国和巴西;2017年奶类产量达到3655万t,居世界第3位[4]㊂作为重要的反刍动物畜种,牦牛和水牛在中国分布广,数量大㊂据统计,牦牛(2009年)和水牛(2004年)数量分别为1400万和2280万头[5-6]㊂持续增长的反刍动物产品消费量与由此而来的大规模养殖生产是重要的CH4排放源,其总量可达到人类活动CH4总排放的40%左右[7]㊂截止到2010年,中国奶牛胃肠道CH4排放量所占反刍动物CH4排放总量的比例由1990年的3.3%上升到了13.1%,且呈逐年上升的趋势[8]㊂更重要的是,以甲烷能的形式损失掉的能量可占到饲粮总能的2% 12%,制约了我国反刍动物生产的养殖效率和盈利能力[9-10]㊂饲粮有机物经瘤胃微生物降解作用生成挥发性脂肪酸,同时伴随有氢气(H2)和CO2的产生㊂H2作为反应底物经过一系列复杂的生物化学反应被瘤胃产甲烷菌利用生成CH4[11]㊂反刍动物品种和生㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报31卷理阶段等诸多因素的差异能够影响瘤胃内产甲烷菌的定植㊁组成和多样性特征,继而造成瘤胃CH4排放量的不同[12]㊂因此,深入研究和理解反刍动物瘤胃产甲烷菌菌群的组成及其多样性有助于明确CH4生成机理㊁为寻找合适的瘤胃CH4调控措施提供理论依据㊂为此,本文重点综述了近年来主要类型和品种反刍动物瘤胃内产甲烷菌的菌群结构和多样性特征,旨在为后期进一步研究产甲烷菌的基因功能和代谢途径㊁探索反刍动物瘤胃CH4减排机制和提高养殖效率提供思路和参考㊂1㊀产甲烷菌分类㊀㊀产甲烷菌是一类区别于细菌且严格厌氧的原核生物,也是一类重要的代谢产甲烷的古菌㊂甲酸甲烷杆菌(Methanobacteriumformicium)和巴氏甲烷八叠球菌(Methanosarcinabarkeri)是最早鉴定出来,同时也是研究最为深入的产甲烷菌㊂与CH4为能量来源的嗜甲烷菌(Methanotrophs)不同,产甲烷菌(Methanogen)这个概念首次由Bry⁃ant提出并被广泛引用和研究[13]㊂随着分子生物学等技术的发展,越来越多存在于反刍动物瘤胃㊁海洋沉积物㊁厌氧发酵罐中的产甲烷菌菌株被鉴定出来㊂已知的产甲烷菌可以分为4个纲:甲烷杆菌纲(Methanobacteria)㊁甲烷球菌纲(Methano⁃cocci)㊁甲烷微菌纲(Methanomicrobia)和甲烷火菌纲(Methanopyri),7个目:甲烷杆菌目(Metha⁃nobacteriales)㊁甲烷球菌目(Methanococcales)㊁甲烷微菌目(Methanomicrobiales)㊁甲烷八叠球菌目(Methanosarcinales)㊁甲烷火球菌目(Methanopy⁃rales)㊁甲烷胞菌目(Methanocellales)和甲烷原体目(Methanoplasmatales)㊂甲烷杆菌属(Metha⁃nobacterium)㊁甲烷短杆菌属(Methanobrevibact⁃er)㊁甲烷微菌属(Methanomicrobium)和甲烷八叠球菌属(Methanosarcine)是广泛存在于反刍动物瘤胃内的4个产甲烷菌属[14]㊂目前有7个种的瘤胃产甲烷菌能够在体外培养基中存活,即:甲酸甲烷杆菌(Methanobacteriumformicicum)㊁布氏产甲烷杆菌(Methanobacteriumbryantii)㊁反刍兽甲烷短杆菌(Methanobrevibacterruminantium)㊁米氏甲烷短杆菌(Methanobrevibactermillerae)㊁奥氏甲烷短杆菌(Methanobrevibacterolleyae)㊁可活动甲烷微菌(Methanomicrobiummobile)和奥兰汤基甲烷囊菌(Methanoculleusolentangyi)[15]㊂近年来,人们更多地利用系统发育学分类法,以物种间小亚基核糖体核苷酸差异性作为判断依据的方法被逐渐应用到产甲烷菌的鉴定和分类中[16];以16SrRNA/mcrA功能基因克隆文库等为代表的分子生物学技术也被逐渐应用到分析产甲烷菌的种群结构组成㊁群落多样性㊁菌群功能及其代谢机理的研究中㊂2㊀产甲烷菌的甲烷合成途径㊀㊀瘤胃产甲烷菌生存在严格的厌氧环境中,通过CH4的生物合成作用形成维持细胞生存所需的能量,具有独特的生物化学代谢途径㊂产甲烷古菌能够将CO2㊁H2㊁甲酸等物质转化成CH4或者CH4和CO2㊂自然界中CH4生成的3种途径包括CO2还原途径㊁甲基营养型途径和乙酸发酵型途径㊂还原CO2是反刍动物瘤胃产CH4的重要途径(图1),占到瘤胃总排放量的90%以上,而以挥发性脂肪酸和甲基化合物为底物的产甲烷途径较难在瘤胃内发生[17]㊂这3种途径中有众多关键酶和辅酶的参与[11,18],但最终都形成甲基辅酶M(methyl⁃coenzymeM),其在甲基辅酶M还原酶(methyl⁃coenzymereductase,mcr)的催化下生成CH4㊂甲基辅酶M还原酶是产甲烷菌特有的一种酶(除甲烷营养型古菌外),编码mcr其中的1个亚基基因(mcrA)可用于产甲烷菌的分类学研究㊂如图1所示,产CH4过程伴随着细胞膜内外钠离子或质子跨膜梯度的形成和变化,能够借助位于细胞膜上的ATP合成酶将ADP转化为ATP㊂3种生物产CH4途径中产生的能量各有差异,以CO2还原途径所产生的能量最高,为-135әGkJ/molCH4,而甲基营养型途径和乙酸发酵型产能较低[17-20]㊂3㊀反刍动物瘤胃产甲烷菌菌群组成和多样性特征3.1㊀奶牛㊀㊀动物品种㊁饲粮以及地理位置之间的复杂互作关系对奶牛瘤胃产甲烷菌区系具有明显的影响㊂King等[21]从荷斯坦和娟姗泌乳奶牛瘤胃液样品中提取微生物总DNA,分别从瘤胃产甲烷菌基因克隆文库得到了180和185个克隆子㊂试验得到的365条有效序列分属为55个操作分类单元82939期董利锋等:反刍动物瘤胃优势产甲烷菌菌群结构及多样性研究进展(operationaltaxonomicunits,OTU),其中荷斯坦和娟姗泌乳奶牛独有的OTU数量分别是23和12个,两者共有OTU数量为20个(占总序列的85%)㊂研究发现,娟姗牛瘤胃内米氏甲烷短杆菌相对丰度是荷斯坦奶牛的2倍以上,而反刍兽甲烷短杆菌相对丰度在2个品种之间没有显著差异㊂从香农指数的结果中发现,荷斯坦奶牛产甲烷菌的多样性显著高于娟姗牛㊂Skillman等[22]采用同样方法研究了放牧条件下娟姗牛瘤胃内产甲烷菌的分布特征,发现优势产甲烷菌分别为反刍兽甲烷短杆菌和unassignedMethanosphaeraspe⁃cies,相对丰度都为33.3%,而居于第3位的unas⁃signedMethanobrevibacterspecies相对丰度较低,为26.7%㊂同样的,Whitford等[23]发现舍饲条件下荷斯坦泌乳奶牛瘤胃优势产甲烷菌分别为unas⁃signedMethanobrevibacterspecies和unassignedMethanosphaeraspecies,相对丰度分别为36.6%和26.8%;反刍兽甲烷短杆菌和unassignedspeciesofMethanosarcinales相对丰度则分别为21.9%和14.6%㊂DeMulder等[24]比较了荷斯坦和比利时蓝泌乳牛在相同饲粮组成和生理条件下瘤胃甲烷菌的多样性特征㊂基于16SrRNA扩增子测序的结果表明,甲烷杆菌科(Methanobacteriaceae)㊁甲烷热球菌科(Methanomassiliicoccaceae)和甲烷八叠球菌科(Methanosarcinaceae)是2个奶牛品种瘤胃内的优势菌群;但3种产甲烷菌的相对丰度在2个品种之间没有显著差异㊂以上结果与Cersosimo等[25]结果一致,认为荷斯坦和娟姗牛瘤胃内存在以甲烷短杆菌属为核心的产甲烷菌群㊂㊀㊀Fdred:还原的铁氧化还原蛋白ferredoxin⁃reduced;Fdox:氧化的铁氧化还原蛋白ferredoxin⁃oxygenated;MF:甲烷呋喃methanofuran;H4MPT:四氢甲烷蝶呤tetrahydromethanopterin;Methyl⁃S⁃CoM:甲基辅酶MmethylcoenzymeM;F420:辅酶F420氧化态oxidizedformofcoenzymeF420;F420H2:辅酶F420还原态reducedformofcoenzymeF420;HSCoM:辅酶McoenzymeM;HSCoB:辅酶BcoenzymeB;CoMS⁃SCoB:异质二硫化物heterodisulfideofCoMandCoB;NADP:烟酰胺腺嘌呤二核苷磷酸nicotinamideadeninedinucleosidephosphate;NADPH:还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸nicotinamideadeninedinucleotidephosphate㊂图1 产甲烷菌合成代谢通路(以反刍兽甲烷短杆菌为例)Fig.1㊀Synthesisandmetabolismpathwayofmethanogens(takeMethanobrevibacterruminantiumasexample)[17]㊀㊀反刍动物瘤胃内包括产甲烷菌在内的微生态系统对机体的生理活动非常重要,而奶牛所处的不同生理阶段反过来能够直接影响产甲烷菌的菌群组成和多样性[24]㊂Guzman等[26]采用16S9293㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报31卷rDNA和实时荧光定量PCR技术,发现荷斯坦犊牛出生20min后瘤胃内就有Methanomicrobialesmo⁃bile㊁Methanobrevibacterspp.和Geobacterspp.的存在㊂出生后第2天沃氏球菌(Methanococcalesvo⁃tae)开始出现,但其相对丰度显著低于Methanomi⁃crobialesmobile和Geobacterspp.㊂瘤胃内产甲烷菌相对丰度变化的原因可能与其他菌群的存在有关,如Geobacterspp.较早在瘤胃内存在,且能够通过直接的电子转移与产甲烷菌形成协同作用,减少有机物发酵产物的积累而促进产甲烷菌的定植㊂作为检测瘤胃产甲烷菌存在和相对丰度的重要标记物,Dong等[27]运用基于mcrA功能基因的高通量测序方法发现荷斯坦犊牛液体饲粮㊁固态饲粮和断奶时间的改变导致瘤胃内产甲烷菌菌群组成发生变化,在属水平上优势产甲烷菌分别是甲烷短杆菌和Methanosphaera㊂Cunha等[28]采用16SrRNA测序技术分析了处于青春前期㊁青春期和配种期的荷斯坦后备奶牛瘤胃中产甲烷菌菌群的多样性,结果发现3个不同生理阶段瘤胃内属水平上的优势菌群分别是甲烷短杆菌属和Metha⁃nosphaera,其相对丰度分别为95.03%和4.32%㊂但是随着生理阶段的递进,产甲烷菌的优势群落及数量上都存在较显著的差异㊂如青年前期后备奶牛瘤胃内甲烷短杆菌属的相对丰度显著低于青春期和配种期奶牛,但其瘤胃内Methanosphaera相对丰度最高㊂泌乳中期奶牛瘤胃产甲烷菌的组成与Cunha等[28]的结果相似,在属水平上甲烷短杆菌属相对丰度最高(88.8%),其次是Methano⁃sphaera和甲烷热球菌科,相对丰度分别为4.8%和5.6%[29]㊂Wang等[30]采用基于功能基因的高通量测序方法对泌乳前期荷斯坦奶牛瘤胃内产甲烷菌进行分析,从6个mcrA克隆文库中得到了763条序列,分属于25个OTU㊂结果显示优势的产甲烷菌为未培养产甲烷菌(rumenclusterC,RCC),其相对丰度为71%,而甲烷杆菌相对丰度只有29%㊂Janssen等[15]发现RCC在瘤胃的含量较低,仅占到古菌总量的15.8%,而甲烷短杆菌属占古菌总量的比例超过60%以上㊂Li等[31]运用16SrRNA方法发现甲烷短杆菌属是泌乳前期荷斯坦奶牛瘤胃内的优势产甲烷菌,这与以往的研究结果一致,认为甲烷短杆菌属的相对丰度与瘤胃产甲烷能力密切相关㊂Cersosimo等[25]研究了荷斯坦㊁娟姗以及荷斯坦与娟姗杂交奶牛在不同泌乳阶段瘤胃产甲烷菌的特征㊂在泌乳的第3天,娟姗牛瘤胃内陶氏甲烷短杆菌(Methanobrevibacterthaueri)相对丰度(26.9%)显著低于荷斯坦奶(30.7%)和荷斯坦与娟姗杂交奶牛(30.3%)㊂3个品种奶牛在泌乳期间瘤胃内的主要产甲烷菌是史氏甲烷短杆菌(Methanobrevibactersmithii)㊁陶氏甲烷短杆菌㊁反刍兽甲烷短杆菌和米氏甲烷短杆菌㊂Jeyanathan等[32]研究发现反刍兽甲烷短杆菌㊁奥氏甲烷短杆菌㊁戈氏甲烷短杆菌(Methano⁃brevibactergottschalkii)㊁陶氏甲烷短杆菌和米氏甲烷短杆菌,以及Methanosphaera相关的产甲烷菌共同存在于荷斯坦与娟姗杂交奶牛和绵羊的瘤胃内,属于核心的产甲烷菌群,不随着动物种类和饲粮类型而改变,这为下一步明确和寻找降低CH4产量的主导菌群提供了思路㊂3.2 肉牛㊀㊀Wright等[33]从海福特杂交肉牛的瘤胃内容物中提取总DNA,利用产甲烷菌的特异性引物扩增建立了产甲烷菌基因文库㊂对241个克隆进行RDP分析之后共获得23个16SrRNA序列,60%以上的序列为反刍兽甲烷短杆菌㊂其中10个序列与可培养的3种产甲烷菌(甲烷杆菌目㊁甲烷微菌目和甲烷八叠球菌目)16SrRNA序列的相似性为89.8% 100.0%㊂13个序列与火山嗜热原体(Thermoplasmavolcanium)和嗜酸热原体(Thermo⁃plasmaacidophilum)的相似性为74.1% 75.8%,表明该品种肉牛瘤胃产甲烷菌以反刍兽甲烷短杆菌为优势菌群㊂与上述结果一致,Daquiado等[34]采用基于mcrA功能基因的高通量测序手段研究了韩牛(Bostauruscoreanae)瘤胃液内产甲烷菌的多样性特征㊂试验共得到146个mcrA克隆,归属于6个OTU㊂研究发现反刍兽甲烷短杆菌(93个克隆)为优势产甲烷菌,占到了产甲烷菌总量的63.6%,Methanobrevibactermilerae和Methanobre⁃vibactermobile的相对丰度分别为21.2%和6.8%㊂Carberry等[35]研究也证实甲烷短杆菌属是利木赞杂交肉牛瘤胃内的优势菌属,主要包括史氏甲烷短杆菌和反刍兽甲烷短杆菌㊂Sirohi等[36]综合采用16SrRNA和功能基因mcrA构建了荷斯坦与塔帕卡杂交肉牛瘤胃产甲烷菌的基因文库㊂16SrRNA文库中的13个OTU都属于甲烷杆菌目,其中12个OTU属于Methanobrevibacterspp.,1个OTU属于斯氏甲烷球菌(Methanosphaerastadtma⁃03939期董利锋等:反刍动物瘤胃优势产甲烷菌菌群结构及多样性研究进展nae)㊂而mcrA文库18个OTU中有15个OTU属于甲烷杆菌目,2个OTU属于甲烷微菌目,只有1个OTU属于甲烷八叠球菌目㊂研究表明,荷斯坦杂交肉牛瘤胃中甲烷杆菌目是优势产甲烷菌,但基于功能基因的mcrA克隆文库能够更好地反映瘤胃内产甲烷菌的多样性㊂为了比较瘤胃古菌特异性引物对产甲烷菌群多样性的影响,裴彩霞等[37]基于3种特异性引物构建了中国晋南牛产甲烷菌的克隆文库,结果发现引物Archf364/1386建立的克隆库中,100个克隆中有61个和15个克隆分别属于Methanobrevibactersp.1Y和Methano⁃brevibactersp.SM9(相似性ȡ97%)㊂以1Af/1100Ar为引物的克隆文库中,所有16个OTU中只有JNB8和MethanosphaerastadtmanaeDSM3091的相似性大于97%,其他序列与奥胡斯甲烷杆菌(Methanobacteriumaarhusense)或斯氏甲烷球菌的相似性较低㊂以Met86F/Met1340R为引物建立的产甲烷菌克隆文库中,属于Methanobrevibact⁃ersp.1Y的克隆子有47个,而只有26个克隆子属于Methanobrevibactersp.SM9,两者的相似性都在98%以上㊂该结果与以Archf364/1386为引物的菌群结构分析最为相似,表明晋南牛瘤胃内优势产甲烷菌为甲烷短杆菌属㊂以上结果表明,甲烷短杆菌属为肉牛瘤胃内的优势菌群,其组成和多样性结果不受遗传背景㊁杂交特征以及研究手段的影响㊂关于不同品种肉牛瘤胃内产甲烷菌区系的多样性及相关代谢通路的差异化机理还有待深入研究㊂3.3 水牛和牦牛㊀㊀中国水牛以沼泽型品种为主,大多分布在淮河以南的水稻产区,由于水牛生活环境的特殊性和耐粗饲等特征,使其具有特殊的瘤胃功能;探索其瘤胃内产甲烷菌菌群结构和多样性对于提高水牛生产效率和降低温室气体排放具有重要意义㊂杨承剑等[38]基于Met86F/Met1340R引物研究了60月龄雌性德昌水牛瘤胃内产甲烷菌的多样性㊂在99条16SrRNA基因序列中属于甲烷短杆菌属的序列占到94%以上,该结果与以往关于其他反刍动物(肉牛和牦牛)上的研究结果[39-40]相一致㊂刘园园等[41]采用聚合酶链反应-变性梯度凝胶电泳(PCR⁃DGGE)技术对广西本地沼泽型水牛瘤胃产甲烷菌进行了研究,测序结果得到的5条古菌序列中,4条均属于甲烷短杆菌属,属于瘤胃内的优势产甲烷菌㊂Franzolin等[42]对比了3种(玉米秸秆㊁牧草和甘蔗稍叶)粗饲料组成对巴西水牛(Bubalusbubalis)瘤胃产甲烷菌菌群多样性的影响,从构建的3个克隆文库中共获得467个有效克隆子,可分为19个OTU,而甲烷短杆菌属是3个组中共有的优势产甲烷菌菌群㊂Singh等[43]基于mcrA功能基因发现印度苏替水牛瘤胃内的产甲烷菌以甲烷杆菌目为主㊂杨承剑等[44]发现中国摩拉水牛和德宏水牛瘤胃液中产甲烷菌以甲烷杆菌目中的甲烷短杆菌属为优势菌群,但德宏水牛瘤胃内发现较多未知的产甲烷菌序列㊂与以上结果不同,Kumar等[45]采用16SrRNA基因克隆文库的方法比较了印度4个地区摩拉水牛瘤胃内产甲烷菌的多样性分布,结果表明旁遮普㊁北方邦和拉贾斯坦邦地区水牛瘤胃优势产甲烷菌是甲烷短杆菌属,而甲烷微菌属是哈里亚纳邦地区水牛瘤胃内的优势菌群㊂Chaudhary等[46]采用Met86F/Met1340R为引物从印度摩拉水牛获得了17条16SrRNA基因序列,证明15条序列属于甲烷微菌属,属于瘤胃内的优势产甲烷菌㊂从目前的文献结果来看,尽管甲烷微菌属作为主导菌群存在于水牛瘤胃内,但不同品种和区域内水牛瘤胃内大多以甲烷短杆菌属为优势产甲烷菌群㊂由于水牛生存环境和饲养模式的特殊性,其瘤胃内产甲烷菌的分布和功能等特征还需进一步研究㊂㊀㊀牦牛是高海拔地区重要的草食性反刍动物,能够把其他牛种无法利用的天然草地资源转化成人类需要的生产和生活资料㊂牦牛超强的环境适应能力和耐粗饲料的显著优势,使得其瘤胃具有独特的生物学研究价值㊂张学燕等[47]分析了青海省河南县放牧牦牛瘤胃食糜和瘤胃液中产甲烷菌的分布㊂基于产甲烷菌特异性引物Met86F/Met1340R扩增16SrRNA基因的研究发现,由2种样品构建的克隆文库中有200个序列,其中126个序列(食糜中68个㊁瘤胃液中58个)属于甲烷短杆菌属,占总序列的63%,12个序列(瘤胃食糜中7个㊁瘤胃液中5个)属于产甲烷球菌属(Meth⁃anococcus),占总序列6%㊂与此同时,Methano⁃brevibacterruminantiumstrainYakM3是瘤胃食糜中的优势序列,而Methanobrevibactersp.1Y则为瘤胃液中的优势产甲烷菌序列㊂Xue等[48]发现西藏红原地区牦牛(Bosgrunniens)瘤胃内优势产甲烷菌群分别是甲烷杆菌科(占总产甲烷菌含量的1393㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报31卷82.5%,下同)㊁甲烷热球菌科(13.0%)㊁甲烷八叠球菌科(3.0%)和甲烷微菌目(1.5%)㊂与以上结论不同,Huang等[49]发现青海牦牛瘤胃内的优势产甲烷菌是甲烷马赛球菌(Methanomassiliicoc⁃cales,80.9%)㊁甲烷杆菌目(12.4%)和甲烷微菌目(0.96%)㊂原因可能与采用的测定手段和动物品种有关㊂Wang等[50]采用高通量测序的方法比较了2个生理阶段(60和120月龄)西藏甘孜地区牦牛瘤胃内产甲烷菌的多样性,共获得2033个OTU,其中974个OTU属于成年牦牛(60月龄),846个OTU属于老年牦牛(120月龄),而两者共有213个OTU㊂甲烷短杆菌属和热无胞壁单胞菌(Thermogymnomonas)是2个生理阶段牦牛瘤胃内的优势菌,甲烷短杆菌属在老年牦牛瘤胃内的相对丰度显著高于成年牦牛,而老年牦牛瘤胃内热无胞壁单胞菌的相对丰度比成年牦牛低34%,表明牦牛瘤胃内产甲烷菌的结构和相对丰度会随着日龄的增加而发生显著性改变㊂有研究发现,与肉牛瘤胃内优势产甲烷菌相比,牦牛瘤胃液里甲烷短杆菌属的相对丰度较高,尽管肉牛和牦牛的甲烷排放量与它们瘤胃内产甲烷菌组成和多样性的差异没有直接的相关关系,但肉牛瘤胃内较高丰度的甲烷马赛球菌有助于底物(H2)的利用和CH4的产生[51-52]㊂4㊀小㊀结㊀㊀CH4是一种造成全球性极端气候变化的重要的温室气体之一,是反刍动物瘤胃内产甲烷菌参与饲粮有机物厌氧发酵的终端产物,同时也是清洁能源的主要成分㊂因此,开展反刍动物瘤胃产甲烷菌生成甲烷的机制研究,对于提高畜牧养殖业生产效率㊁减缓全球变暖趋势和开发清洁能源具有重要的理论和实践意义㊂近年来,分子生物学技术的发展和应用克服了传统研究方法的局限,为深入了解瘤胃产甲烷菌的菌群组成和结构变化规律提供了强有力的手段,并取得了显著成效㊂尽管动物品种㊁遗传背景㊁生理阶段㊁地理背景和研究手段等因素能够影响反刍动物瘤胃内产甲烷菌的分布特征,但是越来越多的研究证实甲烷短杆菌属及其相关的产甲烷菌种能够在维持瘤胃发酵稳态和产甲烷方面发挥重要的主导作用㊂另外,随着现代宏基因组学技术在反刍动物瘤胃中的应用,人们能够更为全面和深入地研究产甲烷菌的代谢途径㊁营养调控,挖掘出更多以前尚未发现的关键性功能性基因,以及更多的不可培养的产甲烷菌菌群,为探索和开发甲烷减排和调控措施提供新的理论和科学指导㊂致谢:㊀㊀感谢塔里木大学叶疆凤同学参与该综述的文献搜集和整理工作,感谢四川农业大学动物营养研究所彭全辉副教授给予本文撰写和内容上的指导㊂参考文献:[1]㊀世界气象组织.温室气体公报[EB/OL].[2019-01-20].https://public.wmo.int/zh⁃hans/media.[2]㊀IPCC.AR5synthesisreport:climatechange2014[R].Geneva,Switzerland:IPCC,2014.[3]㊀殷志扬,袁小慧.我国奶牛养殖业布局及生产组织模式现状[J].江苏农业科学,2013,41(8):8-10.[4]㊀中国农业年鉴编辑委员会.中国农业年鉴[M].北京:中国农业出版社,2017.[5]㊀牛春娥,张利平,孙俊锋,等.我国牦牛资源现状及其产品开发利用前景分析[J].安徽农业科学,2009,37(17):8003-8005.[6]㊀杨炳壮,梁贤威,曾庆坤,等.世界水牛发展趋势[J].中国牧业通讯,2005(15):70-71.[7]㊀IPCC.2006IPCCguidelinesfornationalgreenhousegasinventories[R].Kanagawa,Japan:Intergovern⁃mentalPanelonClimateChange,2006.[8]㊀王荣,邓近平,王敏,等.基于IPCCTier1层级的中国反刍家畜胃肠道甲烷排放格局变化分析[J].生态学报,2015,35(21):7244-7254.[9]㊀MUÑOZC,HUBES,MORALESJM,etal.Effectsofconcentratesupplementationonentericmethanee⁃missionsandmilkproductionofgrazingdairycows[J].LivestockScience,2015,175:37-46.[10]㊀周艳,邓凯东,董利锋,等.反刍家畜肠道甲烷的产生与减排技术措施[J].家畜生态学报,2018,39(4):6-10,54.[11]㊀KNAPPJR,LAURGL,VADASPA,etal.Invitedreview:entericmethaneindairycattleproduction:quantifyingtheopportunitiesandimpactofreducinge⁃missions[J].JournalofDairyScience,2014,97(6):3231-3261.[12]㊀NIUMT,KEBREABE,HRISTOVAN,etal.Predic⁃tionofentericmethaneproduction,yield,andintensityindairycattleusinganintercontinentaldatabase[J].GlobalChangeBiology,2018,24(8):3368-3389.23939期董利锋等:反刍动物瘤胃优势产甲烷菌菌群结构及多样性研究进展[13]㊀BRYANTMP.Methane⁃producingbacteria[M]//BUCHANANRE,GIBBONSNE.Bergey 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DOI :10.15906/11-2975/s.20202102基金项目:2018年省部共建草原家畜生殖调控与繁育国家重点实验室自主课题(30500-518390224)*通讯作者[摘要]与单胃动物不同,反刍动物有瘤胃、网胃、瓣胃和皱胃四个胃室,且以瘤胃为首的复胃内存在着数量众多的微生物。
这些微生物可以将饲料中的结构性碳水化合物,如纤维和半纤维发酵成挥发性脂肪酸(VFA ),为宿主动物提供所需的能量。
反刍动物消化道微生态组成受日粮、年龄、品种、环境和微生态制剂等因素的影响,而其组成与分布和宿主的消化吸收以及免疫密切相关。
本文综述了以牛羊为主的反刍动物瘤胃微生态分布特性及其作用,以及影响瘤胃微生态组成的外界因素,以期对未来的研究和应用提供参考。
[关键词]反刍动物;瘤胃;微生物;菌群多样性[中图分类号]S811.6[文献标识码]A[文章编号]1004-3314(2020)21-0008-07牛羊瘤胃微生物多样性及其影响因素司丽炜,韩红燕*(省部共建草原家畜生殖调控与繁育国家重点实验室,内蒙古大学,内蒙古呼和浩特010070)1反刍动物瘤胃微生物多样性在健康的反刍动物瘤胃内栖息着复杂、多样、非致病的多种微生物,其中包括瘤胃细菌、厌氧真菌、古细菌及瘤胃原虫等。
根据微生物的定植部位可分为三类:瘤胃液相菌、瘤胃固相菌和瘤胃壁黏附菌(代文婷,2014)。
1.1瘤胃细菌反刍动物瘤胃微生物中细菌的数量和种类最多,瘤胃液中细菌数量为1010~1011cfu/mL (巴哈提古丽,2010)。
根据形态瘤胃液中细菌大致可分为球菌、短杆菌、长杆菌、弧菌和螺旋菌等;根据功能可分为纤维素降解细菌、半纤维素降解细菌、淀粉降解细菌、蛋白降解细菌、脂肪降解细菌、利用酸菌和乳酸产生菌等。
Jami 等(2013)观测以色列荷斯坦奶牛从出生到成年期间瘤胃菌群的变化发现,1~3日龄组中厚壁菌门较其他年龄组更为丰富,而在2月龄组群中其数量有所减少,并在6月龄时再次明显地增加,表明厚壁菌门受月龄影响显著。
矿产资源开发利用方案编写内容要求及审查大纲
矿产资源开发利用方案编写内容要求及《矿产资源开发利用方案》审查大纲一、概述
㈠矿区位置、隶属关系和企业性质。
如为改扩建矿山, 应说明矿山现状、
特点及存在的主要问题。
㈡编制依据
(1简述项目前期工作进展情况及与有关方面对项目的意向性协议情况。
(2 列出开发利用方案编制所依据的主要基础性资料的名称。
如经储量管理部门认定的矿区地质勘探报告、选矿试验报告、加工利用试验报告、工程地质初评资料、矿区水文资料和供水资料等。
对改、扩建矿山应有生产实际资料, 如矿山总平面现状图、矿床开拓系统图、采场现状图和主要采选设备清单等。
二、矿产品需求现状和预测
㈠该矿产在国内需求情况和市场供应情况
1、矿产品现状及加工利用趋向。
2、国内近、远期的需求量及主要销向预测。
㈡产品价格分析
1、国内矿产品价格现状。
2、矿产品价格稳定性及变化趋势。
三、矿产资源概况
㈠矿区总体概况
1、矿区总体规划情况。
2、矿区矿产资源概况。
3、该设计与矿区总体开发的关系。
㈡该设计项目的资源概况
1、矿床地质及构造特征。
2、矿床开采技术条件及水文地质条件。
反刍动物的微生物消化特点反刍动物是一类特殊的哺乳动物,包括牛、羊、驯鹿等。
它们具有一个特殊的胃部构造和微生物共生系统,可以利用微生物的帮助进行高效的纤维素消化和能量获取。
下面将阐述反刍动物微生物消化的特点。
首先,反刍动物的胃部构造独特,由四个相互合作的胃室组成:瘤胃( rumen)、网状胃 reticulum)、皱胃 omasum)和真胃 abomasum)。
其中,瘤胃是最重要的消化器官。
瘤胃是一个巨大的发酵槽,容纳大量的微生物。
反刍动物在进食后,将食物咀嚼后咽下,进入瘤胃。
在瘤胃中,微生物包括细菌、纤毛动物和真菌,通过发酵作用分解纤维素、半纤维素和其他复杂多糖,产生短链脂肪酸等有机物。
这些有机物可以被反刍动物吸收和利用。
其次,反刍动物的微生物共生系统包括几十亿个微生物群落。
其中最为重要的是纤维素分解菌 Fibrobacter),它们能够分解纤维素和半纤维素。
此外,其他细菌如放线菌、拟杆菌等也参与纤维素分解。
纤维素分解菌产生外源酶,即纤维素酶,可以降解植物细胞壁的纤维素。
它们将纤维素分解成碳水化合物单元 葡萄糖、木糖等)和短链脂肪酸 乙酸、丙酸等)。
这些产物经过发酵后,能够被反刍动物吸收和利用为能量来源。
此外,微生物的存在也利于防止外源性病菌的生长。
阻碍病原体生长的因素包括pH值的降低、产生抗菌物质以及竞争营养物质等。
因此,微生物的共生对反刍动物的健康具有重要意义。
然而,反刍动物微生物消化的特点也存在一些问题。
由于微生物的活动产生大量气体,反刍动物会不时地进行反刍,将食物从瘤胃中再次咀嚼和嚼碎,以减少气体的积聚。
此外,由于微生物产生乙酸等有机酸,反刍动物的瘤胃内会形成强酸环境,需要通过喝水来稀释胃液,并使胃液向前流动。
否则会导致消化不良。
总的来说,反刍动物的微生物消化特点允许它们高效地与微生物共生,通过发酵将植物纤维分解为有机物,并将其吸收和利用。
这种共生关系使得反刍动物能够在食用植物纤维饲料时获得足够的能量和养分。
反刍动物微生态学及产品推荐一、反刍动物消化道的特点反刍动物消化道结构的主要特点是复胃,如牛羊的复胃有瘤胃、网胃、瓣胃、皱胃组成。
前三个胃没有胃腺,主要靠微生物的发酵作用消化饲料,其中瘤胃最大,占复胃的85%,占动物总重量的20-30%,瘤胃微生物区系极为复杂。
只有皱胃有分泌胃液的胃腺。
牛羊采食粗料后,先进行咀嚼,形成食团后吞咽入瘤胃浸泡,隔一段时间反刍时逆吐至口腔再反复咀嚼,然后再吞入瘤胃由微生物发酵分解。
饲料中70-85%的可消化的干物质和粗纤维在瘤胃被微生物分解。
二、反刍动物胃肠菌群构成及功能瘤胃内微生物种类繁多,数量巨大。
主要是细菌和纤毛虫,微生物的体积约占瘤胃液的10%,其中细菌和纤毛虫约各占50%,除此还有各种酵母、螺旋体、放线菌、噬菌体等。
瘤胃微生物在反刍动物的糖类、蛋白质和脂肪的代谢中起着极为重要的作用。
反刍动物需要的能量主要靠瘤胃内发酵形成的挥发性脂肪酸,饲料中蛋白质则被微生物分解先合成菌体蛋白,再被动物消化吸收。
反刍动物需要的维生素B族和维生素K,亦主要由微生物合成。
在1克瘤胃内容物中,细菌数约为107—1012,大多数菌种为厌氧菌,也存在一些兼性厌氧菌。
主要包括纤维素分解菌、半纤维素分解菌、淀粉分解菌、蛋白分解菌、氨基酸分解菌、脂肪分解菌、利用有机酸的瘤胃细菌、产甲烷菌、合成维生素的细菌等。
反刍动物瘤胃中微生物区系、数量受动物的种类、年龄、饲养条件、抗生素、疾病、应激等多种因素的影响。
纤毛虫同样参与瘤胃内纤维素、半纤维素、果胶、淀粉、氮化合物、脂肪的分解作用。
种类多达120多种,每毫升瘤胃液可达200万个,严格厌氧。
反刍动物肠道微生物有乳酸菌、双歧杆菌、肠杆菌等,其中乳酸菌产生抑菌物质,可抑制溶血链球菌、肺炎球菌、沙门氏菌、结核杆菌、葡萄球菌等,双歧杆菌除具有抑菌作用外,还可促进肠蠕动,促进钙、维生素D的吸收。
三、瘤胃微生态平衡瘤胃内各种细菌的数量和比例,随日粮的组成不同而发生变化,在日粮中纤维素为17%时,细菌对纤维素的消化最好,纤维素低于13%或高于22%时,微生物群对纤维素的消化能力降低。
反刍动物基因组进化及其对人类健康的启示反刍动物(如牛、羊和驼鹿)在进化过程中经历了一系列基因组的变化,这些变化对人类健康有着重要的启示。
以下是一些与此相关的方面:1. 消化能力:反刍动物的胃部具有特殊结构和微生物群落,使它们能够有效地消化纤维素和其他难以消化的植物材料。
研究表明,人类肠道微生物的组成与反刍动物的肠道微生物有着相似之处。
了解反刍动物消化系统的基因组进化可以帮助我们更好地理解人类肠道微生物的功能和代谢过程,以及如何通过调整饮食来改善人类的消化健康。
2. 免疫系统:反刍动物在进化过程中发展出了强大的免疫系统来抵御环境中的病原体。
研究人员发现,反刍动物的免疫基因组在一些抗病毒和抗菌药物方面相对较强。
通过研究反刍动物基因组进化,我们可以获得关于人类免疫系统的洞察,例如病原体的抵御机制和自身免疫疾病的发展。
3. 适应环境的基因变异:反刍动物在长期的进化过程中,逐渐适应了不同的环境压力,如高海拔、严寒和饥荒。
研究人员在分析反刍动物基因组时发现了一些对环境适应具有重要意义的基因变异。
这些基因变异可能对人类在不同环境下的生存和健康有启示作用,例如高海拔地区的缺氧适应和抗寒能力。
综上所述,反刍动物基因组进化的研究对人类健康具有重要的启示。
它们帮助我们更好地理解人类消化和免疫系统的功能,并为开发相应的治疗和健康策略提供了新的思路。
此外,反刍动物的适应环境的基因变异也为我们了解人类在不同环境下的生存和健康提供了重要的线索。
此外,反刍动物基因组进化的研究还揭示了一些与人类健康相关的其他方面。
4. 营养价值:反刍动物在进化过程中适应了以植物为主食的生活方式,使其能够有效地提取营养物质。
这些动物消化系统中的基因变异可以提供有关人类饮食和营养需求的重要线索。
例如,研究人员通过比较反刍动物和人类基因组之间的差异,发现了与叶酸代谢和维生素D合成有关的基因变异。
这些发现有助于我们更好地了解人类对这些营养物质的需求和吸收能力,从而改善人类营养健康。
反刍动物瘤胃微生物多样性的研究进展摘要:瘤胃微生物区系是一个组成和功能极其复杂的体系,微生物的多样性决定了动物机体的健康和生产性能。
反刍动物的瘤胃中栖息着复杂多样的微生物,包括瘤胃原虫、细菌、真菌和古甲烷菌等,具有种类多样性和相互作用的复杂性。
庞大的微生物群落参与日粮营养物质的降解过程,对饲料利用和宿主自身代谢有深远的影响。
研究反刍动物胃肠道微生物多样性有助于了解其结构、功能、影响因素以及可能的调控措施。
本文就反刍动物瘤胃内环境和瘤胃微生物多样性的研究进展做一简要综述。
关键词:反刍动物、瘤胃微生物、多样性反刍动物的瘤胃约占全胃的80 %, 除反刍、食管沟反射和瘤胃运动外, 尚有微生物群系独特的生理作用。
瘤胃微生物的种类极为多样,每毫升瘤胃内容物中有不同种类细菌1010~1011个,已从瘤胃分离出200多种,分29个属,大多数为厌氧菌和兼性厌氧菌。
饲料在瘤胃中经微生物发酵降解为挥发性脂肪酸、肽类、氨基酸及氨等成分, 同时利用氮源、能源等合成微生物蛋白及B 族维生素等。
很显然, 瘤胃是反刍动物的一个极其重要的营养消化器官,就像一个庞大密闭发酵罐, 在整个消化过程中起着重要的作用。
研究反刍动物瘤胃微生物的多样性,首先要了解瘤胃内环境,即微生物的栖息之所。
1 瘤胃内环境的特点瘤胃可看作是一个供厌氧微生物繁殖的发酵罐, 具有微生物活动及繁殖的良好条件。
1.1 瘤胃内的温度:瘤胃内的温度大约39-40℃, 比体温稍高一些。
瘤胃微生物在这一恒定温度下才能有最好的生长和繁殖, 瘤胃原虫在高于40℃的环境中难以存活。
1.2 瘤胃内的pH 值:瘤胃内正常pH 值6.2-6.8, 为中性或弱酸性, 这个酸度恰好是瘤胃微生物存活的最佳条件, 同时对酸性或中性洗涤纤维的消化降解以及挥发性脂肪酸的形成有促进作用。
只有在这个范围内, 才能保证最高的采食量, 最佳的消化率, 瘤胃中产生乳酸的淀粉分解菌耐受pH 值不得超过5.5,但纤维分解菌在pH值6.0以下无法存活, 而最适纤维分解菌作用的条件则是pH值是6.4 时,可见pH值的高低严重影响到瘤胃内不同微生物种群的数量和比例,进而影响瘤胃发酵的发酵功能和饲料的消化率。
高精料饲粮对反刍动物胃肠道微生物区系的影响及调控LIU Junhui;DONG Guozhong;TIAN Ke【摘要】在实际生产中,由于季节性或地区性牧草缺乏尤其是优质牧草不足,生产者常常给反刍动物饲喂高精料饲粮以提高生产性能.这种高精料的饲粮模式会导致胃肠道微生物区系变化,出现菌群失调,影响消化代谢、生产性能,甚至健康.本文综述了高精料饲粮模式下反刍动物胃肠道微生物区系的变化,以及高精料饲粮模式下胃肠道微生物区系的营养调控措施.【期刊名称】《动物营养学报》【年(卷),期】2018(030)012【总页数】7页(P4821-4827)【关键词】高精料饲粮;反刍动物;胃肠道;微生物;调控【作者】LIU Junhui;DONG Guozhong;TIAN Ke【作者单位】;;【正文语种】中文【中图分类】S816由于我国人均耕地少,加上地域性与季节性因素限制,我国青粗饲料资源匮乏,并且品质相对较差[1]。
在反刍动物实际生产中,常常通过增加饲粮中精料比例来满足动物营养需要以提高生产性能。
但是随着精料比例的增加,瘤胃中碳水化合物大量发酵而产生乳酸及挥发性脂肪酸(VFA),造成瘤胃内pH下降和代谢紊乱,出现亚急性瘤胃酸中毒(SARA)以及腹泻、蹄叶炎、肝脓肿等多种代谢性疾病[2-4]。
研究表明,高精料饲粮模式下特别是发生SARA时反刍动物胃肠道内微生物区系发生改变[5]。
因此,研究高精料饲粮对反刍动物胃肠道内微生物区系的影响及其调控措施,对提高反刍动物生产性能和机体健康水平具有重要意义。
1 胃肠道微生物区系1.1 瘤胃内微生物瘤胃中主要的微生物包括细菌、古生菌、原虫和真菌[6]。
细菌多为厌氧菌,并在微生物中占主导地位[7-8]。
根据对营养物质的分解作用可将细菌分为纤维素降解菌、淀粉降解菌、半纤维素降解菌、蛋白质降解菌、脂肪降解菌、酸利用菌和产酸菌等。
对瘤胃内微生物进行测序并与RDP数据库进行比对后发现,瘤胃内微生物有13 478个细菌序列以及3 516个古细菌序列。
中国畜牧兽医 2024,51(4):1466-1479C h i n aA n i m a lH u s b a n d r y &V e t e r i n a r y Me d i c i n e 肠道微生物在反刍动物健康生产中的作用研究进展唐 俊1,3,贺 荔2,王彭辉1,3,何小龙1,3,易唤明1,3,程箫1,3,任春环1,3,陈家宏2,王强军1,3,张子军2(1.安徽农业大学动物科技学院,合肥230036;2.安徽农业大学新农村发展研究院,合肥230036;3.安徽地方畜禽遗传资源保护与生物育种省级实验室,合肥230036)摘 要:近年来,随着各界对微生物功能的关注,人们对肠道微生物的研究也日益增多㊂在反刍动物的肠道中存在着大量的微生物,它们对宿主的营养代谢㊁免疫功能等起到了十分重要的作用,是影响机体健康的关键因素之一㊂肠道微生物受反刍动物的饲粮组成㊁年龄㊁基因型等因素的影响,而饲粮组成是影响肠道微生物最主要的因素,若饲粮改变,其中的粗纤维㊁蛋白质㊁碳水化合物等营养素均发生改变,肠道微生物也随之发生改变㊂反刍动物体内存在的有益微生物(如瘤胃球菌㊁藤黄微球菌㊁牛肠球菌等)对动物机体有积极的作用,而一些有害菌(如梭菌㊁苏黎世杆菌等)会破坏反刍动物体内环境的稳态,使机体免疫力㊁抗病力下降,容易产生疾病,严重影响反刍动物的健康㊂此外,除了肠道微生物会影响反刍动物机体健康外,益生菌和营养素也对反刍动物机体健康起到调控作用,而一般的措施都是在反刍动物饲粮中添加有益益生菌或营养素饲粮,这样既能补充日常的营养水平,也能防止有害微生物的增生,从而保障反刍动物机体的健康㊂作者综述了影响反刍动物肠道微生物的因素,以及益生菌和营养素对反刍动物健康生产的作用,旨在为合理调控反刍动物肠道微生物区系及为其健康发展提供理论参考,进而促进畜牧业的发展㊂关键词:肠道微生物;反刍动物;益生菌;营养素中图分类号:S 852.6文献标识码:AD o i :10.16431/j .c n k i .1671-7236.2024.04.015 开放科学(资源服务)标识码(O S I D ):收稿日期:2023-10-08基金项目:国家自然科学基金青年项目(32302802);安徽省高校自然科学研究重点项目(2023A H 051037);国家重点研发计划 山羊湖羊新品种新品系培育及良种扩繁殖 (2022Y F D 1300202)联系方式:唐俊,E -m a i l :2223936796@q q .c o m ㊂通信作者张子军,E -m a i l :z h a n g z i ju n @a h a u .e d u .c n R e s e a r c hP r o gr e s s o n t h eR o l e o f I n t e s t i n a lM i c r o b e s i n H e a l t h y Pr o d u c t i o no fR u m i n a n t s T A N GJ u n 1,3,H EL i 2,WA N GP e n g h u i 1,3,H EX i a o l o n g 1,3,Y IH u a n m i n g 1,3,C H E N G X i a o 1,3,R E N C h u n h u a n 1,3,C H E NJ i a h o n g 2,WA N G Q i a n g j u n 1,3,Z H A N GZ i ju n 2(1.C o l l e g e o f A n i m a lS c i e n c e a n dT e c h n o l o g y ,A n h u i A g r i c u l t u r a lU n i v e r s i t y ,H e f e i 230036,C h i n a ;2.N e wR u r a lD e v e l o p m e n tR e s e a r c hI n s t i t u t e ,A n h u i A g r i c u l t u r a l U n i v e r s i t y ,H e f e i 230036,C h i n a ;3.A n h u i P r o v i n c i a lL a b o r a t o r y o f An i m a l a n d P o u l t r y G e n e t i cR e s o u r c e sP r o t e c t i o na n dB i o l o g i c a lB r e e d i n g ,H e fe i 230036,C h i n a )A b s t r a c t :I nr e c e n t y e a r s ,w i t ht h ea t t e n t i o n p a i dt ot h ef u n c t i o no f m i c r o o rg a n i s m s ,p e o pl e s r e s e a r c h o n i n t e s t i n a lm i c r o b e s i s a l s o i n c r e a s i n g .I n t h e g u t o f r u m i n a n t s ,t h e r e a r e a l a r ge n u m b e r o fm i c r o o r g a n i s m s ,w h i c h p l a y a v e r y i m po r t a n t r o l e i n t h e h o s t s n u t r i t i o n a lm e t a b o l i s m ,i m m u n e f u n c t i o n ,e t c .,a n d a r e o n e o f t h ek e y f a c t o r s a f f e c t i n g b o d y he a l t h .I n t e s t i n a lm i c r o b e s i s af f e c t e d4期唐俊等:肠道微生物在反刍动物健康生产中的作用研究进展b y d i e tc o m p o s i t i o n,a g e,g e n o t y p e a n do t h e r f a c t o r so f r u m i n a n t s,a n dd ie t a r y c o m p o s i t i o n i s t h e m o s t i m p o r t a n tf a c t o ra f f e c t i ng i n t e s t i n a lm i c r o b e s.I f th edi e t c h a n g e s,t h ec r u d e f i b e r,p r o t e i n, c a r b o h y d r a t e a n do t h e rn u t r i e n t sw i l l c h a n g e,a n d t h e i n t e s t i n a lm i c r o b e sw i l l a l s o c h a n g e.T h e r ea r eb e n e f ic i a lm i c r o o r g a n i s m s i n t h e b od y o f r u m i n a n t s,w h i c hh a ve a p o s i t i v e ef f e c t o n t h e a n i m a lb o d y,s uc ha s R u m i n o c o c c u s,M i c r o c o c c u s l u t e u s,E n t e r o c o c c u sb o v i s,e t c.,w h i l es o m eh a r m f u l b a c t e r i a(s u c ha s C l o s t r id i u m,Z u r i c h b a c te r i u m,e t c.)d e s t r o y t h eh o m e o s t a s i so ft h ei n t e r n a l e n v i r o n m e n t of r u m i n a n t s,r e d u c e t h e i m m u n i t y a n dd i s e a s e r e s i s t a n c eo f t h eb o d y,a n da r e p r o n e t od i s e a s e s,w h i c hs e r i o u s l y a f f e c tt h eh e a l t h o fr u m i n a n t s.I na d d i t i o nt oi n t e s t i n a l m i c r o b e sa f f e c t i n g t h eb o d y h e a l t ho f r u m i n a n t s,p r o b i o t ic s a n dn u t r i e n t s a l s o p l a y a r e g u l a t o r y r o l e i n t h eb o d y h e a l t ho f r u m i n a n t s,a n dt h e g e n e r a lm e a s u r e sa r et oa d db e n e f ic i a l p r o b i o t i c so rn u t r i e n td ie t s t o t h e d i e t s of r u m i n a n t s,w h i c hc a nn o t o n l y s u p p l e m e n t t h ed a i l y n u t r i t i o n l e v e l,b u t a l s o p r e v e n t t h e p r o l i f e r a t i o no f h a r m f u lm i c r o o rg a n i s m s,s o a s t o e n s u r e th e h e a l t ho f r u mi n a n t s.T h e a u t h o r sr e v i e w t h ef a c t o r sa f f e c t i n g t h ei n t e s t i n a l m i c r o b e so fr u m i n a n t sa n dt h ee f f e c t so f p r o b i o t i c s a n dn u t r i e n t so nt h eh e a l t h yp r o d u c t i o no f r u m i n a n t s,a i m i n g t o p r o v i d ea t h e o r e t i c a l r e f e r e n c ef o rt h er e a s o n a b l er e g u l a t i o no f t h e i n t e s t i n a lm i c r o b e so fr u m i n a n t sa n di t sh e a l t h y d e v e l o p m e n t,s o a s t o p r o m o t e t h e d e v e l o p m e n t o f a n i m a l h u s b a n d r y.K e y w o r d s:i n t e s t i n a lm i c r o b e s;r u m i n a n t s;p r o b i o t i c s;n u t r i e n t随着中国居民生活水平的不断提高,对反刍动物的肉制品及奶制品的需求量也不断增加,因此,在畜牧业发展中保护反刍动物的机体健康也是间接保护了人类的身心健康㊂在实际生产过程中,反刍动物的健康受诸多因素影响,如养殖方式㊁抗生素㊁高精饲粮等㊂虽然抗生素类添加剂在畜牧业发展中能起到积极的作用,使养殖成本持续下降,动物产品数量也成倍增长,但是由于使用了抗生素,导致了抗药性细菌的数量和比例有所上升,且抗生素还会有一些残留在动物产品及周边环境中,从而导致更广泛的危害[1],严重影响了畜禽的机体健康㊂现代的集约化养殖不断扩大规模,养殖密度过大导致反刍动物动物免疫力发生了改变,进而导致容易患发炎症㊁腹泻等疾病,严重影响了反刍动物的健康[2]㊂饲料是反刍动物的主要能量来源,适宜的精粗饲料比可以提高反刍动物的采食量㊁日增重及产奶量等生产性能,过高或过低的能量摄入都将影响反刍动物的生长发育㊂饲粮㊁基因型㊁年龄均可使反刍动物的肠道微生物发生改变,而肠道微生物㊁益生菌和营养素可共同促进动物机体健康,提升动物的生产性能(采食量㊁日增重㊁产奶量㊁免疫力及抗病力),从而促进畜牧业的发展(图1)㊂然而,目前鲜有系统性综述肠道微生物在反刍动物健康生产中的作用及研究进展㊂鉴于此,作者对影响反刍动物肠道微生物的因素及如何通过调控措施来保证反刍动物机体的健康进行综述,旨在为今后对反刍动物动物肠道微生物展开深入研究提供重要的指导,并为制定相应的措施来提升反刍动物的健康水平和生产性能奠定一定的理论基础㊂1肠道微生物的概述肠道的微生物数量庞大,种类丰富[3-4],肠道微生物的结构与功能是维持机体内环境稳定的关键,但不同种类的微生物结构与功能差异较大[5],动物是由宿主机体和各种共栖微生物组成的 共生总体 ,影响动物健康的不仅仅是宿主机体的调控作用,还有体内各种微生物,这些微生物可以通过相互作用或者影响宿主机体来影响动物健康㊂有研究发现,肠道内的微生物对机体的代谢和免疫功能及营养吸收等密切相关[6],在维护反刍动物健康以及适应进化中都扮演着重要角色[7-8]㊂肠道微生物通过与宿主的交互作用,形成了一个复杂的微生态系统㊂肠道是反刍动物的后消化道,它是对养分进行消化和吸收的最主要的地方,而在它的内部,定植的微生物发挥着参与蛋白质消化吸收㊁多糖㊁脂多糖㊁氨基酸㊁维生素合成等代谢通路的重要作用[9-11],同时,还对短链脂肪酸㊁胆汁酸㊁多酚代谢等多种代谢途径进行调控,通过信号传导,调控多个器官组织的活动,进而对反刍动物的健康和生产性能产生影响[12]㊂7641中 国 畜 牧 兽 医51卷图1 肠道微生物在反刍动物健康生产中的作用F i g.1 T h e r o l e o f i n t e s t i n a lm i c r o b e s i n r u m i n a n t h e a l t h p r o d u c t i o n 2 影响反刍动物肠道微生物的因素反刍动物胃肠道中生存着大量微生物,在正常情况下这些微生物已适应宿主的生存环境,构成了微生物㊁宿主和环境之间的生态平衡,对正常肠道微生物的运行起着重要作用[13]㊂无论是反刍动物自身还是外部环境,都会对肠道微生物的多样性造成影响㊂目前人们普遍认为,反刍动物的饲粮组成㊁年龄和基因型等是影响反刍动物肠道微生物多样性的主要因素㊂2.1 饲粮组成由于其生存环境或饲粮底物的改变,肠道微生物的菌种组成也会发生变化,如饲粮类型及饲粮中粗纤维㊁碳水化合物㊁蛋白质等含量都会对肠道微生物菌群产生影响;反之,肠道微生物群可为宿主合成丰富的酶㊁维生素和蛋白质[14]㊂对于反刍动物来说,瘤胃微生物受许多因素的影响,全球瘤胃普查项目(G R C )研究表明,瘤胃中的菌群结构与宿主㊁饲料等因素有很大关系,饲粮在众多因子中起主导作用[15]㊂T a o 等[16]以关中地区山羊为对象,就不同饲料添加量(35%~65%)对其瘤胃微生物菌群结构产生的影响进行分析发现,在高精料量的山羊瘤胃中,有害菌(如梭菌㊁苏黎世杆菌等)的数量明显增加,有益菌(如瘤胃球菌㊁藤黄微球菌㊁牛肠球菌等)的数量明显下降㊂L i a n g 等[17]利用宏基因组测序对6组不同饲粮结构的成年健康肉牛粪便样品进行分析发现,每组中拟杆菌门㊁厚壁菌门㊁变形菌门为优势菌群,且不同的饲粮结构影响着肉牛肠道微生物群落的多样性及组成㊂M a o 等[18]研究表明,饲喂高淀粉饲粮会损伤奶牛肠道功能并提高肠道p H ,降低微生物丰富度和多样性,破坏宿主微生物群落稳态,影响奶牛健康,减少产奶量和产品质量,给牧场造成很大的经济损失㊂韩笑瑛[19]利用16Sr R N A 测序和实时荧光定量P C R 分析高谷物饲粮对山羊盲肠微生物群落的影响,结果表明,与干草饲粮相比,高谷物饲粮增加了山羊盲肠的长度㊁重量及盲肠中可发酵碳水化合物含量(淀粉比例及总短链脂肪酸(S C F A s )㊁氨态氮浓度),提高了盲肠微生物的丰富度,降低了厚壁菌门(F i r m i c u t e s )和拟杆菌门86414期唐俊等:肠道微生物在反刍动物健康生产中的作用研究进展(B a c t e r o i d e t e s)丰度,增加了淀粉分解或其他淀粉消化细菌(如双歧杆菌属(B i f i d o b a c t e r i u m)㊁普氏菌属(P r e v o t e l l a)和密螺旋体属(T r e p o n e m a))的增殖㊂W e l c h等[20]通过变更饲粮成分分析肉牛直肠内容物样品微生物群落,结果显示直肠内容物中微生物群落会发生改变,同样在贺兰山羊中也发现,肠道微生物群落结构随着食物的季节性变化而发生改变[21]㊂可见,饲粮一旦变化,反刍动物肠道微生物获取的能量也会发生改变,其丰富度也会发生变化,当机体内肠道微生物的动态平衡一旦打破,最终将影响反刍动物的健康㊂2.2年龄反刍动物的饲粮组成㊁生活习惯㊁胃肠功能等会随着年龄的增加而发生变化㊂因此,年龄也是对动物肠道微生物种群和结构多样性产生影响的一个重要因素,肠道微生物会随着动物年龄的增长而出现一系列的动态变化㊂与成年动物相比,新生动物的胃肠道几乎没有定植微生物,但随着年龄的增长,其胃肠道中的微生物多样性会有所增加㊂周颖等[22]对12个不同日龄组的山羊瘤胃微生物进行分析表明,在7日龄到3月龄,山羊瘤胃中拟杆菌门丰度会逐渐增加,之后会逐渐减少,在6月龄之后趋于稳定,而变形菌门的丰度则呈现出与之相反的变化趋势㊂张科[23]研究发现,刚出生的山羊瘤胃细菌以芽孢杆菌属(B a c i l l u s)和乳杆菌属(L a c t o c o c c u s)为主要优势菌属,约占65%以上;出生后第3天,芽孢杆菌和乳球菌的相对丰度逐渐降低,而主要属则变为异养丙酸杆菌和拟杆菌㊂郭文杰等[24]在早期测定了0.5㊁1.5㊁2.5㊁3.5岁牦牛直肠微生物区系,结果表明,不同年龄牦牛中的优势菌门都为厚壁菌门和拟杆菌门,这2个门类的相对丰度之和都在97%以上,但随着年龄的增长,厚壁菌门相对丰度在1.5~2.5岁增加,至3.5岁时又降低到与0.5岁相同的水平,相对丰度最高的菌属为拟杆菌属(B a c t e r o i d e s),且在不同年龄之间无显著差异㊂P a u l i n等[25]研究了从出生到断奶牛瘤胃微生物的发育规律,结果表明,第1天奶牛瘤胃内菌群结构发生了3次显著变化;第2天瘤胃菌落主要以变形菌门(P r o t e o b a c t e r i a)和拟杆菌门(B a c t e r o i d e t e s)为主,巴氏菌科(P a s t e u r i a c e a e)在科水平上占主导地位;第2~3天奶牛瘤胃菌群结构发生急剧变化,直到第12天才稳定,其中优势菌群变成了以拟杆菌属(B a c t e r o i d e t e s)㊁普氏菌属(P r e v o t e l l a)㊁链球菌属(S t r e p t o c o c c u s)和梭菌属(F u s o b a c t e r i u m)为主;第15~83天由于摄入饲粮的影响,普氏菌属(P r e v o t e l l a)成为唯一的优势菌属,其他种类的含量明显下降或完全消失㊂随着年龄的增长,反刍动物从出生时肠道无微生物定植到越来越多的微生物滋生,在机体内占据优势的微生物群会随着年龄的增长而发生变化,后续随着饲粮的增加肠道微生物的变化会更加频繁㊂2.3动物基因型运用分子生物学技术研究发现,反刍动物的基因与其体内的肠道微生物结构有着密切的关系,不同动物的肠道微生物具有个体特异性[26]㊂S u n 等[27]使用G2系统芯片比较了野生山羊和家养山羊的粪便微生物结构,结果表明,相较于家养山羊,野生山羊中梭状芽孢杆菌科㊁杆菌科㊁拉克诺斯科和肠杆菌科是变异最大的科系㊂兰阿峰等[28]研究发现,山羊和晋南牛瘤胃中产甲烷菌的数量有很大的不同㊂Q i n等[29]研究表明,与晋南牛相比,牦牛瘤胃微生物的演化关系较差,但其中未经培养的种类比例较高,且与纤维溶解相关的菌株序列也较高,除此之外,在瘤胃中还存在着许多特有的纤维溶解菌㊂此外,疾病㊁海拔[30]㊁性别[31]等因素均对肠道微生物有影响㊂当动物机体内有害菌滋生后,动物免疫力下降,导致动物容易发生疾病㊂随着宿主分布地域间距离增加,其共有菌群的比例逐渐递减,菌群差异逐渐会增大㊂性激素与肠道微生物群一般是相互作用的,而雌激素和睾酮与肠道微生物群的结构和组成密切相关㊂反刍动物品种不同,其基因型的差异就决定了体内肠道微生物的不同,不同个体肠道内环境均存在一定差异,而基因型的差异加剧了机体内肠道微生物的差异㊂3反刍动物健康生产的调控措施3.1益生菌益生菌(p r o b i o t i c)又称为益生素㊁微生态制剂或活菌制剂等,是一种可通过改善动物的胃肠道微生物菌群的平衡从而对宿主产生有利影响的活的微生物[32]㊂乳酸杆菌㊁芽孢杆菌㊁双歧杆菌㊁酵母菌等都是比较常见的益生菌㊂在反刍动物中,酵母培养物(Y C)和酿酒酵母(S a c c h a r o m y c e s c e r e v i s i a e)是目前最具应用前景的微生物菌种培养物㊂酿酒酵母是一种能在瘤胃或类似于无菌条件下增殖的菌株,同时还能促进纤维素的水解和酶解㊂益生菌属于一种具有优势的细菌,它能够增加肠道中有益菌群的数量,维持肠道菌群的平衡,在提升反刍动物的健康9641中国畜牧兽医51卷和生产性能方面有着重要的影响,所以益生菌经常被用作饲料添加剂,并被广泛用于畜牧业中㊂3.1.1益生菌对反刍动物采食量的影响采食量对反刍动物的生产力有直接的影响,也是评价益生菌对反刍动物生产力作用效果的最直观反应㊂有研究显示,饲喂纳豆枯草芽胞杆菌可以促进犊牛的采食量增加,从而缩短断奶日龄,促使犊牛提早断奶[33]㊂在奶牛的饲喂过程中,加入有活力的酵母菌可增加奶牛的采食量,并显著缩短奶牛的采食时间,这可能是因为在反刍动物的瘤胃壁上存在着密集的接触受体,它们可以通过对食糜部分物理信息的感知来反馈性地调节动物的采食量[34]㊂研究发现,在梅花鹿饲料中加入乳酸菌,不仅可以提高鹿的采食量,而且还能促进其生长发育[35-36]㊂3.1.2益生菌对反刍动物日增重的影响日增重是一个反映反刍动物生产性能的重要指标,酵母菌培养物不仅可以改善动物的采食量,而且还可以提高肉牛的日增重㊁宰前活重和胴体重[37-38]㊂J i a 等[39]报道,在喂食芽胞杆菌后,荷斯坦奶牛的瘤胃p H维持在6.3~7.2,由于芽胞杆菌的存在,荷斯坦奶牛的瘤胃p H维持在一个较好的范围,可明显增加犊牛的日增重㊂许斌斌[40]用体外瘤胃发酵技术研究发现,用酿酒酵母饲喂肉牛,在不影响其采食的前提下,可使其日增重明显增加㊂此外,还有研究显示,对小母牛饲喂酿酒酵母,各组之间干物质和采食量没有任何差别,日增重得到了明显改善[41]㊂吴占月等[42]在欧拉羊饲粮中添加双歧杆菌的试验结果显示,该饲料具有较好的抗氧化性能,其中小剂量的双歧杆菌可显著改善欧拉绵羊的生长发育,并增加欧拉绵羊的体重及肠道微生物数量㊂3.1.3益生菌对反刍动物产奶量及乳品质的影响益生菌也会影响反刍动物的产奶量及乳品质,在奶牛饲粮中加入益生菌可促进奶牛生产,改善乳品质㊂在荷斯坦奶牛饲粮中加入乳酸杆菌后,可以提高奶牛肠道中瘤胃球菌属等有益菌的丰度,同时还能明显降低蜡样芽胞杆菌等条件致病菌的丰度,从而提高奶牛的产奶量,改善乳品质[43]㊂Q u等[44]研究发现,用米曲霉培养物饲喂奶牛可使奶牛平均产奶量增加0.8%,乳蛋白由2.94%上升至2.96%,且乳脂含量明显增加㊂在热应激的情况下,给奶牛饲喂酿酒酵母并不会对其干物质采食量造成影响,且还可以提高其产奶量和产奶量/干物质摄入量的比值,与对照组相比,饲喂酿酒酵母组奶牛体重明显上升,这对减轻奶牛的热应激很有帮助[45]㊂S i n g h[46]研究发现,用益生酵母1026饲喂奶牛可使其产奶量增加2%~30%,而平均产奶量可提高7.3%;此外,益生酵母1026在全生育期和热应激期均能明显增加奶牛的干物质采食量及泌乳能力,并能显著增加牛奶中的脂肪及蛋白含量,对奶牛的生产性能具有积极作用㊂3.1.4益生菌对反刍动物免疫力及抗病力的影响如果动物肠道生理功能失调或肠道微生物平衡被打破,就会造成兼性厌氧型的条件致病菌和需氧的病原菌大量繁殖,对动物机体的健康造成威胁,如肠杆菌属(E n t e r o b a c t e r i u m)㊁肠球菌属(E n t e r o c o c c u s)㊁致病性大肠杆菌属(E s c h e r i c h i a c o l i)㊁变形杆菌属(P r o t e u s b a c i l l u s v u l g a r i s)㊁假单胞菌属(P s e u d o m o n a s)等,但机体摄入了有益微生物制剂后,它会消耗消化道内的大量氧气,并快速生长和繁殖,在消化道内形成一种厌氧环境,导致需氧和兼氧性致病菌数量减少,有益微生物菌群成为优势菌群,从而提升动物的免疫力及抗病力[47]㊂经调查,在幼龄反刍动物饲粮中加入益生菌菌剂,能够降低断奶应激对幼龄反刍动物所造成的不良影响,进而促进胃肠道微生物达到动态平衡,提高机体对疾病的抵抗力,最终促进犊牛的健康成长[48]㊂D a b i r i 等[49]添加益生菌饲喂羔羊发现,羔羊的免疫力明显高于对照组,且益生菌可提高淋巴细胞及免疫球蛋白水平㊂在初生反刍动物的肠道内存在着大量的致病微生物,如大肠杆菌㊁志贺菌属㊁沙门菌等㊂腹泻会引起犊牛死亡,并会引起牛后期生长发育不良,生产性能下降,此外还会诱发呼吸系统疾病,对犊牛的健康造成很大的危害[50]㊂研究表明,稳定的乳酸杆菌可提高犊牛的免疫力,并可对抗病原菌[51],给初生犊牛饲喂乳杆菌㊁链球菌能减少腹泻[52];饲喂粪链球菌和嗜酸杆菌可使犊牛死亡率从10.2%降到2.8%,腹泻率从82%降到35%[53]㊂王海玉等[54]通过研究复合益生菌对羔羊粪便微生物的影响发现,在饲粮中添加复合益生菌能够调控仔羊肠道菌群,增强机体免疫功能,减少炎性反应及腹泻,缓解断奶应激对仔羊的损伤㊂乳腺炎属于对奶牛生产造成影响的重大疾病之一,当病原菌侵害乳腺后会导致乳腺细胞变形和死亡,使奶牛乳腺产生炎症,牛乳体细胞数增多[55]㊂在患有乳腺炎的奶牛饲粮中添加乳酸菌,既能减少乳汁中的体细胞数,还能减少导致乳房炎的肠球菌和链球菌的丰度[56]㊂造成奶牛乳腺炎的最主要原因是由于金黄色葡萄球菌等病原微生物的感染,而丁酸梭菌可对金黄色葡萄球菌等有害07414期唐俊等:肠道微生物在反刍动物健康生产中的作用研究进展菌的生长产生抑制作用,从而对肠道菌群的平衡进行调控[57]㊂添加益生菌可有效预防和治疗奶牛隐性乳房炎[50],这与M a等[58]研究结果一致㊂因此,肠道微生物失衡可能是导致乳腺炎的一个重要因素,利用益生菌修复肠道微生物是一种有潜力的治疗方法㊂表1就益生菌对反刍动物健康生产的影响进行了总结㊂表1益生菌对反刍动物健康生产的影响T a b l e1E f f e c t s o f p r o b i o t i c s o nh e a l t h p r o d u c t i o no f r u m i n a n t s益生菌P r o b i o t i c s试验动物T e s t a n i m a l生产性能P r o d u c t i o n p e r f o r m a n c e参考文献R e f e r e n c e s乳酸杆菌L a c t o b a c i l l u s 奶牛㊁鹿奶牛产奶量增加,乳品质提高,乳房炎感染风险降低;鹿采食量增加丁亚伟等[35]㊁G a o等[56]㊁X u等[59]芽孢杆菌B a c i l l u s 奶山羊,奶牛羊产奶量提高,乳蛋白率㊁乳糖率㊁乳脂率及奶牛日增重显著提高J i a[39]㊁M a等[60]纳豆枯草芽胞杆菌B a c i l l u s s u b t i l i s n a t t o犊牛采食量明显增加,断奶日龄缩短陈凤梅等[33]双歧杆菌B i f i d o b a c t e r i u m欧拉羊㊁山羊欧拉羊的日增重和山羊的体重显著增加吴占月等[42]㊁A p a s等[61]酵母菌S a c c h a r o m y c e s 肉牛㊁奶牛肉牛日增重㊁宰前活重和胴体重增加;奶牛采食量提高2.5%仲伟光等[34]㊁D a r等[2]酿酒酵母菌S a c c h a r o m y c e s c e r e v i s i a e 肉牛㊁小母牛㊁奶牛肉牛和小母牛日增重显著增加;奶牛体重及产奶量显著增加许斌斌[40]㊁G u j a r等[41]㊁Z h u等[45]米曲霉培养物A s p e r g i l l u s o r y z a e c u l t u r e奶牛奶牛产奶量㊁乳脂率㊁乳蛋白均增加S i n g h[46]丁酸梭菌C l o s t r i d i u mb u t y r i c u m 绵羊绵羊的终末体重和平均日增重增加,料重比降低陈晓雨等[62]复合益生菌C o m p l e x p r o b i o t i c s羔羊㊁犊牛羔羊和犊牛的腹泻率降低,免疫能力增强李萌等[53]㊁王海玉等[54]3.2营养调控饲粮营养水平是反刍动物健康生长的关键,合理的饲粮营养调控可以提高反刍动物的繁殖能力㊁生产性能㊁免疫力和抗病力等[63]㊂目前,在饲粮中添加营养素来调控反刍动物生产效率已达成共识㊂3.2.1营养调控对反刍动物繁殖性能的影响随着现代规模化养殖技术的发展,由于营养代谢导致的生殖障碍问题日益凸显,如何从营养角度进行调控并提高畜禽繁殖率具有重要的理论和现实意义㊂通常情况下会通过饲粮对家畜进行营养调节,研究显示,在冬季补充大麦秸秆和燕麦干草能够提升放牧牦牛的繁殖性能,从而提高其产犊率,缩短产后乏情期[64];俞联平等[65]饲喂的饲粮主要以浓缩料和预混料为基础,这不但提高了放牧藏母羊的生育存活率,还增加了藏寒杂种羔羊的日增重;在高原环境下,雌性湖羊在孕晚期维持高热量饲料(含23.72%蛋白质㊁35.01M J/k g消化能),可以增加产羔及多羔数量,而除能量与蛋白质的摄取外,矿物质与维他命也是调节母羊生殖能力的营养素[66];在饲粮中添加0.3m g/k g酵母硒能显著增加湖羊的发情周期,增加血液中生殖激素的含量,并能显著改善其卵巢中某些生殖相关基因的表达量,使卵泡发育加快[67];在饲粮中添加维生素A可将母牛的首次受精率提高28%,给绵羊注射维生素A可促进排卵[68-69];在饲料中加入维生素A可显著提高滩ˑ湖杂羊的情期受胎率㊁配种妊娠率㊁平均产羔率及羔羊出生体重,但与添加胡萝卜相比差异不大[70];在饲粮中添加维生素B及酵母粉对安格斯犊牛的体重㊁日增重㊁体高及体斜长均有明显的改善作用[71],这与姚志浩等[72]关于维生素B对波杂山羊体重的影响相吻合,这是由于复合维生素B属于水溶性维生素,为一种低分子化合物,在维持人体正常的生理和代谢功能方面起着十分关键的作用,常被作为一种营养添加剂,能够提高饲料转化率,同时还能够提高动物的食欲和抗病力㊂1741中国畜牧兽医51卷3.2.2营养调控对反刍动物肉品质的影响肉品质评价指标包括肉的嫩度㊁肌内脂肪(I M F)㊁色泽㊁p H㊁风味等㊂王鸿泽[73]研究发现,在环湖牦牛的饲粮中提高能量水平可提高脂肪转运㊁背最长肌脂肪合成及减缓脂肪分解等基因m R N A的表达,加速肌内脂肪沉积,从而改善肉质嫩度㊁风味㊁持水性及营养成分的组成和含量㊂刘龙龙等[74]研究发现,高能饲料可增加牛背最长肌内的胶原溶解率及胶原含量,这是因为能量水平对牛肉合成的胶原蛋白总量有很小的影响,但对盐溶性和酸溶性胶原蛋白的比例及胶原蛋白的交联程度有明显的影响,从而导致肉的成熟率下降,嫩度也会相应地得到提升㊂还有一些研究显示,在12月龄阉牛饲粮中添加维生素A可在一定程度上提高背最长肌和臀中肌的肌内脂肪含量,这对改善牛肉品质㊁提高大理石花纹评分都有正面的影响[75];在荷斯坦奶牛中加入营养素可使其生长速度明显加快,同时也可使其肉质变得更嫩㊁更好[76];在添加不同营养调控剂对肉牛增重性能㊁胴体品质及肉品质的影响研究中发现,2种营养调控剂(第1种调控剂主要成分为糖萜素㊁牛至油㊁微量元素和维生素等;第2种营养调控剂主要成分为半胱胺㊁微量元素和维生素等)都可以增加肉牛的脂肪覆盖率㊁眼肌面积㊁肌苷酸(I M P),其中I M P在牛肉的风味物质中起到了主要作用,因此,2种营养调控剂都可以改善肉牛肉的风味美感[77];给牧场羊群补充黑麦草,能够确保羊肉的颜色和脂肪的稳定,同时还能增加脂肪酸的含量[78];在冷季放牧绵羊饲粮中添加苹果酸㊁半胱胺㊁糖萜素等复合营养调节剂,可提高绵羊肌肉剪切力,增加肌肉中的粗蛋白质㊁粗脂肪及氨基酸含量,提高肉的嫩度㊁鲜味及营养价值[79]㊂反刍动物自身能够合成共轭亚油酸(C L A), C L A具有抗癌㊁抗氧化㊁促生长㊁降低脂肪沉积及免疫调节等重要生理功能㊂王思飞[80]就饲粮精粗比例对滩羊生产性能与肉品质的影响研究发现,精粗比为3ʒ7时,饲粮中C L A含量㊁血液中硬脂酰C o A脱氢酶(S C D)与脂肪酸合酶(F A S)含量均较高,可提高不饱和脂肪酸的生成,利于C L A在羊肉中沉积,并可加快滩羊生长速度及肌肉皮下脂肪中C L A的生成,改善滩羊的肉品质㊂3.2.3营养调控对反刍动物产奶量及乳品质的影响乳蛋白是牛奶㊁羊奶中最重要的一种成分,具有很高的营养价值㊂闫金玲等[81]研究发现,在高产奶量(>22k g/d)奶牛饲粮中添加瘤胃蛋氨酸后其产奶量将显著上升,且可显著改善乳蛋白及乳脂含量㊂刘延鑫等[82]也证实在夏季饲粮中加入过瘤胃氨基酸制品,可明显改善奶牛乳蛋白,并有增加奶牛产奶量的趋势㊂在生产实践中,常通过向奶牛饲粮中添加脂肪以减轻奶牛早期泌乳的负性失衡,从而改善奶牛的低乳脂综合征㊁酸中毒等消化系统和代谢性疾病㊂裴明财等[83]曾指出,过量的瘤胃脂肪能明显提高奶牛的产奶能力,并能改变奶牛的乳汁组成,使乳脂含量提高6.23%,乳蛋白含量降低4.51%㊂如果在饲料中添加过多的不饱和脂类,将会对奶牛体内的脂肪及产奶量造成不利影响㊂有研究表明,因为能量失衡,放牧养殖的蒙古羊母羊的产奶量和乳品质都会受到影响,通过补充精饲料可以改善它们的泌乳性能[84];在热应激条件下,用8%㊁12%㊁16%甜菜粕代替同等数量的玉米青贮,可增加奶牛的泌乳能力,其中12%甜菜粕可使奶牛的泌乳能力达到最佳[85];在热应激奶牛饲粮中添加100g/d 植物提取物(含18种中草药),可增加奶牛产奶量㊁乳脂及乳蛋白含量,并有增强免疫力的作用,缓解奶牛热应激,促进机体健康[86]㊂3.2.4营养调控对反刍动物免疫力及抗病力的影响均衡合理的饲料搭配能够促进动物的免疫系统发育㊁免疫能力维持和功能发挥,提高其抗病力,抵御病原微生物的产生㊂一般情况下,饲粮中非结构性碳水化合物含量不能超过40%,超过该含量将引起瘤胃酸中毒等代谢性疾病,如大量摄取糖类物质的绵羊瘤胃及盲肠中会出现大量的产气荚膜梭菌,严重时可引起肠毒血症[87]㊂除此以外,母羊在妊娠后期能量供应不充足很容易造成妊娠毒血症,如果能够预防低血镁㊁低血钙的产生,就可以有效地预防妊娠毒血症的发生[88]㊂很明显,营养物质的缺乏或过度都会对免疫细胞的数量和活性产生影响㊂在饲粮中添加鱼油㊁糖萜素能够有效提升妊娠母羊的免疫力,对细胞免疫进行强化,还能促进血浆中淋巴细胞的数量增加,糖萜素可以通过提高淋巴细胞转化率㊁免疫球蛋白G活性,对动物体内的非特异性和特异性免疫等进行强化㊂王曼等[89]研究发现,牛至油㊁糖萜类化合物对荷斯坦公牛具有明显的改善作用,对其机体的免疫能力及内分泌系统均有明显的改善作用㊂植物提取物可调节绵羊机体的免疫功能,柳树㊁落叶松㊁百里香等植物的提取物都能有效抑制嗜中性粒细胞的过氧化反应,将这些植物提取物添加到饲粮中可提高哺乳母羊的中性粒细胞的抗炎能力㊂维生素A㊁维生素E和胡萝卜素等微量元素在动物体内具有很好的抵抗力,饲粮中补充维2741。
动物营养学报2020,32(10):4697⁃4707ChineseJournalofAnimalNutrition㊀doi:10.3969/j.issn.1006⁃267x.2020.10.021幼龄反刍动物消化道微生物演替与消化道发育及其调控王佳堃㊀杨㊀斌㊀黄开朗(浙江大学奶业科学研究所,杭州310058)摘㊀要:消化道的早期健康发育至关重要㊂消化道微生物不仅能辅助动物体消化利用饲料,其代谢产生的短链脂肪酸㊁维生素㊁氨基酸衍生物㊁胆汁酸等产物还能调节消化道的发育和功能㊂但消化道微生物群落多样性的形成和维持是一个非常复杂的过程㊂瘤胃微生物生态位抢占和修饰主导了瘤胃微生态的 演变 和 成熟 ㊂营养素和外源微生物通过改变原生瘤胃微生物群落组成实现其对消化道发育的调节㊂因此,相比于外源微生物,针对幼龄反刍动物的靶向性瘤胃微生物移植是一种重塑瘤胃菌群结构,调控瘤胃功能的更有效方式㊂关键词:幼龄反刍动物;消化道;微生物演替;消化道发育中图分类号:S823㊀㊀㊀㊀文献标识码:A㊀㊀㊀㊀文章编号:1006⁃267X(2020)10⁃4697⁃11收稿日期:2020-08-06基金项目:国家重点研发计划重点专项课题项目(2017YFD0500502);国家自然科学基金项目(31572431,31622056)作者简介:王佳堃(1976 ),女,黑龙江鸡东人,教授,博士,主要从事反刍动物营养研究㊂E⁃mail:jiakunwang@zju.edu.cn㊀㊀消化道是动物体内最复杂的微生物 库 ㊂消化道微生物不仅能辅助动物体消化利用饲料,还在消化道形态结构和免疫系统发育过程中扮演重要角色㊂微生物通过刺激杯状细胞分泌黏蛋白[1-2]和活化树突状细胞[3],调节免疫细胞分化[4-6],实现其对宿主免疫系统的调节;通过介导缺氧[7],激活Janus激酶-信号转导和转录激活因子(JAK⁃STAT)和氨基末端激酶(JNK)途径[8]或胰岛素/胰岛素样生长因子信号途径[9],调节肠道干细胞分化,实现其对宿主消化道发育的调节㊂因此消化道微生物群落的平衡与多样性意味着消化道的健康,保障了动物生产性能的最大化㊂但消化道微生物群落多样性的形成和维持是一个非常复杂的过程㊂它不仅取决于消化道结构类型,而且受宿主基因型㊁饲养管理和环境等多种因素的影响㊂反刍动物因其复胃结构及饲粮组成的特殊性,其消化道微生物演替有别于单胃动物,且断奶前后幼龄反刍动物的反刍功能逐渐形成,此阶段瘤胃及其微生物的发育状态直接影响成年后的生产性能㊂为此,本文综述了幼龄反刍动物消化道发育的特征,消化道微生物演替与消化道发育的关联及其调控方式,以期为反刍动物健康高效养殖提供新的有力抓手㊂1 幼龄反刍动物消化道发育的特征㊀㊀新生反刍动物瘤胃㊁网胃和瓣胃尚未发育,体积小且壁薄,此时的反刍动物与单胃动物类似,以皱胃的酶消化为主㊂随着机体营养物质来源逐渐从液体饲料(乳或者代乳粉)转变为固体饲料(开食料和饲草),消化道的形态也随之发生一系列变化㊂瘤胃和网胃快速发育㊁重量占比增加,后肠重量占比降低,微绒毛变短,为营养物质吸收利用方式的转变做好形态学的准备[10]㊂消化道中乳糖酶活性降低,而其他水解酶随着年龄的增长在瘤胃内活性逐渐升高至相对稳定的水平[11]㊂瘤胃微生物功能预测结果显示,果糖和甘露糖代谢㊁糖酵解㊁氨基糖和核糖代谢的基因丰度都随着年龄的增加而逐渐增长[12]㊂宏基因组结果显示,犊牛瘤胃中饲粮多糖降解相关的SusD㊁TonB细胞膜外蛋白等基因的丰度在42日龄高于14日龄[13]㊂酶系的变化使饲粮的消化从后肠转移至瘤胃,饲粮在㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报32卷瘤胃内降解产生挥发性脂肪酸,且随着开食料采食量的增加,瘤胃中乙酸比例逐渐下降,丙酸比例逐渐提升,乙丙比渐渐降低至成年动物水平[14]㊂饲粮消化主体的转移,使门静脉血中的葡萄糖含量逐渐减少,乳酸和丙酸等糖异生前体物质含量逐渐增加[15]㊂肝脏中的单羧酸转运蛋白1(MCT1)主要参与C2 C5的单羧酸分子的转运,成年牛肝脏中MCT1基因的表达量是反刍前犊牛的8 9倍[16]㊂瘤胃中丙酸等生酮物质产量的增加标志着瘤胃发育的成熟,常通过血浆中β-羟丁酸含量间接指征瘤胃发育的状态㊂2㊀幼龄反刍动物消化道微生物演替与消化道发育的关联㊀㊀反刍动物消化道微生物演替贯穿动物的整个生长过程,但以幼龄期变化最为剧烈㊂不同功能瘤胃微生物变化以形成瘤胃特有的微生态,成就瘤胃发育及其强大的微生物发酵功能㊂2.1㊀生态位抢占和修饰主导了瘤胃微生物演替㊀㊀反刍动物出生后的数分钟,每克瘤胃内容物中就可以检测到高达1.9ˑ10816SrRNA基因拷贝数的活细菌[17]㊂这些微生物来源于母畜阴道㊁口腔㊁皮肤㊁粪便㊁初乳及饲养环境[18]㊂然而这些以好氧菌和兼性厌氧菌为主的微生物类群通过消耗瘤胃多余氧气,完成瘤胃生态环境修饰后,逐渐为执行饲粮中蛋白质和碳水化合物降解的功能性厌氧微生物所取代[19]㊂这些功能性厌氧微生物在瘤胃内的定植先后顺序及丰富度取决于相同功能微生物对同一可利用底物的竞争,即瘤胃 生态位抢占 ,也取决于先定植微生物对瘤胃环境的改变,即先定植的微生物通过 生态位修饰 为后续微生物创造适宜定植的环境条件㊂生态位是指生态群落中某一物种的时空特异性,及其与其他物种间的相互关系[20]㊂瘤胃微生物按其代谢产物可分为产乙酸㊁产丙酸㊁产丁酸㊁产乳酸/产延胡索酸/产琥珀酸㊁产甲烷和产氨微生物6个功能类群(表1)㊂新生反刍动物瘤胃内产乙酸菌占主导生态位,而随着年龄增长,产甲烷菌取代了产乙酸菌成为瘤胃中主导的氢利用菌,这是因为新生反刍动物瘤胃内氢分压较高,满足产乙酸菌利用H2和CO2生成乙酸的热力学要求㊂产乙酸菌能与其他氢利用微生物有效竞争,抑制其他氢利用微生物类群生长[30-31]㊂而随着瘤胃内微生物的增长,瘤胃内氢分压逐渐降低,不再满足产乙酸菌利用氢的条件,从而被氢分压要求不高的产甲烷菌取代,使氢更多用于生成甲烷[32]㊂产乙酸㊁产丁酸㊁产乳酸/产琥珀酸/产延胡索酸的微生物共同利用糖酵解生成的丙酮酸,存在生态位抢占关系,处于优势地位的微生物类群主导瘤胃发酵模式㊂而不同的发酵模式(乙酸型/丙酸型)下瘤胃内氢分压不同,影响产甲烷菌的数量,优势地位菌群与产甲烷菌间构成生态位修饰关系㊂六大瘤胃微生物功能类群的生态位抢占和修饰关系(表1)主导了瘤胃微生态的 演变 和 成熟 ㊂表1㊀六大瘤胃微生物功能类群的生态位抢占和修饰关系Table1㊀Nichepreemptionandmodificationofsixrumenmicrobialfunctiongroups[21]瘤胃微生物功能类群Rumenmicrobialfunctiongroups编号ID反应过程Reactionprocess生态位分化Nichedifferentiation抢占Preemption修饰Modification代表微生物Representivemicroorganisms产乙酸菌Acetate⁃producingmicroorganism①P+H2OңC2+H2O+2[H]⑤⑦⑥大多数瘤胃微生物,如普雷沃氏菌属㊁梭菌目和瘤胃球菌科[22]②CO2+2[H]ңC2+H2O⑥毛螺菌科㊁梭菌科[23]产丙酸菌Propionate⁃producingmicroorganism③LңAA+2[H]ңC3⑥⑦巨型球菌属㊁沙棘菌属[24-25]④SңC3+CO2⑧⑦普雷沃氏菌属㊁韦荣氏菌科[22]产丁酸菌Butyrate⁃producingmicroorganism⑤P+[H]ңC4+H2O①③⑦丁酸弧菌属[26]㊁毛螺菌科[22]产甲烷菌Methanogen⑥8[H]+CO2ңCH4+H2O②③⑤⑦⑧①⑨甲烷短杆菌属[27]896410期王佳堃等:幼龄反刍动物消化道微生物演替与消化道发育及其调控续表1瘤胃微生物功能类群Rumenmicrobialfunctiongroups编号ID反应过程Reactionprocess生态位分化Nichedifferentiation抢占Preemption修饰Modification代表微生物Representivemicroorganisms产乳酸㊁琥珀酸或延胡索酸菌Lactate,succinateorfumerate⁃producingmicroorganism⑦P+2[H]ңL⑥②④沙棘菌属㊁Mitsukella㊁欧陆森氏菌属[28]⑧P+2[H]+CO2ңS④④普雷沃氏菌属㊁拟杆菌目㊁瘤胃球菌属等[22]⑨PңF+2[H]⑥毛螺菌科㊁瘤胃球菌属㊁丁酸弧菌属[22]产氨菌Ammonia⁃producingmicroorganism⑩NH3厌氧消化链球菌㊁兰氏梭状芽孢杆菌㊁氨基梭状芽孢杆菌[29]㊀㊀P:丙酮酸pyruvate;L:乳酸lactate;S:琥珀酸succinate;F:延胡索酸fumerate;A:丙烯酸acrylicacid;[H]:还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸reducednicotinamideadeninedinucleotidephosphate;C2/C3/C4:乙酸/丙酸/丁酸acetate/propionate/butyrate㊂2.2㊀微生物代谢产物促进消化道上皮分化和增殖㊀㊀消化道微生物不仅能辅助动物体消化利用饲粮,其代谢产生的短链脂肪酸㊁维生素㊁氨基酸衍生物㊁胆汁酸等产物还能调节消化道的发育和功能㊂碳水化合物在消化道中迅速发酵产生短链脂肪酸㊂短链脂肪酸是消化道上皮细胞的主要供能物质,并作为活性信号因子调控消化道上皮的增殖和分化㊂其中以丁酸的作用效果最优,丙酸次之㊂在瘤胃中,80%的丁酸转化为酮体,为瘤胃上皮的生长提供80%以上的能量[33];在肠道中,丁酸通过β-氧化为肠上皮细胞提供70%的能量[34]㊂另外,短链脂肪酸是组蛋白去乙酰化酶(HDACs)的抑制剂和G蛋白偶联受体(GPCRs)的配体,因此能够通过激活基因转录和GPCRs信号途径,调节丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)㊁鞘脂类㊁胰岛素㊁催产素㊁WNT㊁钙离子等信号通路,调控细胞增殖和凋亡[35-36]㊂在培养的瘤胃上皮细胞中,丁酸增加细胞周期相关基因表达㊁减少细胞凋亡相关基因的表达,从而调控瘤胃上皮细胞的增殖[37];在结肠上皮细胞中,丁酸诱导组蛋白H4的高度乙酰化,减少细胞周期蛋白(cyclin)D1转录水平的表达,增加cyclinD3和p21蛋白的表达,使细胞周期停滞在G1期,进而抑制细胞增殖,促进细胞分化[38]㊂丁酸还能通过调控内分泌系统,促进胰岛素样生长因子-1(IGF⁃1)的分泌,通过上调IGF⁃1受体的表达,加速细胞有丝分裂,进一步促进上皮细胞增殖[39-40]㊂3㊀幼龄反刍动物消化道微生物定植与消化道发育的调控㊀㊀宿主基因型㊁饲粮结构㊁饲养管理策略等均会影响幼龄反刍动物消化道微生物的定植㊂近年来研究者通过营养与微生物直接干预的方式调控了反刍动物消化道微生物的定植过程,提高了动物的生产性能,并有一定的长期影响㊂3.1㊀微生物介导营养素调控消化道发育㊀㊀饲粮作为微生物发酵的底物,其物理性质和营养组成直接影响微生物的定植过程㊂液体饲粮饲喂的犊牛瘤胃中乳杆菌(Lactobacillus)㊁拟杆菌(Bacteroides)和Parabacteroides等菌属的丰度较高,这些微生物能够利用乳中的营养成分㊂补饲固体饲粮后瘤胃中与淀粉降解相关的巨型球菌(Megasphaera)㊁沙棘菌(Sharpea)和琥珀酸弧菌(Succinivribrio)等菌属的丰度增加[41],普雷沃氏菌属(Prevotella)等成年瘤胃中的主要微生物快速增长[42],纤维杆菌(Fibrobacter)㊁氨基酸球菌(Acidaminococcus)㊁琥珀酸菌(Succiniclasticum)等菌属的丰度显著增加[43];结肠上皮黏附微生物中S24⁃7㊁颤杆菌(Oscillibacter)㊁Prevotella㊁Para⁃bacteroides㊁双歧杆菌(Bifidobacterium)㊁反刍杆菌(Ruminobacter)和Succinivibrio菌属的丰度显著升高,疣微菌科(Ruminococcaceae)㊁RC9gutgroup㊁9964㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报32卷Blautia㊁Phocaeicola㊁考拉杆菌属(Phascolarctobac⁃terium)㊁BS11gutgroup㊁FamilyⅩⅢ和弯曲杆菌属(Campylobacter)丰度显著下降[44]㊂开食料中添加亚麻籽油,能够促进瘤胃中琥珀酸弧菌科(Succinivibrionaceae)和韦荣氏菌科(Veillonellace⁃ae)的定植,该作用效果在停喂亚麻籽油后仍得以保持[45];混合添加大蒜油和亚麻籽油促进普雷沃氏菌科(Prevotellaceae)的定植,降低毛螺菌科(Lachnospiraceae)㊁Fibrobacteriaceae和Bacteroid⁃alesRF16group的相对丰度[46];添加亮氨酸可以提高瘤胃中Prevotella的相对丰度,降低梭菌属(Clostridium)和Megasphaera的相对丰度[47]㊂㊀㊀Zhang等[48]研究发现,断奶前饲喂高水平的代乳粉能降低断奶时的炎症反应,但代乳粉饲喂水平对瘤胃微生物区系几乎没有影响㊂Lin等[28]基于瘤胃微生物宏基因组及瘤胃上皮转录组分析揭示,开食料提高瘤胃中乙酸产生菌(光岗菌)㊁乳酸产生菌㊁乳酸利用菌(Megasphaera)和内毛虫等的丰度,增加糖苷水解酶家族13的丰度,它们的代谢产物可能通过上调瘤胃上皮细胞生长调节因子丝裂原活化蛋白激酶1(MAPK1)㊁PI3激酶β亚基(PIK3CB)㊁肿瘤坏死因子超家族10(TNFSF10)㊁整合素6α(ITGA6)㊁锌指蛋白(SNAI2)㊁salvador家族蛋白(SAV1)㊁膜相关鸟苷酸激酶大支架蛋白(DLG)和下调促细胞死亡因子(BAD)转录水平的表达,影响瘤胃的形态和发育㊂本课题组以羔羊为研究对象,研究发现补饲苜蓿在断奶前增加瘤胃中unclassifiedLachnospiraceae㊁密螺旋体属(Treponema)和unclassifiedRumino⁃coccaceae的相对丰度;上调瘤胃组织中小窝蛋白3(CAV3)㊁钙离子电压门控通道蛋白α亚基1D(CACNA1D)㊁SH3和半胱氨酸丰富域(STAC)㊁缝隙连接蛋白1(GJA1)㊁钾离子电压门控通道互作蛋白2(KCNIP2)㊁RAR相关孤儿受体A(RORA)㊁PPARG共激活剂1α(PPARGC1A)㊁一氧化氮合酶2(NOS2)㊁蛋白激酶Cβ(PRKCB)转录水平的表达量,下调高尔基相关分泌途径激酶(FAM20C)转录水平的表达量,加速瘤胃肌肉细胞的钙内流,促进瘤胃组织发育;微生物的变化与瘤胃发育间存在显著相关关系,补饲苜蓿使羔羊的瘤胃及其微生物在断奶前就能更好地适应断奶后饲粮的转换,减缓断奶应激[49-50]㊂3.2㊀外源微生物通过改变原生瘤胃微生物群落组成改善动物生长性能㊀㊀微生态制剂是能够促进动物消化道微生态平衡,调节动物机体健康的活性微生物[51]㊂适用于反刍动物的微生态制剂可以是瘤胃源的微生物,也可以是非瘤胃源的微生物㊂反刍动物断奶前后,通过直接饲喂含有活菌的微生态制剂,能够改变原生瘤胃微生物在瘤胃中的定植过程,发挥促生长或缓解腹泻的作用(表2)㊂3.3㊀瘤胃微生物移植重构消化道微生物与宿主互作网络㊀㊀粪菌移植(FMT)是指将健康供体的粪便微生物移植到患病受体的消化道内重塑受体肠道菌群结构来治疗特定疾病的方法㊂粪菌是微生态制剂的一类特殊形式㊂理论上,相比于外源微生物,来自于瘤胃中的微生物更适合在瘤胃中定植㊂因此与粪菌移植相似,瘤胃微生物移植(RMT)被认为是一种重塑瘤胃菌群结构,提高反刍动物生产性能的方法㊂Belanche等[70]给出生后的山羊连续灌注成年羊的新鲜瘤胃液11周,促进了原虫在瘤胃中的定植,提高了粗饲料的采食量㊁瘤胃中氨态氮㊁挥发性脂肪酸和血浆中β-羟丁酸含量,并且瘤胃液取自高粗料饲喂的成年羊的效果要优于高精料饲喂的成年羊㊂给母羊饲喂椰子油或过瘤胃保护脂肪后,将其瘤胃液移植给羔羊,可提高羔羊瘤胃中Veillonellaceae和Prevotellacea的丰度[71]㊂本课题组给成年羊饲喂羔羊的开食料后将其瘤胃微生物冻干粉饲喂给羔羊,改善了羔羊全肠道消化性,提高了瘤胃淀粉酶活性,增加了瘤胃中丙酸的供应量[72]㊂并且研究发现断奶前移植更有助于瘤胃微生物 成熟 [73]㊂但Bu等[74]通过断奶前连续灌注瘤胃液的方式给犊牛移植成年奶牛瘤胃微生物,却未改变断奶27d后犊牛的瘤胃细菌结构,移植没有改善采食量㊁日增重和料重比,仅有效降低了腹泻率㊂007410期王佳堃等:幼龄反刍动物消化道微生物演替与消化道发育及其调控表2㊀幼龄反刍动物常用的微生态制剂Table2㊀Mainmicroecologicalpreparationsforyoungruminants微生物种类Microorganismsspecies宿主物种Host试验周期Experimentalperiod微生物调节能力Microbiologicalregulation平均日增重Averagedailygain饲料效率Feedefficiency腹泻缓解能力Diarrheaalleviation其他作用Otherfunctions参考文献References乳酸杆菌Lactobacillusspp.犊牛1 9周龄降低粪便中大肠杆菌数量++++++降低死亡率[52]干酪乳杆菌Lactobacilluscasei犊牛断奶至90日龄降低70日龄时粪便中大肠杆菌数量+++++提高胰岛素水平[53]乳酸杆菌和芽孢杆菌Lactobacillusspp.andBacillusspp.犊牛2 28日龄提高粪便中乳酸菌与大肠杆菌数量比例++无++提高采食量和最终体重[54]嗜酸乳酸杆菌Lactobacillusacidophilus羔羊7 91日龄++++++降低腹泻率[55]片球菌㊁肠球菌㊁嗜热乳杆菌㊁干酪乳杆菌和双歧杆菌(复合剂)Pediococcusacidilactici,Enterococcusfae⁃cium,Lactobacillusacidophilus,Lactoba⁃cilluscaseiandBifidobacteriumbifidum(compoundpreparation)犊牛 无无++降低腹泻率,缩短腹泻缓解时间[56]布拉迪酵母和嗜酸乳酸杆菌SaccharomycescerevisiaeboulardiiCNCMI⁃1079andLactobacillusacidophilusBT1386犊牛1 56日龄提高瘤胃丝状杆菌和欧陆森菌的丰度++++++降低死亡率[52]酿酒酵母和脆壁克鲁维氏酵母SaccharomycescerevisiaeandKluyveromycesfragilis犊牛4 56日龄提高瘤胃中微生物纤维素酶的活性无无无降低总挥发性脂肪酸含量,降低丁酸比例,增加乙丙比[57]酿酒酵母及其培养物SaccharomycescerevisiaeCNCMI⁃1077andtheircultures羔羊0 2月龄增加瘤胃中Trichostomatia和Neocallimastigaceae等真菌及琥珀酸丝状杆菌的丰度无无无提高瘤胃内半纤维素酶基因的表达量,提升糖苷水解基因的表达量[58]酿酒酵母及其培养物Saccharomycescerevisiaeandtheircultures犊牛4 56日龄提高丁酸弧菌的相对丰度,降低普雷沃氏菌相对丰度++++无促进瘤胃形态发育,降低初生牛犊应激性死亡率[59-60]酿酒酵母SaccharomycescerevisiaeCNCMI⁃1077羔羊1 180日龄加速瘤胃中纤维降解菌的定植无无无降低瘤胃氨含量,提高瘤胃挥发性脂肪酸含量[61]1074㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报32卷续表2微生物种类Microorganismsspecies宿主物种Host试验周期Experimentalperiod微生物调节能力Microbiologicalregulation平均日增重Averagedailygain饲料效率Feedefficiency腹泻缓解能力Diarrheaalleviation其他作用Otherfunctions参考文献References黄色瘤胃球菌Ruminococcusflavefaciens驯鹿2岁驯鹿共计52d提高普雷沃氏菌丰度,降低未分类拟杆菌相对丰度无无无降低瘤胃微生物分解糖的能力[62]黄色瘤胃球菌(复合剂)RuminococcusflavefaciensNJ(compoundpreparation)犊牛21 35日龄在21 35d的幼龄犊牛瘤胃中定植无++无提高草料消化效率[63]片球菌Pediococcusspp.羔羊15 90日龄(断奶前);91 174日龄(断奶后)++无提高采食量[64]纳豆枯草芽孢杆菌Bacillussubtilisnatto犊牛7日龄至断奶;60日龄至断奶后2个月提高瘤胃中白色瘤胃球菌和黄色瘤胃球菌的丰度++++无缩短断奶日龄[65-66]芽孢杆菌属Bacillusspp.羔羊1 9周龄提高瘤胃瘤胃球菌科㊁RC9㊁普雷沃氏菌科和毛螺旋菌科等的相对丰度无++无提高瘤胃乙丙比[67]枯草芽孢杆菌Y4⁃100BacillussubtilisY4⁃100羔羊断奶至断奶后37d+++++降低有害菌定植[68]埃氏巨球菌MegasphaeraelsdeniiNCIMB41125犊牛1 14日龄没有提高瘤胃中埃氏巨球菌的数量,不能有效定植无无无[69]㊀㊀ + :提高趋势(0.05<P<0.10); ++ :显著提高(P<0.05)㊂㊀㊀ + :increasetendency(0.05<P<0.10); ++ :significantincrease(P<0.05).207410期王佳堃等:幼龄反刍动物消化道微生物演替与消化道发育及其调控4㊀小㊀结㊀㊀调控幼龄反刍动物消化道微生物定植的文章相对较多,除营养和微生物干预外,也有研究者考虑母子一体化策略,但这些变化的微生物与消化道发育调节之间的关联仍然停留在相关分析层面㊂瘤胃微生物通过何种途径实现复胃及肠道发育的调节仍需细胞㊁组织层面直接的因果研究㊂生态位理论能够帮助研究者更好地解读瘤胃内微生物的整体功能和演替规律㊂因此针对幼龄反刍动物的靶向微生物调控破坏原有的生态位抢占状态或针对性添加修饰瘤胃环境的微生物制剂等方法能够重新定向瘤胃微生物的演替过程,实现瘤胃的高效调控㊂参考文献:[1]㊀SHARMAR,SCHUMACHERU,RONAASENV,etal.Ratintestinalmucosalresponsestoamicrobialfloraanddifferentdiets[J].Gut,1995,36(2):209-214.[2]㊀PETERSSONJ,SCHREIBERO,HANSSONGC,etal.Importanceandregulationofthecolonicmucusbar⁃rierinamousemodelofcolitis[J].AmericanJournalofPhysiology:GastrointestinalandLiverPhysiology,2011,300(2):G327-G333.[3]㊀MAYNARDCL,ELSONCO,HATTONRD,etal.Reciprocalinteractionsoftheintestinalmicrobiotaandimmunesystem[J].Nature,2012,489(7415):231-241.[4]㊀GABORIAU⁃ROUTHIAUV,RAKOTOBES,LÉCUYERE,etal.Thekeyroleofsegmentedfila⁃mentousbacteriainthecoordinatedmaturationofguthelperTcellresponses[J].Immunity,2009,31(4):677-689.[5]㊀IVANOVII,ATARASHIK,MANELN,etal.Induc⁃tionofintestinalTh17cellsbysegmentedfilamentousbacteria[J].Cell,2009,139(3):485-498.[6]㊀ATARASHIK,TANOUET,SHIMAT,etal.Induc⁃tionofcolonicregulatoryTcellsbyindigenousClos⁃tridiumspecies[J].Science,2011,331(6015):337-341.[7]㊀COONKL,VALZANIAL,MCKINNEYDA,etal.Bacteria⁃mediatedhypoxiafunctionsasasignalformosquitodevelopment[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciencesoftheUnitedStatesofAmeri⁃ca,2017,114(27):E5362-E5369.[8]㊀BUCHONN,BRODERICKNA,CHAKRABARTIS,etal.Invasiveandindigenousmicrobiotaimpactin⁃testinalstemcellactivitythroughmultiplepathwaysinDrosophila[J].Genes&Development,2009,23(19):2333-2344.[9]㊀SHINSC,KIMSH,YOUH,etal.Drosophilamicro⁃biomemodulateshostdevelopmentalandmetabolichomeostasisviainsulinsignaling[J].Science,2011,334(6056):670-674.[10]㊀GUILLOTEAUP,ZABIELSKIR,BLUMJW.Gas⁃trointestinaltractanddigestionintheyoungruminant:ontogenesis,adaptations,consequencesandmanipula⁃tions[J].JournalofPhysiologyandPharmacology,2009,60Suppl3:37-46.[11]㊀REYM,ENJALBERTF,MONTEILSV.Establish⁃mentofruminalenzymeactivitiesandfermentationcapacityindairycalvesfrombirththroughweaning[J].JournalofDairyScience,2012,95(3):1500-1512.[12]㊀MEALESJ,LISC,AZEVEDOP,etal.Weaningageinfluencestheseverityofgastrointestinalmicrobiomeshiftsindairycalves[J].ScientificReports,2017,7:198.[13]㊀LIRW,CONNOREE,LICJ,etal.Characterizationoftherumenmicrobiotaofpre⁃ruminantcalvesusingmetagenomictools[J].EnvironmentalMicrobiology,2012,14(1):129-139.[14]㊀ANDERSONKL,NAGARAJATG,MORRILLJL.Ruminalmetabolicdevelopmentincalvesweanedcon⁃ventionallyorearly[J].JournalofDairyScience,1987,70(5):1000-1005.[15]㊀KLOTZJL,HEITMANNRN.Changesinnetportalnutrientfluxinresponsetoweaningtransitionandionophoresupplementationindairycalves[J].JournalofDairyScience,2007,90(3):1326-1339.[16]㊀KIRATD,INOUEH,IWANOH,etal.Monocarboxy⁃latetransporter1(MCT1)intheliverofpre⁃ruminantandadultbovines[J].TheVeterinaryJournal,2007,173(1):124-130.[17]㊀MALMUTHUGEN,LIANGGX,GUANLL.Regu⁃lationofrumendevelopmentinneonatalruminantsthroughmicrobialmetagenomesandhosttranscrip⁃tomes[J].GenomeBiology,2019,20:172.[18]㊀BIYL,COXMS,ZHANGF,etal.Feedingmodesshapetheacquisitionandstructureoftheinitialgutmicrobiotainnewbornlambs[J].EnvironmentalMi⁃crobiology,2019,21(7):2333-2346.3074㊀动㊀物㊀营㊀养㊀学㊀报32卷[19]㊀JAMIE,ISRAELA,KOTSERA,etal.Exploringthebovinerumenbacterialcommunityfrombirthtoadult⁃hood[J].TheISMEJournal,2013,7(6):1069-1079.[20]㊀WHITTAKERRH,LEVINSA.Niche:theoryandapplicationbenchmarkpapersinecology[M].Stroudsburg,Pennsylvania:Dowden,HutchinsonandRoss,Inc.,1975.[21]㊀李嘉秋,王佳堃.基于生态位理论的瘤胃微生物发酵调控研究进展[J].中国畜牧杂志,2020:1-6.(2020-05-18).https://kns.cnki.net/KCMS/detail/11.2083.S.20200516.1205.001.html.[22]㊀SESHADRIR,LEAHYSC,ATTWOODGT,etal.CultivationandsequencingofrumenmicrobiomemembersfromtheHungate1000collection[J].NatureBiotechnology,2018,36(4):359-367.[23]㊀GAGENEJ,DENMANSE,PADMANABHAJ,etal.Functionalgeneanalysissuggestsdifferentacetogenpopulationsinthebovinerumenandtammarwallabyforestomach[J].AppliedandEnvironmentalMicrobi⁃ology,2010,76(23):7785-7795.[24]㊀KAMKEJ,KITTELMANNS,SONIP,etal.RumenmetagenomeandmetatranscriptomeanalysesoflowmethaneyieldsheeprevealsaSharpea⁃enrichedmi⁃crobiomecharacterisedbylacticacidformationandutilisation[J].Microbiome,2016,4:56.[25]㊀BENSHABATSK,SASSONG,DORON⁃FAIGEN⁃BOIMA,etal.Specificmicrobiome⁃dependentmecha⁃nismsunderlietheenergyharvestefficiencyofrumi⁃nants[J].TheISMEJournal,2016,10(12):2958-2972.[26]㊀MILLERTL,JENESELSE.EnzymologyofbutyrateformationbyButyrivibriofibrisolvens[J].JournalofBacteriology,1979,138(1):99-104.[27]㊀WRIGHTADG,MAXL,OBISPONE.Methano⁃brevibacterphylotypesarethedominantmethanogensinsheepfromVenezuela[J].MicrobialEcology,2008,56(2):390-394.[28]㊀LINLM,XIEF,SUNDM,etal.Ruminalmicrobi⁃ome⁃hostcrosstalkstimulatesthedevelopmentoftheruminalepitheliuminalambmodel[J].Microbiome,2019,7:83.[29]㊀PASTERBJ,RUSSELLJB,YANGCMJ,etal.Phylogenyoftheammonia⁃producingruminalbacteriaPeptostreptococcusanaerobius,Clostridiumsticklan⁃dii,andClostridiumaminophilumsp.nov[J].Interna⁃tionalJournalofSystematicandEvolutionaryMicr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maturation dominatedbythenichepreoccupationandmodificationofrumenmicroorganisms.Nutrientsandexogenousmi⁃croorganismregulategastrointestinaldevelopmentthroughalteringthecompositionofnativemicrobialcommu⁃nity.Comparedtotheexogenousmicrobiota,rumenmicrobialtransplantationtargetedatyoungruminantsisamoreeffectivewaytoreestablishrumenmicrobialcommunity,andthusrealizeamoreefficientregulationofrumendevelopment.[ChineseJournalofAnimalNutrition,2020,32(10):4697⁃4707]Keywords:youngruminant;gastrointestinaltract;microbialsuccession;gastrointestinaldevelopment7074。
矿产资源开发利用方案编写内容要求及审查大纲
矿产资源开发利用方案编写内容要求及《矿产资源开发利用方案》审查大纲一、概述
㈠矿区位置、隶属关系和企业性质。
如为改扩建矿山, 应说明矿山现状、
特点及存在的主要问题。
㈡编制依据
(1简述项目前期工作进展情况及与有关方面对项目的意向性协议情况。
(2 列出开发利用方案编制所依据的主要基础性资料的名称。
如经储量管理部门认定的矿区地质勘探报告、选矿试验报告、加工利用试验报告、工程地质初评资料、矿区水文资料和供水资料等。
对改、扩建矿山应有生产实际资料, 如矿山总平面现状图、矿床开拓系统图、采场现状图和主要采选设备清单等。
二、矿产品需求现状和预测
㈠该矿产在国内需求情况和市场供应情况
1、矿产品现状及加工利用趋向。
2、国内近、远期的需求量及主要销向预测。
㈡产品价格分析
1、国内矿产品价格现状。
2、矿产品价格稳定性及变化趋势。
三、矿产资源概况
㈠矿区总体概况
1、矿区总体规划情况。
2、矿区矿产资源概况。
3、该设计与矿区总体开发的关系。
㈡该设计项目的资源概况
1、矿床地质及构造特征。
2、矿床开采技术条件及水文地质条件。
矿产资源开发利用方案编写内容要求及审查大纲
矿产资源开发利用方案编写内容要求及《矿产资源开发利用方案》审查大纲一、概述
㈠矿区位置、隶属关系和企业性质。
如为改扩建矿山, 应说明矿山现状、
特点及存在的主要问题。
㈡编制依据
(1简述项目前期工作进展情况及与有关方面对项目的意向性协议情况。
(2 列出开发利用方案编制所依据的主要基础性资料的名称。
如经储量管理部门认定的矿区地质勘探报告、选矿试验报告、加工利用试验报告、工程地质初评资料、矿区水文资料和供水资料等。
对改、扩建矿山应有生产实际资料, 如矿山总平面现状图、矿床开拓系统图、采场现状图和主要采选设备清单等。
二、矿产品需求现状和预测
㈠该矿产在国内需求情况和市场供应情况
1、矿产品现状及加工利用趋向。
2、国内近、远期的需求量及主要销向预测。
㈡产品价格分析
1、国内矿产品价格现状。
2、矿产品价格稳定性及变化趋势。
三、矿产资源概况
㈠矿区总体概况
1、矿区总体规划情况。
2、矿区矿产资源概况。
3、该设计与矿区总体开发的关系。
㈡该设计项目的资源概况
1、矿床地质及构造特征。
2、矿床开采技术条件及水文地质条件。