小鼠麻醉剂量

动物麻醉

麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动

物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。

一、常用的麻醉药

(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时

配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为

大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。

(二)常用全身麻醉剂：

1. 乙醚 乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。其麻醉量和致死量相

差大,所以其安全度大。但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；

通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中

要注意。但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉

后恢复比较快。其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，

对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础

麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)

及阿托品(每公斤体重0.1mg)。盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还

可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌

粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。

进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。慢性实验预备手

术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,

通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。在继续给药过程中，要时常检查角膜反射和观察

瞳孔大小(如发现角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。万一呼吸停止，

必须立即施行人工呼吸。待恢复自动呼吸后再进行操作。

2. 苯巴比妥钠 此药作用持久,应用方便，在普通麻醉用量情况下对于动物呼吸、血

压和其它功能无多大影响。通常在实验前半至一小时用药。使用剂量及方法为：狗腹

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不同麻醉剂麻醉小鼠后对晶状体影响的比较

作者：曹妍群 郭兴 易志勇

来源：《医学信息》2014年第17期

摘要：目的 探讨各种麻醉剂对小鼠晶状体透明度的影响。方法 将环境温度控制为（24±1）℃，分别用10%水合氯醛（400 mg/kg）、2%戊巴比妥钠（40mg/kg）及25%乌拉坦（1000mg/kg）腹腔注射麻醉C57/BL6小鼠，扩瞳后于10、20、30、45、60min裂隙灯观察晶状体浑浊情况。结果 乌拉坦、水合氯醛麻醉组与戊巴比妥钠麻醉组相比，麻醉持续时间较长，晶状体出现浑浊的时间较早，浑浊程度较重；24h后裂隙灯检测显示各麻醉组晶状体恢复透明状态。结论 不同麻醉剂诱导小鼠晶状体出现突发性浑浊的程度不同，使用小鼠进行晶状体等眼球相关实验时，要注意麻醉剂的选择，减少对实验结果的影响。

关键词：麻醉；小鼠；晶状体在研究晶状体病变或者视网膜病变等眼科相关疾病时，C57/BL6小鼠已成为常见的实验动物，麻醉是动物实验中重要的步骤，麻醉后晶状体是否透明在进行ERG、VEP、OCT等眼科仪器检测时是至关重要的因素[1]。有研究指出，用甲苯噻嗪/氯胺酮、水合氯醛在进行常规麻醉时，会诱导小鼠晶状体出现突发性可逆性浑浊，并干扰眼科仪器的检查，影响实验结果[2,3]，并指出麻醉后实验动物出现晶状体浑浊与温度有关[2,4]。在前期研究中，我们也已经证实了低温会诱导麻醉后C57/BL6小鼠晶状体出现浑浊，因此，本实验将温度恒定在（24±1）℃，拟探讨各种麻醉剂对小鼠晶状体透明度的影响，为进行眼科动物实验麻醉提供研究基础。

1资料与方法

1.1实验材料、试剂及主要仪器

1.1.1动物健康雄性C57/BL6小鼠36只，2个月龄，体重19～24g。由中南大学湘雅医学院实验动物中心提供。所有小鼠实验前托吡卡胺眼液扩瞳后经裂隙灯检测，晶状体均透明正常。

一、动物麻醉的目的

1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。甚至引起动物死亡或休克。

2.防止动物伤害实验操作者。

3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。

二、麻醉的类型和方法

1.全身麻醉的方法：

吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。

1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。动物先兴奋后抑制，自行倒下。当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。

2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。

3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。

乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。随着吸入乙醚麻醉的加深，犬的呼吸加深，肌肉紧张度增加，可能会出现窒息。预防的办法是：在犬每吸入数次乙醚后，取下口罩，让其呼吸一次新鲜空气。

鼠腹腔注射戊巴比妥钠的麻醉技巧

在实验室研究中，对鼠进行腹腔注射戊巴比妥钠是一种常见的麻醉方法。这种麻醉技巧对于实验操作和研究的准确性具有重要意义。本文将详细介绍鼠腹腔注射戊巴比妥钠的麻醉技巧，包括准备工作、麻醉流程和注意事项等方面。

选取适合的实验动物：在进行腹腔注射麻醉前，应选取健康的成年小鼠，体重在20-30克之间为宜。

准备必要的器材：包括注射器、针头、镊子、酒精棉球等。

准备药品：戊巴比妥钠粉末、生理盐水、10%葡萄糖溶液等。

将戊巴比妥钠粉末溶于生理盐水或10%葡萄糖溶液中，配制成适当的浓度。一般情况下，戊巴比妥钠的浓度为30-50毫克/毫升。

用酒精棉球清洁小鼠的腹部，并用镊子固定小鼠。

用1毫升注射器抽取配制好的戊巴比妥钠溶液。

在小鼠腹部两侧进行腹腔注射，注意避免损伤内脏器官。注射剂量根据小鼠体重而定，一般每10克体重注射1-2毫升药物。 注射完毕后，观察小鼠的反应情况。一般会在几分钟内出现麻醉效果，小鼠会进入嗜睡状态。

避免药物过量：腹腔注射戊巴比妥钠应严格控制药物剂量，避免过量使用导致小鼠死亡或不良反应。

注意动物反应：注射药物后，应密切观察小鼠的反应情况，如出现呼吸急促、心跳加速等异常反应，应及时采取急救措施。

遵循无菌原则：在操作过程中，应遵循无菌原则，避免感染。特别是在抽取药物和注射药物时，要保证针头和注射器的清洁。

固定动物：在注射药物前，应将小鼠固定好，避免注射时造成损伤或药物流失。

及时处理意外情况：在操作过程中，如出现意外情况，如针头断裂、动物躁动等，应及时采取措施处理，保证操作的安全性。

鼠腹腔注射戊巴比妥钠是一种可靠的麻醉方法，适用于实验室研究。在操作过程中，要注意准备工作、麻醉流程和注意事项，保证麻醉效果和动物的安全。要熟悉掌握急救措施，以便在出现意外情况时能够及时处理。 本文旨在探讨戊巴比妥钠、水合氯醛、氨基甲酸乙酯麻醉对雄性SD大鼠血液学指标的影响。实验采用不同剂量的麻醉药物对大鼠进行麻醉，并检测其血液学指标。结果表明，三种麻醉药物对雄性SD大鼠的血液学指标均产生了一定的影响，但不同药物的影响程度和趋势存在差异。