植物组织培养
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植物组织培养的一般过程
以下是有关植物组织培养的一般过程:
1.植物组织培养的一般过程
(1)在无菌条件下,将植物器官或组织(如芽、茎尖、根尖或花药)的一部分切下,用纤维素酶和果胶酶处理以去除细胞壁,使之露出原生质体。
(2)然后放在适当的人工培养基上进行培养,这些器官和组织就会进行细胞分裂,形成新的组织。
不过这种组织没有发生分化,只是一团薄壁细胞,称为愈伤组织。
(3)在合适的光照、温度和一定的营养物质与激素等条件下,愈伤组织便开始分化,分化成植物的各种器官和组织,进而发育成一株完整的植株。
2.植物组织培养的特点
(1)培养条件可以人为控制,组织培养采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长,摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响,且条件均一,对植物生长极为有利,便于稳定地进行周年培养生产。
(2)生长周期短,繁殖率高,植物组织培养是由于人为控制培养条件,根据不同植物不同部位的不同要求而提供不同的培养条件,因此生长较快,另外,植株也比较小,往往20~30天为一个周期。
所以,虽然植物组织培养需要一定设备及能源消耗,但由于植物材料能按几何级数快速繁殖生产,故总体上成本低廉,且能及时提供规格一致的优质种苗或脱病毒种苗。
(3)管理方便,利于工厂化生产和自动化控制。
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植物的组织培养方法植物组织培养是一种无性繁殖技术,通过培养植物的各种器官组织,包括种子、茎、叶和根的细胞和组织,使其在适当的条件下进行生长和分化,从而产生新的植株。
这项技术已被广泛应用于农业、园艺、林业和植物学研究中。
以下是植物组织培养的一般步骤和方法:1. 材料准备:首先,选择适合的植物作为材料,常用的包括水果、蔬菜和花卉植物。
收集新鲜的种子、茎、叶或根,并进行消毒处理,以防止细菌、真菌和其他病原体的污染。
2. 植物组织的分离:将植物材料切成小块或将细胞分离开来。
对于植物的种子,可以直接将种子表面进行消毒处理后,在培养基上进行培养;对于茎、叶和根等组织,则需要进行切割处理。
3. 培养基的准备:制备适当的培养基是进行植物组织培养的重要步骤。
培养基通常由无机盐和有机添加剂组成,以提供植物生长所需的营养物质。
根据组织的不同类型,可以使用不同种类和浓度的培养基。
4. 培养基的调整:将分离的组织放入培养基上,可以将培养基涂覆在组织表面上,或者将组织植入培养基中。
然后,在无细菌的条件下,将组织培养在适当的温度、湿度和光照条件下。
5. 激素的添加:植物生长激素是控制植物生长和分化的关键因素。
在组织培养中,可以根据实验的需要添加适量的激素来促进细胞分裂和分化。
常用的激素有生长素、细胞分裂素和愈伤组织生成素等。
6. 愈伤组织的诱导:愈伤组织是植物组织培养中产生的一种可分化细胞。
通过搅拌、震荡或辐射等途径,诱导组织分化成愈伤组织,然后将其继续培养。
7. 植株的再生:通过培养基中激素的平衡调节,可以使愈伤组织再生为整个植株。
在培养基中,植株的幼苗养分丰富,需要的培养基成分和激素浓度可能与之前的不同。
8. 培养环境的控制:为了使植物组织正常生长和分化,需要控制培养环境的参数。
例如,可以调节培养基的pH值、光照强度、温度和湿度等因素。
9. 组织转化:经过培养,植物组织中可以引入外源基因,使其具有某种特定的性状,这被称为转基因。
植物组织培养的含义:将植物的离体材料(器官、组织、细胞、原生质体等)无菌培养,使其生长、分化、繁殖,再生出完整植株或生产次生代谢物质的技术。
植物组织培养的理论基础是植物细胞的全能性:指一个完整的植物细胞拥有形成一个完整植株所必需的全部遗传信息,在适宜条件下具有发育成完整植株的能力。
外植体:在植物组织培养中,在活体植物上提取下来的,接种在培养基上的无菌细胞、组织、器官等均称为外植体。
外植体选择的原则:①、再生能力强;②、遗传稳定性好;③、来源丰富;④、灭菌容易。
植物组织培养的类型:根据培养材料(即外植体)的不同,可将植物组织培养划分为植株、胚胎、器官、组织、细胞和原生质体五个水平上的培养类型。
愈伤组织:原指植物在受伤后于伤口表面形成的一团薄壁细胞,在组织培养中,则指在人工培养基上由外植体长出来的一团无序生长的薄壁细胞。
植物组织培养的特点:①、培养材料经济;②、培养条件可以人为控制;③、生长周期短,繁殖率高;④、管理方便,利于工厂化生产和自动化控制。
White(1943)撰写的《植物组织培养》是第一部有关植物组织培养的专著。
PH值最适5.6,高温、高压灭菌后PH值会降低,配制时一般为5.7~5.8,若PH值偏高,培养基会偏硬,会不利于植物材料吸取营养;PH值偏低,培养基凝固不好,不利于植物材料的固定。
MS培养基特点:①、无机盐成分很高,硝酸盐、NH+、K+含量高;②、元素平衡较好;③、缓冲性能也比较好;④、微量元素、有机成分丰富、齐全。
无机盐母液适度冷藏保存。
维生素等有机营养元素在—20℃保存,使用前用温水溶解。
MS培养基母液的成分:大量元素母液、微量元素母液、铁盐母液、有机物母液。
CuSO4、CuCl2取25mg溶于10mL,制成2.5mg/mL溶液,配制50mL微量元素母液,吸取该溶液0.05mL。
灭菌的条件:培养基的成分:1、水分2、无机盐①、大量元素:指植物生长发育所需浓度大于0.5mmol/L的营养元素。
《植物组织培养技术》知识清单一、什么是植物组织培养技术植物组织培养技术是一种在无菌条件下,将植物的离体器官、组织或细胞等培养在人工配制的培养基上,使其生长、分化并发育成完整植株的技术。
这项技术的核心在于创造一个适宜的环境,让植物细胞能够像在体内一样进行分裂、生长和分化,从而实现植物的快速繁殖、品种改良以及基因工程等多种应用。
二、植物组织培养技术的基本原理植物细胞的全能性是植物组织培养的理论基础。
这意味着每个植物细胞都包含着该植物的全部遗传信息,在一定条件下具有发育成完整植株的潜力。
细胞分化则是细胞在发育过程中逐渐形成不同形态和功能的过程。
在组织培养中,通过调节培养基的成分和培养条件,可以控制细胞的分化方向,使其按照我们的需求发育成特定的组织或器官。
三、植物组织培养技术的流程1、外植体的选择与消毒外植体是指用于培养的植物器官、组织或细胞。
常见的外植体有茎尖、叶片、花药等。
在选择外植体时,要考虑其来源的植物品种、生长状态和健康程度。
消毒是非常关键的一步,通常使用酒精、升汞等消毒剂对外植体进行处理,以去除表面的微生物,确保培养过程不受污染。
2、培养基的配制培养基是为植物细胞提供营养和生长条件的物质。
它包含大量元素、微量元素、有机成分、植物生长调节剂等。
不同的植物种类和培养目的需要不同的培养基配方。
例如,诱导愈伤组织形成的培养基和诱导芽分化的培养基成分就有所不同。
3、接种在无菌条件下,将消毒后的外植体接种到培养基上。
操作过程要迅速、准确,避免外植体受到污染。
4、培养接种后的外植体需要在适宜的温度、光照和湿度条件下进行培养。
培养过程中要定期观察,及时处理出现的污染、褐化等问题。
5、诱导分化根据培养目的,通过调整培养基成分和培养条件,诱导外植体分化形成芽、根或愈伤组织等。
6、植株再生当分化形成的芽和根发育成熟后,将其转移到生根培养基上,促进根系的生长,最终形成完整的植株。
7、炼苗与移栽再生的植株需要经过一段时间的炼苗,使其逐渐适应外界环境。
植物组织培养的方法植物组织培养(Plant tissue culture)是指利用无菌条件下培养植物细胞或组织,以实现繁殖、繁育新品种、生物合成化合物、环境污染处理等目的的技术。
其不仅可以大幅度提高植物材料的品质和数量,还可以在无限制地产生同一种植物。
方法一:赤潮法(Embryogenesis)这一方法是利用赤潮细胞发生器官(如胚性板)的细胞分化,诱导植物组织的胚胎发生,进而实现植物再生。
该方法适用于很多种植物,如玉米、大麦、水稻等。
步骤为:1. 准备培养基:含有赤潮素、氨基酸、维生素、植物激素和适当的糖类和盐类的基础培养基。
2. 处理材料:将植物的姿态板或种子材料在高温(35-40C)下进行消毒,使其无菌。
3. 材料分离:将消毒材料放入无菌条件下进行材料分离。
4. 培养细胞:将细胞或组织放入含有培养基的无菌培养皿中,保持恒定的温度、湿度和光照条件,促进发生素感应化。
5. 发生胚胎体:促进胚胎形成,通过培养发生胚胎胶囊或胚胎体。
6. 块茎冷藏:利用低温存储胚胎体或胚胎胶囊。
方法二:组织培养(Organogenesis)组织培养方法是通过培养植物的基本组织如叶片、茎尖、芽分根进而再生整个植株。
步骤为:1. 材料处理:对种子或植株进行表层消毒处理。
2. 制备组织片:将消毒好的植株切成组织片段,如茎尖、叶片等。
3. 培养基准备:准备无菌的培养基,其中含有植物的必需胰凡陈列如糖类、氨基酸、维生素、生长因子和植物激素等。
4. 组织分化:将组织片段放入含有培养基的培养皿中,使其分化成根、茎、叶等。
5. 干涸与移栽:将培养的加上适量水后,移栽到含有生长素适量的培养基中,促进植物以正常生长的形式营养。
方法三:悬浮细胞培养(Suspension Culture)在此方法中,使用悬浮培养细胞进行植物细胞或组织的生物合成和生物转化。
步骤为:1. 培养基准备:通常使用植物基础培养基加入氨基酸、维生素和植物激素等。
2. 细胞处理:将细胞分散在含有培养基的匀浆器中,使其悬浮在培养基中。
一、实验背景植物组织培养技术是一种在无菌条件下,将植物的茎尖、茎段或叶片等切成小块,通过人工方法在特制的培养基上进行培养,使其逐渐发育成完整植物体的技术。
本实验旨在让学生了解植物组织培养的基本原理,掌握实验操作技能,培养学生的创新意识和实践能力。
二、实验目的1. 了解植物组织培养的基本原理及应用。
2. 掌握植物组织培养实验的操作步骤。
3. 培养学生的创新意识和实践能力。
三、实验材料与仪器1. 材料:植物茎段、叶片、茎尖等;培养基;植物激素;消毒剂等。
2. 仪器:无菌操作台、高压蒸汽灭菌锅、培养皿、移液器、解剖刀、镊子、滤纸等。
四、实验步骤1. 准备实验材料:选取健康的植物茎段、叶片或茎尖,去除杂质,清洗干净。
2. 消毒:将实验材料用70%酒精浸泡30秒,再用无菌水清洗,用消毒剂处理1-2分钟。
3. 切割材料:用解剖刀将消毒后的实验材料切割成适当大小的小块。
5. 培养:将接种后的培养皿放入培养箱中,控制温度、光照等条件,进行培养。
6. 观察与记录:定期观察植物组织的生长状况,记录实验现象。
五、实验注意事项1. 实验过程中需严格无菌操作,避免污染。
2. 切割材料时要注意刀片的消毒和更换。
3. 培养过程中要定期观察,调整培养条件。
4. 实验结果可能存在差异,要注重数据分析与讨论。
教案编写仅供参考,具体实验操作请根据实际情况进行调整。
祝实验成功!六、实验拓展1. 探索不同植物激素对植物组织培养的影响。
2. 尝试用植物组织培养技术繁殖难生根或珍贵植物。
3. 研究植物组织培养在基因工程中的应用。
七、实验报告要求1. 描述实验材料、仪器和实验步骤。
2. 记录实验现象和结果。
3. 分析实验结果,探讨可能的原因。
4. 提出实验中存在的问题及改进措施。
八、实验评价1. 评价学生对植物组织培养原理的理解。
2. 评价学生对实验操作的熟练程度。
3. 评价学生对实验现象的观察与分析能力。
4. 评价学生在实验过程中的团队合作精神。
植物组织培养的理论基础:植物细胞全能性细胞全能性:植物体的每一个具有完整细胞核的细胞都具有该物种全部遗传的物质,在一定条件下具有发育成完整植物体的潜在能力。
外植体:由活体植物体上切取下来的,用于组织培养的各种接种材料。
包括器官、组织、细胞或原生质体等。
愈伤组织:植物外植体脱分化后形成的无组织结构,无明显极性的无定型薄壁细胞,具有再度分化的能力。
脱分化:离体培养条件下细胞,组织,器官经过细胞分裂或不分裂逐渐失去结构和功能而恢复分生状态,形成无组织结构的细胞团和愈伤组织或成为未分化细胞特性的细胞过程。
再分化:离体培养的细胞和组织由脱分化状态重新进行分化,形成另一种或几种类型细胞,组织,器官和完整植株的过程。
植物细胞全能性实现的条件:1.离体条件:任一分化细胞从植物体其余部分的抑制性影响下解脱出来,消除抑制作用就可以使细胞恢复分化。
2.切割损伤刺激:是细胞分化的重要条件之一,它会使细胞呼吸速度增大,酶活性增加,代谢含量变化。
3.营养物质及激素的刺激:离体细胞需要适当营养和外源激素刺激,以打破抑制力恢复细胞分裂,外源激素对脱分化和再分化起重要作用4.光照和温度等条件:温度,空气,无菌条件,合适的PH,适时光照等培养条件。
红花,乌饭树需要再黑暗条件下诱导愈伤组织。
植物离体培养中植株再生的途径:器官发生途径体胚发生途径体细胞胚:由体细胞产生的的类似于合子胚结构胚状体:在离体培养过程中产生的具有明显的根端和芽端,一种形似胚且功能与胚相同。
植物体细胞胚胎发生的途径有:1.器官外植体直接发生途径2.悬浮培养细胞发生途径3.愈伤组织发生途径 : 幼胚、和子叶4.单细胞发生途径:花药培养中的小孢子发育成5.原生质体发生途径影响植物离体形态发生的因素:1.植物种类和基因型2.材料的生理状态3.培养条件培养基:是人工配制的,适合微生物生长繁殖或产生代谢产物的营养基质。
灭菌:指用化学方法和物理方法杀死物体表面和空隙内的一切微生物或生物体,即把所以生命的物质全部杀死。
消毒:指杀死,消除或充分抑制部分微生物,使之不再发生危害作用,不包括芽孢和孢子。
大量元素:含量在0.01%以上,需要量在100mg/d以上的元素。
微量元素:含量在0.01%以下,需要浪在100mg/d以下的元素。
无菌接种:通过严格灭菌的操作空间里使用无菌器皿用具,在操作者不带任何微生物的条件下进行的操作。
母液配制:1.可分别配成大量元素、微量元素、铁盐、有机物,注意分别称取,分别溶解,然后依次混合最后定容。
2.大量元素可配成浓度10倍母液,用分析天平称取药品,分别加入100ml左右蒸馏水溶解后,再用玻璃棒搅拌,促进溶解。
然后依次倒入1000ml容量瓶中,加水定容。
3.微量元素方法与大量元素相同,配成100倍。
4.铁盐可配成100倍母液,分别称取药品后加热溶解,然后混合定容。
5.有机物母液配成500倍,分别称取药品,溶解,混合后加水定容至500ml。
配制培养基母液的优势:1.使用方便2.减少多次称量产生的工作量及称量所产生的误差3.微量元素用量极小,配制成母液可保证称量的精确性注意事项:1.浓缩倍数不能太高;2.肥料需按序依次加入3.激素的溶解: 细胞分裂素—HCl助溶;生长素—NaOH 或95%酒精助溶;赤霉素—热水或95%酒精4.母液吸取量=配制培养基的量/母液倍数;激素吸取量=(配制培养基的量×配制浓度)/母液浓度培养基制备的基本过程如下:1.调配成分:按培养基组成准确称取各成分用量,加一定量蒸馏水使其充分混合2.溶解:将调配好的混合物经沸水浴使其完全溶解。
3.将pH:一般是7.2~7.6。
4.分装:按制备目的将培养基分装于不同的容器内,如试管、三角瓶等。
5.灭菌:高压蒸汽灭菌锅6.质量检验:培养基制备后需进行无菌试验和效果试验以检查是否合格。
7.保存:制备好的培养基应注明名称、制作日期,存放在冷暗处或4℃冰箱里。
常用的植物生长调节物质的种类:生长素类0.05-5㎎/L;细胞分裂素类0.1-10㎎/L;赤霉素类10-50㎎/L;脱落酸30-40㎎/L;植物组培中常用的灭菌方法及其适用范围:1.物理方法:干热灭菌法:各种玻璃器皿和器械湿热灭菌法:培养基、蒸馏水、各种器械、棉塞熏蒸灭菌:接种室和培养室过滤灭菌:液体培养基烧灼灭菌:接种器械、瓶口、棉塞射线灭菌:接种室空气和台面、花粉灭菌2.化学方法:抗菌素灭菌,消毒剂3.高压蒸汽灭菌:1.06Kg/cm²,121⁰C, 15 -40分钟植物初代培养时植物材料的灭菌和无菌接种技术:外植体的消毒灭菌1.将外植体处理好,置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时,冲洗时间视材料清洁程度而宜。
洗时可加入洗衣粉清洗,然后再用自来水冲净2.在超净台或接种箱内完成。
用70%酒精浸10~30s。
然后用浓度为2%的次氯酸钠浸泡5-30分钟。
无菌操作技术1.在接种前4h用甲醛与高锰酸钾混合薰蒸接种室,并打开紫外灯照射30min;2.正式接种前半小时左右,打开超净工作台上的紫外灯和风机,20~30min后接种;3.用肥皂水洗净双手,在缓冲间内穿好灭过菌的实验服、帽子与拖鞋,进入接种室; .4.用75%的酒精擦拭工作台面和双手; .5.用蘸有75%酒精的纱布擦拭装有培养基的培养器皿,放进工作台:6.把解剖刀、剪刀、镊子等器械浸泡在95%酒精中,在火焰上灭菌后,放在器械架上;7.把植物材料放进75%的酒精中浸泡约30s,再在0. 1%的升汞中浸泡5~ 10min,或在10%的漂白粉上溶液中浸泡10~ 15min,浸泡时可进行搅动,使植物材料与灭菌剂有良好的接触;然后用无菌水冲洗3~5次:8.用火焰烧瓶口,转动瓶口使瓶口各部分都烧到,打开封口塑料:9.取下接种器械,在火焰上灭菌;10.把培养材料迅速放入培养瓶,扎上瓶口(每人接种5~10瓶)。
操作期间应经常用75%酒精擦拭工作台和双手:接种器械应反复在95%的酒精中浸泡和在火焰上灭菌:11.接种结束后,清理和关闭超净工作台。
外植体选择的基本原则:1.再生能力强:未分化或分化程度较低的材料。
2.遗传稳定性好:不变异/变异小的部位3.来源丰富:材料丰富,容易得到4.灭菌容易:地上>地下,一年生>多年生,幼嫩组织>老组织,温室材料>田园材料花粉花药培养:在人工合成培养基上接种无菌花粉花药改变花粉的发育途径,使其形成配子,如体细胞一样分裂,分化,最终发育成植株。
花粉与花药培养的用途:1.远缘杂交新类型的培育和稳定2.利于隐性突变筛选,提高选择效率3.花粉原生质体与二倍体细胞融合成体配杂种4.花粉原生质体为良好的遗传受体5.利用花培技术进行园艺植物的基础理论研究.离体小孢子培养可能发生的途径:花粉不均等分裂途径(A途径):营养细胞发育途径(A-V途径)、生殖细胞发育途径(A-G途径)、营养细胞和生殖细胞并进发育途径(A-VG/E途径)、营养核与生殖核融合发育途径(C途径)。
花粉均等分裂途径(B途径):细胞各自继续分裂形成单倍体愈伤组织或胚状体,对称式分裂;细胞发生第二次有丝分裂后发生核融合,并继续分裂形成多细胞团,破壁后形成胚状体或愈伤组织。
花粉培养的特殊性:1.用较少的花药获取大量花粉植株2.避免药壁产生的体细胞愈伤组织干扰,获得真正的花粉单倍体植株3.直接观察小孢子发育过程,便于小孢子发育生理生化基础理论4.花粉培养难度较大花粉离体培养方法:悬滴培养,平板培养,液体浅层培养,条件培养,花药看护培养影响花粉花药离体培养效率的因素:1.基因型2.花药花粉生理状态3.花粉发育期:单核期,单核靠边期4.花粉的二型性5.药壁因子6.培养前低温预处理7.培养基,培养方式8.培养温度,光照条件9.花粉密度10.花丝,花药的切割花粉花药离体培养前要进行预处理:低温冷藏原因:1.低温可改变花粉粒第一次有丝分裂纺锤体的轴向,形成两个均等细胞,使得花粉朝着胚胎方向发育;2.低温使花粉保持较长时间的活力,使营养细胞得以完成细胞质的改组而转向胚胎发生。
外植体玻璃化:部分嫩茎,叶片等外植体不断进行离体增殖时往往会呈半透明水渍状现象影响玻璃化的因素:1.植株种类,品种不同2.高水平的营养成分3.培养容器中空气湿度过高,透气性较差4.低光照减轻玻璃化的措施:1.降低培养基水势:提高琼脂浓度,添加少量聚乙烯醇2.降低培养基营养:减少含氮化合物和细胞分裂素的用量,添加适量脱落酸3.改变培养条件:增加光照,降低温度,进行变温培养4.增加容器通风透气性:进行二氧化碳施肥外植体褐变:指在接种后,由于植物组织中的多酚氨化酶被激活而使细胞的代谢发生变化,产生棕褐色的醌类物质使外植体表面开始褐变甚至扩散至培养基,使整个培养基褐变的现象。
减轻褐变的措施:1.选择合适的外植体:选择旺盛生长的幼嫩外植体2.合适的培养条件:无机盐,植物生长调节剂,培养前期低温低光时继代培养均可减轻材料的褐变3.使用抗氧化剂:0.1-0.5%的活性炭4.持续转接组培苗移栽基质具有哪些特点:具备透气性、保湿性和一定的肥力, 容易灭菌处理,并不利于杂菌滋生。
常见的移栽基质有哪些:1.用珍珠岩、蛭石、草炭土或腐殖土比例为1∶1∶0.5,2.用沙子、草炭土或腐殖土为1∶1。
3植物器官发生的类型:短枝发生型;丛生芽发生型;不定芽发生型;胚状体发生型;原球茎发生型植物快繁的过程:1.初代培养:指外植体最初接种于组织培养瓶中的第一次培养。
2.继代培养:将无菌培养材料移植于新鲜培养基中,反复多次转接的培养。
3.生根培养:诱导无根组培苗生产根,形成完整植株的过程。
植物离体快繁:利用植物组培技术对植物的部分器官组织的外植体进行离体培养,使其短期内获得遗传性一致的大量再生植物的方法。
植物离体快繁特点:1.周年生产,效率高。
2.培养条件可控心强,管理方便,利于植物工厂化生产。
3.使用料少,占用空间小,经济效益高。
4.便于种质保存和交换,省工省时。
植物离体快繁的应用:1.加速某些难繁或繁殖速度低的植物繁殖。
2.用有性繁殖的方法以保持品种特性的异花授粉植物3.需要去除病毒的植物4.原种少,生产上又急需推广的植物影响植物离体授粉受精的因素:1.胚珠和子房的育龄2.母体组织的保留3.父本花粉的萌发4.授粉方式5.培养条件植物器官培养:是指利用植物某一器官的全部或部分器官和器官原基进行离体培养的技术。
分生组织培养:利用植物根尖,茎尖和形成层分生组织进行离体培养的技术。
愈伤组织培养:在离体条件下诱导植物外植体产生一团无序生长的薄壁细胞,并对其继代培养的技术植物外植体愈伤组织的形成:诱导期,分裂期,形成期特点:细胞排列疏松而无规则,高度液泡化呈无定形状态的薄壁细胞。
下列有关细胞全能性的含义,正确的是A、每个植物体内的所有细胞都具有相同的功能B、植物体内的任何一一个细胞可以完成该个体的全部功能;C、植物体的每一一个活细胞都具有发育成完整个体的潜能D、植物体的每个细胞都经过产生、分裂、分化、生长、衰老、死亡的全过程。