大肠杆菌的培养
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大肠杆菌培养一、菌种冻存液的制备含有足量细菌的液体培养基离心后在沉淀中加入等量40%甘油,-80o C冻存。
二、培养基制备LB培养基配方(胰化蛋白胨(Trypton):10 g/L;酵母提取物(Yeast Extract):5 g/L;NaCl:10 g/L;pH 7.4)液体培养基胰化蛋白胨 10.0g酵母粉 5.0g氯化钠 10.0g水 1000mlpH 7.4固体培养基在液体培养基的基础上再加入1.5%-2.0%的琼脂三、平板的制备1)称取胰化蛋白胨10.0g,酵母粉5.0g,NaCl 10.0g,加入800mL二次水溶解,并用玻璃棒搅拌均匀,用1mol/L的NaOH调pH至7.4左右,定容至1L,调pH 7.4(若溶液pH大于7.4,用1mol/L HCl回调)。
2)分装在锥形瓶中,每瓶量不宜太多,没过瓶底一指左右。
如需固体培养基在分装后的液体培养基内加入约2%的琼脂(150mL液体培养基加入2.5g琼脂)。
3)在锥形瓶口依次覆盖带滤纸通气小孔的塑料膜和硬质纸,用皮筋捆好。
所有锥形瓶如上述操作。
用记号笔注明培养基名称、配制日期。
4)高压蒸汽灭菌锅121 oC灭菌15min。
5)灭菌后的培养基取出置电热鼓风干燥器内60oC烘干,待锥形瓶的封口纸干燥后取出。
液体培养基可直接保存或使用,此时加有琼脂的培养基不会凝固,可在预先紫外杀菌30min以上的无菌操作台上,将培养基倒入培养皿内,每个培养皿培养基约10-15mL(直径90mm),在培养皿中厚度大约4mm左右。
将平皿叠放在无菌操作台上,放置10min左右,待琼脂基本凝固可涂平板。
6)若平板不直接使用,灭菌后将培养基在锥形瓶中保存,待需制备平板时,微波炉中火加热约3min,使琼脂熔化,室温冷却20min至不烫手可制备平板。
四、接种大肠杆菌1)取实验室储备的大肠杆菌BL21冻存液,管口用酒精灯灼烧,打开离心管。
2)接种方法一:用灭菌枪头蘸取冻存液在平板边缘上划横条,每三道为一组,旋转平皿一圈,最后中间划之字;接种方法二:用移液枪吸取100uL溶液于平板上,用酒精灯灭菌厚的涂抹棒划十字,涂布平板。
大肠杆菌实验报告
实验目的:研究大肠杆菌的生长规律和影响因素。
实验原理:
大肠杆菌是一种常见的革兰氏阴性菌,广泛存在于自然环境中,如土壤、水体和动物的消化道中。
大肠杆菌是一种强大的生物工程工具,被广泛用于基因克隆、蛋白表达和生物制药等领域。
大肠杆菌的生长主要受到以下因素的影响:
1. 温度:大肠杆菌的适宜生长温度一般为37℃。
过高或过低
的温度都会抑制细菌的生长。
2. pH值:大肠杆菌对酸碱度有一定的耐受能力,适宜生长的pH范围为6.5-7.5。
3. 氧气含量:大肠杆菌是一种厌氧菌,但也可以在氧气存在的条件下进行生长。
4. 营养物质:大肠杆菌需要碳源、氮源、磷源等营养物质来进行生长。
实验步骤:
1. 准备培养基:将大肠杆菌营养琼脂混合溶解,并进行高温高压灭菌处理。
2. 用无菌移液管取一小滴大肠杆菌液,滴入含有营养琼脂的平板培养基上,轻轻摇晃平板,使细菌均匀分布于培养基上。
3. 将培养基置于恒温培养箱中,调节温度为37℃,培养一定
时间,观察菌落的形成和生长情况。
4. 在不同温度、pH值、氧气含量和营养物质条件下,重复步
骤2和3。
实验结果:
根据实验观察,大肠杆菌在37℃左右的温度下生长最好,pH 值在6.5-7.5之间时生长最快,适宜的氧气含量是气体和液体的界面。
实验结论:
大肠杆菌的生长受到温度、pH值、氧气含量和营养物质的影响。
掌握这些影响因素,能够更好地培养和利用大肠杆菌进行实验和工程应用。
竭诚为您提供优质文档/双击可除大肠杆菌培养实验报告篇一:大肠杆菌实验报告大肠杆菌紫外线诱变及抗药性菌株筛选0740063阿噟兰1.前言抗生素能破坏细菌细胞壁的结构,使细菌的繁殖和生长受到抑制。
但某些细菌对抗生素表现出抗性,原因是其基因发生了改变,产生能抵抗抗生素的性状。
在自然情况下,细菌的基因突变率很低,而且突变是不定向的,因此在自然条件下,想要获得有抗性的细菌是很困难的。
当给与适当的物理条件时,其突变率会大大增加。
如当用α射线、β射线、γ射线、Χ射线、中子和其他粒子、紫外线、微波等物理因素辐射时,能够促进遗传物质突变。
DnA对紫外线(uV)有强烈的吸收作用,尤其是碱基中的嘧啶,它比嘌呤更为敏感。
紫外线引起DnA结构变化的形式有DnA链断裂、碱基破坏、胸腺嘧啶二聚体等。
因此,紫外线通常作为诱变剂,用于微生物菌种选育。
一般细胞分裂越旺盛,诱变剂量越大,突变率高,诱变最有效的波长253~265nm。
选择合适的诱变剂量对于获得较高突变率十分关键,过高或过低的辐射剂量会导致菌株死亡或诱变不充分而降低诱变效果。
在紫外线诱变下,菌株发生不定向的突变,想要得到需要的特向变异必须对诱变后的菌株做筛选。
本实验想要得到的是能够抵抗抗生素的菌株,因此可以用抗生素培养基作为筛选培养基对菌种进行筛选。
若菌株没有发生定向突变,则该菌株不能在抗性培养基上正常生长,只有发生了定向突变才可能在筛选培养基上正常生长。
紫外线对于菌株有诱变作用外,对菌株还有较强的致死作用,因为紫外线改变了菌株的基因结构导致菌株无法正常生长繁殖。
因此,通过本实验的操作,在合适的照射剂量的设置下,比较不同不同照射剂量下的致死效果和突变率,并初步分析两者的相关性。
在分析死亡曲线和诱变率曲线的基础上,能了解诱变育种的机理和方法,为做进一步的诱变实验做准备。
2.材料和方法2.1实验材料、仪器和试剂菌种:大肠杆菌仪器:超净台、离心机、高压灭菌锅、培养箱、磁力搅拌器、培养皿、涂布器、移液管、移液器试剂:牛肉膏蛋白胨培养基相关试剂、硫酸卡那霉素水溶液(50mg/ml)、生理盐水2.2实验方法2.2.1制备培养基普通培养基——牛肉膏蛋白胨培养基(400ml):牛肉膏5g蛋白胨10gnacl5g琼脂20g蒸馏水1000mlph7.0按配方配制好培养基后置于灭菌锅中115℃15min,倒平板,4皿*15ml*5组+2皿*15ml=22皿*15ml=330ml筛选培养基(200ml):含抗生素50mg/L。
大肠杆菌培养和分离超净台实验准备工作2灭菌和消毒无菌操作目的:为了避免被杂菌污染。
1对实验操作空间:超净台:紫外线灭菌,过滤风桌面:酒精擦拭,酒精灯外焰附近操作2.操作者衣服和手进行:清洁和消毒,70%酒精3.避免已灭菌处理的材料用具和周围物品的接触消毒的方法1、100℃煮沸5-6min2、巴氏消毒法70-75℃下煮30min或80℃下煮15min3、用70%酒精、新洁尔灭等进行皮肤消毒4、氯气、高锰酸钾消毒……(1)消毒:利用化学或物理方法,杀死大部份致病微生物的过程。
消毒与灭菌的区别(2)灭菌:灭菌与消毒技术是微生物有关工作中最普通也是最重要的技术。
以化学剂或物理方法消灭所有微生物,包括所有细菌的繁殖体、芽孢、霉菌及病毒,而达到完全无菌的过程。
实验1大肠杆菌的培养和分离超净台上紫外灯和过滤风实验过程:准备阶段:1培养基的配制,2灭菌和消毒操作阶段:1倒平板:分装固体培养基倒平板:将已灭菌的固体培养基倒入培养皿的过程。
分装培养基:1倒平板:将灭菌后的固体培养基倒入培养皿培养基冷却到60度时倒入2培养基的分装(试管,三角瓶,培养皿)倒入三角瓶和试管(漏斗法)1.培养基灭菌后,需要冷却到60℃左右时,才能用来倒平板。
你用什么办法来估计培养基的温度?答:可以用手触摸盛有培养基的锥形瓶,感觉锥形瓶的温度下降到刚刚不烫手时,就可以进行倒平板了。
2.为什么需要使锥形瓶的瓶口通过火焰?答:通过灼烧灭菌,防止瓶口的微生物污染培养基。
朊病毒就是蛋白质病毒,是只有蛋白质而没有核酸的病毒。
1997年诺贝尔医学/生理学奖的获得者美国生物学家斯垣利·普鲁辛纳(S.B.Prusiner)就是由于研究朊病毒作出卓越贡献而获此殊荣的。
细菌细胞壁的主要成分是肽聚糖,它使得这层壁坚韧并富有弹性。
一旦失去细胞壁,所有的细菌都将变成球形。
细菌细胞壁的主要功能是保护细胞、维持细胞形状、协助鞭毛运动等,而且还与细菌的抗原性、致病性和对噬菌体的敏感性有关。
大肠杆菌如何培养
一、大肠杆菌如何培养1. 大肠杆菌如何培养2. 大肠杆菌的保存方法 3. 大肠杆菌菌种的复苏二、大肠杆菌对人体益处和危害三、什么是大肠杆菌
大肠杆菌如何培养
1、大肠杆菌如何培养1.1、称药品按实际用量计算后,按配方称取各种药品放入大烧杯中。
牛肉膏可放在小烧杯或表面皿中称量,用热水溶解后倒入大烧杯;也可放在称量纸上称量,随后放入热水中,牛肉膏使与称量纸分离,立即取出纸片。
蛋白胨极易吸潮,故称量时要迅速。
1.2、加热溶解在烧杯中加入少于所需要的水量,然后放在石棉网上,小火加热,并用玻棒搅拌,待药品完全溶解后再补充水分至所需量。
若配制固体培养基,则将称好的琼脂放入己溶解的药品中,再加热融化,此过程中,需不断搅拌,以防琼脂糊底或溢出,最后补足所失的水分。
1.3、调pH 检测培养基的pH,若pH偏酸,可滴加lmol/L NaOH,边加边搅拌,并随时用pH试纸检测,直至达到所需pH范围。
若偏碱,则用lmol/L HCl进行调节。
pH的调节通常放在加琼脂之前。
应注意pH值不要调过头,以免回调而影响培养基内各离子的浓度。
1.4、过滤液体培养基可用滤纸过滤,固体培养基可用4层纱布趁热过滤,以利培养的观察。
但是供一般使用的培养基,这步可省略。
1.5、分装按实验要求,可将配制的培养基分装入试管或三角瓶内。
分装时可用漏斗以免使培养基沾在管口或瓶口上而造成污染。
2、大肠杆菌的保存方法
2.1、常用的长期保存法有:液体石蜡法、硅胶保存法、加入甘油或二甲基亚砜(DMSD)等保护剂。
纯化大肠杆菌的方法
首先,准备工作是非常重要的。
在进行大肠杆菌的纯化前,需要准备好所需的实验器材和试剂,包括培养基、离心管、离心机、超声波破碎机等。
同时,要确保实验室环境的清洁和无菌操作。
其次,进行大肠杆菌的培养和收获。
首先将大肠杆菌接种到含有适当抗生素的培养基中,进行培养。
培养时间和条件根据具体实验而定,一般需要在37摄氏度下培养12-16小时。
培养后,使用离心机将培养液进行离心,收集细菌沉淀。
接下来是大肠杆菌的破碎和裂解。
将收集到的细菌沉淀用适当的缓冲液进行悬浮,然后使用超声波破碎机进行破碎和裂解。
这一步是为了破坏细菌细胞壁,释放细胞内的目标蛋白。
然后进行蛋白的纯化和分离。
通过离心、过滤、层析等方法,将目标蛋白从混合物中分离出来,得到较纯的蛋白样品。
这一步需要根据目标蛋白的特性选择合适的纯化方法,如亲和层析、离子交换层析等。
最后是对纯化后的蛋白进行检测和分析。
使用SDS-PAGE凝胶电
泳、Western blotting等方法对纯化后的蛋白进行检测和鉴定,确
保蛋白的纯度和活性。
通过以上步骤,可以得到较为纯净和活性较高的大肠杆菌蛋白
样品。
这种方法不仅适用于纯化大肠杆菌蛋白,也可以根据具体情
况进行相应的改进和优化,以满足不同实验的需求。
总之,纯化大肠杆菌的方法是一个复杂而又重要的过程,需要
仔细操作和科学设计。
只有通过严格的实验操作和精准的技术手段,才能得到理想的纯化效果。
希望本文介绍的方法对您有所帮助,谢
谢阅读。
大肠杆菌培养方法 大肠菌群测定的操作细则 大肠菌群系指一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽胞杆菌。该菌主要来于人畜粪便,故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量,推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。食品中大肠菌群数系以100ml(g)检样内大肠菌群最可能数(mpn)表示。1设备和材料1.1温箱:36±1℃。1.2冰箱:0~4℃。
1.3恒温水浴:44.5±0.5℃。1.4天平。1.5显微镜。1.6均质器或乳钵。1.7平皿:直径为90mm。1.8试管。1.9液体。
1.10广口瓶或三角烧瓶:容量为500ml。1.11玻璃珠:直径约5mm。1.12载玻片。1.13酒精灯。1.14试管架。2培养基和试剂
2.1乳糖胆盐蒸煮管:按gb4789.28中4.9规定。2.2伊红美绿琼脂平板:按gb4789.28中4.25规定。
2.3乳糖发酵管:按gb4789.28中4.10规定。2.4ec肉汤:按gb4789.28中4.11规定。 2.5磷酸盐缓冲器稀释液:按gb4789.28中3.22规定。2.6生理盐水。 2.7革兰氏染色液:按gb4789.28中2.2规定。3操作步骤3.1检样稀释 3.1.1以无菌操作将检样25ml(或g)置于存有225ml杀菌生理盐水或其他稀释液的杀菌玻璃瓶内(瓶内予置适度数量的玻璃珠)或杀菌乳钵内,经充份振摇或研磨制成1:10的光滑稀释液。固健康检查样最出色用均质器,以8000-10000r/min的速度处置1min,制成1:10的光滑稀释液。
3.1.2用1ml灭菌吸管吸取1:10稀释液1ml,注入含有9ml灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内,振摇试管混匀,做成1:100的稀释液。
3.1.3另挑1ml杀菌液体,按上条操作方式依次搞10倍递减稀释液,每递减吸收一次,改用1两支1ml杀菌液体。
3.1.4根据食品卫生标准要求或对检样污染情况的估计,选择三个稀释度,每个稀释度,接种3管。3.2乳糖发酵试验
第1篇一、目的为确保大肠杆菌培养过程的准确性和安全性,防止污染和交叉感染,特制定本操作规程。
二、适用范围本规程适用于实验室大肠杆菌的培养、传代、保存及相关实验操作。
三、操作步骤1. 准备工作(1)实验环境:实验室应保持清洁、通风,操作台面、仪器设备等应定期消毒。
(2)人员要求:操作人员应熟悉大肠杆菌培养知识,遵守无菌操作原则。
(3)材料与设备:大肠杆菌菌株、无菌水、LB培养基、琼脂糖、接种环、移液器、无菌试管、无菌培养皿、恒温培养箱、酒精灯、高压灭菌器等。
2. 大肠杆菌培养(1)制备LB培养基:按照说明书配制LB培养基,高压灭菌后备用。
(2)接种:将保存的大肠杆菌菌株接种于LB培养基中,置于37℃恒温培养箱中培养过夜。
(3)传代:次日取培养过夜的大肠杆菌菌液,用无菌水稀释至适宜浓度,涂布于LB琼脂平板上,37℃恒温培养箱中培养18-24小时。
3. 大肠杆菌分离纯化(1)挑取单菌落:用无菌接种环挑取平板上的单菌落,接种于LB培养基中,37℃恒温培养箱中培养过夜。
(2)验证:次日观察菌液是否澄清,若澄清,则证明分离纯化成功。
4. 大肠杆菌保存(1)保存液:配制含有20%甘油的大肠杆菌保存液。
(2)操作:将培养过夜的大肠杆菌菌液转移至无菌离心管中,加入等体积的保存液,混匀后转移至无菌冻存管中,置于-80℃冰箱中保存。
5. 无菌操作(1)操作前,操作人员应穿戴无菌手套、口罩、帽子等防护用品。
(2)操作过程中,避免触碰无菌区域,确保操作台面、仪器设备等无菌。
(3)接种、传代等操作应在无菌操作台(超净工作台)进行。
四、注意事项1. 操作过程中,严格遵循无菌操作原则,防止污染。
2. 试剂、耗材等应定期检查,确保质量。
3. 操作过程中,如发现污染现象,应立即停止操作,对污染区域进行消毒处理。
4. 实验室应定期进行无菌检查,确保实验室环境、操作人员、仪器设备等符合无菌要求。
五、应急处理1. 如发生污染,应立即停止操作,对污染区域进行消毒处理。
大肠杆菌扩大培养操作规程一、实验目的本操作规程旨在指导实验人员进行大肠杆菌的扩大培养,以获取足够量的菌液用于后续实验。
二、实验材料和设备1.大肠杆菌菌株(可从实验室或商店购买)2.LB培养基(Luria-Bertani)3.营养琼脂(可从实验室或商店购买)4.实验室培养皿(含有适当孔径的培养皿)5.离心管(容量应能满足培养菌液的要求)6.培养箱7.培养炉8.离心机9.移液器和吸头三、实验步骤1.准备工作a.准备好所需的培养基(LB培养基),并按照说明配制。
b.准备好所需的培养皿,确保培养皿的洁净无菌。
2.菌种接种a.将大肠杆菌菌株从保存的冰冻物中取出,解冻后立即进行接种操作。
b.取一小部分菌落,用移液器吸取,并迅速加入培养基中。
3.培养菌液a.将接种好的培养基转移到离心管中,每支离心管装满约1.5ml培养基。
b.离心管盖紧,轻轻倒置数次,使菌液均匀分布。
c.将离心管放入培养箱中,设定适当的温度和时间进行培养。
4.培养基上菌液的涂布a.准备好干净的培养皿,并倒入约20ml的营养琼脂。
b.等菌液培养时间结束后,将培养液转移到干净的离心管中。
c.打开离心管盖,将菌液均匀涂布在培养皿上,用酒精灯或酒精棉球消毒铁环,按图案转移到培养皿上。
d.将培养皿盖紧,倒置放置,避免细菌污染。
5.培养皿的培养a.将培养皿放入培养炉中,设定适当温度进行培养。
b.培养温度一般为37°C,培养时间根据实验需要而定,一般为16-24小时。
6.菌落计数a.培养时间结束后,从培养箱中取出培养皿。
b.用目镜观察培养皿上的菌落,记录菌落的数量和特征。
c.如需进一步使用扩大菌液,可将菌落转移到离心管中进行保存。
四、注意事项1.操作过程需保持洁净无菌,避免细菌污染。
2.温度和时间的选择应根据实验需要和大肠杆菌的培养特性来确定。
3.使用离心机时要注意转速和离心时间的设置,避免菌液的氧化破坏。
4.涂布菌液时注意均匀和无气泡的涂布,以获得准确的菌落计数结果。
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在进行大肠杆菌培养之前,需要进行充分的准备。
探讨大肠杆菌的培养及药敏试验摘要:随着社会经济带动养殖业的发展,产生的大量的环境及其他问题也亟待解决[1]。
其中,大肠杆菌属于常发性感染细菌病,其传播范围大、病情严重,给养殖经济带来严重损失,有效预防大肠杆菌病是现代养殖业需要研究的重要课题[2]。
本文研究大肠杆菌的分离纯化培养及对各种抗生素的敏感程度。
得到结论:大肠杆菌对抗生素环丙沙星、头孢唑啉敏感,对氯霉素、庆大霉素、复方新诺明、丁胺卡那、诺氟沙星表现为中度敏感,氨苄西林、红霉素、青霉素则表示为不同程度上的耐药性。
关键词:大肠杆菌分离纯化药敏实验抗生素引言21世纪以来,我国养殖业不断扩大,随着养殖市场规范化、集约化养殖程度的增加,随之而来的动物疾病也越发严重[3],尤其是大肠杆菌病日益突出[4]。
大肠杆菌可引起鸡、鸭、猪、兔、羊、水貂、狐狸等多种动物的疾病[7],常见的大肠杆菌病例如:仔猪水肿病、动物肺炎及腹泻等。
为此也给养殖业带来了严重的经济损失。
大肠杆菌是革兰氏阴性兼性厌氧菌,是一种常见的胃肠道细菌和环境污染源。
它是引起人和动物并发症[5]的重要病原体。
目前,抗生素治疗是控制疾病最有效的方法,由于部分药物抗菌活性强、价格低廉、易被口服[6]吸收,但随着抗生素的过度使用,导致耐药严重。
本课题旨在为临床合理用药提供可靠依据[3]。
1材料与方法1.1材料大肠埃希氏菌(ATCC25922标准菌株[8],斜面菌种,上海鲁微科技有限公司)营养琼脂培养基(杭州微生物试剂有限公司)[9],LB肉汤培养基(长沙市雨花区加德实验仪器),10种抗生素药敏纸片(氯霉素、庆大霉素、复方新诺明、丁胺卡那、环丙沙星、头孢唑啉、氨苄西林、诺氟沙星、红霉素[10]、青霉素等购于常德比克曼生物科技有限公司)[11],电热恒温培养箱DNP 型( 上海精宏实验设备有限公司) ; 高压蒸汽灭菌器YX - 280D + ( 合肥市华泰医疗设备有限公司) ; 紫外灯2537A 型( 江苏申星光电医疗器械有限公司)[9]。
大肠杆菌操作细则大肠杆菌,学名为肠杆菌属(Escherichia),是一类常见的革兰氏阴性杆状细菌,是肠道中最重要的正常菌群之一、大肠杆菌的基因组结构简单,易于研究,所以被广泛应用于生物学和医学领域的研究。
下面是大肠杆菌操作的一些基本细则。
1.试剂准备使用纯净的生化试剂,并根据实验的需要进行配制。
2.菌液的制备在无菌条件下,选择合适的培养基,如LB培养基,加入适量的试剂,如琼脂糖,混合均匀后灭菌。
将所需菌株转接至含有适量培养基的无菌试管中,静置孵育一夜,最好在37摄氏度的恒温培养箱中培养。
3.菌液的保存将培养好的菌液进行冷冻保存,-80摄氏度保存效果更好。
同时,在每次冻存之前,应检测菌液的纯度和活性。
4.菌株的接种在接种大肠杆菌之前,首先要进行洗涤步骤,去除可能存在的外源性种菌。
取一株菌落转移到无菌培养基上,进行稀释操作。
选择适当的浓度的细菌悬液,在孵育过程中注意观察。
5.培养条件大肠杆菌适合在富含养分的培养基上生长。
常用的培养基有LB培养基、M9培养基等。
培养温度通常设定为37摄氏度,培养基的pH值为7.0。
培养器的摇床速度和通气量等参数也要根据实验需求进行调整。
6.无菌操作在进行大肠杆菌的操作时,要保持无菌状态,常用的方法有酒精灯消毒,超净工作台等。
使用无菌操作的工具,避免向周围环境带入细菌。
同时在操作过程中避免直接接触菌株,以减少外源性细菌的污染。
7.菌液的收获培养一定时间后,可根据需求收获大肠杆菌菌体。
使用无菌技术配制无菌离心管,用离心机将菌液离心,沉积菌体,去除上清液。
然后用冷PBS缓冲液洗涤菌体,最后可以按需求冻存或进行后续实验。
8.表达工具的利用大肠杆菌可以使用过表达工具进行外源蛋白的表达。
常用的表达载体有pET、pGEX等。
选择合适的载体,将目标基因插入表达载体中,再将重组载体转化入大肠杆菌中,在适合的培养条件下诱导表达。
9.检测菌落和纯度对于分离获得的大肠杆菌菌株,应进行菌落检测和纯度检测。
大肠杆菌的保存和培养1菌种的保存菌种的保存通常采用甘油低温保存法1.1基本原理:在-70℃或液氮中冻存,细菌内的酶活性均己停止,即代谢处于完全停止状态,故可以长期保存。
在0℃—-70℃温度范围内,水晶呈针状,极易招致细菌的严重损伤。
用电镜观察,可见细菌的核膜上有大量针尖样小孔。
因此,为了避免0℃—-70℃冰晶的形成和细菌膜两侧离子平衡的破坏,需要加保护剂。
甘油可降低冰点,在缓慢的冻结条件下,能使细菌内水分在冻结前透出细菌外。
贮存在-70℃以下低温中能减少冰晶形成,甘油对细菌无毒性,分子量小,溶解度大,易穿透细菌。
1.2使用浓度范围为15%-50%,一般常用30%。
在保存瓶中按1:1加入60%的甘油和菌液,混匀后液氮速冻,然后放入-70度超低温冰箱贮存。
2菌种的复苏复苏菌种时,用接种环或牙签挑取少许冻结的菌种到平皿上,37℃培养8-12小时即可。
甘油菌从冰箱取出使用时应置于低温或0℃冰浴中,用完尽快放回,接种时挑取表面已融化部分即可,不可全溶,因反复冻融会导致细胞壁破裂。
切记:接种过程中不得使保存瓶中的菌液融化。
3大肠杆菌培养3.1培养基配制:培养基从形态上分为液体与固体培养基。
根据有无抗生素和其他选择性药物分为普通与选择培养基,常用LB培养基。
3.1.1 LB(Luria-Bertain)液体培养基配制蛋白胨 1.0%酵母提取物0.5%氯化钠 1.0%称重后搅拌使之完全溶解,用5M NaOH调pH至7.0,高压灭菌20min。
3.1.2含琼脂的固体培养基配制(1)普通培养基:固体培养基是在液体培养基中加 1.5%琼脂制成,先配液体培养基,然后加入 1.5%琼脂,高压灭菌20min,取出后再无菌状态下铺平板(2)选择性培养基:将消毒好的固体培养基置室温下冷却50℃时加抗生素,摇匀后倒入灭菌皿中厚度2-3mm, 室温固化。
(抗生素用三蒸水溶解后,用无菌滤头过滤到无菌瓶中, 氨苄青霉素终浓度50μl/ml)。
大肠杆菌培养实验报告篇一:大肠杆菌检测实验报告国标法测定大肠杆菌样本的细菌总数实验目的实验原理:国标法操作的原理实验器材:培养箱,10只移液管,1只250ml锥形瓶,5只大试管,试管架,4个平皿,500ml大烧杯1个,电子天平,纱布,脱脂棉,灭菌锅,PH计或PH试纸,100ml量筒,橡皮手套,超净台实验药品:磷酸盐缓冲液,蒸馏水,LB培养基,琼脂,5%NaOH,5%HCl 实验步骤:一:10只移液管,1只250ml锥形瓶,5只大试管,4个平皿,500ml大烧杯1个,100ml量筒进行洗涤,然后一起放入高压蒸汽灭菌锅中在121摄氏度条件下灭菌20min。
灭完菌后烘干,完成后放入超净台中。
用酒精擦拭超净台,紫外消毒30min二:1:用电子天平称取成品LB 3.1241g和琼脂1.8756g放入250ml的洁净锥形瓶中。
2:用量筒量取125ml的蒸馏水加入该锥形瓶中,制成培养基。
3:用棉花堵住该锥形瓶的瓶口,用牛皮纸包住瓶口,用橡皮筋扎牢,再将培养基放入灭菌锅中在121摄氏度之下灭菌20min。
4:灭完菌后放入超净台中备用。
三:1:取1只无菌250ml锥形瓶,用量筒向其中加入49ml PBS 2:将1ml样品加入到该锥形瓶中,摇匀制成1:50的细菌溶液。
3:取4只试管,编号1—44:用无菌移液管分别向4只试管中加入9ml的PBS5:用1ml无菌移液管从样品中移取1ml菌液加入到1中.震荡试管使菌液均匀。
6:用1ml无菌移液管从1号试管中移取1ml的细菌溶液加入2号试管中,摇匀7:用另一只1ml无菌移液管从2号试管中移取1ml细菌溶液,加入3中,摇匀......以此类推直至4只试管中均加入了细菌溶液。
9:取4只平皿,编号1—410:分别用4只无菌移液管从这4只试管中移取1ml的菌液置于4只平皿中,加入45—50摄氏度温度下的培养基,约15mm厚度。
缓慢旋转平皿使菌液与培养基混合均匀;待培养基冷凝后倒置。
大肠杆菌斜面扩大培养实验的结果报告大肠杆菌斜面扩大培养实验的结果报告序号:1这篇文章将深入探讨大肠杆菌斜面扩大培养实验的结果,并对其进行评估和总结。
在这个实验中,我们对大肠杆菌进行了斜面扩大培养,希望通过观察和分析,了解其生长特性和产生的一些相关特征。
下面是我们的实验结果和观察。
序号:2在我们的实验中,我们选择了含有某种培养基的斜面培养板作为我们的生长介质。
这个培养基提供了大肠杆菌所需的必要养分和适宜的环境条件。
我们在斜面上均匀涂抹了一定数量的大肠杆菌样本,并进行了培养。
序号:3经过一段时间的培养后,我们观察到大肠杆菌在斜面上开始生长。
我们注意到生长的速度是逐渐增加的,最初几天的生长速度相对较慢,但随着时间的推移,生长速度逐渐加快。
序号:4随着大肠杆菌的生长,我们还注意到在斜面上出现了一些特殊的结构和特征。
其中之一是菌落的形成。
我们观察到菌落开始作为一个小的点状结构出现,并随着时间的推移逐渐扩大和成长。
这表明大肠杆菌在斜面上形成了一个分散的、有机体群体的结构。
序号:5我们还观察到大肠杆菌的颜色在培养过程中发生了变化。
最初,大肠杆菌呈无色或淡黄色,但随着时间的推移,颜色逐渐变为深黄色。
这可能是由于细菌的代谢产物或细胞成分的变化所致。
序号:6通过进一步的实验和分析,我们还注意到大肠杆菌在斜面上的生长呈现出一定的空间和方向性。
在斜面上,我们观察到菌落的扩大和生长主要沿着特定的方向。
这可能是由于培养基和其他环境条件在斜面上的分布不均匀所导致的。
这一发现揭示了大肠杆菌在特定环境中的适应性和生长模式。
序号:7大肠杆菌斜面扩大培养实验的结果展示了大肠杆菌在特定环境中的生长和形态特征。
通过斜面扩大培养,我们能够观察到大肠杆菌的生长速度、菌落形成、颜色变化和空间方向性等特征。
这些观察为我们了解大肠杆菌的生物学特性和生长规律提供了有价值的信息。
序号:8在对这个实验结果的理解和总结中,我们认为斜面扩大培养提供了一种简单而有效的方法来观察细菌的生长和形态变化。
大肠杆菌种子液的制备
牛肉膏蛋白胨培养基的配方:
液体培养基
牛肉膏 3.0g
蛋白胨 10.0g
氯化钠 5.0g
水 1000ml
pH 7.4-7.6
固体培养基在液体培养基的基础上再加入1.5%-2.0%的琼脂
1 试管斜面与平板的制备
(1) 称量 按培养基配方比例依次准确称取蛋白胨、牛肉膏、氯化钠、琼脂、水放
入烧杯中。
(2) 熔化 在上述烧杯中先加入少于所需要量的水,用玻璃棒搅匀,然后,在石棉
网上加热使其溶解,药品完全溶解后,补充水到所需的总体积。将称量好的
1.8%琼脂放入已溶的药品中,再加热熔化,最后补充所损失的水分。
(3) 调PH 在未调PH前,先用精密PH试纸测量培养基的原始PH,如果偏酸,
用滴管向培养基中逐滴加入1mol/L NaOH,边加边搅拌,并随时用PH试纸测
基PH直到PH达到7.4-7.6。反之用1mol/L HCl进行调节。
(4) 分装 将培养基分装入三个试管中和三角烧瓶中。其试管装量不超过管高的
1/5,三角烧瓶的量不超过1/2加塞 培养基分装完毕后,在试管口和三角烧瓶
口上塞上棉塞。
(5) 包扎 加塞后,将全部试管用麻绳捆好,再在棉塞外包一层牛皮纸,其外再用
一道麻绳扎好。用记号笔注明培养基名称、配制日期。
(6) 灭菌 将上述培养基以0.1Mpa,121℃,15min高压蒸气灭菌。
(7) 倒平板 ,取三个已消毒的培养皿,在无菌操作台上用三角烧瓶中的培养基倒
制三个平板培养基,冷却。
(8) 搁置斜面 将灭菌的试管培养基冷却至50℃左右,将试管口端搁在玻璃棒上,
搁置的斜面长度以不超过试管总长的一半为宜。
2 接种大肠杆菌斜面种子
(1) 取实验室储备的大肠杆菌BL21种子, 在酒精灯附近,用接种环在已制备好
的斜面上接种上大肠杆菌。
(2) 将接种好的斜面放入37℃的恒温培养箱子中培养24h。
3 制备平板种子
(1) 在无菌条件下,取一支保存的大肠杆菌的斜面,用无菌生理盐水将菌种冲洗下
来,再用无菌生理盐水将其梯度稀释为1倍,10倍,100倍和1000倍,用移液
枪分别吸取各梯度的溶液涂布平板(每个梯度涂布三个平板,每次吸取溶液
100ul),然后在37℃培养箱中过夜。
(12) 次日,挑取生长状态好,特征明显的单个菌落,接种于新鲜灭菌的牛肉膏蛋白
胨液体培养基中37℃,170r/min恒温振荡培养18h作种子培养液。
其后的实验中,每次实验前从种子培养液中吸取2ml菌液接种于新鲜灭菌的液体培养基中,
37℃,170r/min恒温振荡培养
使用牛肉膏蛋白胨培养基
组成成分:牛肉膏 3g,蛋白胨 10g,Nacl 5g,琼脂 15~20g,水1000mL,PH7.4~7.6。
具体配置步骤:
1.称药品 按实际用量计算后,按配方称取各种药品放入大烧杯中.牛肉膏可放在小烧杯或表
面皿中称量,用热水溶解后倒入大烧杯;也可放在称量纸上称量,随后放入热水中,牛肉膏使与
称量纸分离,立即取出纸片.蛋白胨极易吸潮,故称量时要迅速.
2.加热溶解 在烧杯中加入少于所需要的水量,然后放在石棉网上,小火加热,并用玻棒搅拌,待
药品完全溶解后再补充水分至所需量.若配制固体培养基,则将称好的琼脂放入己溶解的药品
中,再加热融化,此过程中,需不断搅拌,以防琼脂糊底或溢出,最后补足所失的水分.
3. 调pH 检测培养基的pH,若pH偏酸,可滴加lmol/L NaOH,边加边搅拌,并随时用pH试纸检
测,直至达到所需pH范围.若偏碱,则用lmol/L HCl进行调节.pH的调节通常放在加琼脂之前.
应注意pH值不要调过头,以免回调而影响培养基内各离子的浓度.
4.过滤 液体培养基可用滤纸过滤,固体培养基可用4层纱布趁热过滤,以利培养的观察.但是
供一般使用的培养基,这步可省略.
5.分装 按实验要求,可将配制的培养基分装入试管或三角瓶内.分装时可用漏斗以免使培养
基沾在管口或瓶口上而造成污染.
分装量:固体培养基约为试管高度的l/5,灭菌后制成斜面.分装入三角瓶内以不超过其容积的
一半为宜.半固体培养基以试管高度的1/3为宜,灭菌后垂直待凝.
6.加棉塞 试管口和三角瓶口塞上用普通棉花(非脱脂棉)制作的棉塞.棉塞的形状,大小和松紧
度要合适,四周紧贴管壁,不留缝隙,才能起到防止杂菌侵入和有利通气的作用.要使棉塞总长
约3/5塞入试管口或瓶口内,以防棉塞脱落.有些微生物需要更好的通气,则可用8层纱布制成
通气塞.有时也可用试管帽或塑料塞代替棉塞.
7.包扎 加塞后,将三角瓶的棉塞外包一层牛皮纸或双层报纸,以防灭菌时冷凝水沾湿棉塞.若
培养基分装于试管中,则应以5支或7支在一起,再于棉塞外包一层牛皮纸,用绳扎好.然后用记
号笔注明,培养基名称,组别,日期.
8.灭菌 将上述培养基于121.3℃湿热灭菌20min.如因特殊情况不能及时灭菌,则应故入冰箱
内暂存.
9.无菌检查 将灭菌的培养基放入37℃温箱中培养24~48h,无菌生长即可使用,或贮存于冰箱
或清洁的橱内,备用.
大肠杆菌的培养:
37摄氏度,恒温培养48到72小时,因为接种时和具体培养条件的不同,其生长一般都在2
天外才能长出明显的菌落。
菌落特征:乳白色,圆形,菌落边缘整齐,表面光滑,表面和背面颜色一致。
大肠杆菌 / 大肠菌群显色培养基是青岛海博生物公司改良的培养基,用于食品、水、牛奶、
冰激凌和肉制品中大肠杆菌和大肠菌群的快速检测。大肠杆菌显蓝色至紫色,大肠菌群显红
色。
成份 (g/L)
特殊营养物质
28.19
混合显色剂
0.31
琼脂
13.0
pH 6.8 ± 0.2 25 ℃
此配方可以进行改良或增加营养成份以获得最佳的结果。
注意
此培养基仅供实验室使用。
用法
称取本品 41.5g 加入 1000ml 蒸馏水,加热溶解并不停搅拌,煮沸不要超过 1 分钟。取 1ml
制备好的样品液加入直径为 9cm 无菌平皿中心,倾入冷却至 45-50 ℃培养基约 15ml ,
混匀,凝固后,再加入一层培养基进行履盖。或冷却至 45-50 ℃时,倾入无菌平皿,琼脂
完全凝固后,在 37 ℃的培养箱中倒置放置 1-2 小时,加入适当稀释度的样品液 1ml ,涂
布于培养基上, 36 ± 1 ℃培养 18 ~ 24h 。
贮存
制备好的平板应立即使用,应避免光线直接照射。干燥培养基应放置于阴暗干燥处, 保存
温度 2-8 ℃,注意避光保存。
失效
干燥培养基超过保质期、结块和颜色变化都不能使用。
操作步骤
1 、按国家标准、 SN 标准、 FDA 标准或其它方法制备样品液
2 、取样品液 1ml 加入 冷却至 45-50 ℃显色培养基中混匀或 涂布于平板上
3 、 36 ± 1 ℃培养 18 ~ 24h ,选用有 30 ~ 200 个菌落的平板,计数平板上出现的
典型大肠菌群和大肠杆菌菌落。大肠杆菌典型菌落为蓝色至紫色,大肠菌群为粉红色菌落,
其它细菌为无色或黄色菌落。
总大肠菌群 = 蓝色菌落 + 紫色菌落 + 粉红色菌落
大肠杆菌 = 蓝色菌落 + 紫色菌落
4 、对可疑大肠杆菌菌落可划线接种到营养琼脂平板上, 36 ± 1 ℃培养 12-16 小时,挑
取单菌落做大肠杆菌全套生化试验 ( 本公司有生化鉴定管套装 20 支 x3 种 )
质量控制
1 、外观
此干燥培养基的粉末均匀,具有良好的流动性,呈淡红色。制备好的平板呈透明粉红色固体
培养基。
2 、微生物试验
在 36 ± 1 ℃培养 18 ~ 24h 小时:
质控菌株
ATCC
生长情况
菌落颜色
单增李氏菌
27853
-/+
无色
金黄色葡萄球菌
25923
-/+
无色
大肠杆菌
25922
+++
蓝色
沙门氏菌
+++
无色
大肠菌群
+++
粉红色
方法的局限性
本培养基鉴定 大肠菌群 / 大肠杆菌,少数情况下可能会出现假阳性,但不会出现假阴性,
有时可能需做其它补充试验。
典型特征
大肠杆菌典型菌落为蓝色至紫色,大肠菌群为粉红色菌落,其它细菌为无色菌落。