常见实验动物疾病及制

一、名词解释1、传染源：传染源就是指受感染的实验动物，包括传染病患病动物／带菌（毒）或死亡的实验动物。

2、传播途径：病原体进入动物机体，并能导致传染的途径和通道。

3、易感动物：是指对某一传染病病原体敏感的那些动物。

4、传播媒介：被患病和携带病原体的动物的尸体、分泌物、排泄物所污染的设施、饲料、饮水、垫料、空气和用具等称之为传播媒介。

5、水平传播：即传染病在实验动物群体之间或个体之间以水平形式横向平行的传播。

6、垂直传播：即从母体到其后代两代之间的传播。

7、灭菌（Sterilization）：杀灭所有活的微生物叫做灭菌。

8、消毒（Disinfection）：驱除或杀灭有害微生物叫消毒。

消毒比灭菌范围狭窄，它不能杀死细菌的芽胞，消毒剂不能用于灭菌。

二、是非题（下列试题中正确的用（√）号错误的用（X）号）l、某实验动物场发现了大鼠的流行性出血热，该场应采用如下措施：封锁疫区，扑杀、焚烧饲养单元内的全部动物，向上级主管部门和卫生防疫部门做出报告，实验动物饲育室用福尔马林、高锰酸钾熏蒸消毒，对实验动物饲育室内的一切物品进行彻底清扫洗涤，彻底灭鼠，再次用福尔马林、高锰酸钾熏蒸消毒，检测，空厩，重新引种动物。

（√）2、某实验动物场发现了大鼠的流行性出血热，该场应采用如下措施：封锁疫区，扑杀、焚烧饲养单元内的全部动物，对外采取保密措施，严格封锁消息：实验动物饲育室用福尔马林、高锰酸钾熏蒸消毒，对实验动物饲育室内的一切物品进行彻底清扫洗涤，再次用福尔马林、高锰酸钾熏蒸消毒，检测，空厩，重新引种动物。

（X）3、某实验动物场发现了大鼠的流行性出血热，该场应采用如下措施：封锁疫区，扑杀、焚烧饲养单元内的全部动物，向上级主管部门和卫生防疫部门做出报告，对实验动物饲育室内的一切物品进行彻底清扫洗涤，用福尔马林、高锰酸钾熏蒸消毒，检测，空厩，重新引种动物。

（X）4、新入场的猴，应立即和其它猴在一起，并做好防疫注射和驱虫。

（X）5、新入场的猴，应被隔离一个月以上，并做好防疫注射和驱虫。

实验小鼠常见疾病一、病毒性疾病(一) 小鼠肝炎病毒(Mouse hepatitis virus MHV)属冠状病毒科。

自然宿主为小鼠，也容易感染裸鼠与免疫缺陷小鼠。

可引起多种型式的病症，发病时无症状或昏睡，皮毛粗刚，厌食，或有神经症状。

传染途径依不同型分为飞沫传染或经口传染。

造成研究干扰有导致免疫抑制或免疫刺激，抑制淋巴球增殖反应，抑制小肠淋巴组织Peyer’s Patch中B细胞免疫球蛋白的分泌。

控制方法：1. 清除受感染的族群 2. 利用剖腹产防止污染 3. 杀死所有新出生的小鼠，停止繁殖，成鼠至少隔离6-8个星期，如此聚居地里的病毒才可以完全消除。

(二) 仙台病毒(Sendai virus)属RNA病毒中的副黏液病毒科第一型。

可构成小鼠最常见的呼吸器官疾病，通常不会产生明显的临床症状，而多呈潜伏性感染 (latent infection)。

感染途径：由呼吸道进入体内，在上呼吸道复制后进入气管及小支气管中。

在仔鼠或某些品系小鼠，如DBA/2往往受仙台病毒感染发生肺炎。

临床症状：皮毛粗刚，呼吸困难和发生气管啰音。

预防及控制：避免让感染进入动物房内，定期对供货商作健康状况监视，隔离。

(三)小鼠肺炎病毒Pneumonia virus of mice (PVM)天然宿主：小鼠、大鼠和仓鼠。

属于副黏液病毒属(paramyxoviridae)的肺病毒(pneumovirus)。

通常无临床症状。

病变：引起慢性鼻炎，间质性肺炎。

控制：使用剖腹产及良好的环境障壁。

(四) 鼠痘Mouse pox (缺肢畸形 ectromelia病毒)属Poxviridae之正黏液病毒属。

宿主为小鼠。

鼠痘是非常严重的疾病，具高度传染性及死亡率。

传染途径：直接接触和媒介物：例如小鼠组织，小鼠血清，转移性小鼠肿瘤。

有抵抗力的品系(不明显的感染)：C57BL/6和C57BL/10；易感染的品系(显现临床症状)：BALB/c、DBA/2、CBA和C3H。

动物生物安全实验室是进行动物实验和研究的重要场所，然而在这样的环境中，常常存在各种生物危害，这些危害可能会对实验室的动物、工作人员和整个实验室的运行产生一定的影响。

了解常见的生物危害及相应的防治措施非常重要。

本文将围绕动物生物安全实验室常见的生物危害及防治措施展开讨论。

一、常见的生物危害1. 病原微生物病原微生物是动物实验室中最常见的生物危害之一，这些微生物可能会导致动物感染疾病，甚至对人员健康产生威胁。

常见的病原微生物包括细菌、真菌、病毒等，它们常常通过空气传播、器械污染等途径传播。

2. 昆虫在动物实验室中，昆虫可能会对动物实验和工作人员的生活和健康造成威胁。

苍蝇、蚊子等昆虫可能会传播各种疾病，并在实验室环境中引起感染。

3. 啮齿类动物啮齿类动物（如老鼠、仓鼠等）在实验室中常常被用于进行实验和研究，然而它们本身也可能成为生物危害，传播疾病、破坏实验设备等。

二、防治措施1. 严格的环境控制为防止病原微生物的传播，动物生物安全实验室应该实施严格的环境控制，包括空气净化、无菌操作、实验室内消毒等措施，以确保实验环境的安全和无菌。

2. 实施有效的防扩散措施一旦发现病原微生物在实验室环境中传播，需要立即采取有效的防扩散措施，例如对实验设备、器械进行彻底消毒、隔离患病动物等措施，防止病原微生物的扩散。

3. 昆虫控制为防止昆虫对实验室环境和动物的威胁，需要实施有效的昆虫控制措施，例如建立防虫设施、定期对实验室进行杀虫、维持实验室环境的清洁等。

4. 动物管理对啮齿类动物的管理也是防治生物危害的重要措施，包括定期清洁动物笼、保持动物健康检查等，以减少动物对实验室环境和人员健康的威胁。

5. 健全的安全管理制度建立健全的安全管理制度也是防治生物危害的重要措施，包括制定详细的操作规程、加强员工培训、建立安全预案等，以应对各种生物危害的发生。

在动物生物安全实验室中，了解常见的生物危害及相应的防治措施对保障实验室的安全运行和人员健康非常重要。

动物实验的风险评估及控制一、常见生物危害及风险1.动物源性危害动物咬伤、抓伤、皮毛过敏原等可造成直接危害。

动物感染实验从接种病原体到实验结束的整个过程，包括动物喂食、给水、更换垫料及笼具等，病原体随尿粪、唾液排出，都会有感染性接触、不断向环境扩散的危险。

解剖动物时，实验者还存在接触体液、脏器等标本中病原体的危险。

用于实验研究的野生动物、实验用动物等也可能携带对人类产生严重威胁的人兽共患病病原微生物。

2.病原性危害包括不合格动物携带的人兽共患病病原以及实验所用的各种病原污染。

生物废弃物有实验动物标本，如血液、尿、粪便和鼻咽拭子等；检验用品，如实验器材、细菌培养基和细菌病毒阳性标本等。

开展病原性实验的实验室会产生含有害微生物的培养液、培养基，如未经适当的灭菌处理而直接外排，会使病原扩散传播，甚至引起严重不良后果。

3.物理、化学、放射等危害包括玻璃器皿、注射器、手术刀的直接创伤，或通过伤口感染等。

化学药品（如核酸染料溴化乙啶）、毒品的误用都能造成损伤。

放射性污染常通过放射性标记物、放射性标准溶液污染。

4.基因重组的危害近年来发展快速的基因工程实验，如利用合成生物学技术合成重组病原等，存在潜在的生物危害。

5.废物危害实验动物所产生的三废与尸体如处理不当，将会对周围环境造成污染。

如在没有相应污物和尸体无害化处理设施的条件下开展动物实验，将导致严重的不良后果，甚至产生极坏的社会影响。

6.不良动物设施危害实验动物饲养环境条件与动物实验环境条件不合格，会造成动物逃逸、病原扩散等危害。

二、动物实验的生物安全和福利伦理审查动物实验单位生物安全委员会和实验动物伦理委员会负责咨询、指导、评估、监督实验室的动物生物安全活动相关事宜以及动物实验活动安全管理。

实验人员不仅要注重动物实验本身，也应懂得动物福利、伦理和生物安全要求。

因此，动物实验福利和伦理委员会负责审查动物实验，对涉及动物保护、动物福利、科学需要、生物安全等各方面内容的每个环节把关。

病料的采取方法1. 脓汁先将表面流水线,然后以灭菌注射器或吸管抽取深部的浓汁;若是开口化脓灶或皮肤,粘膜表面化脓,可用灭菌棉拭子浸沾脓汁后,放入试管中.2. 内脏器官采取心,肺,肝,脾,肾等有病变的组织及其淋巴结,无病变时也要采取,无菌剪取1-2cm大的方块,分别装入灭菌容器内.3. 血液要全血时,无菌采取血液10m,立即注入盛有含0.5%肝素溶液0.1ml或5%柠檬酸钠液1ml的灭菌试管内,并立即混合均匀.要分离血清时,将无菌采取的血液直接注入灭菌试管,待血液自然凝固后分离血清.从尸体采取血液时,可用灭菌注射器或吸管从右心房抽取.4. 皮肤和粘膜采取病变局部的皮肤和粘膜及其所属淋巴结,放入甘油盐水溶液中.5. 脑和脊髓无菌采取脑的脊髓约1-2cm大的方块,放入甘油盐水溶液中.6. 胆汁用灭菌注射器抽出后放入灭菌试管中.7. 肠和胃剪取有病变的部位一段或一块.也可将肠管一段(约6-8cm)用线扎紧两端后剪下送往实验室.8. 粪便可用棉拭子插入肛门沾取,或扑杀病畜后由肠管采取,立即放低温条件下保存.9. 乳汁先用消毒药液洗净乳头及其附近,弃去最初挤出的几滴乳汁,然后采取乳汁约10ml放入灭菌试管内.10. 流产胎儿可将整个胎儿用塑料薄膜包紧,装入箱中送检.11. 小动物,禽和鱼等可按上述流产胎儿方式整体送检.在距离实验室很近,又有隔离运输条件时,也可将发病小动物直接送检.病料的处理采集的病料,在接种培养前,应对其性状进行观察,例如:是否脓性带血或腐败,有何异味,并作记录.各种病料在分离培养前均应制备一张涂片,作革兰氏染色,镜检,以了解细菌的形态,染色特性,并大致估计其含菌量.通过肉眼观察和显微镜下看到的结果,对病料中可能含有的病原菌作最初步的估价.如果病料是病变组织,又是用无菌方法采集的,在接种前一般无需作特别处理.但如果病料被杂菌污染严重,则需根据要分离的病原菌的特性,采用一些对病原菌无害,但对杂菌有杀灭或抑制作用的方法,以抑制杂菌生长.例如从粪便中分离沙门氏杆菌,可将粪合接种于亚硒酸钠肉汤中,作增菌处理.在这种培养基中,其它杂菌被抑制,而沙门氏杆菌则能自由繁殖.又如,分离布鲁氏杆菌,胎儿弯曲杆菌,炭疽杆菌,副结核杆菌可用选择性抗菌琼脂.分离链球菌和猪丹毒杆菌用叠氮钠结晶紫血琼脂等.如果从肠道内容物或从污染有不产生芽胞的杂菌培养物中分离能形成芽胞的细菌(如魏氏梭菌,破伤风梭菌等),可将病料在80℃加热15分钟,以杀死不形成芽胞的杂菌,取此材料再接种培养基,即容易获得纯培养物.有些病料(如奶,尿等)含菌太少,则应先作集菌处理,然后接种,以提高检出率,其集菌方法有离心法和过滤法.离心法取沉淀物作培养物;过滤后取沉积于滤板上表面的病料作培养.还有些细菌往往在细胞浆内集结成团,在它们所形成的病灶中含菌较少,遇到这种情况,可将病料组织磨碎,制成乳剂,加入酶,酸或碱,消化组织,使菌团散开,然后离心,收集沉淀物作培养(如从肠粘膜分离副结核杆菌即用此法).病原性细菌致病能力的强弱程度称为毒力.通常病原菌的毒力越大,其致病性就越强.同一种病原菌,因菌株数不同,致病力大小也不相同,它的毒力也有强毒,弱毒和无毒株之分.侵袭力和毒素构成细菌毒力,其物质基础是细菌的菌体结构和代谢产物。