红墨水染色法快速测定小麦生活力
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实验五种子活力的测定(红墨水法)一、实验目的掌握快速测定种子活力的方法二、实验原理种子生命力是指种子能够萌发的潜在能力或种胚具有的生命力。
它是决定种子品质和实用价值大小的主要依据,与播种时的用种量直接有关。
活细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的能力,而死的细胞原生质膜丧失这种能力,于是红墨水染料可进入死细胞而使其染色。
活细胞不能吸收红墨水所以不染色。
三、试剂、材料5%红墨水、培养皿、刀片青稞种子四、实验过程1、将随机购买的种子用温水浸泡3-6小时,使其充分吸胀。
2、吸胀后的种子挑选50粒,沿胚中心线纵切为两半。
3、一半至于培养皿中,用红墨水浸泡染色10分钟,染色后倒去红墨水,用清水冲洗至液体无色。
4、另取50粒种子吸胀,沸水煮熟成死种子,重复步骤3,作为空白对照。
五、计算结果未被染色的种子数目种子活力=*100%总种子数目实验一植物组织水势的测定--小液流法一、实验目的1、掌握植物细胞水势概念及计算公式;2、了解小液流法测定植物组织水势的方法。
二、实验原理1、植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定;2、当植物细胞或组织放在外界溶液中时:A、ψw<ψs,则植物组织吸水,C外↑,液滴↓;B、ψw>ψs,则植物组织失水,C外↓,液滴↑;C、ψw=ψs,则二者水分保持动态平衡,C外不变,液滴不动。
三、试剂、材料试管、试管架、滴管、打孔器、蔗糖溶液菠菜四、实验过程1、取出8支试管,依次编号1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M、0.60M、0.70M、0.80M一系列不同浓度的蔗糖溶液,取出8支试管用力混匀。
五、实验结果根据公式计算叶片细胞的水势公式:ψw =-RTiC式中:ψw为细胞水势,R为摩尔气体常数,0.083×105(L٠Pa)/(mol٠K);T为热力学温度,单位K;即273+t ,t为实验温度,单位是℃;i为解离系数,蔗糖为1;C为等渗溶液的质量摩尔浓度,单位是mol/L。
小麦种子活力的测定:
1、加入5%的红墨水没过种子,红墨水需不需要加水稀释?加多少量?
红墨水需要加水稀释到浓度5%。
加水的比例是:一份红墨水加19份自来水。
2、对死种子、活种子分别进行计数,是不是分别数清粒数就行?
小麦种子的胚染为红色的为死种子。
胚没有被染色或为染色很浅的为有活力的种子。
对死种子、活种子分别进行计数,就是数清粒数就行,其目的为了下一步计算种子活力。
3、写出正确的计算公式,这个公式是哪个公式?
种子活力(%)=(不着色或着色很浅的种子粒数÷实验种子的总粒数) ×100%
比如取种子30粒,沿种胚中央准确切开,其中一半置于培养皿中,加入5%红墨水染色后,有5粒被染为红色,其它25粒为白色或染
色很浅,则种子活力(%)=25÷30×100%
4、计算两份样品种子活力的平均值,是如何计算的?
两份样品种子活力的平均值=(样品1种子活力+样品2种子活力)÷2
5、两份样品种子活力之差与平均数之比不应超过5%,是什么意思?是如何计算的?
“两份样品种子活力之差与平均数之比不应超过5%”的意思将“两份样品种子活力之差与平均数之比”的值与5%比较,如果大于5%,说明本次实验就是失败的,需要重做实验;如果小于5%,说明本次实验正确合理,其结果是可靠的。
计算如下:
“两份样品种子活力之差与平均数之比”=∣样品1种子活力—样品2种
子的活力∣÷两份样品种子活力的平均值。
大小麦种子生活力和发芽率快速测试方法夏收期间,有些地区会遭受了梅雨、暴雨和特大暴雨袭击,这给夏熟大小麦选留种带来极大困难。
因此及时做好麦种速测,做到心中有数,尤为重要。
麦种发芽需经过一段休眠期,特别是大麦种子,休眠期长达三个月左右。
这主要是种子内脱落酸含量较高,只有当脱落酸含量降低时,麦种才能解除休眠。
一、红墨水快速测定法:
1、常用红墨水稀释1:500倍液,将需测定的大麦种子用刀片纵切,取带有种胚的一半漫于红墨水液中,浸泡半小时左右,用清水冲洗后逐粒检查,凡是有生活力的种胚处无红色反应,仍呈白色,其它部分都染成红色,而无生活力的种子无论胚或胚乳部分都被染红,依据种胚的着色与否判断麦种有无生活力。
2、在采用红墨水测定的过程中,将麦种预先用清水浸泡12小时,再纵切染色,可提高测定效果,浸泡染色时间仅需10分钟。
同时由于经过了预先浸泡,经红墨水染色测定后,该半粒种子可继续留下保湿培养,观察其发芽情况,3-4天后就可得出发芽率结果;而且这一方法测定发芽率还不易受霉菌污染。
二、赤霉素快速测定法:
用赤霉素打破种子休眠期,直接速测其发芽率。
将市售小包装赤霉素配成20ppm 的溶液(即20毫克赤霉素加水1000 毫升),将备好的大小麦种子浸人药液内,并置于冰箱,在5°C条件下浸泡24小时后,取出按常规发芽方法,每个培养皿放麦种10粒并保湿,在25°C室温下经1-2天后胚根、胚芽萌动,3-4天内就能迅速确定麦种的发芽率。
一、红墨水染色法快速测定小麦、玉米种子生活力的具体方法如下:选取玉米种子100粒、小麦种子200粒,在30℃~35℃温水中浸泡6小时~8小时,使种子充分吸胀。
取吸胀的种子100粒,用刀片沿胚部中线切为两半,其中一半用于测定。
将准备好的半粒种子置于杯中,加入稀释20倍的红墨水溶液,以浸没种子为好。
染色15~20分钟后捞出,用清水冲洗种子,洗去颜色。
观察冲洗后种子胚部着色情况,胚部不着色或略带浅红色者,即为有生命力的种子。
若胚部染成与胚乳相同的深红色,则为无生命力的种子。
依次计算活种子百分率,即为发芽率。
小麦种子发芽率快速测定法1、浸种将小麦种子用28℃~30℃的温水浸泡3~5小时,让种子充分吸收水分膨胀。
2、切取选择具有代表性的种子,用刀片沿麦粒的腹沟切成两半,留取带有胚部的一半作测定之用。
3、染色先配制好5%的红墨水溶液(即将1份红墨水加入19份清水中,混合均匀即成),然后将切取的麦种半片均匀摊在培养器皿或瓷盘中,将红墨水倒入(用量以浸没种子为宜)。
4、冲洗染色5~10分钟以后,将种子取出,用清水反复冲洗数次,直到冲洗后的水不再见到红色为止。
5、观察种子的胚不着色或仅带有浅红色的,即为具有生命力的种子。
如果胚部呈红色,与胚乳着色的程度不同,即表明该小麦种子已经丧失了生命活力,观察时将其拣出。
6、计算数出具有生命力的种子数目,除以供测试种子的总数,即可得出该小麦种子的发芽率。
如果供测试的种子正好是100粒,那么具有生命活力的种子就是该小麦种的发芽率。
种子发芽率快速测定法——————红墨水染色法宝兴县明礼乡朱范刚舒正蓉科技下乡应深入农户种子发芽率是指在最适宜的条件下,在规定的天数内,发芽的种子占供试种子的百分数,它是决定种子品质和实用价值大小的主要依据,与播种时的用种量直接相关。
但是常规发芽(直接发芽)方法测定发芽率所需时间较长,特别是有时为了应急需要,没有足够的时间来测定发芽率,遇到休眠种子也无法知道。
实验五、种子活力的快速测定一、实验目的熟悉种子活力快速测定的方法⏹TTC(氯化三苯基四氮唑)法⏹BTB(溴麝香草酚蓝)法⏹红墨水法⏹纸上荧光法二、实验原理⏹TTC(氯化三苯基四氮唑)法二、实验原理⏹红墨水法⏹活细胞的原生质膜具有选择透性,死亡的种胚细胞原生质膜无选择透性;⏹红墨水中的染色成分大红G不能通过选择透性膜,但能通过非选择透性膜。
三、实验材料、器材及试剂⏹材料:小麦种子⏹仪器及器皿:恒温箱,恒温水浴锅,镊子,刀片,培养皿,小烧杯⏹试剂:⏹0.5% TTC溶液(随配随用,若已变为红色则不能继续使用。
)⏹5%红墨水四、实验步骤⏹1、材料准备:将待测小麦种子用30-35℃温水浸种6~8h。
⏹2、切种子:随机取种子30粒以上,用刀片沿种子胚中心线切成两半。
⏹3、染色处理:取一半的种子放在培养皿中,加入染色溶液(刚好浸没种子),30-35℃恒温箱中保温0.5-1h。
⏹4、对照处理:另一半于沸水中煮死,染色同3。
⏹5、结果观察:倒出染色溶液,TTC处理种子用清水将种子冲洗1-2次,红墨水处理种子则用水冲洗至冲洗液无色为止。
观察种胚着色状况。
⏹6、结果验证:随机取种子30粒以上,25℃保温保湿培养,48h检测发芽率。
五、结果与讨论⏹1、计算两种测定法得到的种子发芽率。
统计分析两种测定方法的结果是否有差异。
⏹讨论两种方法有什么不同?你认为哪一种方法测定的结果较好,为什么?⏹2、统计分析种子活力快速测定结果与实际种子萌发结果的差异性。
⏹讨论可能原因。
比较分析种子活力快速测定与种子直接发芽率测定的优缺点。
注意事项⏹TTC处理染色结束后要立即进行鉴定。
凡种胚全部或大部分被染成红色的即为具有生活力的种子,种胚不被染色的为死种子。
如果种胚中非关键性部位(如子叶的一部分)被染色,而胚根或胚芽的尖端不能染色都属于不能正常发芽的种子。
⏹红墨水处理后要冲洗充分后观察。
凡种胚不着色或着色很浅的为活种子,凡种胚与胚乳着色程度相同的为死种子。
实验三十九种子生活力的快速测定种子发芽率是鉴定种子品质的重要标志,在确定播种量以及种子生理研究方面具有重要的作用,常需加以测定。
但一般测定发芽率的方法所需时间长,尤其是对处在深休眠状态的种子,根本无法应用,所以有必要根据活种子的生理特性建立起一套快速鉴定种子生活力的方法,以克服常规方法的缺点。
本实验介绍剥胚法,染色法和荧光法三类方法,可根据具体情况选用。
Ⅰ、剥胚法一、目的掌握用剥胚法测定种子生活力的原理和方法。
二.原理此法适于测定休眠状态的种子的生活力。
种子深休眠的原因很多,有些是因为果皮或种皮的束缚(如不透水、不透气)造成的;也有的在果皮、种皮、胚乳中存在着萌发抑制剂,这类障碍可以用除去果皮、种皮、胚乳或切去一部分子叶的办法克服。
当阻碍萌发的物理或化学因素被排除以后,胚就很快萌发。
三、材料与设备1. 材料:苹果、柑桔的成熟种子或玉米乳熟期籽粒。
2. 设备:培养皿;滤纸;刀片;镊子。
3. 试剂:0.1﹪升汞。
四、实验步骤1. 种子处理取刚从成熟果实中剥出的新鲜柑桔种子300粒,已晒干的柑桔种子100粒,乳熟期新鲜玉米种子200粒,经晒干的乳熟期玉米种子或贮存三年以上的玉米陈种子各100粒,用0.1%升汞消毒后再用水充分洗净,进行以下处理:1.1柑桔新鲜种子,不加处理,作为对照;1.2 柑桔新鲜种子,用镊子小心剥去种皮,留下完整的胚;1.3柑桔新鲜种子,用刀片把种子横切为二,留下带胚根的一半,注意切除部分应不少于种子全长的一半。
1.4晒干的柑桔种子*,处理同1.2;*柑桔种子经晒干后即失去发芽能力。
1.5新鲜乳熟期玉米粒,不加处理作为对照(新鲜乳熟玉米种子粒因胚乳中存在着萌发抑制剂,不能萌发)。
1.6新鲜乳熟期玉米子粒,用镊子小心地将胚剥出。
1.7 晒干的乳熟期玉米子粒,不加处理。
1.8 贮存三年以上的玉米陈子粒,不加处理。
2. 观察测定以上处理完毕,随即将种子或胚整齐地摆在铺有适当大小滤纸的培养皿里,用蒸馏水湿润滤纸,加盖后置30℃左右的温箱中培养,并注意随时补充水分(但不可加水过多,否则易因缺氧而霉烂),从第二天起每天统计发芽种子数,记入下表,连续观察二星期。
一、红墨水染色法快速测定小麦、玉米种子生活力的具体方法如下:选取玉米种子100粒、小麦种子200粒,在30℃~35℃温水中浸泡6小时~8小时,使种子充分吸胀。
取吸胀的种子100粒,用刀片沿胚部中线切为两半,其中一半用于测定。
将准备好的半粒种子置于杯中,加入稀释20倍的红墨水溶液,以浸没种子为好。
染色15~20分钟后捞出,用清水冲洗种子,洗去颜色。
观察冲洗后种子胚部着色情况,胚部不着色或略带浅红色者,即为有生命力的种子。
若胚部染成与胚乳相同的深红色,则为无生命力的种子。
依次计算活种子百分率,即为发芽率。
小麦种子发芽率快速测定法1、浸种将小麦种子用28℃~30℃的温水浸泡3~5小时,让种子充分吸收水分膨胀。
2、切取选择具有代表性的种子,用刀片沿麦粒的腹沟切成两半,留取带有胚部的一半作测定之用。
3、染色先配制好5%的红墨水溶液(即将1份红墨水加入19份清水中,混合均匀即成),然后将切取的麦种半片均匀摊在培养器皿或瓷盘中,将红墨水倒入(用量以浸没种子为宜)。
4、冲洗染色5~10分钟以后,将种子取出,用清水反复冲洗数次,直到冲洗后的水不再见到红色为止。
5、观察种子的胚不着色或仅带有浅红色的,即为具有生命力的种子。
如果胚部呈红色,与胚乳着色的程度不同,即表明该小麦种子已经丧失了生命活力,观察时将其拣出。
6、计算数出具有生命力的种子数目,除以供测试种子的总数,即可得出该小麦种子的发芽率。
如果供测试的种子正好是100粒,那么具有生命活力的种子就是该小麦种的发芽率。
种子发芽率快速测定法——————红墨水染色法宝兴县明礼乡朱范刚舒正蓉科技下乡应深入农户种子发芽率是指在最适宜的条件下,在规定的天数内,发芽的种子占供试种子的百分数,它是决定种子品质和实用价值大小的主要依据,与播种时的用种量直接相关。
但是常规发芽(直接发芽)方法测定发芽率所需时间较长,特别是有时为了应急需要,没有足够的时间来测定发芽率,遇到休眠种子也无法知道。
这里介绍红墨水染色法却能在较短时间内获得结果。
其原理是:凡生活细胞的原生质膜具有选择性吸收物质的能力,而死的种胚细胞原生质膜丧失这种能力,于是染料便能进入死细胞而染色,活种胚细胞则不被染色。
操作方法:将待测种子在30~35℃温水中浸种6~8小时左右,以增强种胚的呼吸强度,使显色迅速。
染色。
取已吸胀的种子20粒,用刀片沿种子胚的中心线纵切为两半,将一半置于培养皿中,加入5%红墨水(以淹没种子为度),染色10~15分钟,染色后倒去红墨水,用水冲洗多次,至冲洗液无色为止即可检查种子的死活。
凡种胚不着色或着色很浅的为活种子;凡种胚与胚乳着色程度相同的为死种子。
可将另一半种子用沸水杀死后作对照观察。
计数种胚不着色或着色浅的种子数,就可算出发芽率。
(邓云彬)二、生活力的四唑测定2.1 意义四唑测定的意义是迅速了解某些用普通发芽方法其发芽缓慢种子的生活力。
便于休眠种子检验、种子收购和管理工作中的初步检查以及种子变质原因的诊断。
即测定种子潜在的发芽能力。
2.2 原理氯化或溴化三苯基四唑,经过氢化作用,在活细胞中产生红色稳定的不扩散物质,即三苯基甲?(triphenylformazan)。
种子活细胞内发生的还原过程,在脱氢酶催化之下,氢从各种呼吸物质中脱离出来,遇到浸入的无色红四氮唑溶液,则红四氮唑与氢离子相结合,产生红色物质。
由此可以区别种子红色的有生命部分和无色的无生命部分。
除完全染色的有生命活力的种子及完全不染色的无生活力种子外,一些不同部分染上红色,是存在不同大小的坏死组织。
种子生活力的有无,不是决定于颜色的深浅,而是决定于胚和胚乳的坏死组织所在部位和蔓延情况。
2.3 一般说明2.3.1 试剂准备a.四唑溶液:采用2,3,5-三苯四唑氯化物(TTC),通常配成1%水溶液(pH6.5~7.0)保存。
如果水的酸碱度不在中性范围内,则四唑盐应溶解在磷酸盐缓冲液中。
其缓冲液的配制如下:溶液A──在1000毫升水中溶解9.078克KH2PO4,溶液B──在1000毫升水中溶解11.876克Na2PO4,取溶液A400毫升和溶液B600毫升混合在一起。
将10克四唑盐溶解于按上法混合的1000毫升缓冲液中,即得到pH7.0的1.0%四唑溶液。
须将配好的溶液贮存在黑暗处或棕色瓶里,以免照光而变质。
这种溶液可在室温里保存几个月,但每次用过后即作废。
b.乳酸苯酚溶液为辨清某些牧草种子如早熟禾、猫尾草、小糠草等的生活力,经四唑处理后,用2~3滴乳酸苯酚液浸泡,能使稃壳变为透明,易看清胚的染色部分。
其配制方法是20份乳酸、20份苯酚、40份甘油和20份水。
应注意不能接触与吸入,因乳酸苯酚有毒。
并保持通风,以降低其空气中的浓度。
2.3.2 程序a.测定种子准备。
每次测定应不少于200粒种子。
一般种子在水中浸3~10小时,使组织稍变柔软。
根据不同种子特点进行纵切或横切以及刺破种皮的准备。
b .染色。
准备好的种子,放在小玻璃容器里染色。
各类种子染色所需的时间要根据种子的具体情况以及四唑溶液浓度和温度而变化。
c.鉴定。
种子染色结束后立即进行鉴定。
小粒种子须放在立体显微镜下检查。
紫花苜蓿、三叶草可用乳酸苯酚液洗净,不必剥去种皮,放透射光下检查。
一般胚的构造发育良好,未受损伤,并染成正常红色者应作为有生活力的种子(见图1、2)。
2.4 牧草种子四唑测定方法根据种子四唑测定的程序,按不同种类牧草将准备方法、溶液浓度、染色时间列于表6.4.A。
2.5 结果的计算和报告测定种子生活力的百分率根据4个重复计算。
重复间最大容许差距与发芽试验的规定相同,平均百分率计算到最接近的整数。
四唑测定报告:有生活力种子……%;空壳……%,带有幼虫的……%,破裂或腐烂……%。
5、发芽试验5.1 目的发芽试验的最终目的是获得关于种子在草地建设中种的利用价值,并提供试验结果,以比较不同种子“批”的用价。
利用实验室方法检验,在能控制部分或全部外界条件的情况下,使各类种子样品,大多数可以获得最整齐而迅速的发芽。
这些控制条件应逐步达到标准化,使试验结果尽可能接近。
5.2 定义在鉴定实验室发芽试验所产生的幼苗其主要构造的发育阶段必须达到能够查出某些不正常的没有实用价值的幼苗。
在检验证书上填报的发芽百分率是指规定条件下和时间内,产生了正常幼苗的种子比例。
5.2.1 正常幼苗在计算发芽百分率时,必须将正常幼苗与不正常幼苗分开。
为了使鉴定正常幼苗具有一致性,正常幼苗必须符合下列规定之一。
a.一个发育良好的根系,包括一条初生根,其主根长于种子。
b.一个发育良好的下胚轴,其输导组织未受损伤的。
c.一个完整的胚芽,具有一张发育良好的叶片,或一个具有正常胚芽的上胚轴。
d.单子叶植物幼苗具有一片子叶,双子叶植物具有两片子叶。
5.2.2 不正常幼苗是指生长在良好土壤及适宜的水分供应、温度和光线条件下,表现不能继续发育为不正常植株的幼苗。
具有下列缺陷之一者:a.损伤的幼苗:幼苗没有子叶;幼苗带有皱缩、裂缝、破裂或损伤而影响上胚轴、下胚轴与根的输导组织。
幼苗没有初生根。
b.畸形的幼苗:幼苗细弱、发育不平衡;发育停滞的胚芽、下胚轴或上胚轴;肿胀的幼芽及发育停滞的根;子叶出现后没有进一步发育的幼苗。
c.***的幼苗.:幼苗的某种主要构造染病或***严重,以至阻碍幼苗的正常发育。
d.子叶从珠孔发育出来或胚根从珠孔以外的其他部分发育的幼苗。
5.2.3 硬实豆科牧草种子,由于它们有一层不透水的种皮不能吸水,到规定的试验日期结束时,仍是坚硬的,这类种子列为硬实。
硬实百分率应与发芽百分率分开填报在检验证书上。
5.2.4 新鲜的未发芽种子除硬实外,种子经适当的破除休眠处理后仍保持原状,而外表看来有生活力的,应列入新鲜的未发芽种子,必须与发芽百分率分开填报。
灌木植物在常规发芽试验末期,具有活胚的新鲜未发芽种子,可用四唑测定其活动力。
5.3 一般原则所有发芽试验都要从净种子分出来的种子进行。
净种子应充分混和,从中随机数取400粒种子,使成为100粒、50粒或25粒的重复。
种子应均匀的放在发芽床上,并有足够的距离,尽可能防止种苗在计数和取出前相互接触。
在表5.A 所规定的各个种的发芽床类型、温度及对光的要求,可在指定的方法中任选一种。
5.4 材料和条件5.4.1 纸床纸上:种子放在一层或多层纸上发芽。
纸放在(1)玻璃培养皿里,(2)光照发芽器(Jacobson apparatus)内,(3)直接放在发芽箱或发芽室内的发芽盘上。
第(2)法的每一重复盖有一个钟罩,它的顶上有一小孔以便通气。
用一条灯芯,其下端放在水中,以便将水吸收到纸上。
第(3)法的发芽箱或发芽室必须保持相对湿度为90%~95%。
经过湿润的疏松纸或脱脂棉可用来垫在纸底下,亦可直接作为发芽床。
纸间:种子放在两层纸中间发芽。
纸层可(1)直接放在发芽箱或发芽室内的发芽盘上,或(2)放在金属、塑料玻璃盒内。
方法(1)的发芽箱或发芽室内必须保持相对湿度达90%~95%。
纸可以折好或卷好,平放或竖放。
金属的、玻璃的或塑料的框架可插入纸间以保持通气。
经湿润的疏松纸或脱脂棉可作纸的衬底或直接作为发芽床(规定用光照的,只能用纸上法)。
5.4.2 砂砂用于表5.A所规定的下列方法的发芽床:砂中:种子播在一层均匀的湿沙上,然后加盖1~2厘米深松散的砂。
砂上:种子压入砂的表面。
用砂做发芽床在必要时,必须预先洗涤消毒,以杀灭各种细菌、真菌、孢子、线虫瘿及混入的其他种子。
砂粒不应过大过小。
几乎全部的砂粒应通过筛孔直径0.8毫米的筛子,而留在筛孔直径为0.5毫米的筛子上。
pH值应在6.0~7.5范围内。
5.4.3 土壤土壤或人造堆肥(相当于营养土)可用以代替砂中及砂上两法中的砂,不过一般更难于标准化,所以容易造成结果之间的更大差异。
但对鉴定的幼苗发生怀疑时,以及某些样品在纸上或砂上发芽而所产生的幼苗表现生物中毒症状时,必须用这种发芽床加以证实。
土壤中加水,应该使土壤达一定粘度,使其在手掌中能捏挤成团,而放在两指间一压时,容易散开。
5.4.4 水分和通气在全部发芽过程中,发芽床必须含有足够水分,以满足发芽需要,但水分不宜过多。
发芽床不应湿到有一层水膜围绕着种子。
在建议用低水分时,湿的发芽床须压上一种能吸水的干物品,如干的擦脸纸或吸水纸,以除去过多的水。
在种子四周的空气相对湿度,应保持在90%~95%,以防止蒸发散失。
水应相当地不含酸碱有机物质或其他杂质。
有时需要应用0.2%的硝酸钾(KNO3)或应用0.2%的双氧水处理24小时以打破休眠。
如用蒸馏水,必须通气增加氧的含量。
5.4.5 温度表5.A中所规定的温度,应在和发芽床上种子相同的水平进行测定,发芽箱或发芽室的温度必须尽可能均匀一致。
在日光直射或在人造光源下试验时,应注意温度不超过规定标准。