经口急性毒性试验

《食品毒理学》经口急性毒性试验一、实验目的和要求掌握给药方法；了解一次或24小时内多次给予受试化学物后，动物所产生的急性毒性反应及其严重程度，中毒死亡的特征以及可能的死亡原因，观察受试动物毒性反应与剂量的关系，求出半数致死量。

二、主要仪器设备实验动物：成年昆明系实验小鼠（SPF级别）。

器材：注射器（0.25，1，2，5ml）、吸管（0.1，0.2，0.5，1，2，10ml）、容量瓶（10，25，50ml）、烧杯（10，25，50ml）、滴管、灌胃针12号、动物体重秤、解剖剪刀、镊子、手术手套，口罩。

试剂：受试化合物（氯化钡溶液，20mg/mL）。

三、实验原理氯化钡是强电解质，可完全电离出钡离子，导致钡离子在小鼠血液内部引发急性低钾血症，故小鼠会出现肌无力和发作性软瘫，心肌应激性减低，各种心律失常和传导阻滞，由于肌无力，严重中毒的小鼠还会出现呼吸困难乃至死亡等症状。

四、实验内容1．健康动物的选择和性别鉴定。

2．实验动物称重、编号和随机分组。

3．受试化学物溶液的配制。

4．小鼠灌胃操作技术。

（1）预实验，取小白鼠、称重、随机分为5组，每组3只，以灌胃的方式给予等体积、不同剂量的氯化钡溶液，摸索小鼠接近100%和0%死亡的剂量范围。

（2）小鼠随机分为5组，每组3只，以灌胃的方式给予等体积、不同剂量的氯化钡溶液。

小鼠灌胃法：将钝头的12号注射针（适用于小鼠），安装在适当容积的注射器上，吸取所需的受试物溶液，左手抓住动物双耳后至背部的皮肤（小鼠仅抓住耳后、颈部的皮肤，用无名指、小手指和大鱼际肌将其尾根部压紧），将动物固定成垂直体位，腹部面向操作者。

注意使动物的上消化道固定成一直线。

右手持注射器，将针头由动物口腔侧插入，避开牙齿，沿咽后壁缓缓滑人食管。

若遇阻力，可轻轻上下滑动探索，一旦感觉阻力消失，即可深入至胃部。

如遇动物挣扎，应停止进针或将针拔出，千万不能强行插入，以免操作穿破食管，甚至误人气管，导致动物立即死亡。

硫酸铜经口急性毒性实验设计一、实验目的1.测定硫酸铜的致死剂量，学会LD50等急性毒性参数的计算方法。

2.熟悉实验动物的饲喂技术及基本操作，掌握实验动物灌胃的技能。

3.通过观察动物中毒表现，毒作用强度和死亡情况，描述实验过程中实验动物的各种反应及可能的靶器官，为重复剂量、亚慢性和慢性毒性研究及其他毒性实验提供接触剂量的设计依据，并为观察指标的选择提出建议。

二、实验原理1.急性毒性实验是指受试动物在一次大剂量给药后所产生的毒性反应和死亡情况。

药物毒性的大小，常用动物的致死量来表示，因为动物生与死的生理指标较其他指标明显、客观、容易掌握。

致死量的测定也较准确。

在测定致死量的同时，还应仔细观察动物是否出现耸毛、倦卧、耳壳苍白或充血、突眼、步履蹒跚、肌肉瘫痪、呼吸困难、昏迷、惊厥、大小便失禁等不良反应。

2.致死量的测定常以半数致死量为标准。

半数致死量是指能够引起实验动物一半死亡的剂量，妈药物致死量对数值,用符号LD50表示。

由于LD50的测定较简便、可靠，而稳定，现已成为标志动物急性中毒程度的重要常数。

LD50测定的方法有多种，如Bliss法、改进寇氏法、简化机率单位法、累积插值法、机率单位-加权直线加归法等等。

3.本次实验采用改良寇氏法，实验设计的原则是：各组剂量按等比级数；各组动物数相等：大致有一半组数的动物死亡率在10%～50%之间，另一半在50%～100%之间，最好出现0 %和100 %的剂量组。

三、实验器材与试剂实验试剂：3%-5%苦味酸、0.5%酸性品红、蒸馏水、无水硫酸铜、水、动物饲料实验动物：健康成年大鼠（60只）实验仪器：灌胃针（16号）、电子天平、动物体重秤、饲养室、烧杯、容量瓶、吸量管、吸耳球、胶头滴管、手术剪、托盘、镊子、药匙等四、实验步骤1. 实验动物的选择：选择50只2-3月龄，体重在180～240g的健康大鼠，大鼠体重相差不超过10%（±18-24g）。

2. 实验管理：实验前动物先适应环境和饲料5天。

附件12急性经口毒性试验上下增减剂量法Acute Oral Toxicity Test Up-and Down Procedure1 范围本方法规定了急性经口毒性试验上下增减剂量法（上下法）的基本原则、要求和方法。

本方法适用于化妆品原料安全性毒理学检测。

2 试验目的急性经口毒性试验是评估化妆品原料毒性特性的第一步，通过短时间经口染毒可提供对健康危害的信息。

试验结果可作为化妆品原料毒性分级和标签标识以及确定亚慢性毒性试验和其他毒理学试验剂量的依据。

3 定义3.1 急性经口毒性acute oral toxicity一次或在24 h内多次经口给予实验动物受试物后，动物在短期内出现的健康损害效应。

3.2 经口半数致死量（LD50）oral medium lethal dose经口一次给予受试物后，引起实验动物总体中半数死亡的毒物的统计学剂量。

以单位体重接受受试物的重量(mg/kg或g/kg)来表示。

3.3 延迟死亡delayed death设定的给药间隔（通常为48 h）内不引起受试动物死亡或出现濒死状态，但在14 d的观察期间内出现死亡。

3.4 剂量级数因子dose progression factor也称为剂量步进因子。

是指主试验中，当前剂量的一只动物存活或死亡时，下一只动物染毒剂量增加或降低倍数。

剂量级数因子建议为1/（估计的剂量-反应曲线斜率）的反对数。

默认的剂量级数因子为3.2，即0.5（1/2）的反对数。

3.5 限值剂量limit dose受试动物进行急性经口毒性试验的上限剂量（2000 mg/kg或5000 mg/kg）。

3.6 逆转reversal是指在某个染毒剂量下观察动物无反应，在下一个染毒剂量下观察动物有反应的现象，反之亦然（也就是前一个动物发生反应，后一个动物无反应）。

因此，一对不同的动物染毒反应情况产生一个逆转。

3.7 名义受试动物量nominal sample size是指受试动物的总数量按下列规则减去一定量动物数：（1）减去染毒序列开始时出现相同反应的最后1只动物之前的受试动物数量，（2）或减去第一次发生逆转的一对动物之前受试动物的数量。

实验二经口急性毒性LD50测定实验二经口急性毒性LD50测定一、试验目的1. 熟悉急性毒性LD50测定的剂量设计2. 掌握小鼠灌胃技术3. 掌握改进寇氏法计算LD50的方法二、试验原理选择健康的实验动物，依据LD50计算的设计原则，将实验动物随机分成数个染毒组和一个阴性对照组。

一次或24小时内多次给予实验组受试物后，观察动物所产生的急性毒性反应及其严重程度，中毒死亡的特征以及可能的死亡原因。

根据受试物毒性反应与剂量的关系，求出半数致死剂量(LD50)，并根据LD50值将受试物进行急性毒性分级。

三、材料和试剂1. 实验动物:健康成年小鼠60只，雌雄各半2. 器材:灌胃针(小鼠适用)、注射器、吸管、容量瓶、烧杯、滴管、分析天平、台秤、外科手术剪、镊子3. 受试物:(敌百虫或克佰威)4. 染色剂:苦味酸酒精饱和溶液、0.5%品红溶液四、实验内容1. 实验动物称重、编号和随机分组2. 染毒剂量设计及试剂配制3. 小鼠灌胃染毒技术4. 毒性反应的观察及LD50计算五、试验方法(一)预实验1. 探索剂量范围先找出100%与0%的致死量(或阳性反应的剂量)为实验的上、下限剂量(Dmax和Dmin)。

据经验或文献定出一个估计量，取动物若干，每4只一组，按估计量给药，如出现4/4死亡时，下一组剂量降低，当出现3/4死亡时，则上一剂量为Dmax;如降低一档剂量出现的死亡率2/4或1/4时，应考虑到4/4死亡剂量组在正式实验时可能出现死亡率低于70%，为慎重起见可将4/4死亡剂量乘以1.4倍，作为Dmax。

以次类推，找出Dmin。

2. 剂量分组一般染毒组数(G)以5-8组为宜，组间剂量比值为r。

在确定组数后，按下列公式计算r。

1/(G-1)r = (Dmax/Dmin) 3. 受试物溶液的配制配制等比浓度的敌百虫溶液，并使每只动物在给药容量上相等(如0.5ml/20g)。

剂量按等比级数增减，相邻两剂量比值1:0.6,0.9，设5个剂量组。

经口急性毒性试验经口急性毒性试验是一种广泛使用的实验室动物毒性试验，它通常用于评价新化合物、生物制品等物质的毒性，以及评估安全使用剂量的潜在结果。

这篇文章将介绍经口急性毒性试验的背景、方法、注意事项和限制。

背景方法经口急性毒性试验通常使用小鼠、大鼠、兔子或其他哺乳动物，动物必须年龄相似、体重相当且健康状态良好。

实验中使用不同剂量的测试物质来确定它们在动物体内的毒性。

通常，实验中使用的剂量量较低，但有时也会使用较高的剂量以便观察更加严重的毒性反应。

其实验流程如下：1.选取合适且健康的实验动物，检查其体内和体外健康状况；2.确定实验剂量，并将物质以食物、水、灌胃管等方式交予动物口服；3.观察动物的外观、行为和症状，记录观察结果；4.在一定时间后继续观察动物，在必要时应用适当的护理；5.按照实验协议的规则处理动物，以确保其安全。

注意事项在进行经口急性毒性试验时，需要注意以下几点：1.确定剂量：需要选择适当的实验剂量，以确保所测试的物质不会对动物造成过度毒性反应，且可以解释毒性的分级。

2.采取恰当的动物保护措施：对于实验过程可能造成疼痛或不适的情况，应采取适当的保护措施，例如提供充足的饮水、合适的饲料和温度环境。

3.保证实验数据质量：为了确保实验数据质量，需要在实验过程中跟踪记录、分析数据，并确定实验的有效性以及物质毒性分级的准确性。

限制虽然经口急性毒性试验是一种有效的毒性评估方法，但它有一定的局限性。

经口急性毒性试验只能评估物质对动物的急性毒性反应，而对于慢性毒性、免疫毒性或生殖毒性等长期影响，它并不能提供完整的信息。

此外，每种动物特征不同，对物质的敏感程度也会不同，因此难以将实验结果适用于不同品种的动物和不同的物质评估。

因此，除经口急性毒性试验外，还需要完善其他的毒性评估方法以更准确地评估药物、化学物质和其他物质的毒性。

化学品丽斑麻蜥急性经口毒性试验1范围本文件规定了化学品对丽斑麻蜥急性经口毒性试验的测定方法，包括试验的材料、条件、操作、质量控制、数据处理、试验报告等的基本要求。

2术语和定义下列术语和定义适用于本文件。

2.1半数致死剂量median lethal dose在急性经口毒性试验中，引起50%的供试生物死亡时的供试物剂量，用LD50（mg/kg 体重）表示。

2.2急性毒性acute toxicity是指生物体短时间（天）暴露于某种化学物质中产生的明显不良反应。

在本试验中，丽斑麻蜥急性经口毒性用半数致死剂量(LD)来表示，即在特定时间内（7d）导致50%数量的50供试蜥蜴死亡的供试物浓度。

2.3供试物test substances试验中需要测试的物质。

2.4化学品chemicals化学品是指各种元素组成的纯净物和混合物，无论是天然的还是人造的。

3方法原理将不同浓度的供试物以一次经口灌注的方法暴露给丽斑麻蜥，以7d为一试验周期，记（mg/kg体重）录丽斑麻蜥的死亡情况，确定50%试验丽斑麻蜥死亡时的供试物剂量，用LD50表示。

4试剂和材料4.1供试生物试验应选择同一种群、体长、体重和年龄相似的丽斑麻蜥（Eremias argus）成年蜥蜴。

试验用丽斑麻蜥体重变异系数不超过平均体重的20%。

试验前至少需要驯养7d，驯养条件和照明条件与试验时的条件一致。

驯养期间死亡率小于5%，且生长状态符合物种生长规律视为健康良好，可用于后续试验。

雌性丽斑麻蜥用于试验不能在其繁殖期。

丽斑麻蜥驯养环境参数见附录A。

4.2试剂丽斑麻蜥的饮水可使用自来水。

配置不同浓度供试物溶液过程中的溶剂一般选择水（GB/T6682-2008规定的实验室一级用水）或者食用油（例如玉米油）。

试验用水的pH值应为6.5-8.5。

试验期间水质保持恒定。

对于难溶于水或者油的供试物，可使用少量对丽斑麻蜥毒性小的有机溶剂助溶,例如乙醇，二甲基亚砜等，其中有机溶剂用量一般不得超过0.1mL/L(0.1%)，用前应了解溶剂的毒理学特性。

经口毒性急性试验实验报告一、实验目的本次经口毒性急性试验的主要目的是评估测试物质通过口腔摄入后在短时间内对实验动物可能产生的毒性反应，包括但不限于观察中毒症状、确定致死剂量范围以及了解毒性作用的特点和机制，为后续的毒性评估和安全性研究提供基础数据。

二、实验材料1、测试物质本次实验所选用的测试物质为_____，其纯度为_____，物理状态为_____。

2、实验动物选用健康的_____种属动物，体重范围在_____至_____克，雌雄各半，共_____只。

实验动物均来自具有资质的供应商，并在实验前经过适应性饲养，确认健康状况良好。

3、饲料和饮水实验动物在实验期间给予标准的饲料和清洁的饮用水，自由摄取。

4、实验器材包括灌胃针、电子天平、计时器、观察笼等。

三、实验方法1、剂量设计根据预实验结果和相关文献资料，设置了_____个剂量组，分别为_____、＿____、＿____等，同时设立了阴性对照组（给予等量的生理盐水）。

2、动物分组将实验动物随机分为不同的剂量组和对照组，每组动物数量为_____只，确保分组的随机性和均衡性。

3、染毒途径采用一次性经口灌胃的方式进行染毒，灌胃体积根据动物体重进行计算，控制在_____毫升/千克体重。

4、观察指标及时间在染毒后的_____小时内，对实验动物进行密切观察，观察指标包括一般行为表现（如活动、进食、饮水、毛发状态等）、神经系统症状（如抽搐、震颤、昏迷等）、呼吸系统症状（如呼吸急促、呼吸困难等）、消化系统症状（如呕吐、腹泻等）以及死亡情况。

观察时间点分别为染毒后_____分钟、＿____小时、＿____小时等。

四、实验结果1、中毒症状在不同剂量组中，实验动物表现出了不同程度的中毒症状。

低剂量组动物可能仅出现轻微的活动减少、食欲不振等症状；中剂量组动物可能出现呕吐、腹泻、呼吸急促等症状；高剂量组动物则可能出现抽搐、昏迷甚至死亡。

2、死亡情况随着剂量的增加，实验动物的死亡率逐渐升高。