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癫痫儿童外周血淋巴细胞CD4、CD8的表达意义摘要：目的：探讨癫痫患儿外周血淋巴细胞cd4、cd8的表达意义，以供临床参考和借鉴。
方法：随机抽取2009年9月～2012年7月我院收治的癫痫患儿80例为研究对象，所有患儿均符合癫痫的诊断标准。
并取同期进行健康体检的儿童70例为对照组。
对所有患儿均进行外周血淋巴细胞检查，对比cd4、cd8的检查结果。
结果：癫痫组患儿cd4较低，与对照组比较p0.05；癫痫患儿cd4/cd8较低，与对照组比较，p0.05；癫痫患儿cd4/cd8较低，与对照组比较，p<0.05。
如表1所示。
3 讨论癫痫是因神经元突然或间歇性痫样放电，致使短暂反复发作的神经性功能失调的慢性疾病，发作原因主要有遗传因素、脑结构异常及诱发因素所引起的，其发病机制较为复杂，还未完全阐明，t细胞亚群分布与癫痫病发作具有密切关系，癫痫病发作前，t细胞亚群会悄然发生变化，通过外周血淋巴细胞cd4、cd8的计数，了解患儿细胞免疫变化与病变程度，对癫痫病预后具有很重要的作用。
cd4与cd8均属于t细胞，在t细胞亚群鉴别中，cd4t细胞与cd8t细胞均具有重要的意义，其中，cd4是辅助性的t细胞，依据分泌细胞因子能分成th1与th2，这两者都能刺激大脑细胞活化增生，以产生大量抗体，不过主要产生抗体的是th2，cd4t细胞具有辅助细胞免疫与体液免疫的应答作用，而cd8是细胞毒性与抑制性的t细胞，具有效应作用，对癫痫病来说，产生作用的主要是th细胞与大脑细胞，同时，cd4/cd8比值能够直接反映细胞免疫状态，以及两者间的平衡关系。
通过研究可知，在治疗前，癫痫患儿的cd4t 细胞会减少，与对照组相比，cd8t细胞的表达意义无显著差异，但cd4/cd8比值却有所下降，通过抗癫痫药物治疗后，cd8的表达没有变化，cd4的表达会升高，而cd4/cd8的比值会上升，这说明通过免疫球蛋白能够抑制外周血淋巴细胞，改变cd4的淋巴细胞亚群分布能够抑制大脑细胞过度的活化，以降低体液免疫与细胞免疫反应带来的神经损伤，有效控制癫痫病的发作，而cd8的t淋巴细胞影响不大。
CD4+和CD8+T淋巴细胞检测技术规范1 范围本章规定了CD4+和CD8+T淋巴细胞检测的意义、实验室要求、检测方法、结果报告及质量控制要求。
适用于从事相关检测的各级艾滋病实验室。
2 规范性引用文件《艾滋病和艾滋病病毒感染诊断标准》（中华人民共和国卫生行业标准，WS293-2008）《国家免费艾滋病抗病毒药物治疗手册（第二版）》（人民卫生出版社，2007年12月）《艾滋病病毒感染者及艾滋病患者CD4+T淋巴细胞检测质量保证指南（试行）》（中国疾病预防控制中心，2006年2月）《病原微生物实验室生物安全管理条例》（中华人民共和国国务院令第424号，2004年11月12日）3 CD4+ 和CD8+T淋巴细胞检测的意义3.1 HIV感染临床分期CD4+T淋巴细胞数量可评价HIV感染者免疫状况，辅助临床进行疾病分期。
我国《艾滋病和艾滋病病毒感染诊断标准》（中华人民共和国卫生行业标准，WS293-2008）将CD4+T淋巴细胞值作为成人及15岁（含15岁）以上青少年HIV/AIDS 临床分期标准的主要依据之一。
3.2HIV感染儿童免疫抑制分级和治疗辅助指标CD4+T淋巴细胞百分数可以作为儿童免疫抑制分级指标，可以作为儿童临床治疗分期和辅助条件。
3.3 疾病进展监测《国家免费艾滋病抗病毒药物治疗手册（第二版）》推荐对无症状HIV感染者及CD4+T淋巴细胞计数高的感染者每六个月进行一次CD4+ T淋巴细胞计数检测，以评估疾病进展，判断预后状况。
3.4 机会性感染的风险评估机会性感染是艾滋病患者死亡的主要原因，CD4+T淋巴细胞可评估HIV感染者机会性感染的风险，辅助判断是否进行预防性治疗（如当CD4+ T淋巴细胞＜200/μl时，应给予抗肺孢子菌肺炎的预防性治疗。
3.5 抗病毒治疗适应症选择及疗效评价《国家免费艾滋病抗病毒药物治疗手册（第二版）》将CD4+T淋巴细胞数量作为是否开始抗病毒治疗的重要实验室指标之一，并规定治疗后定期检测CD4+T淋巴细胞数量，判断免疫系统恢复情况。
肿瘤免疫浸润检测指标
肿瘤免疫浸润检测指标主要包括CD8、CD4、T细胞亚群、自然杀伤细胞等。
CD8：T淋巴细胞的表面分子，可以与靶细胞表面的MHC-I类分子结合，从而激活T淋巴细胞，介导细胞免疫。
CD4：T淋巴细胞的表面分子，可以与靶细胞表面的MHC-Ⅱ类分子结合，从而激活T淋巴细胞，介导体液免疫。
T细胞亚群：T淋巴细胞的各个亚群，主要包括CD4+T淋巴细胞、CD8+T淋巴细胞、NK细胞等。
自然杀伤细胞：一种能够在体内或者体外抵抗病原微生物、肿瘤细胞的免疫细胞，可以有效地参与免疫反应，清除体内的病原微生物以及衰老的细胞。
T淋巴细胞亚群检测参考值淋巴细胞表面标志物检测：E玫瑰花形成试验、免疫荧光法（IFA）、荧光激活细胞分类法（FACS）、免疫金银法以及免疫酶染色法等。
E玫瑰花形成试验SRBC+CD2参考值Et 64.4%±6.7%免疫荧光法T淋巴细胞表面标志物检测意义可用于T淋巴细胞计数，T淋巴细胞亚群的分类以及判断T淋巴细胞的活化程度。
CD3 分子表达于所有成熟T淋巴细胞的表面，是总T淋巴细胞的重要标志，CD3+ 常见于甲状腺功能亢进、淋巴细胞性甲状腺炎、重症肌无力以及器官移植后排斥反应。
CD3+ 主要见于免疫缺陷病，如AIDS、先天性胸腺发育不全综合征以及联合免疫缺陷病等。
亦可见于恶性肿瘤、SLE、免疫抑制剂治疗等。
T细胞分化抗原测定白细胞分化抗原（cluster differentiation，CD）CD3代表总T淋巴细胞，CD4是辅助、诱导T细胞的标志，CD8是抑制、杀伤性T细胞的标志。
应用单抗和荧光标记二抗反应在荧光显微镜下或流式细胞仪中计数CD的百分率。
参考值：免疫荧光法（IFA）：CD3为63.1%±10.8%；CD4 为42.8%±9.5%；CD8 19.6%±5.9%；CD4 /CD8为（2.2±0.7）/1。
流式细胞术：CD3 61%~85%；CD4 28%~58%；CD8 19%~48%；CD4 /CD80.9~2.0/1。
T细胞分化抗原测定临床意义CD3CD4+T细胞下降常见于某些病毒感染性疾病，如AIDS、MCV、严重创伤、全身麻醉、大手术、应用免疫抑制剂等；升高见于类风湿性关节炎活动期。
CD8+ T细胞下降常见于类风湿性关节炎、Sjogren综合征、重症肌无力、DM（II型）以及膜型肾小球肾炎等；升高见于传染性单核细胞增多症急性期、MCV以及慢性乙肝。
CD4 +/CD8+比值下降，常见于AIDS、瘤型麻风病、恶性肿瘤进行期和复发时。
也见于部分感染性疾病如传染性单核细胞增多症、MCV、血吸虫病等；增高见于类风湿性关节炎活动期、SLE、Sjogren综合征、重症肌无力、膜型肾小球肾炎以及器官移植后排斥反应等。
小鼠T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8）酶联免疫分析（ELISA）试剂盒使用说明书本试剂仅供研究使用目的：本试剂盒用于测定小鼠血清，血浆，组织液及相关液体样本中T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8）的含量。
实验原理：本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中小鼠T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8）水平。
用纯化的小鼠T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8）抗体包被微孔板，制成固相抗体，往包被单抗的微孔中依次加入T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8），再与HRP标记的T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8）抗体结合，形成抗体-抗原-酶标抗体复合物，经过彻底洗涤后加底物TMB显色。
TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色，并在酸的作用下转化成最终的黄色。
颜色的深浅和样品中的T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8）呈正相关。
用酶标仪在450nm波长下测定吸光度（OD值），通过标准曲线计算样品中小鼠T淋巴细胞亚群（CD3,CD4,CD8）浓度。
试剂盒组成：样本处理及要求：1. 血清：室温血液自然凝固10-20分钟，离心20分钟左右（2000-3000转/分）。
仔细收集上清，保存过程中如出现沉淀，应再次离心。
2. 血浆：应根据标本的要求选择EDTA或柠檬酸钠作为抗凝剂，混合10-20分钟后，离心20分钟左右（2000-3000转/分）。
仔细收集上清，保存过程中如有沉淀形成，应该再次离心。
3. 尿液：用无菌管收集，离心20分钟左右（2000-3000转/分）。
仔细收集上清，保存过程中如有沉淀形成，应再次离心。
胸腹水、脑脊液参照实行。
4. 细胞培养上清：检测分泌性的成份时，用无菌管收集。
离心20分钟左右（2000-3000转/分）。
仔细收集上清。
检测细胞内的成份时，用PBS（PH7.2-7.4）稀释细胞悬液，细胞浓度达到100万/ml左右。
通过反复冻融，以使细胞破坏并放出细胞内成份。
离心20分钟左右（2000-3000转/分）。
CD4＋与CD8+ T淋巴细胞检测1 范围本章规定了用多平台三级程序法与单平台一步法检测全血中得CD４＋与CＤ8＋T淋巴细胞。
2 规范性引用文件1９９7Reｖｉsed Guideｌｉneｓfor PeｒformingＣD4+ T-Cell Deterｍｉnatioｎs in Peｒsons Iｎfecteｄwiｔh Ｈumａn ImmunodeficｉeｎcｙVｉｒｕs (HIV) MMWR 46(ＲＲ—2);1-29 Pubｌiｃatｉon date:0１/10/199７。
3 实验室条件3、１人员进行HIＶ感染者CD4＋与CD8＋Ｔ淋巴细胞检测得人员须具有艾滋病实验室得上岗资格,并接受过省级以上艾滋病实验室安全及实验操作技术培训。
３。
2 设施与设备3.2.1 样品处理区:生物安全柜、离心机、冰箱、水浴箱、旋转振荡器、精确移液器(5μl～50μl、２0μl～200μl、20０μl~１０00μｌ)。
3。
2。
2 流式细胞仪检测区:流式细胞仪3、３功能分区实验室原则上应分为样品处理区与流式细胞仪检测区,各区得功能就是:3、3.1 样品处理区应达到生物安全Ⅱ级(ＢＳL-２)实验室要求,用于样品处理、流式检测样品制备。
3、3、2 流式细胞仪检测区用于制备好得样品上机检测。
４样品采集、运输与接收４、1 样品得采集４、１。
1 选择合适得抗凝剂,分别用于血液学检测与流式细胞仪得免疫表型检测、4.1。
1.1 用于血液学检测得抗凝剂(1) EＤTA(1、5±0.15ｍg/ｍｌ血液)。
(２)在血球分析仪生产商允许得时间范围内检测,不超过30ｈ,不检测超出抗凝时间范围得样品。
4。
１。
１。
２用于流式细胞仪免疫表型检测得抗凝剂(１)用K3ＥＤTＡ抗凝,收集样品应在30h以内,尽早(8h以内)处理。
(2)用ACＤ或肝素抗凝,收集样品在4８h以内,尽早(8ｈ以内)处理。
4、1。
2 静脉采血收集血样,将血液注入一个事先加入适当抗凝剂得试管(用真空试管)。
如何看懂CD4/CD8的比值，多久检测一次小四值？通常A友们在拿到检测单，关注的最多的还是小四，即CD4，当然对于一个全面性的检查不能光看小四数值，尤其是艾滋病这种全身性的免疫缺陷病，那么今天咱们来聊聊CD4及CD4/CD8代表着什么？CD3 淋巴细胞代表全T淋巴细胞，它包括辅助/诱导T淋巴细胞（CD3+CD4+）（病友们简称为CD4）、抑制/细胞毒T淋巴细胞（CD3+CD8+）（病友们简称为CD8）。
CD3 CD4 / CD3 CD8 代表T辅助细胞/T抑制细胞的比值（病友们简称为CD4/CD8比值）。
CD4 加CD8 等于CD3 吗？CD3 理论上应约等于CD4 细胞和CD8 细胞的总和，但往往出现CD4 加CD8 细胞之和大于CD3 ，所以，用CD4、CD8的值来得出CD3的值是不准确的，反之亦然。
我们简单记住——CD3约等于但必然小于CD4加CD8之和。
关于CD4T辅助淋巴细胞带有大量CD4分子，所以叫CD4细胞，简称T4细胞。
它的作用是，有病毒入侵，CD4对免疫系统发出对抗信息，起到免疫应答的枢纽作用。
CD4本身不杀病毒。
HIV病毒对CD4分子有亲嗜性，凡带有CD4分子的细胞就成了它侵害的靶子。
这些细胞主要是T4和巨噬细胞，此外还有粘膜、淋巴结L细胞、神经细胞和树突细胞，它们表面也有CD4分子，也易受到攻击。
在验单上常以“CD3+CD4+T细胞/淋巴细胞”（百分比）或“CD3+CD4+T细胞绝对数”来表示。
CD4标准值到底是多少？CD4细胞正常值标准，在我国多为420以上。
但是正常值范围在不同的国家会有所差别，即便是同一国家的不同地区其指标也可能存在差异，一般比较认可的范围是每微升血中500~1500个。
实验室通过对我国20—40岁青壮年人群样本的检测发现，CD4的平均值为750个左右，但也不乏每微升血中只含有CD4细胞350或者400个的健康成人。
随着年龄增长（如60岁以上），CD4细胞会逐渐减少。
CD4/CD8 比值正常值范围及临床意义T淋巴细胞亚群检测中的CD4 CD8 CD56正常参考值：CD3：60-80% ；CD4：35-55% ；CD8：20-30% ；CD4/CD8比值：1.4-2.0临床意义：1. CD3 下降常见于①恶性肿瘤；②自身免疫性疾病，如系统性红斑狼疮、类风湿关节炎等；③先天性免疫缺陷病, 艾滋病；④接受放疗、化疗或者使用肾上腺皮质激素等免疫抑制剂。
CD3 上升则见于慢性活动性肝炎、重症肌无力等。
2. CD4 淋巴细胞减少：见于恶性肿瘤、遗传性免疫缺陷病、艾滋病、应用免疫抑制剂的患者。
3. CD8 淋巴细胞增多：见于自身免疫病，如SLE 、慢性活动性肝炎、肿瘤及病毒感染等。
4. CD4 ／CD8 比值异常：CD4 ／CD8 的比值做为免疫调节的一项指标，正常值约1.4 ～ 2.0 ，若其比值＞ 2.0 或＜ 1.4 ，表明细胞免疫功能紊乱。
CD4 ／CD8 ＜ 1 ． 4 常见于①免疫缺陷病，如艾滋病的比值常小于0.5 ；②恶性肿瘤；③再生障碍性贫血，某些白血病；④某些病毒感染，急性巨细胞病毒感染；⑤其它，SLE 肾病、传染性单核细胞增多症、骨髓移植恢复期等。
CD4 ／CD8 ＞ 2.0 常见于自身免疫性疾病，如系统性红斑狼疮、类风湿关节炎、I 型糖尿病等等。
此外还可用于监测器官移植的排斥反应，若移植后CD4/CD8 较移植前明显增加，则可能发生排异反应。
5. CD56 某些病毒感染早期、长期使用干扰素及其干扰的诱导物，骨髓移植后、习惯性流产等可增高；恶性肿瘤特别是中晚期伴转移的肿瘤，免疫缺陷病及使用免疫抑制剂等可降低。
CD4代表体液免疫状态，可由il-4（白介素-4）测定CD8代表细胞免疫状态，可有IFn-y（干扰素-y）测定CD8+/CD4+所占的细胞分型比例反映了机体免疫状况。
CD8+/CD4+ > 2%则表示正常，若CD8+/CD4+<2%，则表示体液免疫占主导。
CD4+ 和CD8+ T淋巴细胞检测
1 范围
本章规定了用多平台三级程序法和单平台一步法检测全血中的CD4+ 和
CD8+ T淋巴细胞。
2 规范性引用文件
1997 Revised Guidelines for Performing CD4+ T-Cell Determinations in Persons Infected with Human Immunodeficiency Virus (HIV) MMWR 46(RR-2);1-29 Publication date: 01/10/1997。
3 实验室条件
3.1 人员
进行HIV感染者CD4+ 和CD8+ T淋巴细胞检测的人员须具有艾滋病实验室的上岗资格，并接受过省级以上艾滋病实验室安全及实验操作技术培训。
3.2 设施和设备
3.2.1 样品处理区：生物安全柜、离心机、冰箱、水浴箱、旋转振荡器、精确移液器（5μl~50μl、20μl~200μl、200μl~1000μl）。
3.2.2 流式细胞仪检测区：流式细胞仪
3.3 功能分区
实验室原则上应分为样品处理区和流式细胞仪检测区,各区的功能是：
3.3.1 样品处理区应达到生物安全Ⅱ级（BSL-2）实验室要求，用于样品处理、流式检测样品制备。
3.3.2 流式细胞仪检测区用于制备好的样品上机检测。
4 样品采集、运输和接收
4.1 样品的采集
4.1.1 选择合适的抗凝剂，分别用于血液学检测和流式细胞仪的免疫表型检测。
4.1.1.1 用于血液学检测的抗凝剂
（1）EDTA（1.5±0.15mg/ml血液）。
（2）在血球分析仪生产商允许的时间范围内检测，不超过30h，不检测超出抗凝时间范围的样品。
4.1.1.2 用于流式细胞仪免疫表型检测的抗凝剂
（1）用K3EDTA抗凝，收集样品应在30h以内，尽早（8h以内）处理。
（2）用ACD或肝素抗凝，收集样品在48h以内，尽早（8h以内）处理。
4.1.2 静脉采血收集血样，将血液注入一个事先加入适当抗凝剂的试管（用真空试管）。
4.1.2.1 当收集儿童样品时，采用儿童用注射器、小试管。
4.1.2.2 采血后立即握住试管两端，颠倒混匀数次，将血液与抗凝剂混匀，以防止凝固。
4.1.3 准备适当数量的样品管
4.1.3.1 当同一样品的血球检测和流式细胞仪免疫表型检测在不同实验室内进行时，用2个装有K3EDTA的试管即可。
4.1.3.2 在所有其它条件下用2个试管（用K3EDTA作血球检测，用K3 EDTA、ACD或肝素作流式细胞仪免疫表型检测）。
4.1.4 对所有样品编号，并写明日期和收集时间。
4.2 样品运输
4.2.1 在室温下（18~23℃）保存和运输样品，避免极端温度（冷冻或过热）。
超过37℃的温度会破坏细胞，对血液学和流式细胞仪的检测有影响。
天气热时，需要用一个隔热的容器装样品，并且把这个容器放于另一个有冰袋和吸热物质的容器中。
这种方法有助样品的保存。
4.2.2 尽可能快地将样品送至免疫表型检测实验室。
4.2.3 如需运送样品到其它地点时，应将装样品的试管放于一个防漏的容器中，并将此容器放于一个装有充足的吸水性物质的纸罐中，以防止震动并可吸收所有因试管破裂漏出的血液。
盖紧纸罐，用橡皮带系紧。
4.2.4 应选择特定的方案，并且安排合适的时间收集和运输样品。
4.3 样品接收
4.3.1 样品到达以后立即检查试管及其所装的血样。
4.3.2 如有以下现象发生，采取正确的方法处理：
4.3.2.1 如果样品较热或较冷，但没有明显的溶血或结冰，可以处理样品，但要在工作表的报告上注明温度条件。
不要马上加热和冷冻样品以使其达到室温，因为这样会对免疫表型检测的结果产生不利的影响，散射光模式的不正常会显示出所受到的影响。
4.3.2.2 不可检测溶血或结冰的样品。
4.3.2.3 不可检测凝血的样品。
4.3.2.4 如果样品的采集时间已超出48h，不可检测。
5 方法
目前用于CD4+ 和CD8+ T淋巴细胞计数的检测方法分为自动检测方法和手工操作法。
自动检测方法包括流式细胞仪（主要采用单平台一步法）和专门的细胞计数仪，手工操作法包括几种手工操作试验，需要显微镜或酶联免疫试验设备。
6 实验资料的记录
6.1 实验应及时、准确地记录结果。
6.2 实验记录中应包括以下内容：日期、操作者、所有样品、实验内容、过程（步骤）、结果及有无事故等。
6.3 整个实验室的实验资料要统一有专人负责，按固定格式记录在案。
6.4 计算机生成的实验结果，存档备案；定期拷贝计算机结果文档，备案保存。
7 结果报告
7.1 按照实验结果填写CD4+ 和CD8+ T淋巴细胞检测报告单，检测人员签字。
7.2 根据CD命名标准报告数据，用一个简短的描述解释命名的意义。
注意：CD4+T细胞是指辅助性T细胞。
正确的报告CD4+ T细胞应该是那些CD4+ 和CD3+ 双阳性的细胞。
同样地，CD8+ T细胞是T-suppressor/cytotoxic细胞，为CD3+ 和CD8+ 双阳性的细胞。
在CD4+ 和CD8+ 的判定中重要的是排除其它细胞（非T 细胞）的干扰。
7.3 以全部淋巴细胞的百分比报告数据，并且修正门内淋巴细胞纯度。
例如，如果淋巴细胞纯度是94%，而CD3值为70%，可以通过0.7除以0.94乘以100
得到74%，修正CD3的值。
7.4 为检测免疫亚群而取血的同时，用该血样作自动测定全血细胞（CBC）计数白细胞（WBC）及分类测定，报告淋巴细胞亚群绝对数值。
7.4.1 用淋巴细胞的总数（来自于WBC及分类）乘以淋巴细胞亚群的百分率（从流式细胞仪的数据中得到），计算绝对数值。
7.4.2 如可能，应报告计数的百分率和绝对值。
7.5 单平台一步法由计算机软件直接出结果并打印出报告单，报告单的内容包括如下结果：CD45+ Abs Cnt；CD3+ Abs Cnt；CD3+ CD4+ %T Lym；CD3+CD4+ Abs Cnt；CD3+CD8+ %T Lym；CD3+CD8+ Abs Cnt；Th/Ts及其正常参考值范围(BD公司建立的正常参考值范围见表3)，检测人员签字。
表3 BD公司应用单平台一步法建立的正常参考值范围表
*另有报告：①0.68-2.47（中华检验医学杂志，2003，26（2）：123-125）
②0.71-2.87（中华检验医学杂志，1998，21（4）：223-227）
③1.38±0.34(中华检验医学杂志，1998，21（2）：98)
7.6 应报告所有相关数据的正常值范围（如CD4＋T淋巴细胞百分率和绝对数）。
每个实验室都应测定参考数值。
应分别建立成人和儿童的正常值参考范围，在对病人样品检测时应使用合适的参考值。
7.7 报告单经复核人复核签字及签发，加盖检验专用公章后发出。
7.8 报告发放时，可经挂号邮寄或直接交给送检人。
8 质量控制和评价
制定质量保证计划，建立内部质量控制制度。
参加室间质量评价。
正常参考数据见7.5。
9 检测CD4+、CD8+ T淋巴细胞的意义
T淋巴细胞是机体免疫系统内功能最重要的一群细胞。
在正常机体内各淋巴细胞亚群相互作用，维持着机体正常免疫功能。
当不同淋巴细胞亚群的数量和功能发生异常时，可导致机体免疫功能紊乱并发生一系列病理变化。
因此，Ｔ淋巴细胞亚群的免疫分型能够提供有关患者免疫状态的重要信息。
AIDS是由HIV引起的一组综合征，HIV主要侵犯人CD4+ T淋巴细胞，导致其数量上的减少和功能缺陷，使机体免疫平衡被打破造成免疫功能低下，最终导致各种机会感染和肿瘤。
因而，对HIV感染者和AIDS病人定期进行CD4+、CD8+T淋巴细胞检测具有十分重要的意义。
主要表现在以下几个方面：
9.1 了解机体的免疫状态以进行疾病分期，如美国CDC就是以此为基础制订了HIV感染者/AIDS病人的诊断和分类标准（见表4），目前国内外仍被采纳应用。
表4 1993年修订的HIV感染的分类系统和青少年及成人扩展的AIDS监测病例定义
备注：A、B、C的解释请参考《艾滋病病毒感染的诊断与治疗》邵一鸣、蒋岩、栾文民主译，
科学出版社，2002年。
9.2 长期监测CD4+ T淋巴细胞绝对数的变化，有助于了解患者的病情发展，决定正确的治疗方案，并观察对治疗的反应。
如判断HIV感染者的临床合并症（当CD4+ T淋巴细胞细胞＜200/ml时，很容易发生卡氏肺孢子虫肺炎；当CD4+ T淋巴细胞<50时，易发生CMV感染）。
9.3 帮助确定抗HIV药物治疗及预防机会性感染治疗的适应症，如当CD4+ T 淋巴细胞＜200/ul时，应给予抗卡氏肺孢子虫肺炎的预防性治疗。
9.4 是用来评价一些新的、针对HIV的治疗方法和治疗药物疗效的重要指标。
