[高等教育]慢病毒包装操作说明

Clontech-Lenti-X™ Lentiviral Expression Systems User ManualProtocol No. PT5135-1慢病毒包装操作说明A.用Lenti-X HTX Packaging System生产慢病毒悬浮物为了获得最高效价的病毒悬液，用Lenti-X 293T细胞系，严格尊守以下说明，尤其尊守（1）培养体系和培养量（2）DNA的量和转染质量（3）无四环素血清（4）孵育时间。

所有的Xfect™转染成份，量和条件最好用Lenti-X Vectors，Lenti-X HTX 包装混合物，Lenti-X 293T细胞。

用10cm组织培养板并确保血清无四环素，四环素污染的血清对表达包装成份是有害的。

所有的实验步骤均在无菌组织培养器血中完成。

包装病毒需要有微生物安全等级2的生物安全柜中进行，注意重组的假性慢病毒包装颗粒能够感染人。

1.转染24小时前，在10cm培养板接种4-5×106个293T细胞，添加10ml的生长培养基。

在37℃，5%CO2℃条件下过夜。

在进行第7步前确保培养血有80-90%的覆盖率。

2.充分混均Xfect Polymer。

3.每个转染样品需准备两个离心管，按顺序添加如下试剂Tube 1(Plasmid DNA) Tube 2(Polymer)557µl Xfect Reaction Buffer 592.5µl Xfect Reaction Buffer 36µl Lenti-X HTX Packaging Mix 7.5µl Xfect Polymer7µl Lenti-X Vector DNA(1µg/µl)600µl 总量600µl 总量注意：Xfect Polymer 不要在室温下搁置长于30min4.充分混均每个管5.把Tube2添加到Tube1中，中速涡旋10秒。

慢病毒包装实验技术方法1、实验试剂DMEM、超牛血清、G418、L-谷氨酰胺、非必需氨基酸、Lipofectamine TM 20002、实验仪器细胞培养板，37℃细胞培养箱，离心机，Amicon Ultra-15离心过滤器3、293FT细胞的培养用于包装病毒的293FT细胞必须处于生长旺盛期，细胞状态良好，细胞边缘清晰，传代次数较低。

293FT细胞培养：使用含10%超级新生牛血清的DMEM高糖培养基（并添加0.1mM的非必需氨基酸，2mM的L-谷氨酰胺，2mM的丙酮酸钠，500µg/ml的G418和1%的青霉素或链霉素），置于37℃、5% CO2 细胞培养箱中常规培养，保证细胞生长状态良好。

4、转染质粒细胞铺板：用含有10%FBS的无抗生素DMEM将生长旺盛的293FT细胞以一定密度铺到培养板中，使次日密融合度达到60%左右。

分别用脂质体作为转染试剂实现包装质粒和核心质粒的共转，PAX 2、pMD和核心穿梭质粒以3：1：4的比例用Lipofectamine TM 2000共转293 FT细胞。

转染6h后，移去细胞培养液，更换为新鲜的DMEM 培养基。

转染后24 h和48h分别于倒置荧光显微镜下观察转染效率并拍照，效率应达到85%以上。

5、收集病毒转染48小时后收集含慢病毒的上清液于无菌的离心管中，3000 rpm，4 ℃离心10 min，取离心后的上清分装到新的无菌的离心管中，-80℃冰箱保存。

将包装病毒的细胞培养板中加上新鲜的培养基，72h 后再次收获慢病毒上清液并离心处理后于-80℃保存。

6、慢病毒滴度测定慢病毒滴度测定：滴度测定前1天接种HeLa细胞，12孔板中细胞密度为2×105个细胞/孔，含10% FBS的DMEM为1ml/孔，第2天将500µl病毒液及含10% FBS的DMEM 500µl加入到1.5ml的离心管中混匀，并将其加入到预先种好的细胞中，37℃、5%CO2培养箱培养，48h后用流式细胞仪检测阳性率。

Clontech-Lenti-X™ Lentiviral Expression Systems User ManualProtocol No.PT5135-1慢病毒包装操作说明A.用Lenti-X HTX Packaging System生产慢病毒悬浮物为了获得最高效价的病毒悬液，用Lenti-X 293T细胞系，严格尊守以下说明，尤其尊守（1）培养体系和培养量（2）DNA的量和转染质量（3）无四环素血清（4）孵育时间。

所有的Xfect™转染成份，量和条件最好用Lenti-XVectors，Lenti-XHTX包装混合物，Lenti-X293T细胞。

用10cm组织培养板并确保血清无四环素，四环素污染的血清对表达包装成份是有害的。

所有的实验步骤均在无菌组织培养器血中完成。

包装病毒需要有微生物安全等级2的生物安全柜中进行，注意重组的假性慢病毒包装颗粒能够感染人。

61.转染24小时前，在10cm培养板接种4-5×10个293T细胞，添加10ml的生长培养基。

在37℃，5%CO2℃条件下过夜。

在进行第7步前确保培养血有80-90%的覆盖率。

2.充分混均Xfect Polymer。

3.每个转染样品需准备两个离心管，按顺序添加如下试剂Tube 1(Plasmid DNA) Tube 2(Polymer)557µlXfectReaction Buffer592.5µl Xfect ReactionBuffer36µl Lenti-X HTX Packaging Mix7.5µl Xfect Polymer7µl Lenti-X Vector DNA(1µg/µl)600µl 总量600µl 总量注意：Xfect Polymer不要在室温下搁置长于30min4.充分混均每个管5.把Tube2添加到Tube1中，中速涡旋10秒。

慢病毒包装实验流程、原理与步骤慢病毒（Lentivirus）是逆转录病毒的一种，它需要相对较长的孵育时间，所以称之为“慢”病毒，Lenti在拉丁文中就是慢的意思。

它包括人免疫缺陷病毒（HIV）、猫免疫缺陷病毒（FIV）、猿免疫缺陷病毒（SIV）、牛免疫缺陷病毒等。

其中研究最多的是HIV-1慢病毒。

慢病毒载体（Lentivirus vector）是以慢病毒基因组为基础，由所需的目的基因取代部分基因构建而成。

目前使用的慢病毒载体多采用HIV-1基因组改造而来。

与一般的逆转录病毒载体相比，慢病毒载体对分裂细胞和非分裂细胞均具有感染能力而具有更广的宿主范围。

慢病毒载体还可以将外源基因有效地整合到宿主染色体上，从而实现持久表达。

在感染能力方面可以有效感染神经元细胞、肝细胞、心肌细胞、肿瘤细胞、内皮细胞、干细胞等多种类型的细胞，又很少引发机体免疫反应，能达到良好的基因治疗效果，具有广阔的应用前景。

慢病毒包装实验流程如下：1.根据目的基因相关信息（序列，基因序列号等）获取目的基因；2.根据客户要求选择对应载体；3. 将目的基因构建到慢病毒载体获得含有目的基因的重组载体；4. 测序鉴定重组质粒，高纯化（不含内毒素）提取的重组质粒；5. 使用高纯提重组载体和慢病毒包装质粒共转染 293FT 细胞，进行病毒包装并收集上清液；6. 通过超滤和超速离心浓缩和纯化病毒；7. 使用病毒液感染 293T 细胞，药物筛选细胞，构建稳定表达细胞系。

慢病毒使用安全及注意事项1.慢病毒相关实验请在生物安全柜内操作。

如果使用超净台请不要打开风机。

2.慢病毒感染实验时，请穿实验服，佩戴口罩和手套，尽量不用将身体的任何部位裸露在安全柜内。

3.操作病毒时尽量避免气雾或者飞溅。

如果溅出，请立即用70%乙醇加1%的SDS溶液擦拭干净。

4.如果需要离心，应使用密封性好的离心管，或者用Parafilm膜封口后离心。

5.废弃的含有病毒的培养基或者病毒接触过的枪头、离心管、培养板及培养瓶请用84消毒液（1:20），浸泡一天后丢弃。

(WORD)-生产企业质量管理制度范本760慢病毒（过表达）包装步骤秦超1.转染复苏293T细胞，传2-3代进行转染，转染推荐使用合元公司的慢病毒转染试剂。

转染步骤：（以10cm培养皿为例）⑴最好在铺细胞后20h左右进行转染，控制转染前细胞密度70%-90%，保证细胞处于良好的状态，转染前一小时把一半培养基（约5ml）换成新的（含血清，因为此转染试剂不需换液）。

⑵加psin 10ug，pspax2 10ug，pmd2.g 5ug于800ul opti-mem，混匀⑶加40ul慢病毒转染试剂于800ul opti-mem，混匀，室温静置5min⑷将⑶所得的转染试剂稀释液滴加到⑵所得到的质粒稀释液中，边加边轻轻混匀，室温放置20min⑸取出细胞培养皿，将⑷得到的质粒转染试剂复合体加入到细胞培养基中，前后轻轻推摇使混合均匀，放回培养箱。

2.收毒(36-48h)收毒前如果质粒带有荧光标签可先看一下转染效率，一般达到60%即可。

⑴将培养皿中的病毒上清液吸出到15cm离心管中，然后2000rpm离心10min，以沉淀细胞碎片。

⑵取上清用0.22um滤清过滤到浓缩管（用蛋白质浓缩管即可）中。

4000rpm离心至所需体积。

⑶浓缩完毕后，吸出浓缩后的病毒液，按每次的接毒量分装，-80℃冻存。

由于反复冻融会降低慢病毒滴度，因此避免反复冻融。

3.接毒接毒前12-20h铺细胞，使接毒时细胞密度约为40%-50%，务必使用生长状态良好的细胞。

将分装好的慢病毒滴加到细胞中，加polybrene使其终浓度为8ug/ml 细胞密度60%-70%时可以再接毒一次。

4.检测及培养细胞系(48h)如果带有荧光标签可直接显微镜看一下感染效率，如需用药杀用puromycin杀三天（对照组完全杀死），剩下的即为基因整合进去的细胞。

如需培养成细胞系，可继续培养。

如果剩下的细胞较少可用高浓度血清，待细胞聚团时用胰酶消化一下，使细胞铺匀。

慢病毒包装操作流程一、材料1 细胞培养试剂试剂名称终浓度试剂品牌DMEM/High glucose基础培养基90%Invitrogen胎牛血清10%Invitrogen/Gibco丙酮酸钠1mM Invitrogen2 慢病毒包装试剂试剂名称浓度试剂品牌Lipofectamine 2000InvitrogenPEG6000溶液50%WakoHBSS溶液Invitrogen3 耗材50 mL离心管15 mL离心管10 cm细胞培养皿μm过滤器2 mL EP管二、操作流程1细胞培养1.1293T/293FT细胞的复苏1)将完全培养液从4°C中取出放置到室温预热30 min左右。

在超净台内，用吸管吸取6~7mL完全培养液至15 mL离心管中；2)快速将冻存的细胞从液氮中取出，并迅速用镊子夹住盖子放入37°C 水浴中快速晃动（水不要没到盖子），使其在1~2分钟内完全融化；3)在超净台内，用酒精棉球擦拭冻存管外壁消毒，用吸管吸取所有融化的细胞悬液至装准备好的完全培养液中，轻轻吹打混匀，使冻存液分散开（目的是让DMSO分散，降低恢复室温的DMSO对细胞造成的毒性作用）。

4)在室温条件下，250 g离心4分钟。

5)离心后，在超净台内小心倒去上清，用吸管吸取2 mL新鲜完全培养液重悬细胞至单细胞悬液，再转移已经加好培养基的培养瓶/培养皿中，写上细胞名称、日期，放置37°C、5% CO2饱和湿度培养箱内培养。

（首次复苏细胞时，离心重悬后需取样计数，根据细胞数选择面积合适的培养容器。

）6)复苏翌日，给复苏的293T细胞更换新鲜的完全培养基。

1.2293T/293FT细胞传代1)待细胞长至60%-70%融合度即可传代。

将培养瓶里的所有培养液全部移去，用1×PBS洗涤细胞两次（洗涤速度要快，避免细胞干涸时间过长），以去除残余的培养液和血清（血清含有胰酶的抑制因子）；2)加入适当的胰酶溶液，能使其完全浸过细胞即可，室温孵育1-2分钟。

慢病毒包装标准操作细则1. 目的：规范慢病毒包装标准操作程序2. 范围：适用于慢病毒包装操作工序3. 操作程序3.1器材准备无菌10ml玻璃吸管、电动移液枪、，移液枪（量程1000μL）、10cm培养皿、各种枪头，1.5mL EP管、试管架，酒精灯、振荡混匀仪、荧光显微镜、CO2培养箱、生物安全柜3.2溶液准备1640培养基，Opti-MEM，Lipo转染试剂，293T细胞，重组慢病毒穿梭质粒，重组慢病毒骨架质粒(H1，H2)。

3.3操作步骤3.3.1转染前一天，用胰蛋白酶消化对数生长期的293T细胞，以含10%血清的培养基调整细胞密度为6x 106细胞，重新接种于10 cm细胞培养皿，37 ℃、5% CO2培养箱内培养。

24 h待细胞密度达～80%时即可用于转染。

细胞状态对于病毒包装至关重要，因此需要保证良好的细胞状态和较少的传代次数。

3.3.2第二天转染前用电动移液器将细胞培养基更换为无血清的1640培养基或是opti-MEM培养基。

3.3.3准备两个灭菌EP管，依次向一灭菌的EP管中加入10ug目的载体质粒，12ug pHelper 1.0质粒， 10ug pHelper 2.0质粒、相应体积的Opti-MEM培养基，总体积调整为500ul，轻轻混匀。

3.3.4在另一灭菌EP管中，加入460ul的Opti-MEM培养基和40ul Lipo转染试剂轻轻混匀，室温孵育5分钟。

3.3.5把两管含有载体的溶液与转染试剂的溶液进行混合，轻轻颠倒混匀，总体积为1ml，室温孵育20分钟。

将混合液滴加入细胞培养皿中，37 ℃, 5% CO2细胞培养箱中孵育6h～8 h。

3.3.6培养6-8 h后换液，弃去含有转染混和物的培养基，每盘细胞加入10 ml的10% FBS的1640培养基，于37 ℃, 5% CO2细胞培养箱中培养。

3.3.7转染24h后观察转染效率并拍照。

3.4清场3.4.1物品集中在废液桶中灭菌后清洗。

慢病毒包装步骤慢病毒包装步骤慢病毒包装简要步骤：以六孔板中的1孔为例，每个样品需要1×106个293T细胞。

1、取1.5ml灭菌EP管，加入1.5μg包装混合质粒和0.5μg表达质粒以及250μl的无血清培养基。

轻柔混匀，室温孵育5min。

3、将DNA溶液和脂质体溶液轻柔混匀。

室温孵育20min4、用胰酶消化并记数293T细胞。

用含血清的培养基重悬细胞。

5、在六孔板中每孔，加入1ml含血清的生长培养基，再加入DNA-脂质体复合物。

6、将1ml重悬的293T细胞（1×106个细胞/ml）加入到平板中。

37℃CO2孵箱中孵育过夜。

7、转染后48-72h收获含病毒的上清。

3000 rpm 离心20min，去除沉淀。

8、病毒上清-80°C贮存。

包装出来的慢病毒对NIH/3T3细胞达90%以上感染效率。

注意事项1.在慢病毒感染细胞前，为检测病毒上清培养液内病毒的活性，并确定病毒与转染细胞之间的比率，需要确定病毒2. 在慢病毒转染细胞的过程中最重要的一步是融合，只有一些较小的慢病毒载体才能转导进细胞，因此，病毒颗粒的吸附是慢病毒转染的限速步骤。

质粒转染的步骤1、DNA的量：Lipofectamine 2000=1：2~32、细胞密度大约占培养板的80%左右，转染。

3、转染期间不要加抗生素，否则会导致细胞死亡。

步骤如下：以24孔培养板为例1、转染前一天细胞换新的培养基2、制备DNA-Lipofectamine 2000复合物，如下:a、用50ul无血清培养基稀释DNA（0.8g），轻轻混匀；b、Lipofectamine 2000使用前，轻轻混匀，用48ul无血清培养基稀释2ul Lipofectamine 2000，轻轻混匀，室温孵育5分钟；c、将a+b的液体加在一起，轻轻混匀，室温孵育20分钟，使DNA-Lipofectamine 2000复合物形成；3、将100ul DNA-Lipofectamine 2000复合物加入培养板中，轻轻前后摇匀；4、放入37度孵箱中培养24~48h后，1：10传代，加入G418筛选。

慢病毒包装用于侵染Hela细胞和A549细胞用24孔板进行培养293FT细胞，每孔500μl培养液，用于包装慢病毒实验。

用6孔板培养Hela细胞和A549细胞，每孔2ml培养液，用于侵染实验。

包装对照质粒：表达GFP和RFP的PTK643空载体；包装样品质粒：PTk643-cc1各片段和PTk643-cc2各片段。

具体操作流程如下：（1）对用去内毒素试剂盒提过的质粒进行浓度测定，用于统一之后慢病毒包装中质粒的量。

（2）准备293FT细胞，按1：5接种于0.5ml DMEM（含10%FBS）的24孔板中，过夜培养到60%-80%细胞密度。

（3）准备DNA mixture。

按1ug PTK643-cc +0.7 ugΔNRF +0.5 ugVSVG计算相应的质粒体积。

将上述混合物加入50ulopti-MEM中，振荡并稍离心。

（4）准备PEI mixture。

融化PEI并稍离心，按60：500的比例将PEI加入到opti-MEM中，立即振荡并稍离心，静置5min。

（5）准备DNA/PEI混合液，将56ul的PEI混合物一滴滴加入到（3）中的DNA混合液中，振荡并稍离心。

室温孵育20-30min。

（6）从细胞培养皿中移去100ul培养液，之后加入上述DNA/PEI 混合液，同时左右摇摆盘子。

（7）37ºC培养过夜。

12小时后，换培养液（加入500ul DMEM （含10%FBS））。

（8）回收病毒上清。

转染分别在48和72小时后，回收病毒上清。

（可用0.45μm syringe filter millipore过滤回收病毒上清，本次不用）（9）将病毒上清分为300ul和200ul两份，立即进行侵染实验或于-80ºC保存。

（一份300ul侵染Hela细胞，用于后面的流式分析；另一份200ul用于跟踪观察细胞的形态。

）（10）侵染12小时后，换一次培养液。

培养48小时后，观察细胞，弱培养液变黄，则换培养液。

慢病毒包装实验步骤
1.选择长势良好的293T细胞，胰酶消化计数，以2×106个细胞的数量接种于接种到6 cm
细胞培养皿中,当细胞密度在90%时转染目的质粒。

2.细胞转
A液：16.5 μL lipo3000，
250 μL Opti-MEM
B液：21.6 μL p3000，
4 μg PMDLg/PRRE
2 μg pcl-VSVG
0.8 μg PRSV-REV
4 μg 目的质粒
250 μL Opti-MEM
将B液加到A液中混匀，室温静置20 min，将脂质体混悬液逐滴加入到6 cm细胞培养皿中，转染8 h。

3.8 h后，弃掉旧培养基，更换4 mL 预热过的10% FBS无双抗新鲜DMEM培养基，培
养48 h。

4.48 h后吸取上清液至15 mL离心管中，3000 rpm，离心20 min去除细胞碎片，后向3
体积的上清液加入1体积的病毒浓缩液（浓缩液为8.5%的聚乙二醇（PEG）8000和0.4 M氯化钠），涡旋混匀后，4℃过夜孵。

5.病毒感染前一天，选择有良好生长状态的目的细胞，胰酶消化计数，接种于96孔板。

6.病毒浓缩结束后，3500 g，4 ℃，离心25 min后，去上清。

7.96孔板中，弃掉旧培养基，每孔加入浓缩的病毒的不含双抗的完全培养基。

补充8
μg/mL polybrene以促进病毒转导，同时设置一个没有病毒的对照孔。

8.24 h后，更换F-12K完全培养基培96 h后分别加入含有2 μg/mL嘌呤霉素的F-12K培
养基进行筛选。

管中，1000 rpm，离心5-10分钟；
– 去上清，加新鲜培养液重悬细胞后移至37℃，5% CO2 ，饱和湿度培养箱 中培养。
细胞的培养及传代 （293FT）
• 实验仪器，耗材及试剂
– 15 ml 无菌离心管，低速离心机 – 293 FT 完全培养基
• 90% 高糖 DMEM+10% FBS+1% NEAA • PBS 缓冲液 • 0.25% Trypsin/EDTA（胰酶）或TryPLE
管，1000 rpm×5 min离心沉淀细胞。
• 弃上清，新鲜细胞培养液重悬细胞，按1:3-1:5比例铺板至新的培养皿中。 37℃，5% 培养及传代
• 293 FT细胞培养
– 293 FT细胞复苏24 h后，如果细胞尚未铺满皿底， 则进行换液：
• 小心用负压吸引器吸去上清，沿皿壁小心加入新鲜培养液， • 将培养皿移至37℃，5% CO2 ，饱和湿度培养箱中培养。
细胞的培养及传代
• 293 FT细胞培养及传代步骤
– 293 FT细胞复苏24 h后，如果细胞汇合度达80-90%，则进行传代：
慢病毒包装
细胞的复苏（293FT）
• 步骤
• 在15 ml离心管，加入5-10 ml 293 FT完全培养液；
– 从液氮中取出冻存细胞，迅速在37 ℃ ～38℃温水中轻轻晃动，使其融化
至黄豆粒大小（1分钟左右）；
– 在冻存管表面喷洒酒精后，擦干，移至超操作台中； – 将冻存管拧开后，轻轻用枪头吹匀细胞后移入含5 ml培养液的15 ml 离心
• 小心用负压吸引器弃去上清，沿皿壁小心加入适量PBS，轻轻晃动两圈，弃 去PBS， • 加入Trypsin或TryPLE（以盖住细胞为宜），置培养箱消化20-60s，轻磕培养 皿使细胞掉落后加入适量完全培养液终止消化。 • 用1 ml tip 头沿皿底划半弧，将细胞全部吹打为单个细胞后，移至15 ml 离心

慢病毒包装实验流程介绍
慢病毒包装流程：
1、载体质粒与系统质粒共转染293T细胞。

2、收集48~72h的细胞上清液。

3、超速离心纯化浓缩。

4、纯化分装。

5、滴度检测。

慢病毒包装具体实验步骤如下：
一、质粒转染
1、转染前，依次准备好转染试剂、Opti-MEM培养基、目的质粒、骨架质粒、EP管。

2、然后，配置质粒和OMEM的混合液。

3、配置转染试剂和OMEM的混合液。

4、轻轻混匀，静置5min。

5、将配好的质粒与转染试剂混合后形成转染体系。

6、轻轻混匀，静置20min。

7、从培养箱中取出10cm培养皿，弃去培养液，更换为OMEM 培养液。

8、转染，轻轻混匀。

9、在培养皿盖上做好标记，放回培养箱继续培养。

10、转染后6-8h，更换为新鲜的DMEM培养基。

11、转染后次日，显微镜下观察转染效率。

12、转染后48h，收集上清液于干净的50ml离心管中。

13、加入新鲜的DMEM培养基，继续培养。

14、转染后72h，再次收集上清液。

二、浓缩纯化
1、将收集好的上清液离心，弃去细胞碎片。

2、用0.22μm滤膜过滤，分装到超速离心管中。

3、超速离心。

4、离心结束后，将所收获的病毒颗粒重新悬浮，于4℃冰箱中溶解，过夜。

5、次日，再次将溶解后的病毒过滤、分装、入库。

慢病毒使用操作指南一、慢病毒的储存与稀释：1. 病毒的储存：用户收到病毒液后在很短时间内即使用慢病毒进行实验，可以将病毒暂时放置于4 ℃保存；如需长期保存请放置于-80℃（病毒置于冻存管，并使用封口膜封口）注：A．病毒可以存放于-80℃6个月以上；但如果病毒储存时间超过6个月，我们建议在使用前需要重新滴定病毒滴度。

B．反复冻融会降低病毒滴度：每次冻融会降低病毒滴度10%；因此在病毒使用过程中应尽量避免反复冻融，为避免反复冻融我们强烈建议客户收到病毒后按照每次的使用量进行分装。

2. 病毒的稀释：用户需要稀释病毒时，请将病毒取出置于冰浴融解后，使用培养目的细胞用PBS或无血清培养基(含血清或含双抗不影响病毒感染)混匀分装后4℃保存(请尽量在三天内用完)，分装后使用。

二、慢病毒用于体外（in vitro）实验：感染培养原代细胞和建系细胞1. 慢病毒对各种细胞和组织的亲嗜性不同，用户使用Invabio提供的慢病毒之前可以通过查阅相关文献，了解慢病毒对您的目的细胞的亲嗜性，感染复数（MOI 值）以及在体内（in vivo）注射所需要的病毒量。

如果没有相关文献支持，可以通过感染预实验得到合适的感染复数（MOI 值）（使用24孔板检测病毒对目的细胞的亲嗜性）2. 慢病毒感染目的细胞预实验①慢病毒感染目的细胞预实验注意事项A．测定慢病毒对目的细胞的亲嗜性时，需要同时设置对慢病毒亲嗜性较高的（HEK293T，Hela）细胞作为平行实验的对照细胞。

B．在进行慢病毒感染实验时,可以用完全培养基（培养目的细胞用）稀释；理论上，含有血清、双抗或者其他营养因子的完全培养基不影响慢病毒的感染效率。

C．Invabio提供的病毒单位为TU/ml，即每毫升中含有具有生物活性的病毒颗粒数。

如：病毒滴度为>1X108 TU/ml 即每毫升病毒液中至少含有1X108个具有生物活性的慢病毒颗粒。

②以24孔培养板为例，进行目的细胞和HEK293T 细胞的感染预实验实验前按照不同的MOI设置不同的感染孔，并根据MOI和细胞数量计算所需要的病毒量，如有必要可以使用PBS溶液或者无血清培养基稀释病毒原液第一天，准备细胞：在24孔培养板接种若干孔，每个孔内接种3~5X104个目的细胞，铺板时细胞的融合率为50%左右，每孔培养基体积为100 μl；进行病毒感染时细胞的融合度约为70%左右。

一、包装细胞293T细胞的培养一、293T细胞的冻存1. 随着传代的次数增加，293T细胞会出现生长状态下降，出现突变等。

所以要在细胞购进时就进行冻存。

2. 在细胞对数生长期进行冻存，增加细胞复苏成活率。

3. 倒去细胞上清液，加入D-Hank's液洗去残留的培养基。

4. 加入0.25%的胰酶，消化10-20s后倒去。

5. 镜下观察细胞变圆，细胞间间隙加大时，加入新鲜培养基吹打混匀。

6. 细胞计数。

7.将细胞离心，1000rpm，2min。

8. 根据计数结果加入细胞冻存液（70%完全培养基+20%FBS+10% DMSO）重悬细胞，密度为3×106个/ml。

10. 第二天将细胞放入液氮灌，并记录。

二、293T细胞的传代1. 当细胞生长至汇合率达到80~90%需要对细胞进行传代操作，以扩大细胞数量，维持细胞良好的生长状态。

2. 消化细胞，方法同上。

3. 细胞离心结束后，加入完全培养基重悬。

密度为3×105个/ml。

4. 分到10cm培养皿中，10ml/皿。

三、293T细胞的复苏1. 当细胞传代次数过多（超过50代），细胞状态变差时或细胞出现污染事故时，需要丢弃并对开始冻存的细胞进行复苏。

2. 打开水浴锅，设置温度为40℃。

3. 查看细胞库记录，根据记录从液氮灌中取出冻存的细胞（需戴上棉手套，防止被冻伤），迅速丢入水浴锅中并快速晃动，在1~2 min内使细胞溶液完全溶解。

4. 将1ml细胞溶液加入9 ml完全培养基中并混匀后转入10cm培养皿。

5. 放回37℃、3%CO2和95%相对湿度的培养箱中培养。

6. 第二天观察细胞存活率。

倒掉旧的培养基，加入10ml新鲜培养基。

二、慢病毒的包装、浓缩和滴度测定1. 所用病毒检测引物为WPRE特异引物，序列如下5'-CCTTTCCGGGACTTTCGCTTT-3' (forward primer),5'-GCAGAATCCAGGTGGCAACA-3' (reverse primer) and5'-FAM-ACTCATCGCCGCCTGCCTTGCC-TAMRA-3' (probe)2. TaqMan Universal PCR Master Mix (Applied Biosystems，cat. no. 4304437)3. TaqMan DNA Template Reagent Kit (Applied Biosystems，cat. no. 401970)4. TaqMan RNaseP control reagent (Applied Biosystems，cat. no. 4316844)用于包装的293T细胞的培养用于包装的293T细胞(ATCC No. CRL-11268)必需选择处于生长旺盛期，细胞状态较佳，存活率90%以上，细胞边缘清晰，传代次数较低。

慢病毒包装简要程序(以六孔板中的1孔为例)：第一天：1.用无抗生素DMEM+10%FBS铺板293FT细胞，2ml/孔。

确保第二天细胞密度达到80%-90%融合度第二天：1.转染293FT细胞。

1. 500ul Opti-MEM稀释2ug pWPXLd-目的基因+1.5ug psPAX2+1.5ug pMD2.G2. 500ul Opti-MEM稀释15ul lipofectamine20003. 5min后，将①，②溶液混合，室温静止30min4. 从6孔板中吸出1ml培养基，然后滴加入1ml质粒和脂质体混合物。

2. 6-10h后，移除含有DNA-脂质体复合物的培养基，代之以正常培养液DMED+ 10%FBS（从此刻开始算时间）。

第三天：3.转染24h后，荧光显微镜下观察，转染效率应达到70%以上第四天：4. 48h收获含病毒的上清，0.45um滤膜过滤，同时再往6孔板中加入2ml完全培养基4. 感染细胞：用一份病毒液+2份完全培养基感染目的细胞。

第五天：5. 72h后再次收获病毒上清。

将昨天感染的细胞离心去除上清，然后再次感染目的细胞。

6. 一般感染48h后，就能见到明显的荧光。

慢病毒的构建，可以把你感兴趣干涉片段构建到entry载体上，然后与其他两个包装载体共同转染到细胞中，然后进行病毒的回收纯化等等，也可以把要研究的基因构建到表达载体上然后与包装载体共转293FT，之后回收纯化病毒载体。

具有许多优点：比如说感染效率是极其高的，其他常用的转染方法是没法和它相比的，构建完成并且进行回收纯化，病毒滴度的测定之后就可以长期使用。

相比脂质体转染，电转等价格上要便宜的多。

其次还有值得提的一点是其转染效率，由于其他几种转染方法不一定转染的进去，一直存在转染效率的问题困扰，而采用慢病毒转染则不会遇到这种问题。

这里说的不太清楚，感兴趣的话可以先查阅一点相关资料。

我们也是进来才做这些的，因此也存在着一些问题，希望大家可以多多交流。

第一天：293FT细胞提前铺6孔板，保证第二天汇合度达到90-95％.第二天：1，AB液准备：A：0.5μgPMD2.G+ 1.5μgpsPAX2+ 2μg目的质粒+250μL opit-MEM 混匀。

（先加质粒到EP管，再加培养基）B：10μL lipo2000 + 240μL opit-MEM混匀。

2，静置5min，后将AB液混合均匀，放置30min。

均匀滴加到6孔板。

3，转染6-8h后跟换2mL培养基。

4，48h后收集上清于4℃保存，再添加2mL培养基继续培养24小时。

5，合并两次收集的病毒液上清，3000rpm离心5min，取上清经0.45μm过滤器过滤，病毒液直接感染细胞或-80℃保存。

细胞感染：培养细胞汇合度至50％，病毒上清与培养基1:1感染细胞，加polybrene 终浓度8μ/ML，持续感染至细胞传代。

至少感染48h以上然后加puro筛选或过流式筛选。

不挑取单克隆：将感染并筛选后的细胞进行传代，并继续施加puromycin进行维持性筛选培养。

连续筛选并传3代后，冻存保重稳定细胞株感染悬浮细胞上面介绍的是针对贴壁细胞的感染方法，若是悬浮或半悬浮细胞，则需要通过平角离心转染法，即将适量的病毒液加入细胞培养皿后，封好口，放入平角离心机后，低速（500g-1000g/min）离心1h，然后放入培养箱中正常培养即可。

若由于实验条件有限，没有平角离心机，可用离心管代替，将细胞吹打吸入离心管中，进行低速离心，去掉大部分上清，然后加入适量的病毒液，室温放置15min（不能超过半小时），然后将细胞和病毒液同时吸出转入培养皿中继续病毒感染过夜后换液即可注意：1，实验细胞状态良好2，培养基用无双抗DMEM3，293FT细胞汇合度90-95％4，根据情况可以进行多次感染如果要感染干细胞，那最后一步293T的收毒加入干细胞培养基。

随着传代的次数增加，293T细胞会出现生长状态下降、突变等。

为了防止此类现象的出现，我们需要在开始就对细胞进行大量冻存。

慢病毒包装实验的要点：1：良好的293FT细胞状态是转染成功的首要因素，细胞代数不宜超过30代；2：细胞铺板需均匀，避免细胞成团，影响转染效率；尽量多的细胞转入质粒，产生的病毒就越多；3：细胞换液和共转染时，动作要轻柔避免细胞漂浮。

尽量少的细胞死亡，产生的病毒就越多；实验前要准备的试剂、耗材和仪器；试剂准备：10%灭活胎牛血清+90%DMEM配好的完全培养基,0.25%胰酶，PBS,TRL 转染试剂，包装质粒，目的质粒，无血清培养基。

耗材准备：10cm细胞培养皿，6孔细胞培养板，吸头规格1ml、200ul、10ul，10ml移液管，离心管规格15ml、5ml、1.5ml，0.22um PVDF滤膜和10ml无菌注射器，试管架。

仪器准备：倒置荧光显微镜，普通光学倒置显微镜，电动移液器，吸引器，移液枪，二级生物安全柜，二氧化碳细胞培养箱。

第一天：上午（病毒包装质粒共转染前，293FT细胞复苏后至少让其传代两次以上，293FT 细胞能成倍的增长，确定细胞状态好）；实验前准备：安全柜开紫外灯照30分钟；把培养基和试剂放置常温；消化细胞：从37 5%的co2细胞培养箱拿出细胞状态良好的293FT细胞，吸出原培养基，加入PBS 1ml略洗之后吸出，加入1ml胰酶消化1-2min，轻轻拍打培养皿，再加入3ml新鲜培养基终止消化，将培养皿中的细胞转移至15ml离心管内离心1000r /5min,吸出上清液，加入10ml PBS吹打混匀后，离心1000r /5min, 吸出上清液。

细胞铺板：在10cm细胞培养皿上标记细胞名称、细胞代数、时间和操作人，将计数好大约2.5×106个293FT细胞吸入15ml离心管，再加入完全培养基至10ml充分混匀，然后把混匀的293FT细胞移入10cm培养皿）。

放置培养箱中培养48h。

插入铺板后图片刚铺板后铺板1天后第三天：上午细胞转染：细胞铺板48h后，从培养箱取出293FT细胞，倒置显微镜观察，细胞密度达90%左右；吸出原有培养基，沿皿壁缓慢加入8ml完全培养基，放置于培养箱中，待转染。