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弓形虫检测标准弓形虫的检测主要包括以下几种方式：1. 体格检查：检查眼部可能出现结膜充血、黄染等症状，腹部触诊、叩诊可有肝脾肿大，淋巴结检查可能有压痛、肿大的情况，多见于颌下淋巴结和颈后淋巴结。
2. 病原学检查：直接涂片：取患者血液、骨髓，或者是脑脊液、胸腹水、痰液、支气管肺泡灌洗液、眼房水、羊水、乳汁、尿液等做涂片，其后用常规染色或免疫细胞化学法检测，可发现弓形虫的花环、链条和簇状群体，位于细胞质内。
组织切片：取淋巴结、肌肉、肝、胎盘等活组织切片，做瑞氏或姬氏染色镜检，可以查到滋养体或包囊，但此检查阳性率不高。
动物接种：取待检者体液或组织悬液接种小鼠腹腔内，可造成感染并找到病原体，第一代接种阴性，应至少盲目传代3次。
DNA杂交技术：将含有弓形虫的特异性DNA序列制作成探针，与外周血液提取的DNA进行杂交，当结果显示特异性杂交条带或斑点为阳性反应。
3. 免疫学检查：血清弓形虫抗体的检查：血清弓形虫抗体分为IgM抗体和IgG抗体。
IgM抗体提示近期感染，IgG抗体提示既往感染。
当血清IgM抗体阳性时，考虑患弓形虫病。
弓形虫循环抗原：常用ELISA法（酶联免疫吸附试验）检测血清或体液中的弓形虫循环抗原，具有较高的特异性，可以检出血清中μg/mL的抗原，是弓形虫急性感染的可靠指标。
皮肤试验：弓形虫素皮内试验较为特异，感染后阳性出现较晚，但持续很久，可用于流行病学调查。
4. 其他检查：包括外周血白细胞略有增高，淋巴细胞或嗜酸性粒细胞比例增高，有时可见异型淋巴细胞。
感染弓形虫脑病时脑脊液常表现为白细胞总数增高，以单核细胞为主，蛋白增高、糖正常、氯化物减少，脑脊液离心沉渣涂片的吉姆萨染色有时可见速殖子。
以上信息仅供参考，如有任何健康疑虑或症状，应及时向医疗专业人士寻求帮助和建议。
弓形虫的检测方法有几种
弓形虫的检测方法主要有以下几种：
1. 血清学检测：通过检测血清中特定的抗弓形虫抗体（如IgM和IgG抗体）来判断是否感染弓形虫。
常用的血清学检测方法有酶联免疫吸附试验（ELISA）、免疫荧光法（IFA）和补体结合试验（CFT）等。
2. 细胞学检测：通过分离病患的淋巴细胞、骨髓细胞、腹水细胞等，直接观察弓形虫样虫体或虫體所致的包囊等，从而确定感染弓形虫。
此种检测方法对临床活动病例诊断很有意义。
3. 分子生物学检测：通过提取病原体DNA并进行多重PCR扩增，使用特异性引物和标记探针，可以检测出弓形虫的存在。
此种方法敏感度高、特异性好，可以检测到早期感染，对于免疫抑制患者或胎儿感染的血液标本检测很有价值。
4. 组织学检测：对于病理组织进行光镜或电镜观察，可以发现弓形虫的囊腔或虫体，从而确定感染弓形虫。
一般适用于组织活检或尸体解剖的检测。
需要注意的是，不同方法的适用情况和敏感性可能会有所差异，一般会根据具体病情和临床需要选择合适的检测方法进行诊断。
判断弓形虫最简单方法弓形虫是一种常见的寄生虫，它可以通过食物、水源、接触感染等途径传播给人类和动物，引起弓形虫病。
弓形虫病是一种全球性的寄生虫病，对人类和动物的健康造成了严重威胁。
因此，判断弓形虫是否存在以及如何进行有效的预防成为了重要课题。
那么，什么是判断弓形虫最简单的方法呢？首先，我们可以通过实验室检测来判断弓形虫的存在。
目前，常用的方法包括血清学检测和分子生物学检测。
血清学检测通过检测血清中的抗体水平来判断是否感染了弓形虫。
而分子生物学检测则是通过检测样本中的弓形虫DNA来进行判断。
这些实验室检测方法需要专业设备和技术支持，可以准确地判断出是否存在弓形虫感染，但是需要耗费一定的时间和成本。
其次，我们可以通过临床症状来初步判断弓形虫感染。
弓形虫病的临床症状多种多样，包括发热、头痛、肌肉疼痛、淋巴结肿大等。
这些症状并不特异，容易与其他疾病混淆，因此不能作为确诊的依据。
但是，如果在特定的环境下出现了这些症状，就需要考虑到弓形虫感染的可能性。
另外，我们还可以通过食物和饮水的安全性来判断弓形虫感染的风险。
弓形虫主要通过食物和饮水传播，因此我们可以通过注意食品安全和饮水卫生来降低感染的风险。
避免生吃或未煮熟的肉类和蔬菜水果，饮用煮沸的水，可以有效地预防弓形虫感染。
此外，对于家养动物的主人来说，定期带宠物去兽医处进行体检和驱虫也是一种有效的预防措施。
弓形虫可以通过动物排泄物传播，因此保持宠物的卫生和健康对于预防弓形虫感染非常重要。
总的来说，判断弓形虫最简单的方法是通过实验室检测来进行。
但是在日常生活中，我们也可以通过临床症状和食物饮水的安全性来初步判断感染的风险。
预防弓形虫感染需要我们从多个方面进行，包括个人卫生习惯、食品安全、宠物健康等。
只有做到全方位的预防，才能有效地降低弓形虫感染的风险，保护自己和家人的健康。
检测实验动物弓形虫感染的两种PCR方法的建立和比较陈俏梅;张俐;何国声【期刊名称】《中国动物传染病学报》【年(卷),期】2003(011)002【摘要】为了建立敏感、稳定、特异的PCR检测体系,用于实验动物弓形虫感染的检测.采用B1基因设计引物,建立常规PCR,用P30基因设计引物,建立巢式PCR;用两种PCR方法检测实验感染弓形虫小鼠血液和腹腔液中的DNA动态变化;用巢式PCR检测自然状态下的普通级豚鼠、教学和科研用兔的弓形虫感染率,并和常规PCR检测结果比较.结果,巢式PCR可检测到1fg DNA含量,比常规PCR敏感100倍;对其他微生物DNA无交叉现象,特异性强;对同一样品重复检测3次,阴、阳性结果一致,稳定性好.小鼠感染弓形虫2 d后,巢式PCR对小鼠腹腔液的阳性检出率为83.3%,对血液的阳性检出率为33.3%;感染3 d后,腹腔液阳性检出率为100%;而常规PCR在小鼠感染3 d和4 d后才能在腹腔液和血液中检测到,检出率各为16.7%.受检普通级豚鼠没有感染弓形虫,教学和科研用免的弓形虫总感染率为14.3%.结论认为,巢式PCR方法可用于实验动物弓形虫早期感染的检测,具有敏感性高、特异性强、稳定性好的特点.【总页数】4页(P5-8)【作者】陈俏梅;张俐;何国声【作者单位】上海生物制品研究所国家实验动物寄生虫质量检测中心,卫生部上海实验动物检测中心,上海,200051;上海生物制品研究所国家实验动物寄生虫质量检测中心,卫生部上海实验动物检测中心,上海,200051;中国农业科学院上海家畜寄生虫病研究所,上海,200232【正文语种】中文【中图分类】S852.723【相关文献】1.两种免疫学方法检测弓形虫感染的比较研究 [J], 郭彩琴;陈道桢;项静英;许飞2.两种巢式PCR方法在HIV-1早期检测的应用和比较 [J], 肖信;吴书志;苏齐鉴;周平;臧宁;刘伟;岑平;梁浩3.两种荧光定量PCR方法检测猪瘟病毒的比较及应用 [J], 袁雪梅;陈宁;陈宇;王萍;童超;李得江;万婧;李肖梁;方维焕4.同时检测两种对虾病毒和4种弧菌的同步PCR方法的建立 [J], 许拉;黄使;戈蕾;杨冰5.两种实时定量PCR方法检测系统性红斑狼疮患者DNA甲基化状态的比较研究[J], 李遇梅;李政亮;马红;盛元华;许辉;刘莉萍;陈志强因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。
判断弓形虫最简单方法弓形虫是一种寄生虫，常常存在于动物的肠道中，特别是猫科动物。
而人类往往是通过食用受感染的食物或水而感染弓形虫的。
弓形虫感染可以导致弓形虫病，对人体健康造成威胁。
因此，判断弓形虫是否存在是非常重要的。
那么，有没有一种简单的方法来判断弓形虫呢？最简单的方法之一是进行血清学检测。
这种方法通过检测人体血清中的抗体水平来判断是否感染了弓形虫。
一般来说，人体在感染了弓形虫后，会产生特定的抗体来对抗寄生虫。
因此，通过检测这些抗体的水平，可以初步判断是否存在弓形虫感染。
这种方法简单易行，且准确性较高，是目前较为常用的判断方法之一。
除了血清学检测，还可以通过PCR技术来判断弓形虫的存在。
PCR技术是一种分子生物学技术，可以通过扩增DNA片段来检测特定的病原体。
对于弓形虫，可以通过提取样本中的DNA，然后进行PCR扩增，最终检测出是否存在弓形虫的DNA。
这种方法的优势在于其高度的特异性和敏感性，可以在较短的时间内得出准确的结果。
此外，还可以通过影像学检查来判断弓形虫的存在。
比如，通过X光、CT、MRI等影像学技术，可以观察到患者体内是否存在弓形虫囊囊或组织囊囊。
这种方法可以直观地展现出弓形虫的存在情况，但需要借助专业的医学影像设备和专业人员进行解读，因此相对来说并不是最简单的方法。
除了上述方法外，还可以通过症状来初步判断是否感染了弓形虫。
弓形虫感染会导致一系列的症状，包括发热、肌肉疼痛、淋巴结肿大等。
但这种方法并不十分可靠，因为这些症状并不具有特异性，可能与其他疾病的症状相似，容易造成误诊。
综上所述，判断弓形虫最简单的方法之一是通过血清学检测，其次是PCR技术和影像学检查，最后是通过症状来初步判断。
在实际应用中，可以根据具体情况选择合适的方法来判断弓形虫的存在，以便及时进行治疗和预防。
希望这些信息能够帮助大家更好地了解和判断弓形虫感染。
中国动物保健2019.09弓形虫导致动物发烧、呼吸受阻、食欲下降等一系列临床症状，严重影响动物生长性能的寄生虫病。
弓形虫病是一种人畜共患病，感染率高，感染严重时半个月内就会出现死亡。
本文主要对弓形虫病的免疫诊断技术进行简述。
1弓形虫病的危害弓形虫寄生在猪的细胞中，可随着血液而流动，到达机体的大脑、肝脏等各个部位，引发各种疾病[1]。
感染弓形虫病的猪一周内的症状和猪瘟十分相似，体温升高，脏器出血，半个月内得不到正确及时的治疗会导致病猪死亡。
对病猪的淋巴结、肝脏以及脾脏进行染色，镜检，均发现了弓形虫。
死亡后的病猪作为新的感染源，其粪便或感染器官被鸟类或其他动物啄食后也会被感染，若不及时处理感染病猪，感染范围越扩越大，情况不容乐观。
孕妇感染弓形虫病会通过胎盘传染给胎儿，降低胎儿的免疫力，引发各种疾病，严重时可导致流产，胎儿畸形，危害极大。
因此，必须加强弓形虫病的诊断技术，并采取措施提前预防弓形虫病的感染。
2弓形虫病的诊断方式目前实验室和临床上使用的弓形虫病的诊断方式有镜检法、动物接种法、影像学诊断法、免疫诊断法和比较先进的基于弓形虫遗传物质的分子生物学诊断法等。
其中，使用最为广泛的属免疫诊断法。
3弓形虫病免疫诊断技术弓形虫病免疫诊断技术主要依靠的是免疫学研究，抗原遇到相应的抗体时发生反应，再经过染色或者其他方式表示弓形虫病的存在[2]。
本文将介绍以下6种弓形虫免疫诊断技术：3.1弓形虫病的染色试验染色试验是诊断弓形虫病的经典方法之一[3]。
染色试验的原理是抗原与血清中的抗体结合，从而破坏弓形虫体表膜结构，使之可以被美蓝染色。
该方法操作简单，不需要借助仪器，结果准确，使用范围较广，缺点是需要活的寄生虫，存在局限性。
3.2免疫结合技术采用免疫结合技术可检测出人和动物血清中循环弓形虫抗原。
用硝酸纤维素纸直接点样检测弓形虫抗原，是一种灵敏的弓形虫抗原检测方法。
从实验感染弓形虫RH 株的小鼠和家兔中采集血清样本，从感染第2天开始收集的小鼠血清和感染后2周和3周的家兔血清中检测到循环弓形虫抗原。
判断弓形虫最简单方法弓形虫是一种寄生虫，可以引起弓形虫病。
弓形虫病是一种由弓形虫寄生在人体内引起的疾病，可能导致严重的健康问题，尤其是对于孕妇和免疫系统较弱的人群。
因此，及早判断是否感染了弓形虫对于预防和治疗弓形虫病至关重要。
那么，如何判断是否感染了弓形虫呢？下面将介绍几种最简单的方法。
首先，最直接的方法是进行血清学检测。
通过检测血清中的抗体水平，可以判断是否曾经感染过弓形虫。
这种方法的优势在于准确性较高，可以较为准确地判断是否感染了弓形虫。
但是，这种方法需要到医院或者专业机构进行检测，需要一定的时间和费用。
其次，可以通过检测环境中的弓形虫囊来判断是否感染了弓形虫。
弓形虫囊是弓形虫的一种传播形式，可以存在于土壤、水源、生鲜蔬果等环境中。
通过对环境样品进行检测，可以初步判断是否存在弓形虫的传播途径。
这种方法的优势在于简单易行，可以在家中或者周围环境进行初步检测，但是结果可能不够准确，需要进一步确诊。
另外，对于孕妇和免疫系统较弱的人群，可以通过定期进行医学检查来判断是否感染了弓形虫。
医生可以根据个体情况，选择合适的检测方法，如血清学检测、影像学检查等，及时发现并处理潜在的弓形虫感染问题。
最后，预防弓形虫感染同样重要。
在日常生活中，应注意饮食卫生，避免生吃或未熟食品，特别是生肉、生蔬果等食物。
定期洗手，避免接触可能受污染的土壤、水源等环境。
对于孕妇来说，更要注意接触宠物、花园土壤等可能受到弓形虫污染的环境。
总之，及早判断弓形虫感染对于预防和治疗弓形虫病是非常重要的。
通过血清学检测、环境样品检测、定期医学检查等方法，可以及时发现弓形虫感染的迹象。
同时，加强预防意识，注意日常生活中的饮食卫生和个人卫生，可以有效降低弓形虫感染的风险。
希望大家能够重视弓形虫感染问题，保护自己和家人的健康。
治疗弓形虫病需要做哪些化验检查是由刚地弓形虫引起的全身性或中枢性神经系统损害和全身播散感染。
临床上轻者有中等度发热、乏力、多个淋巴结肿大、口腔内发疹、轻度脾肿大、血单核细胞(M)增多等;严重者可有多脏器损害，如心肌炎、心包炎、肾病、多发性神经根炎和中枢神经系统病变等。
(1)病原体检查:血、脑脊液、支气管肺泡冲洗液等，用直接染色法和免疫过氧化物酶标记，如发现弓形虫，即可以确诊。
(2)血清免疫学检测:间接放免法、直接凝集法等，可为阳性;弓形虫免疫球蛋白M(IgM)和E(IgE)，在急性感染的第一天就已产生，免疫球蛋白A(IgA)也很快产生，12～15天后免疫球蛋白G(IgG)产生;3～4个月后，IgA、IgM消失，2个月时IgG达高峰，此后可低滴度长期存在。
弓形虫病检查项:1、弓形虫2、免疫球蛋白G(IgG)3、免疫球蛋白A(IgA)4、免疫球蛋白M(IgM)5、免疫球蛋白E(IgE)弓形虫(正常值及其临床意义)【正常值】未找到弓形虫或阴性。
【临床意义】找到弓形虫或阳性，即为弓形虫感染，为患弓形虫病。
免疫球蛋白G(IgG)(正常值及其临床意义)【单位】克/升(g/L)【正常值】单相免疫扩散或免疫比浊法:脐带血7.6～17.0克/升，新生儿7.0～14.8克/升，1～6个月3.0～10.0克/升，6个月～2岁5.0～12.0克/升，6～12岁7.0～15.0克/升，12～16岁7.5～15.5克/升，成人7.6～16.6克/升。
【临床意义】(1)增高:常见于免疫球蛋白G型多发性骨髓瘤、类风湿性关节炎、系统性红斑狼疮、黑热病、慢性肝炎活动期及某些感染性疾病。
(2)降低:常见于肾病综合征、自身免疫性疾病、原发性无丙种球蛋白血症、继发性免疫缺陷及某些肿瘤等。
免疫球蛋白A(IgA)(正常值及其临床意义)【单位】毫克/升(mg/L)【正常值】单相免疫扩散法或免疫比浊法:新生儿0～120毫克/升，1～6个月30～820毫克/升，6个月～2岁140～1080毫克/升，2～6岁230～1900毫克/升，6～12岁290～2700毫克/升，12～16岁500～3000毫克/升，成人710～3350毫克/升。
弓形虫感染小鼠腹水中虫体分泌排泄抗原（E／SA）的免疫印
迹分析
沈继龙;马济宏
【期刊名称】《中国人兽共患病杂志》
【年(卷),期】1993(009)005
【摘要】本文应用ＳＤＳ－聚丙烯酰胺凝胶电泳（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）、免疫印迹以及ＳＰＡ－ＥＬＩＳＡ方法对弓形虫３种可溶性抗原进行了比较分析。
ＷＡ为全虫熔解抗原，Ｅ／ＳＡ采自感染小鼠腹水。
免疫印迹显示Ｅ／ＳＡ被兔ＩｇＧ抗体识别出至少１３条抗原区带，分子量范围为１０８～１２ＫＤａ。
上清液抗原（ＳＡ）所含组分较少。
Ｅ／ＳＡ与ＷＡ具有１００、５８～５１．５、４０、３８、３５、３０、２０及１２ＫＤａ等共同抗原组分。
２７
【总页数】3页(P5-7)
【作者】沈继龙;马济宏
【作者单位】不详;不详
【正文语种】中文
【中图分类】R531.803
【相关文献】
1.牦牛肝片吸虫分泌排泄抗原的生化特性和免疫印迹分析 [J], 徐恒;吴峰;沈斌;刘世贵;张西玉
2.片形吸虫分泌排泄抗原和虫体抗原的分析 [J], 沈涛;何国声;沈永林;顾越星;徐梅
倩
3.细粒棘球蚴原头节虫体和排泄分泌抗原抗体系统检测犬粪抗原的比较研究 [J], 焦伟;柴君杰;等
4.小鼠腹水中弓形虫排泄分泌抗原鼻内免疫小鼠诱导的免疫应答 [J], 刘娟娟;殷国荣;管志玉;石蓉;张宇斌;孟晓丽
5.华支睾吸虫成虫虫体与排泄-分泌物抗原在ELISA检测中的评价 [J], 叶春艳;王峰;吴秀萍;李玉香;杨秀云;于申业;邓洪宽;刘相叶;刘明远
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弓形虫感染鼠血清中弓形虫循环抗原的检测金武官1 李云珠1 俞善昌1 杨惠珍2 钱宗立21 上海第二医科大学附属瑞金医院儿科 上海2000252 上海第二医科大学寄生虫学教研室 上海200025提要 目的:探索弓形虫感染早期诊断方法。
方法:用快速EL ISA检测弓形虫感染鼠血清中弓形虫循环抗原。
结果:在轻、中、重3个感染组,分别于感染后d4、d4及d3检测到弓形虫循环抗原。
结论:感染虫体数量越多则弓形虫循环抗原测出时间越早,OD值亦越高。
检测弓形虫循环抗原具有早期诊断价值。
关键词 弓形虫 循环抗原 鼠血清 弓形虫病缺乏典型的临床症状,诊断主要靠实验室检查。
1975年前,其诊断主要用血清学检测抗体的方法,但往往难以区分早期急性感染和慢性感染。
在有些情况下,如患先天性弓形虫病的新生儿,弓形虫感染并伴有严重免疫抑制的患者,就不能根据抗体的检测作出诊断。
R aiz m an等(1975)首次在实验感染弓形虫的兔和鼠血清中测到弓形虫循环抗原,证实具有早期诊断价值而引起关注。
V an Knap en[1]和A rau j o等[2]用EL ISA检测急性弓形虫病患者,进一步发现人血清中弓形虫循环抗原的存在。
B rook s[3]对检测到的弓形虫循环抗原作定量研究,用do t2EL ISA测定血清中循环抗原,灵敏度达40-130p g m l。
我国弓形虫病研究起步较晚,仅少数单位开展了弓形虫循环抗原的研究。
本文用快速EL ISA检测实验感染弓形虫小鼠血清中的弓形虫循环抗原,以期为临床早期诊断弓形虫病提供有效方法。
材料与方法鼠抗弓形虫循环抗原的制备 实验分为轻、中、重3个感染组,每组小鼠20只,每只小鼠腹腔接种RH株弓形虫速殖子依次为1×104、1×106及1×108个,另30只正常小鼠平行对照。
各感染组接种弓形虫后分别于24、48、72、96、120及144h采集外周血,离心后取血清,-20℃保存。
每次取5只正常小鼠外周血作对照。
兔抗弓形虫IgG的制备 按多点免疫法人工感染家兔,获高价血清后,用L KB层析柱D E252提取弓形虫IgG(效价1∶40000)。
兔抗弓形虫酶结合物的制备 参照郭春祥方法[4]进行。
快速EL ISA 参照A rau j o法加以改进。
分别取兔抗弓形虫80、40、20、10、5Λg m l作为包被抗体,取兔抗弓形虫IgG酶结合物,以1∶200、1∶800、1∶1600、1∶3200浓度作棋盘滴定,加底物后分别于37℃或室温下放置5、10、15、20m in 作比较,确定的EL ISA最适条件:抗体包被浓度为20Λg m l,结合物浓度为1∶400,室温下15m in中止反应,血清样本用PB S稀释,以1∶10稀释度加样。
操作步骤为:抗体包被后置冰箱过夜,PB S冲洗后,每孔加50Λl样本后即加入50Λl酶结合物,于37℃孵育1h,冲洗后加底物于室温下放置15 m in,用硫酸中止反应,在酶标仪上读数。
结果判读:待测样本OD值 阴性样本OD值(P N)>211判为阳性。
结 果实验结果显示,轻感染组小鼠于感染后96h,有1只小鼠血清弓形虫抗原阳性(1 5),120h有2只阳性(2 5),144h有2只阳性(2 3)。
中感染组于感染后96h,有2只阳性(2 5),120h有5只阳性(5 5),144h有2只阳性,余均死亡。
重感染组于感染后96h,有5只阳性(5 5),120h后小鼠全部死亡。
正常对照组全部阴性(表1)。
讨 论本文用EL ISA法检测RH株弓形虫速殖子感染小鼠血清,检测到弓形虫循环抗原。
检测结果表明:轻、中、重不同感染组,感染的虫数越多则循环抗原测出的时间越早,OD值亦越高。
观察发现感染鼠于d3出现竖毛及不活泼等症状,轻感染组与中感染组d4症状加重,d6全部死亡;重感染组d5全部死亡。
循环抗原测出的时间及浓度梯度与小鼠急性发病时间及症状轻重相平行,表明检测血清中弓形虫循环抗原具有反映宿主急性感染期的价值。
不同弓形虫株感染鼠血清,弓形虫循环抗原出现的・711・Ch inese Jou rnal of Parasito logy and Parasitic D iseases表1 EL ISA 检测感染弓形虫速殖子后不同时间小鼠血清中循环抗原结果Table 1 Results of EL ISA detecti ng c irculati ng an tigen i n sera fro m m ice i nfected with Toxop lasm a组别Group感染后不同时间血清OD 值 M ean of OD values of hour after infecti on24h 48h 72h 96h 120h 144h 轻感染组L igh t infecti on01243(0 5)301269(0 5)01280(0 5)01328(1 5)01408(2 5)01477(2 3)中感染组M oderate infecti on01211(0 5)01236(0 5)01254(0 5)01394(2 5)01530(5 5)01557(2 2)重感染组H eavy infecti on01166(0 5)01226(0 5)01371(1 5)01531(5 5)--正常鼠N o rm al contro l01219(0 5)01235(0 5)01206(0 5)01221(0 5)01225(0 5)01270(0 5)3阳性鼠数 检测鼠数 N o.m ice po sitive N o.m ice exam ined时间早晚不同。
L ee YH [5]等研究表明,RH 株感染后弓形虫循环抗原出现较早,于感染后d 2即可测出。
而B everley 株感染后弓形虫循环抗原出现较晚,于感染后d 10测出。
弓形虫循环抗原在血清中的消长有一定规律。
郭小华等[6]观察到,在实验动物中6417%在感染后d 1血清中测出弓形虫循环抗原,在d 10-13达到高峰,d 60-90消失。
进一步证实了弓形虫循环抗原出现在感染的早期。
A cebes 等[7]分别检测弓形虫抗体Ig M 、IgG 、弓形虫循环抗原(CA )、免疫复合物(I C ),以区分急性和慢性弓形虫病。
结果,在高抗体滴度Ig M 组可以100%测到CA 和I C ,在亚急性和慢性感染组,IgG 占优势为100%。
结果显示,CA 是急性弓形虫病的一个主要标志。
参 考 文 献1 V an Knapen F.D etecti on of circulating antigen during acuteinfecti ons w ith T ox op lam sa g ond ii by enzym e 2linkedi m m uno so rbent assay .J C lin M icrobi o l 1977;6∶5452 A rauj o FG ,R em ington JS .A ntignem ia in recently acquiredacute toxop las mo sis .J Infect D is 1980;141∶1443 B rook s R G ,Sharm a SD ,R em ington JS .D etecti on ofT ox op las m a g ond ii .J C lin M icrobi o l 1985;21∶1134 郭春祥,郭锡琼.介绍一种简单、快速、高效的辣根过氧化物酶标记抗体的过碘酸钠法.上海免疫学杂志1983;3∶975 L ee YH ,K in KY ,Kang M S .D etecti on of T ox op las m a antigensand antibodies in m ice infected w ith different strains ofT ox op las m a g ond ii .Ko rean J Parasito l 1995;33∶2016 郭小华,陈观今,徐秉锟,等.弓形虫感染的循环抗原检测的研究.中国寄生虫学和寄生虫病杂志1991;9∶1787 A cebes M V ,D iez B ,M artin M T ,et al .Sero logical param etersfo r the diagno sis and fo llow 2up of toxop las mo sis .Experi m ental models .Enferm Infect M icrobi o l C lin 1994M ar;12(3)∶141-1451998年12月4日收稿 1999年3月10日修回(编辑:庄兆农)D ETECT ON OF C IRCULAT ING ANT IGEN IN SERA FROM M I CE INFECTED W ITH TOXO PLASM A TACH YZO ITESJ I N W uguan 1,L I Yunzhu 1,YU Shancang 1,YAN G H u izhen 2,Q I AN Zongli21 D ep art m ent of p ed iatric M ed icine ,R u ij in H osp ital ,S hang hai S econd M ed ical U niversity ,S hang hai 2000252 D ep art m ent of P arasitology ,S hang hai S econd M ed ical U niversity ,S hang hai 200025ABSTRACTA I M :To exp lo re an assay m ethod fo r the early diagno sis of T ox op las m a infecti on .M ETHOD S :Serum sam p les co llected from th ree group s of m ice infected exp eri m en tally w ith differen t do ses ofT ox op las m a trop hoz oites w ere detected fo r the p resence of T ox op las m a circu la ting an tigen by u sing fastEL ISA .RESUL TS :T ox op las m a circu lating an tigen w as detected on days 4,4and 3after infecti on in ligh t ,m oderate and heavy infecti on group s ,resp ectively .CONCL USI ON :T he level of circu lating an tigen w as in p arallel w ith the du rati on of infecti on .T he determ inati on of circu lating an tigen is u sefu l in the early diagno sis of T ox op las m a infecti on .Key words :T ox op las m a g ond ii ,circu lating an tigen ,m ou se serum・811・。
