免疫组化实验
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免疫组化实验报告范文一、实验名称。
免疫组化(Immunohistochemistry)实验。
二、实验目的。
1. 学习和掌握免疫组化的基本原理和实验操作流程。
2. 通过免疫组化染色方法,检测组织切片中的特定蛋白表达情况。
三、实验原理。
免疫组化是利用抗原与抗体特异性结合的原理,通过化学反应使标记抗体的显色剂(荧光素、酶、金属离子、同位素)显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质),对其进行定位、定性及相对定量的研究。
简单来说,就像是给我们想要找的蛋白分子安上一个“小标签”,这个“小标签”还能发出信号让我们看到,这样就能知道这种蛋白在组织里到底在哪里,多还是少啦。
四、实验材料。
1. 组织样本:[具体组织名称]的石蜡切片。
2. 试剂。
一抗(针对目标蛋白的特异性抗体)。
二抗(与一抗特异性结合,并且带有标记物的抗体,这里我们用的是[标记物类型,比如辣根过氧化物酶标记])。
DAB显色剂(辣根过氧化物酶的底物,能在酶的催化下产生棕色沉淀,这样就能显示出目标蛋白的位置啦)。
抗原修复液(用于暴露被石蜡包埋过程中可能被掩盖的抗原表位)。
封闭液(防止非特异性结合,一般是用血清)。
PBS缓冲液(用于清洗切片,就像给切片洗个澡,把不需要的东西冲走)。
3. 仪器设备。
光学显微镜。
恒温箱。
移液器。
五、实验步骤。
# (一)石蜡切片脱蜡至水。
1. 把石蜡切片放到二甲苯Ⅰ中浸泡10分钟,这时候切片就像是在“泡澡”,二甲苯就像强力清洁剂,把石蜡都溶解掉。
然后再放到二甲苯Ⅱ中浸泡10分钟,确保石蜡去得干干净净。
2. 经过二甲苯的洗礼后,切片再依次放入100%乙醇、95%乙醇、80%乙醇、70%乙醇中各浸泡5分钟,就像从高浓度的酒慢慢过渡到低浓度的酒里,最后再用蒸馏水冲洗,这个过程就像是给切片逐渐“解酒”,让它慢慢适应水环境。
# (二)抗原修复。
1. 将切片放入盛有抗原修复液的容器中,放到微波炉里加热。
这个过程可有点像给蛋白分子做“按摩”,让那些被石蜡藏起来的抗原位点暴露出来。
免疫组化实验报告免疫组化实验报告免疫组化实验是一种常用于生物医学研究领域的技术,它通过利用抗体与特定抗原的结合来检测和定位细胞或组织中的特定蛋白质。
本次实验旨在探究免疫组化实验的原理、步骤以及在疾病诊断和治疗中的应用。
一、实验原理免疫组化实验基于免疫学的原理,即利用机体免疫系统产生的抗体与特定抗原结合的特异性。
在实验中,首先需要制备特定抗原的抗体,通常通过免疫动物(如小鼠)注射抗原,使其产生特异性抗体。
然后,将这些抗体与待检测的细胞或组织样本进行反应,通过标记抗体的方法来检测和定位特定蛋白质。
二、实验步骤1. 细胞或组织的固定和切片:首先,将待检测的细胞或组织样本固定在载玻片上,常用的固定剂有甲醛、乙醛等。
然后,将固定的样本进行切片处理,通常使用微型切片机或手工切片刀进行切片。
2. 抗体的制备和标记:制备特定抗原的抗体是实验的关键步骤之一。
通常,将抗原注射到小鼠等免疫动物体内,使其产生特异性抗体。
然后,从免疫动物的血清中提取抗体。
为了方便检测和定位,可以将这些抗体标记上荧光染料或酶等物质。
3. 抗体与样本的反应:将标记好的抗体与待检测的细胞或组织样本进行反应,使抗体与特定蛋白质结合。
这一步通常需要在适当的温度和时间条件下进行,以确保反应的充分和特异性。
4. 反应产物的可视化:根据抗体标记的方式不同,可采用不同的方法来可视化反应产物。
如果是标记了荧光染料的抗体,可以使用荧光显微镜观察样本;如果是标记了酶的抗体,可以使用底物与酶的反应产生颜色变化,再通过显微镜观察。
三、实验应用免疫组化实验在疾病诊断和治疗中具有广泛的应用价值。
例如,在肿瘤学中,通过检测肿瘤标志物的表达情况,可以帮助医生确定肿瘤的类型、分级和预后。
此外,免疫组化实验还可用于研究疾病的发生机制、筛选新的治疗靶点以及评估药物疗效。
在临床诊断中,免疫组化实验也发挥着重要的作用。
例如,通过检测心肌标志物的表达情况,可以帮助医生判断心肌梗死的程度和范围。
免疫组化实验结果分析免疫组化实验是一种常用的检测方法,用于检测组织或细胞中特定蛋白质的表达情况。
通过使用特异性抗体与待检测蛋白质结合,再通过染色或荧光技术来观察和分析结果。
本文将对免疫组化实验结果进行详细的分析和解读。
1. 实验方法本实验采用了免疫组化染色法来检测特定蛋白质的表达情况。
其中,我们选择了抗体A作为主要的检测抗体,用于对待测样本中目标蛋白质进行特异性结合。
同时,我们还使用了辅助抗体B,用于与抗体A结合并提供染色或荧光信号。
2. 样本来源本实验使用的样本来自于XXX组织/细胞,这是一个重要的背景信息。
样本的来源可能对结果的解读产生一定的影响,因此需要在结果分析时进行综合考虑。
3. 实验结果分析3.1 强阳性表达强阳性表达表示目标蛋白质在待测组织/细胞中高度表达。
在免疫组化染色结果中,强阳性表达通常呈现出深色的染色信号或明亮的荧光信号。
强阳性表达可能具有以下几个意义:3.1.1 与生理功能相关某些蛋白质的强阳性表达可能与特定的生理功能相关。
例如,在肿瘤标记物的检测中,强阳性表达可能意味着该蛋白质与肿瘤发生发展密切相关。
3.1.2 指示疾病状态在疾病的诊断中,某些蛋白质的强阳性表达可能成为判断疾病的重要指标。
例如,在乳腺癌的诊断中,HER2/neu蛋白的强阳性表达是肿瘤治疗策略选择的重要依据。
3.2 弱阳性表达弱阳性表达表示目标蛋白质在待测组织/细胞中低度表达。
在免疫组化染色结果中,弱阳性表达通常呈现出浅色的染色信号或弱荧光信号。
3.2.1 可能存在变异弱阳性表达可能意味着目标蛋白质表达量较低,但仍存在。
这可能与样本来源、疾病进展阶段或其他因素相关。
3.2.2 值得进一步研究虽然弱阳性表达表明目标蛋白质的表达水平较低,但仍值得进一步研究其在特定生理或病理过程中的作用和意义。
4. 阴性表达阴性表达表示目标蛋白质在待测组织/细胞中未被检测到。
在免疫组化染色结果中,阴性表达通常呈现出无染色信号或荧光信号。
免疫组化实验结果分析免疫组化实验是一种常用的生物学实验方法,用于检测细胞或组织中特定蛋白质的表达情况。
通过特定的抗体与目标蛋白质结合的方式,可以在光学显微镜下观察到颜色反应,从而得出关于该蛋白质表达水平的结论。
本文将对免疫组化实验结果进行详细分析。
一、实验结果描述在分析免疫组化实验结果之前,首先需要对实验结果进行描述。
描述应该包括实验样本的来源、处理方法、实验抗体及其稀释倍数、染色方式以及显微镜下观察到的颜色和形态特征等信息。
例如,可以描述实验使用的抗体是针对肿瘤标志物CA125的,样本来源于人体卵巢癌组织,实验过程中使用了免疫组化染色试剂盒,并观察到染色结果具有明显的细胞膜表达。
二、结果分析1. 强阳性表达:强阳性表达意味着目标蛋白质在细胞或组织中高水平表达。
在显微镜下观察到明亮的染色,通常是在细胞膜、细胞质或核内。
这种结果表明目标蛋白质与相关疾病或生物学过程密切相关,可以作为潜在的治疗靶点或疾病诊断标记物。
2. 弱阳性表达:弱阳性表达意味着目标蛋白质在细胞或组织中低水平表达。
在显微镜下观察到的染色较为淡色,并且通常在少数细胞中出现。
这种结果可以表示目标蛋白质在特定细胞类型或条件下的表达受到抑制,或者表达水平较低对于疾病进展的影响较小。
3. 阴性表达:阴性表达意味着目标蛋白质在细胞或组织中未被检测到。
在显微镜下观察不到明显的染色。
这种结果可能表明目标蛋白质在该细胞类型或该疾病中不表达,或者实验方法存在技术问题导致无法检测到目标蛋白质。
4. 零值控制:在免疫组化实验中,通常会设置阴性对照或零值对照来验证实验结果的准确性。
零值控制是指阴性对照样本在实验中未出现任何染色反应。
这一结果证明实验方法的特异性良好,不会对非特异性信号产生干扰。
三、结果解释对实验结果进行解释是免疫组化实验结果分析的重要环节。
在解释时,需要结合实验目的、已有的相关研究和临床实际进行综合考虑。
根据实验结果的阳性或阴性表达情况,可以推测目标蛋白质在疾病发生发展中的作用以及其潜在的临床应用前景。
免疫组化实验结果分析免疫组化是一种常用的实验技术,它可以通过使用特定的抗体来检测和定位生物样本中的特定分子或细胞结构。
通过对实验结果的分析,我们可以获得关于细胞或组织中目标分子表达的定量或定性信息,从而深入了解生物样本的免疫状态、疾病特征以及分子信号通路等。
一、实验设计和步骤回顾在进行免疫组化实验结果分析之前,我们需要回顾实验的设计和步骤。
通常,一个免疫组化实验包括以下几个主要步骤:1)样本制备:包括样本收集、固定和切片等处理;2)抗原去脱:去除组织或细胞中的内源酶和抗原,在此过程中通常使用蛋白酶和其他处理方法;3)抗体染色:使用特异性抗体靶向检测目标分子,一般为荧光标记或酶标记的抗体;4)显色和图像捕获:对染色后的组织或细胞进行显色反应,并获取显微镜图像;5)结果分析:对图像进行定量或定性分析,并进行统计学处理。
二、结果分析方法1. 定性结果分析定性结果分析旨在确定目标分子在样本中的表达情况。
通过对显微镜图像的观察,可以判断目标分子是否存在于组织或细胞中。
对于荧光标记的抗体染色,我们可以观察到标签的荧光信号,并确定是否与目标结构共定位。
对于酶标记的抗体染色,可以通过显色反应产生的颜色变化来判断目标分子的存在与否。
同时,对照组和阴性对照的结果也是定性分析中的重要参考。
2. 定量结果分析定量结果分析可以进一步测量目标分子在组织或细胞中的表达水平。
对于荧光染色,可以利用荧光定量仪或图像处理软件测量荧光强度来定量目标分子的相对表达水平。
对于酶标记的染色,可以通过显色反应产生的色素强度来进行定量测量。
在定量结果分析时,我们需要考虑设置适当的对照组,确保数据的可靠性。
三、结果解读和讨论在对免疫组化实验结果进行分析之后,我们需要对结果进行解读和讨论。
在解读结果时,我们需要考虑样本制备是否符合要求,抗体染色的特异性是否良好,显色和图像捕获的质量等因素。
同时,我们还需要将结果与相关文献进行对照,探讨实验结果与已有知识的一致性和差异性,并提出可能的解释。
免疫组化实验步骤免疫组化是一种常用的实验技术,用于检测蛋白质的存在和定位。
其步骤包括样本制备、抗原去原、阻断试验、一次抗体处理、二次抗体处理、显色和镜检。
下面将详细介绍每个步骤:1.样本制备:收集需要检测的样本,可以是细胞、组织或体液。
样本收集后,需要进行固定和切片处理,以保持细胞和组织结构的完整性。
2.抗原去原:蛋白质在组织中可能会被结构和其他因素影响,使其在免疫组化实验中难以被检测到。
因此,需要进行抗原去原处理。
常用的方法有热处理、酸碱处理、酶解处理等。
3.阻断试验:细胞和组织常常会存在非特异性结合位点,会使得后续的免疫反应变得模糊不清。
为了减少这种非特异性结合,需要进行阻断试验。
常用的阻断试验方法有牛血清白蛋白(BSA)、动物血清等。
4.一次抗体处理:在一次抗体处理步骤中,需要准备与目标蛋白质特异性结合的一次抗体。
将制备好的一次抗体加入样本中,使其与目标蛋白质发生反应,并形成抗原抗体复合物。
5.二次抗体处理:一次抗体只能与抗原结合,无法提供光学信号。
因此需要加入与一次抗体结合的二次抗体,该二次抗体与荧光物质或酶偶联,可以提供可视化信号。
常见的二次抗体有HRP(辣根过氧化物酶)、荧光染料等。
6.显色:通过加入合适的显色底物,可以使得与二次抗体结合的酶产生可见的颜色反应。
常用的显色底物有DAB(3,3'-二氨基联苯),其在酶的作用下会产生棕色的显色产物。
7.镜检:最后一步是使用光学显微镜对样本进行观察和分析。
通过镜检可以确定抗原存在的位置和分布情况,并对结果进行定量分析。
总结:免疫组化是一种确定蛋白质存在和分布的重要实验技术。
通过以上步骤的顺序操作,可以获得可靠的结果。
实验人员需要熟悉每个步骤的操作方法,并根据实验样本的要求进行调整和优化,以获得准确和可重复的结果。
免疫组化实验结果分析免疫组化实验是一种常用的免疫学技术,通过特定的抗体与标记物之间的特异性结合,可以对样本中特定抗原的定位和分析进行定性和定量研究。
本文将对免疫组化实验结果进行详细分析,以期为科学家和研究人员提供参考和指导。
1. 实验结果概述免疫组化实验主要通过荧光染色或酶标染色的方式来呈现结果。
通常,结果会呈现为显微镜下的图像,显示出特定抗原在组织或细胞中的定位和分布情况。
2. 定性分析通过观察免疫组化实验的结果图像,可以对特定抗原在样本中的存在与否进行定性分析。
当目标抗原与抗体结合后,会出现染色反应,通常为荧光或酶标信号的显现。
如果结果图像中有明显的染色信号,则说明目标抗原存在于样本中。
反之,如果没有染色信号,则说明目标抗原可能不存在或浓度较低。
3. 定量分析在一些情况下,科学家需要对免疫组化实验的结果进行定量分析。
这可以通过计算染色信号的强度或数量来实现。
一种常用的定量方法是使用图像分析软件,对染色信号的强度进行测量。
通过对多个图像进行分析和比较,可以得出目标抗原在不同组织或细胞中的表达量差异,从而进一步探究其生物学功能和疾病相关性。
4. 结果解读和讨论在免疫组化实验结果分析的最后,需要对结果进行解读和讨论。
首先,需要分析目标抗原在样本中的定位和分布情况。
例如,抗原可能位于细胞核、细胞质或细胞膜上。
其次,可以比较不同样本中的抗原表达差异,如正常组织与肿瘤组织之间的差异。
最后,可以将免疫组化实验结果与其他实验结果进行比对,以验证免疫组化实验结果的有效性和可靠性。
5. 结论免疫组化实验结果的分析对于研究特定抗原的功能与表达具有重要意义。
通过定性和定量分析,可以获得关于目标抗原在组织或细胞中的分布、表达量及变化的有用信息。
然而,需要注意的是,免疫组化实验结果的分析应结合其他实验结果和相关文献进行综合解读,以确保结果的准确性和可靠性。
总而言之,免疫组化实验结果的详细分析可以提供有关目标抗原的定位、定量和变化的重要线索。
免疫组化实验报告一、实验目的本实验的主要目的是了解免疫组化技术的基本原理、方法和应用。
并在实验中掌握标本制备、抗体与抗原的反应、染色等技术。
通过本次实验,还可以深入了解体内各种细胞和组织中存在的不同蛋白质的分布、表达和定位情况,对于发现疾病发生机制、诊断疾病以及分子生物学和细胞生物学研究方向的选定等都有着重要的启示和指导意义。
二、实验原理免疫组化是一种基于抗原抗体反应的化学染色技术,该技术主要通过标记特定的抗体,标记可以是荧光、放射性或酶等,再与被检测的抗原结合,形成物质团,以便对其在组织切片或细胞中的分布、表达和定位情况进行观察和研究。
其原理如下:1.抗原抗体反应抗体是一种高度特异性的蛋白质,它通过与与其特异性结合的抗原组成免疫复合物来介导免疫反应,具有非常高的结合亲和力。
2.荧光标记技术荧光标记技术是免疫组织化学中常用的标记技术之一,其主要特点是具有快速、高度敏感和高特异性等优点,目前广泛应用于免疫荧光显微镜的检测中。
三、实验材料与方法1.材料(1)黏片刀(2)盛装杯(3)离心机(4)玻璃切片(5)氯仿(6)牛血清白蛋白(7)丙酮(8)PBS(9)荧光标记的二抗(10)DAPI(11)溶解铁(12)抗体2.方法(1)标本制备将含有细胞和组织的标本制成薄片,经过常规组织学和细胞学处理,制成玻璃切片。
然后,将其离心获取细胞和组织,摆放在混合溶液中振荡。
将抗体稀释至适宜浓度,与标本混合,进行PFA定制,随后进行冷却缓存,制备成样品。
将标本与荧光二抗混合,适当搅拌,使其充分反应。
然后,在暗室中进行荧光显微镜检测,观察标本发出的光强。
DAPI可添加至样品中,使得核糖体更容易用眼观察。
四、实验结果通过本次实验得到的结果如下。
制作标本时,需要仔细阅读操作手册,遵循严格的操作步骤,操作清洁、细致、稳定。
制作好的标本应该是样品清晰、明亮、无噪点的。
提取到的抗原抗体在能够有效反应的基础上,需要尽可能的达到最佳的配比,以充分发挥其效果。
免疫组化实验结果分析免疫组化实验是一种常用于检测细胞或组织中特定蛋白质表达的方法,通过特异性抗体与目标蛋白质结合,并通过染色反应来显示该蛋白质的位置和表达水平。
免疫组化实验可以提供关于细胞功能、病理状态以及疾病预后的重要信息。
本文将分析免疫组化实验的结果,探讨其中的数据和意义。
1. 实验设计免疫组化实验的可靠性和准确性受实验设计的影响。
在进行实验时,应考虑以下因素:合适的抗体选择、适当的试样处理和固定、充足的阳性和阴性对照以及恰当的染色方法。
实验设计的合理性对于准确解读实验结果至关重要。
2. 观察结果观察免疫组化实验结果时,需要关注以下几方面内容:2.1. 细胞定位根据实验的目标,观察目标蛋白质的定位情况。
目标蛋白质的定位可出现在胞质、核或细胞膜等位置。
定位的结果有助于了解目标蛋白质在细胞内的功能和调控机制。
2.2. 过程表达和相对强度通过免疫组化实验可以对目标蛋白质的表达水平进行初步评估。
观察染色结果的颜色强度,并与阳性和阴性对照进行比较,可以初步了解目标蛋白质的相对表达水平。
2.3. 阳性细胞/组织的百分比在观察免疫组化实验结果时,通常会评估阳性细胞/组织的百分比。
例如,在肿瘤样本中,阳性细胞的百分比可以反映肿瘤中目标蛋白质的表达水平。
3. 数据分析对于免疫组化实验结果的数据分析,可以采用以下方法:3.1. 图像分析软件利用图像分析软件对染色图像进行处理和分析,可以提高数据的准确性和可靠性。
图像分析软件可以从定量和定性方面评估目标蛋白质的表达水平,并产生可视化的统计结果。
3.2. 数据统计与图表展示对实验结果进行统计学分析,如计算平均表达水平、标准差和显著性差异等。
将结果用表格或图表形式展示,可以更直观地了解实验数据的分布和变化趋势。
3.3. 结果解读与比较将实验结果与基准值、对照组或其他相关实验进行比较,进一步解读结果中的意义。
通过比较不同样本之间的差异,可以揭示目标蛋白质在生理和病理过程中的作用和变化。
免疫组化实验方法免疫组化(Immunohistochemistry,简称IHC)是一种利用特异性抗体与组织或细胞特定抗原结合的方法,以此可以检测细胞或组织中蛋白质的表达和分布情况。
IHC技术已广泛应用于病理学、癌症诊断、生物医学研究等领域。
以下是免疫组化实验的常用方法:1.样本处理:通常以石蜡包埋切片作为实验样本。
首先,从固定的组织或细胞中取得标本,然后进行脱水、透明化和浸蜡等处理。
接下来,使用切片机将组织或细胞切割成厚度为3-5μm的切片。
2.抗原恢复:由于样本的固定和包埋可能导致抗原的损伤,因此需要对切片进行抗原恢复处理。
常见的抗原恢复方法包括热处理、酶解法和酸性水解法。
热处理是将切片置于缓冲液中,在高温下进行退火。
酶解法是使用胰蛋白酶等酶对切片进行消化。
酸性水解法则使用盐酸或酶进行酸性处理。
3.抗体结合:选择特异性的一抗体与目标抗原结合。
一抗体可以是单克隆抗体或多克隆抗体,可以经商业采购或自家制备。
将一抗体加入待检测切片上,让其与目标抗原结合。
4. 第二抗体结合:待检测切片上结合了一抗体的抗原后,需要添加第二抗体与一抗体结合。
第二抗体通常是反相应物免疫球蛋白(Secondary Antibody),如反人IgG,反兔IgG等。
第二抗体上常会标记有发光物质、酶标记物或荧光染料,用于可视化结果。
5.可视化和显色:根据选择的第二抗体,可以选择显色方法。
例如,辣根过氧化物酶(HRP)结合的第二抗体可以使用3,3'-二氨基联苯思(DAB)作为底物,呈棕色或棕黄色;荧光标记的第二抗体可以用荧光显微镜进行观察。
6.伪染色:为了辅助观察和识别目标组织或细胞,可以进行伪染色。
常见的伪染色方法有对比染色、核染色和细胞质染色等。
7.阴性对照和阳性对照:为了确保实验结果的准确性和可靠性,同时进行阴性对照和阳性对照实验。
阴性对照是在实验中将第一抗体替换为非特异性抗体或缺少抗体的处理组织或细胞组织;阳性对照是在实验中使用已知表达目标蛋白的组织或细胞进行处理。
免疫组化实验
实验原理:应用免疫学基本原理——抗原抗体反应,即抗原与抗体特异性结合的原理,通过化学反应使酶标记的抗体与显色剂进行显色反应,生成有色的不溶性产物,来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质),对其进行定位、定性及相对定量。
实验目的:通过染色结果强弱,对所研究蛋白在组织水平的表达进行判断比较。
(干净的背景会使结果判断的更加准确)。
在实验室实验时遇到的难题:染色强度不够,背景较深,染色对比不够明显。
实验效果不好的可能原因:一抗效果不够好,脱蜡水化后有机溶剂冲洗的不够干净,抗原修复的程度不够,二抗效果不够好,DAB染色时间过久。
修改后的protocol:
1.烘片:IHC白片,60度或70度烘箱,烘片40min。
2.脱蜡:二甲苯分别浸泡两次,10min/次。
(脱蜡时间可以适当延长,不需严格遵守10min
时间,脱蜡脱得越干净越好)
3.水化:依次放入100%酒精,95%酒精,80%酒精,各2min。
4.自来水冲洗:水化后在自来水流水下冲洗。
(水流不能太急,务必将有机溶剂完全冲洗
干净,否则会影响后续实验效果)
5.抗原修复:将片子浸没在抗原修复液中,高压锅20min,高温修复。
**实验室中可用小电饭锅或者微波炉替代,若在微波炉中操作,要保证液体在咕噜噜冒泡煮沸状态下煮20min,不然可能抗原修复力度不够。
**关于抗原修复液的选择:选用酸性柠檬酸缓冲液或碱性EDTA,最好根据抗体购买时说明书上推荐使用的缓冲液。
6.冷却:浸泡在修复液中冷却,时间充裕可放在室温下慢慢冷却;也可直接在室温冷却
10min后,用自来水流水冲洗冷却,但不可直接在自来水下冲洗冷却。
7.封闭:3% H2O2中浸泡10min,去除内源性的过氧化氢酶。
8.冲洗:清水冲洗,PBST清洗两次,摇床上3min/次。
(摇床可以清洗的更干净)
9.封闭:封闭液(3% FBS或3% BSA或10%山羊血清)室温下封闭1h。
10.冲洗:PBST清洗三次,摇床上3min/次。
11.抗体孵育:一抗,按照稀释比稀释,37度烘箱湿盒中孵育1h(最好不要超过1h,不
然背景会很强),PBST摇床清洗3次,3min/次。
二抗,按照稀释比稀释,37度烘箱湿盒中孵育30min。
PBST摇床清洗3次,3min/次。
(如果可以,买抗体稀释液,成分更稳定)
12.显色:1XDAB显色,仔细观察,棕色显现后立马用自来水终止反应。
(若第一次显色强
度不够,可以再次显色)
13.苏木精复染:苏木精染色1min,自来水冲洗,显微镜下观察,若不够可重复苏木精染
色。
(苏木精没染好可以将苏木精洗去,再染,清洗配方没记得,后续再补充)
14.脱水:依次放入80%酒精,95%酒精,100%酒精,各2min。
15.封片:60度烘箱中烘干片子,中性树脂封片,完全晾干后,显微镜下观察,拍照。
注意点:
➢本实验室所用切片一般是石蜡切片。
➢烘片:使蜡片水分蒸发,石蜡软化,组织切片牢固贴在玻片上;烘片至跟烘片前透明度有差异。
➢抗原修复时,使片子始终浸没在修复液中,液体不能干。
➢一抗孵育在37度培养箱,湿盒放置1h,省时间和结合效果好,不要超过1h,容易过染。
➢二抗使用:两个二抗放大信号或一个二抗;若抗体信号强,可不用放大信号,尽量增大信噪比。
➢10XDAB在常温溶解,尽可能现用现配,放于4度储存时间久了效果不佳。
➢复水和脱水时所用的梯度酒精不可混用,要区分开。
➢加抗体和显色液时,都要将片子甩干,在半干半湿的状态下再加,不然容易造成溶液的二次稀释。
➢整个操作过程中在显色之前,一定不能干片。
试剂配制:
3% H2O2:用甲醇或ddH2O稀释。
抗原修复液:1xPBS稀释配置。
1xPBST:1xPBS中1:1000加入吐温。
1xDAB:10xDAB室温溶解,PBS稀释成1XDAB,1:1000加入30% H2O2。