番茄miRNA的茎环qRT-PCR方法验证
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miRNA研究方法miRNA主要研究技术深度测序抽提分离小分子(例如18-30nt)RNA,通过RT-PCR扩增之后,利用solexa深度测序,并进行生物信息学分析,获得miRNA表达谱。
深度测序结合生物信息学分析手段,可以对海量数据进行分析,分别统计出已知的miRNA(miRNA-known)、新的miRNA(miRNA-new)以及可能的新miRNA(mi RNA-cadidate new),并对新发现的miRNA进行靶基因分析,功能预测等。
通过深度测序的方法,可以发现新的miRNA,为进一步的深入研究奠定基础。
miRNA芯片利用miRNA芯片(例如Agilent miRNA芯片),可以高通量分析miRNA表达的时空特异性、不同样本(例如癌组织和癌旁组织)中miRNA的差异表达,进而进行把基因分析,功能注释、通路分析,网络分析等,以了解miRNA在疾病发生中的作用。
与深度测序不同,miRNA芯片针对已知miRN A进行研究。
筛选到的差异miRNA可以利用q-pCR进行验证。
q-PCR q-PCR技术可以用来检测miRNA以及其靶mRNA和相关mRNA等的检测,主要方法有茎环法和加尾法等。
前者针对特定miRNA设计引物,特异性好,然而成本较高,周期长;后者采用通用引物,时间短,通量较大。
(欧易生物为您提供以上项目的优质服务,详情请关注:)Mimics以及Antogomirs 通常基因功能研究常常采用过表达或干涉(抑制、敲除)等方法,miRNA 研究也不例外。
通过导入化学合成的小分子miRNA mimics或拮抗miRNA 的antagomir,观察靶mRNA 及编码蛋白表达以及细胞、动物水平的表型变化,进行信号通路研究,是目前miRNA功能研究的常用方法。
萤光素酶报告系统在确定了靶mRNA之后,找到位于3ˊ-UTR区的miRNA结合位点是研究者下一步关心的内容。
通过生物信息学分析获得候选的miRNA结合区域,将野生型和结合位点突变的3ˊ-UTR序列克隆入商品化的萤光素酶报告载体(例如pMIR-REPORT? miRNA Expression Reporter Vector系统),通过观察miRNA对发光强度的影响对结合位点加以验证。
第1篇一、实验目的本实验旨在通过基因工程技术,将外源基因导入番茄植株,实现特定性状的表达,并研究转基因番茄的生长发育、生理特性和抗病性等方面的变化。
二、实验材料1. 番茄植株:品种为“中蔬5号”。
2. 外源基因:目的基因(如抗病基因、抗虫基因等)。
3. 载体:pGEM-T载体。
4. 工具酶:限制性内切酶、DNA连接酶等。
5. 试剂:植物细胞培养试剂、抗生素等。
三、实验方法1. 目的基因的克隆(1)设计引物,针对目的基因进行PCR扩增。
(2)将PCR产物与pGEM-T载体连接,转化大肠杆菌感受态细胞。
(3)挑选阳性克隆,进行测序鉴定。
2. 番茄植株的转化(1)将目的基因与载体构建成重组质粒。
(2)采用农杆菌介导法将重组质粒导入番茄植株。
(3)筛选阳性植株,进行PCR和Southern blot检测。
3. 转基因植株的筛选与鉴定(1)采用PCR和Southern blot方法检测转基因植株。
(2)对转基因植株进行抗性筛选,如抗病、抗虫等。
4. 转基因植株的表型分析(1)观察转基因植株的生长发育、生理特性和抗病性等方面的变化。
(2)对转基因植株进行产量、品质等指标测定。
四、实验结果1. 目的基因的克隆成功克隆了目的基因,并进行了测序鉴定。
2. 番茄植株的转化成功将重组质粒导入番茄植株,获得了转基因植株。
3. 转基因植株的筛选与鉴定通过PCR和Southern blot检测,证实了转基因植株的存在。
4. 转基因植株的表型分析(1)转基因植株的生长发育与对照植株无明显差异。
(2)转基因植株在抗病性、抗虫性等方面表现出显著的优势。
(3)转基因植株的产量和品质与对照植株相当。
五、讨论与分析1. 本实验成功将目的基因导入番茄植株,并获得了转基因植株,为研究转基因番茄的性状表达提供了基础。
2. 转基因植株在抗病性、抗虫性等方面表现出显著的优势,表明基因工程技术在农业生产中具有广泛的应用前景。
3. 实验结果表明,转基因番茄的生长发育、生理特性和抗病性等方面与对照植株相当,说明转基因技术对番茄的性状影响较小。
miRNA常用实验方法一、miRNA的检测方法miRNA的realtime-PCR检测方法1、realtime-PCR引物设计miRNA realtime-PCR引物设计方法:1)stem-loop RT引物设计:基于通用的茎环结构,只需要按照不同的miRNA序列修改最末端6个碱基即可。
通用茎环结构序列为:GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGAC 例如设计miR-1(UGGAAUGUAAAGAAGUAUGUAU)的RT引物,只需在通用茎环序列后架上miRNA3’末端的6个碱基的反向互补序列,即GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGAC ATACAT2)realtime 上游引物设计:miRNA序列除去3’端6个碱基的剩余部分作为上游引物,如miR-1的上游引物为(注意把U改为T):TGGAATGTAAAGAAGT.检查引物的Tm值(一般参考DNAMAN),如果Tm值较低,则在5’端加GC使Tm值接近60度。
因此miR-1的上游引物可设计为:GCGCTGGAATGTAAAGAAGT,61.4度。
3)下游引物是通用的,序列为GTGCAGGGTCCGAGGT。
4)引物设计好后,需要通过预试验检测引物的特异性。
一般需要做溶解曲线来检测引物的特异性;同时最好将PCR产物进行电泳检测产物是否单一(因产物长度很小,需要3%以上的琼脂糖胶)。
2、miRNA反转录miRNA的反转录与一般基因的反转录过程基本相同。
因为其产物很短,用最普通的逆转录酶即可。
我们一般使用的是TIANGEN的MLV,逆转录体系为:RNA 500ng~2ug5xbuffer 2uldNTP 0.25ulDDT 0.25ulRRI 0.25ulMLV 0.25ulRT primer 0.5ulH2O(RNase free) 补至10ul程序为(PCR仪中通常命名为CTFRT)16度,30min;42度,60min;85度,5min;4度,hold。
茎环miRNA qRT-PCR 检测使用说明一.概述microRNA(miRNA)是生物体内未编码的单链小分子RNA,其成熟体主要通过跟mRNA的3’UTR 区域结合,导致mRNA降解或表达抑制来行使其生物学功能。
miRNA 在生物体内主要有三种不同的存在状态:刚在细胞核内转录并加工成的初级状态,Primary-miRNA(Pri-miRNA);Pri-miRNA经过Drosha等酶剪切后形成的约80nt的茎环状结构, Precursor-miRNA(Pre-miRNA);真正行使生物学功能的约22nt的成熟体,Mature-miRNA(我们常简称为miRNA)。
现阶段最特异、最经济的miRNA qPCR检测方法即为采用茎环引物反转录再配合SYBR Green qPCR检测试剂盒来进行,该技术主要两个步骤():(1). 基于茎凸环结构的反转录引物进行特异miRNA的反转录;(2).基于经济的SYBR Green qPCR试剂进行快捷的检测反应。
茎凸环结构的反转录引物能与特异miRNA的3’端结合,在RT酶的作用下开始进行特异行反转录反应, 然后再配合特异的miRNA正向引物及反向通用引物来实现对特异miRNA进行定量检测,其检测原理示意图如图1所示:图1. 茎凸环-SYBR Green qPCR miRNA检测原理示意图二.配套试剂iScript cDNA Synthesis Kit: Cat# 1708890, 1708891 (BIO-RAD)iTaq Universal SYBR Green Supermix :Cat# 1725120, 1725121, 1725122, 1725124 (BIO-RAD) 三.检测流程引物的准备1. 引物融解:收到订购或合成回的miRNA引物实物后,需在离心机上12000 rpm 离心2 min,使其引物粉末完全到达离心管底部,轻柔的打开盖子,按每1nmol引物中加入20ul的灭菌去离子水(如是RT引物,建议用DEPC水进行融解)至50μM,其即为引物使用母液,涡旋震荡混匀后可在-20 ℃长久保存2. 用于RT反应的茎凸环引物使用反应液的配置:在正常情况下,一个RT反应可至少同时进行1-45个茎环引物的反转录,即一次RT可同时反转录该样品中至少1-45个miRNA,从而实现高通量的检测。
microRNA的实时定量茎环RT-PCR技术摘要:已开发出一种新型的microRNA(miRNA)的定量方法,即利用茎环反转录,Taqman PCR 分析。
茎环RT引物在RT 效率和特异性方面比传统的更好。
TaqMan miRNA的检测是很具体的,可以检测成熟miRNA和区分相关的甚至低至一个核苷酸的miRNAs。
此外,他们不会受到基因组DNA污染的影响。
精确量化可以从低至25皮克的总RNA中提取大多数miRNA。
事实上,这种方法灵敏度高,特异性强和精密度高,允许无需核酸纯化,直接分析单个细胞。
如标准TaqMan基因表达分析,TaqMan miRNA的检测显示出了7个数量级的动态范围。
七个小鼠组织中五个miRNA定量显示,在每个细胞中,有低至10到超过30000个拷贝数。
这种方法可以确保快速,准确,灵敏miRNA表达谱,并能识别和监控特定组织或疾病的潜在生物标志物。
茎环RT-PCR可用于其他小RNA分子,如短干扰RNA(siRNAs)的量化。
此外,为更好的特异性和效率,茎环RT引物设计的概念可以应用在小分子RNA 克隆和多重检测。
引言:miRNA是自然发生的,高度保守的转录家庭,来源于较大的发夹前体。
miRNA是在动物和植物的基因组上发现的。
到目前为止,有1000个独特的转录产物,其中,在桑格中心miRNA的注册表中包括326人类miRNA。
miRNA是通过催化mRNA的分裂或抑制mRNA的翻译来调节基因表达。
他们被认为在细胞发育,分化和传导中发挥着重要作用。
具体职责包括调节细胞增殖和新陈代谢,发育时间,细胞死亡,造血,神经发育,人类肿瘤形成与DNA甲基化和染色质修饰。
虽然miRNA的相对丰富的转录产物类别,其表达水平在物种和组织之间相差很大。
低丰度的miRNA经常逃避检测技术,如克隆,Northern杂交和基因芯片分析。
这里,我们提出一种新型实时定量方法,能够准确灵敏地检测miRNA与其他小分子RNA。
microRNA qRT-PCR引物套装是包含了miRNA特异的逆转录引物,以及PCR正反向引物。
通常样本采用U6作为miRNA检测的内参,适用于单个和多个样本不同miRNA的定量分析。
根据目的miRNA设计独特茎环和加poly(A)结构,提供人源、大鼠源以及小鼠源miRNA的逆转录引物及定量PCR 引物,引物具有灵敏度高,可特异地结合miRNA分子并且具有更好的稳定性,检测范围广,能有效地扩增待检测样本。
(1) Stem-loop miRNA qRT-PCR
利用特殊的茎环结构反转引物在SYBR Green荧光染料或TaqMan探针的作用
下检测miRNA。
图1.Stem-loop miRNA qRT-PCR检测试剂的实验流程图。
利用特殊的茎环结构反转引物
在SYBR Green 荧光染料或TaqMan探针的作用下检测miRNA
(2) 加Poly(A)尾miRNA qRT-PCR
在成熟的miRNA的3‘端加poly(A)尾后,通过带通用序列的poly(T)引物反
转延伸,在SYBR Green 荧光染料的作用下PCR检测反转录形成的miRNA。
图2.加Poly(A)尾miRNA qRT-PCR检测试剂盒的实验流程图
在成熟的miRNA的3’端加poly(A)尾后
通过poly(T)引物反转延伸,在SYBR Green荧光染料的作用下PCR检测反转录形成的miRNA
miRNA引物验证
1、反应条件均一,灵敏度高。
2、可检测少量样本中的成熟的miRNA。
3、方便,经济,覆盖面广,重复性好。
4、高特异性和灵敏度确保了结果的可靠性和重复性。
检测miRNA方法
检测miRNA的方法主要有以下几种:
1. Northern blotting(北方印迹法):通过RNA电泳分离和迁移,然后使用探针结合miRNA进行检测。
2. qRT-PCR(实时定量逆转录聚合酶链反应):利用逆转录将miRNA转录为cDNA,然后使用PCR进行定量检测。
3. Microarray技术(芯片技术):将已知的miRNA探针固定在芯片上,通过杂交检测待测miRNA。
4. Next-generation sequencing(下一代测序):利用高通量测序技术,将小RNA转录本进行测序,然后通过比对和统计分析来确定miRNA的存在和表达水平。
5. 免疫细胞化学染色:利用抗体和荧光标记来检测miRNA的表达和定位。
6. 探针法:通过使用与目标miRNA互补的标记探针来检测miRNA。
这些方法各有优缺点,选择合适的方法需根据实验目的、预算、样本量等因素综合考虑。
miRNA qRT-PCR 引物Bulge-Loop™ miRNA qRT-PCR是锐博生物开发的成熟miRNA检测方法,不需荧光探针,只要SYBR Green 即可,具有高灵敏度和特异性的优点。
检测包括两个步骤:(1) 基于茎凸环结构引物的逆转录反应和(2) 实时荧光定量PCR。
茎凸环结构的逆转录引物能与miRNA 3'端部分结合,在逆转录酶的作用下进行逆转录反应,然后特异的正反向引物和SYBR Green荧光染料共同参与的定量PCR反应体系,实现对逆转录产物进行定量检测。
SYBR Green荧光染料共同参与的定量PCR反应体系,实现对逆转录产物进行定量检测。
◇特异性—hsa-let-7家族成员同源性极高(表1),彼此之间仅有单个或数个碱基的差异。
传统检测方法对此无能为力,无法区分各个家族成员。
但Bulge-Loop TM miRNA定量PCR方法采用了具有茎凸环结构的逆转录引物以及高特异的miRNA引物套装,保证了该方法的高度特异性,即使是高度同源的miRNA也能被准确检测。
表1:hsa-let-7家族:红色标示的是与hsa-let-7a不同的碱基图1 Bulge-Loop TM miRNA定量检测has-let-7家族成员的融解曲线针对hsa-let-7家族7个miRNA成员的Bulge-Loop TM miRNA定量PCR结果分析表明,hsa-let-7家族各成员的特异性引物对其他成员的干扰极小,绝大部分均可以区分开来(下表:以7个化学合成的miRNA为模板,归一化处理后的定量检测结果)。
与一般的miRNA检测方法不同,Bulge-Loop TM茎凸环结构引物可以在同一个试管进行1-45个逆转录反应,而不影响检测效果。
Bulge-Loop TM miRNA实时定量PCR具有检测范围广、更快速,更灵敏,更省钱的优点;既能够准确定量低至0.1 pg总RNA中5个拷贝数的miRNA,也能够实现从1µg总RNA中精确定量检测高拷贝数的miRNA,即miRNA的拷贝数在7个数量级的动态变化范围内,均可实现准确定量的目的。
番茄qRT-PCR内参基因的筛选姜静;王银磊;赵丽萍;周蓉;李亚茹;赵统敏;余文贵【期刊名称】《江苏农业学报》【年(卷),期】2017(033)002【摘要】以高温、低温、盐胁迫、TYLCV接种处理和对照的番茄幼苗为植物材料,通过实时荧光定量RT-PCR(Real-time fluorescence quantitative PCR,qRT-PCR)方法分析了常用的8个内参基因肌动蛋白基因(ACT)、甘油醛-3-磷酸脱氢酶基因(GAPDH)、泛素基因(UBI)、18S核糖体RNA基因(18S)、转录延伸因子基因(EF-1a)、β-微管蛋白基因(TUB)、表达蛋白基因(EXP)和接合素蛋白复合物基因(CAC)在不同样本中的表达情况.利用geNorm和NormFinder软件分析筛选表达稳定性较高的内参基因.结果表明,在不同胁迫处理条件下,UBI和ACT的稳定性较高;在同样的胁迫处理中,8个内参基因的表达稳定性不同.综合而言,虽然UBI和ACT的稳定性同样较高,但在TYLCV接种处理试验中ACT的稳定性相对较差,而TUB和GAPDH表达较稳定,故TUB和GAPDH可在TYLCV接种处理试验中作为番茄qRT-PCR的内参基因.【总页数】8页(P389-396)【作者】姜静;王银磊;赵丽萍;周蓉;李亚茹;赵统敏;余文贵【作者单位】南京农业大学园艺学院,江苏南京210095;江苏省农业科学院蔬菜研究所,江苏南京210014;江苏省农业科学院蔬菜研究所,江苏南京210014;江苏省农业科学院蔬菜研究所,江苏南京210014;江苏省农业科学院蔬菜研究所,江苏南京210014;江苏省农业科学院蔬菜研究所,江苏南京210014;江苏省农业科学院蔬菜研究所,江苏南京210014;南京农业大学园艺学院,江苏南京210095;江苏省农业科学院蔬菜研究所,江苏南京210014【正文语种】中文【中图分类】S641.2【相关文献】1.授粉后红球姜雌性生殖器官qRT-PCR的内参基因筛选 [J], 林浩川;钟春梅;孙姝兰2.孟氏隐唇瓢虫qRT-PCR分析中内参基因的筛选 [J], 潘畅;张宇宏;庞虹3.葡萄不同摘心处理下qRT-PCR内参基因的筛选与验证 [J], 赖呈纯; 潘红; 张静; 王琦; 高慧颖; 陈源; 黄贤贵4.TSA诱导橡胶树次生乳管分化过程qRT-PCR内参基因的筛选 [J], 吴绍华; 张世鑫; 杨署光; 田维敏5.橡胶树'热研7-33-97'死皮相关研究的qRT-PCR内参基因筛选 [J], 卢亚莉;张世鑫;杨署光;田维敏;史敏晶因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
【技术】miRNA的茎环法逆转录和qPCR“原理”增加miRNA逆转录产物长度的另一种方法是使用一个非常长的逆转录引物对miRNA进行逆转录。
这个长逆转录引物就被称作“茎环引物”,使用茎环引物获得的逆转录产物可直接用于后续的染料法或探针法荧光定量检测。
“逆转录引物(Stem-loop引物)”整个茎环法逆转录引物由两个部分组成:①通用的茎环结构,自身形成的茎环结构不仅能够有效地延长miRNA的逆转录产物长度,同时它自身互补的构象可以避免与其他同源基因结合,减少了非特异性扩增的几率。
② 5~8个与目的miRNA的3端反向互补的碱基。
茎环结构的逆转录引物与miRNA 分子的3端结合,并在逆转录酶的作用下进行反应,获得人为加长的miRNA 第一链cDNA。
生工生物的茎环法逆转录引物中茎环序列为: GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGA C,只需要按照不同的miRNA序列3端6 nt,将其反向互补添加至上述序列的3端即可完成茎环法逆转录引物的设计。
“qPCR”茎环法的qPCR的反向引物也是相同的(通用引物R),为茎环中的一部分,序列为GTGCAGGGTCCGAGGT 或者ATCCAGTGCAGGGTCCGAGG。
而正向引物则需要根据miRNA的序列进行设计。
设计方法是将miRNA序列除去3’端6个碱基的剩余部分作为上游引物,如果Tm值较低,则在5端加G或C使Tm值接近60℃。
内参U6同样可以按照与miRNA相同的方法进行引物设计。
“特点”茎环法最大的特点是其逆转录和qPCR都是序列特异性的,针对不同的miRNA,具有不同的茎环引物以及正向qPCR引物,从而极大程度地增加了检测的精确性和特异性。
但是另一方面,由于茎环引物的特异性,针对同一样本中不同的目的miRNA,需要配制不同的逆转录体系。
所以这种方法比较适合对样本中少量几个miRNA的精确定量检测。
由于茎环引物与相应miRNA的同源区比较短(一般为5~8个碱基),逆转录效率不高,因此不建议将不同的茎环引物添加到一个体系中进行逆转录,这样可能会造成部分miRNA逆转录不充分从而对qPCR结果造成影响。
番茄环纹斑点病毒(TZSV)实时荧光定量PCR检测方法的建立徐弢;张洁;郑雪;张晓林;陈永对;穆野;陈勇;郑宽瑜;赵立华;刘小烛【摘要】本研究根据番茄环纹斑点病毒(Tomato zonate spot virus, TZSV)保守N基因(GenBank登录号: 13YV639)设计一对特异性引物,通过优化反应条件和反应体系,构建了TZSV的SYBR Green RT-qPCR检测方法.该方法稳定可靠,组内和组间的变异系数都小于2%;标准曲线的斜率和相关系数分别为-3.39和0.996,扩增效率为97.44%;最低能检测到1.07×104 copies/μL的阳性质粒,灵敏度为常规PCR的1 000倍.同时利用构建的RT-qPCR方法检测TSWV、TNSaV、PCSV和TZSV四种病毒,只有TZSV有特异扩增曲线,表明该方法特异性良好.本研究构建的RT-qPCR方法能够为TZSV的早期预警与动态监测提供可靠的技术支撑.%The real-time PCR specific primers were designed according to the coat protein N gene sequence (GenBank accession number 13YV639) of Tomato zonate spot virus (TZSV).By optimizing the reaction conditions and reaction system, the SYBR Green real-time PCR method was established to detect the TZSV.This method was stable and reliable, and the CV between and among groups were both less than 2%.The slope and correlation coefficient of the standard curve were-3.39 and 0.996 respectively, and the amplification efficiency was 97.44%.The po sitive plasmid of 1.07×104 copies/μL could be detected, and the sensitivity was 1 000 times of conventional PCR.When TSWV, TNSaV, PCSV and TZSV were detected by the method, only TZSV had a specific amplification curve, which indicated that the method was specific.This research would provide technical supports for the early warning and dynamic monitoring of TZSV.【期刊名称】《山东农业科学》【年(卷),期】2017(049)007【总页数】6页(P139-144)【关键词】番茄环纹斑点病毒;实时荧光定量PCR;检测方法【作者】徐弢;张洁;郑雪;张晓林;陈永对;穆野;陈勇;郑宽瑜;赵立华;刘小烛【作者单位】西南林业大学生命科学学院,云南昆明 650224;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;西南林业大学生命科学学院,云南昆明 650224;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;西南林业大学生命科学学院,云南昆明650224;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;福建省农业科学院植物保护研究所,福建福州 350003;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;云南省农业科学院生物技术与种质资源研究所/ 云南省农业生物技术重点实验室/农业部西南作物基因资源与种质创制重点实验室,云南昆明 650223;西南林业大学生命科学学院,云南昆明 650224【正文语种】中文【中图分类】S41-30;Q78番茄环纹斑点病毒(Tomato zonate spot virus, TZSV)属于布尼亚科(Bunyaviridae)番茄斑萎病毒属(Tospovirus)。
mirna引物设计茎环法Mirna引物设计茎环法Mirna(microRNA)是一种长度约为22nt的小RNA,它们广泛存在于真核生物中,能够通过与靶基因mRNA结合来调节基因表达。
Mirna在许多生物学过程中发挥着重要作用,如细胞增殖、分化、凋亡和免疫应答等。
因此,对mirna的研究已成为当前生物学研究的热点之一。
Mirna引物设计是mirna研究的重要一环,正确的引物设计能够保证PCR扩增反应的特异性和灵敏度。
本文将介绍一种常用的mirna引物设计方法——茎环法。
一、茎环法原理茎环法是一种基于mirna二级结构的引物设计方法。
Mirna通常具有一个稳定的二级结构,其中包括一个5'端带有7-8个碱基的单链区域(seed区域)和一个3'端带有不稳定碱基序列(尾部序列)。
在这个二级结构中,seed区域与靶mRNA结合,并识别靶mRNA上相应序列进行调控。
在茎环法中,我们利用mirna二级结构中稳定性较高的茎环结构来设计引物。
具体来说,我们需要将mirna序列分为两段,即5'端的seed 区域和3'端的尾部序列。
然后,在这两段序列之间设计一对引物,其中一个引物位于seed区域上,另一个引物位于尾部序列上。
这样设计的引物能够形成一个茎环结构,并且能够扩增出完整的mirna序列。
二、茎环法步骤1. Mirna序列获取首先需要从数据库或文献中获取所需mirna的序列信息。
在选择mirna时,应注意其在研究中的重要性和已有文献报道程度。
2. Mirna二级结构预测使用在线工具或软件预测所选mirna的二级结构,并确认其中稳定的茎环结构。
3. 引物设计将mirna序列分为seed区域和尾部序列,并在这两段序列之间设计一对引物。
其中一个引物应包含seed区域,另一个引物应包含尾部序列。
引物长度通常为18-22nt,GC含量应控制在40%-60%之间。
4. 引物评价对所设计出来的引物进行评价,包括Tm值、特异性、剪切位点等方面。
microRNA 定量PCR检测实验设计●首先特异性检测:最常用的ABI公司的Taqman 探针法,其策略是采用发卡RT引物反转录,随后taqman探针做real-time。
ABI的TaqMan探针法,设计的是颈环引物,针对特定的microRNA,反转后以特定的引物和探针做荧光定量。
反转录引物和荧光定量引物及探针组成一个assay。
大多数研究的位点,都能在ABI网站上找到现成的assay。
TaqMan探针法检测灵敏度高,目前大多数文章中都采用的这种方法。
同时TaqMan探针技术是专利技术,所以相对较贵。
如果资金有限,可以使用SYBR 染料法代替,这方面很多公司都有相应的试剂盒,比如TIANGEN,TaKARA等,国内公司广州锐博或上海吉玛也可以,相对便宜一些。
●其次是非特异性方法,即总RNA加上poly A尾巴,再用poly T的引物做反转,然后用SYBR Green做荧光定量。
代表性的Qiagen方法是首先给miRNA加poly(A)+adapter,然后利用adapter的序列作为反向引物,miRNA本身为正向引物(或者5‘端修饰下)。
然后和普通real-time PCR一样进行就可以了。
这个可以自己设计,adapter就是一段随即引物,末端转移酶等。
具体可以搜下相关资料。
关于microRNA定量PCR的RT引物:●1、Oligo d(T)特异的RT引物QIAGEN产品为主由特异序列Oligo d (T)20左右兼并碱基V或VN组成。
所有miRNA可以公用一个Oligod(T)的RT引物但是RNA在反转录前需要进行末端Poly(A)加尾●2、茎环状结构的RT引物ABI产品为主由可以自身呈环茎状的特异序列6到8个miRNA3’端反向互补碱基组成。
(一条miRNA序列特异对应一个茎环状结构的RT引物1)stem-loop RT引物设计:基于通用的茎环结构,只需要按照不同的miRNA序列修改最末端6个碱基即可。
microRNA检测方法miRNA(MicroRNA)是一类短链非编码RNA分子,通常由21-24个核苷酸组成。
它们在转录后被Drosha和Dicer等内切酶处理,形成成熟的miRNA。
miRNA通过与靶基因的mRNA结合,调控基因表达的下降,从而在细胞的生物学过程中发挥重要作用。
因此,miRNA的检测方法对于研究miRNA的功能和作用机制具有重要意义。
目前,有多种方法可以用来检测miRNA,其中包括实验室技术和计算机模拟方法。
实验室技术主要有定量逆转录聚合酶链反应(qRT-PCR)、北方印迹、原位杂交和测序等。
这些方法都有各自的优势和限制,可以根据研究的目的和需求选择合适的方法。
qRT-PCR是一种常用的miRNA检测方法。
这种方法通过逆转录将miRNA转化为cDNA,然后使用特异性引物进行扩增和定量测量。
qRT-PCR 具有灵敏度高、特异性强和准确性高的特点,可以快速检测和定量miRNA 的表达水平。
此外,由于qRT-PCR可以同时检测多个miRNA,因此可以用于高通量分析。
北方印迹是另一种常用的miRNA检测方法。
它通过将miRNA转移到膜上,然后使用与miRNA互补的探针进行杂交,最后使用化学发光或放射性同位素进行检测。
北方印迹具有高度特异性和准确性,可以检测低水平的miRNA。
然而,这种方法的操作复杂,需要较长的时间和高成本,且不能进行定量分析。
原位杂交是一种通过与miRNA互补的探针进行杂交来检测miRNA的方法。
该方法将miRNA直接定位在细胞或组织的位置,从而可以研究miRNA的空间表达模式。
原位杂交具有高分辨率和高空间特异性的特点,可以用于观察miRNA在发育和疾病过程中的动态变化。
测序是一种较新的miRNA检测方法,它通过高通量测序技术对miRNA 进行定量和高效检测。
该方法可以检测整个miRNA组的表达水平,并且可以发现新的miRNA序列和剪接变异。
测序技术的发展使得对miRNA的全面研究成为可能,但也存在一些挑战,如测序误差和数据处理的复杂性。
番茄种子RNA提取及快速检测qRT-PCR模板纯度的方法优化杨荣超;章月琴;丰锋;丁小明;齐飞【期刊名称】《种子》【年(卷),期】2016(35)5【摘要】番茄种子内富含多糖、贮藏蛋白、脂肪,同时还含有酚、酮等多种次生代谢物质,给提取高质量的RNA进行基因表达相关研究带来了的困难.本研究通过优化北京华越洋生物科技有限公司RNA提取试剂盒的操作流程,获得大量完整的RNA,并通过设计跨越内参基因(EF1α)内含子的引物鉴定DNA的污染.结果表明,以水和RNA为模板没有扩增出片段,以种子DNA为模板扩增出包含内含子的441 bp DNA片段,以cDNA为模板扩增出363 bp的DNA片段,这说明cDNA没有被DNA污染.利用这种策略分析了种子萌发过程中2个基因的表达水平,基因表达结果证明了这是一种快速、有效的方法.另外,这种策略为植物转录组学的相关研究提供了参考方法.【总页数】5页(P27-30,35)【作者】杨荣超;章月琴;丰锋;丁小明;齐飞【作者单位】广东海洋大学农学院,广东湛江524088;广东海洋大学农学院,广东湛江524088;广东海洋大学农学院,广东湛江524088;农业部规划设计研究院设施农业研究所,北京100026;农业部规划设计研究院设施农业研究所,北京100026【正文语种】中文【中图分类】S641.2【相关文献】1.浅谈甘州区外繁杂交番茄种子提高纯度的技术措施 [J], 石作雄2.qRT-PCR快速检测汉滩病毒抗体中和活性实验方法的建立 [J], 张晓晓;刘蓉蓉;张亮;叶伟;张芳琳;徐志凯;吴兴安;张尧;冯伟;程林峰;王芳;应旗康;马瑞雪;马铁军;刘梓谕3.金棚1号番茄种子纯度检测的SCAR标记 [J], 王飞;姚明华;巩振辉;李晓东4.丙肝病毒RNA提取方法优化研究 [J], 刘学敏;陈丽茹;马冬雪;杜娟琳;侯冬冬;5.意大利蜜蜂大龄幼虫总RNA提取方法优化 [J],因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
番茄果实中一种快速验证microRNAs的方法
马远征;刘海平;左进华;傅达奇;迟丽红;朱本忠
【期刊名称】《北方园艺》
【年(卷),期】2011(000)012
【摘要】以番茄果实为材料,采用颈环引物的方法对番茄果实中的miRNA159和miRNA168进行反转录,并对得到的目的片段进行扩增,通过琼脂糖凝胶电泳观察得到相应大小的目的片段.对miRNA159所得大小正确的片段进行测序,验证所得片段为正确的目的片段.这种低成本的miRNA检测方法简单、实用,适用于生物信息预测及深度测序得到的低拷贝的新miRNA的快速验证.
【总页数】3页(P93-95)
【作者】马远征;刘海平;左进华;傅达奇;迟丽红;朱本忠
【作者单位】中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京,100083;中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京,100083;中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京,100083;中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京,100083;中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京,100083;中国农业大学食品科学与营养工程学院,北京,100083
【正文语种】中文
【中图分类】S641.2
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