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微生物标本采集送检及处理原则一、标本采集1.采集时机：采集标本应在疾病出现初期进行，避免开始使用抗生素治疗前采集。
2.采集部位选择：根据病情选择合适的部位进行采集，一般可根据症状、疾病类型和临床表现进行判断。
3.采集方法：采集标本时应采取无菌手法，使用无菌采样器材，避免污染和交叉感染。
4.标本储存条件：采集后的标本应立即送往实验室进行检测，若无法及时送达实验室，则应储存在合适的条件下，避免细菌的生长和繁殖。
二、标本送检1.标注采集信息：标本送检前应在标本瓶或容器上标注病人信息、采集时间和采集部位等必要的信息，确保标本的准确性和唯一性。
2.冷藏和运输：对于易变质的标本，如粪便、尿液等，应冷藏并尽早送达实验室；对于其他标本，应采取适当的保存和运输方式，避免温度过高或过低，影响细菌的生存和检测结果的准确性。
三、标本处理1.标本处理前的准备：在对标本进行处理前，必须进行准备工作，如标记标本编号、记录标本类型、检查标本的一致性和完整性等。
2.标本处理方法：根据标本类型的不同，采取相应的处理方法，如深部标本(如脑脊液、关节液等)应优先进行细菌涂片、培养等方法，浅部标本(如咽拭子、鼻拭子等)可直接进行细菌培养。
3.标本处理的时间：不同类型的标本处理时间有所不同，但一般应尽快进行处理，避免细菌在标本中的生长和污染。
四、标本保存1.标本封存：处理完的标本应在标本瓶或容器上进行标注，并进行封存，避免污染和交叉感染。
2.标本保存时间：保存标本的时间应根据实验室的需求和标本的特性来确定，如对于一些常见的标本，如尿液、粪便等，一般保存时间较短，而对于其他一些特殊标本，如组织标本等，可保存更长时间。
总之，微生物标本采集送检及处理原则的正确遵守可以确保实验结果的准确性和可靠性，为疾病的诊断和治疗提供有力的支持。
同时，医务人员在进行标本采集和处理过程中应加强无菌操作和个人防护，有效避免交叉感染的发生，保障自身和他人的健康安全。
微生物检验标本采集和运送原则微生物检验标本采集和运送原则正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性，同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
下面是店铺为大家带来的关于微生物检验标本采集和运送原则的知识，欢迎阅读。
采样时机抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样采样方法采集无菌部位的标本应严格无菌操作，非无菌部位尽量减少正常菌群的污染，采样量足。
采样容器专用的无菌，防渗漏，有盖，无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检尽快送检，一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存，但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前，或停药3至5天后采集标本，如不能停用抗菌药物，应于下次抗菌药物应用前采集。
应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位，并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作，将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本，且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。
容器须灭菌处理，防止渗漏，但不得使用消毒剂。
标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检，最好在2h内。
如不能及时送检，应将标本置于适当的储存环境待送，但不超过24小时。
对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15～30分钟内送检，防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本，应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息，在检验申请单上填写足够的有关临床资料。
(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。
1．目的规范检验科的微生物检测。
2．适用范围适用于检验科的微生物空气监测。
3．操作步骤3.1 检验科实验室空气培养监测3.1.1采样及检查原则采样后必须尽快对样品进行相应指标的检测，送检时间不得超过6h。
若样品保存0—4℃条件时，送检时间不得超过24h。
3.1.2. 采样时间检验科各室空气培养在每月下旬，选择消毒处理后与进行医疗活动之前期间采样。
3.1.3 采样高度与地面垂直高度80—150cm。
3.1.4 布点方法室内面积≤30m3，设一条对角线上取3点，既中心一点、两端各距墙1m处各取一点：室内面积＞30m3，设东、西、南、北、中5点，其中东、西、南、北点均距墙1m。
3.1.5 采样方法用9cm直径普通营养琼脂平板在采样点暴露5min后送检培养。
盖上盖子，并填写好检验单，送细菌室培养。
3.2 48h后，观察结果。
各个实验室空气培养要求在：≤4CFU／m3。
监测时间:根据不同的特殊重点部门,每1～3个月监测一次.当发生医院感染流行,高度怀疑或确定与空气,物体表面,医务人员手的污染有关时,可随时进行监测.4．处理根据培养结果，对检验科的消毒灭菌效果进行总结，采取积极的应对措施，使检验科的微生物监测符合要求。
1．目的规范检验科的微生物检测。
2．适用范围适用于检验科的微生物物表监测。
3．操作步骤3.1 检验科实验室物表培养监测3.1.1 物体表面采样方法3.1采样时间检验科各室空气培养在每月下旬，选择消毒处理后4h内进行采样。
3.3采样方法①采样面积被采表面＜100cm2，取全部表面：被采表面≥100cm2，取100cm2。
用5×5cm2的标准灭菌规格板，放在被检物体表面，用浸有无菌生理盐水采样液的棉拭纸1支，在规格板内横竖往返各涂抹5次，并随之转动棉拭纸，连续采样1—4个规格板面积，剪去手接触部分，将棉拭纸放入装10ml采样液的试管中送检。
门把手等小型物体则采用棉拭纸直接涂抹物体的方法采样。
医院环境微生物检测
一、监测项目：
1、空气、物体表面、医务人员手；
2、透析用水、透析液出口、入口监测；
3、使用中的灭菌剂
反渗水、入口水的细菌学监测每月一次，且每台机器在1年里至少监测到1次；内毒素监测每月1次，且每台机器在1年里至少监测到1次。
二、采样及检查原则：
采样后必须尽快对样品进行相应指标的检测，送检时间不得超过6h，若样品保存于0~4℃条件时，送检时间不得超24h。
A1、空气采样及检查方法：
采样时间：选择消毒处理后与进行医疗活动之间期间采样；
采样高度：与地面垂直高度80~150cm；
布点方法：室内面积<30m2，设一条对角线上取3点，即中心一点，两端各距墙1m处各取一点；室内面积>30m2，设东、西、南、北、中五点，其个点均距墙1m。
采样方法：用9cm直径普通营养琼脂平板在采样点暴露5min后送检培养。
A2、物体表面采样及检查方法：
采样时间：选择消毒处理后4h进行采样；
采样面积：采样表面<100cm2，取全部表面，采样表面>100cm2，取100cm2；
采样方法：压印采样法：采样时将直径5.6cm（面积约25cm2）的消毒塑料专用平皿上的琼脂表面之间压贴在被检物体表面10~20秒后送检。
A3、使用中消毒剂
采样时间：采取更换前使用的消毒剂；
采样量及方法：在无菌条件下，用无菌吸管吸取1ml 被检样液，加入9ml稀释后中混匀后送检。
微生物检验流程及操作标准全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：微生物检验是一种重要的实验室技术，用于检测食品、水质、环境等样品中的微生物存在情况。
微生物检验需要严格遵守一系列操作标准和流程，以确保检验结果的准确性和可靠性。
下面我们将介绍一下微生物检验的流程及操作标准。
一、样品采集1. 样品的采集需要采用无菌工具，并保持样品在采集过程中不受到外界环境的污染。
2. 样品的采集过程应尽量避免接触到任何可能引入外源微生物的物质，比如皮肤、空气等。
3. 采集的样品应标明正确的标识信息，包括样品名称、采集地点、采集日期等。
二、样品处理1. 样品收到实验室后，需要尽快进行处理，避免样品内的微生物增殖或死亡。
2. 样品处理过程需要保持在无菌条件下进行，使用无菌工具进行操作。
3. 样品处理过程中需要按照检验要求进行适当的稀释，以确保实验得出准确的结果。
三、培养基准备1. 培养基的制备需要按照标准的配方和步骤进行，以确保培养基的质量符合要求。
2. 制备培养基时需要严格遵守无菌操作规范，避免细菌、真菌等外源微生物的污染。
3. 制备好的培养基需要在适当的条件下保存，确保培养基的稳定性和有效性。
四、接种操作1. 在进行微生物检验之前，需要准备好无菌的接种环、移液器等工具。
2. 采取适当的方法将处理好的样品接种到培养基上，避免接种时引入外源微生物。
3. 接种操作需要在无菌条件下进行，避免培养物受到任何污染。
五、培养与观察1. 接种后的培养基需要置于适当的温度和湿度条件下进行培养，促使样品中的微生物生长。
2. 定期观察培养基上的生长情况，记录生长的数量和形态，用于后续的分析和鉴定。
3. 在观察过程中需要注意反复进行无菌操作，避免细菌、真菌等外源微生物的污染。
六、鉴定与结果解读1. 当样品中的微生物生长到一定程度时，需要进行鉴定和分析，确定其种属和数量。
2. 鉴定过程需要参考相关的鉴定手册和标准，进行适当的试验和测试。
3. 根据鉴定结果进行结果解读，判断样品中微生物的种类和数量是否符合标准要求。
一、我院微生物标本的采集和运送基本原则1．发现医院感染应及时采集微生物标本作病原学检查，我院总的医院微生物标本送检率应不低于70％。
2．尽量在抗菌药物使用前采集标本。
3．标本采集时应严格执行无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其他杂菌污染。
4．标本采集后立即送至实验室，床旁接种可提高病原菌检出率。
5．以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子等，应标明标本种类，并立即送检。
6．盛标本容器须经灭菌处理，但不得使用消毒剂。
中段尿培养的标本应用专用的无菌尿标留取（在仓库领取）。
静脉导管、胸腹水，脑脊液等到细菌室取无菌试管留取。
7．送检标本应注明来源和检验目的，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境，必要时应注明选用何种抗菌药物。
二、常见医院微生物标本采集送检方法1．血液与骨髓①通常采血部位为肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜。
切忌在静脉点滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
②采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养基前，应更换针头或过火消毒针头。
血培养瓶应在避光室温中保存，不必置冰箱保存。
③每次采血量成人5一10ml，婴幼儿l一5ml，培养基与血液之比以10：1-5：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
④怀疑菌血症应尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机。
对已用抗菌药物而又不能停药者，可在下次用药前采血。
⑤每例病人至少采血两次，间隔0.5-lh，以利于提高阳性率和区分感染菌与皮肤污染菌。
多次多部位采血可提高阳性率。
⑥对疑为细菌性骨髓炎或伤寒病人，在病灶部位或髂前(后)上棘处严格消毒后抽取骨髓lml 作增菌培养。
2．尿液①中段尿：女性采样前应先用肥皂水或0．1％高锰酸钾溶液冲洗外阴部及尿道口；男性须翻转包皮冲洗，用0.1％新洁尔灭消毒尿道口．灭菌纱布擦干后收集标本10ml，0.5小时内送检。
②导尿管导尿采样可减少污染。
对留置导尿者，可用碘酒消毒尿道口处的导尿管壁，用空针细针头斜穿管壁抽吸尿液。
微生物采样的基本原则
微生物采样的基本原则主要包括以下几点：
1. 采样前要进行充分的准备工作，包括了解采样区域的环境特点、采样目的和方法、采样时机等。
对于不同的微生物类型和采样对象，需要使用不同的采样工具和方法。
2. 采样应尽量避免污染和破坏样品。
要使用无菌的采样器具，并在采集样品前进行必要的消毒处理。
同时，要注意采样过程中不要碰触其他非目标微生物。
3. 采样时要选择合适的采样点和采样面积。
采样点应代表采样区域的整体特征，采样面积应足够大，以保证样本的代表性。
同时，要避免采样点太过接近可能存在疫源的地方，以免造成交叉污染。
4. 采样过程要注意采集足够的样本量。
样品数量有限可能导致结果的偏差，因此要根据实际需要采集足够的样本量。
5. 采样后要妥善保存样品，并及时进行运送。
保存时要避免温度过高或过低、阳光直射等不利条件，以防样品的变质和微生物的活性丧失。
运输时要注意防止震动和撞击，避免样品破损或泄漏。
6. 采样后要进行详细记录，包括采样地点、日期、采样方法、采样前后的环境条件等，以供后续分析和研究参考。
总的来说，微生物采样的基本原则是准确、可靠、代表性和规范性，需要根据具体情况选择适当的采样方法和工具，严格控制污染和破坏，确保采样过程和样品保存的科学性和可靠性。
微生物标本采集操作规程基本原则1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查，三级医院微生物标本送检率不应低于60%。
2.尽量在抗菌药物使用之前采集标本。
3.标本采集时应严格无菌操作，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染。
4.标本采集后应立即送至细菌室。
床旁接种可提高病原菌检出率。
5.以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭或伤口拭子，宜插入运送培养基送检。
6.送检标本应注明姓名、床号、标本来源、检验目的和标本采集具体时间，使细菌室能准确及时接种相应的培养基和适宜的培养环境，提高阳性检出率。
一、血液与骨髓的送检方法1.一般原则:在出现临床症状后应尽快抽血样作培养，最好在发热初期、高热或寒战时，原则上应选择在抗菌药物应用之前，对已应用药物而病情不允许停药的患者应在下一次用药前采血。
2.采血部位：肘静脉。
疑似细菌性心内膜炎时，以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本。
3.采血最佳时间与频率：急性败血症应在治疗前24小时内抽血3次或者更多次，并在不同部位，如左右手臂或颈部，分别做厌氧、需氧培养以及内毒素、降钙素原检测；急性心内膜炎在治疗前1-2小时内分别在3个不同部位抽血样；怀疑伤寒病人，在病程第1-2周内采静脉血液；肺炎链球菌在寒战、高热或者休克时；布鲁杆菌感染除在发热期采血，还要多次采血，一般是24小时抽3-4次；分枝杆菌感染早期采血样阳性率高。
怀疑菌血症因尽早采血，体温上升阶段采血可提高阳性率，但要防止因等待而延误时机，对已用抗菌药物而不能停药者，可在下次用药前采血。
对疑为伤寒病人，在第1-3周内采集骨髓是最佳时间，在病灶或髂前（后）上棘处严格消毒后抽取骨髓1ml 作细菌培养。
4.采血部位的局部皮肤应严格消毒。
将采集的血液注入血培养瓶前，认真识别相应颜色的瓶，并仔细检查培养瓶有无变色或混浊。
过火消毒针头，血培养瓶撕掉塑料盖后，瓶口不是无菌部位必须消毒。
消毒不能用碘酒消毒而是75%酒精消毒。
56医药健闻微生物检验标本的正确采集方法及注意事项刘洋 （河南京城皮肤中医院，河南郑州 450000）常见的微生物检验标本包括以下几种类型：血、骨髓、静脉导管标本，痰及下呼吸道标本，尿液标本，大便标本，生殖道系统标本，眼、耳、鼻、咽拭子标本。
血、骨髓、静脉导管标本正确采集方法：（1）先用75%酒精对静脉穿刺部位擦拭消毒30 s 以上，用一根碘棉签从穿刺点向外1.5~2 cm 的直径范围内再次消毒60 s 。
（2）使用75%酒精对血培养瓶和橡皮塞子消毒60 s 。
在血液注入血培养瓶前，先用无菌纱布或者棉签将橡皮塞子表面的残余酒精清除干净。
（3）在穿刺前或穿刺期间，佩戴乳胶手套将静脉进行固定，防止滑动，但是不可接触穿刺点；使用注射器无菌穿刺取血后，可直接注入血培养瓶中；在血标本进入到培养瓶后，轻轻颠倒混匀并立即送检，以免血液凝固。
（4）成人的采血量是8~10 ml ，儿童的采血量是1~3 ml ，骨髓采血量是1~2 ml 。
注意事项：（1）静脉采血的部位通常为肘静脉，不建议从动脉采血。
患者疑是细菌性心内膜炎时，可以选择肘动脉或者股动脉采血，勿要在静脉滴注抗菌药物时进行采血。
（2）使用注射器无菌穿刺取血后勿换针头，直接注入血培养瓶。
如果需要进行第二次穿刺，需要更换针头。
（3）多次采血时，应在不同部位的血管穿刺，以排除皮肤菌丛污染的可能。
除非无法从静脉穿刺处取血，否则不能从静脉植入管内取血。
（4）若是从静脉植入管内取血，应该同时自外周静脉采集血液进行培养，以协助判读血培养阳性结果，同时在申请单上注明标本类型。
（5）采血前，应该将患者信息、采血时间、部位、采血量写在标签上，并贴在培养瓶上。
（6）有血的培养瓶若不能立即送检，可放室温保存，切不可放入冰箱。
痰及下呼吸道标本正确采集方法：（1）能够自行取痰的患者，在清晨起床后未进食前，先用漱口水漱口，去除口腔细菌，再用清水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，放置于无菌集痰器中并盖好瓶盖；无法咳痰或者不合作的患者，需要帮助其采取卧位，由上而下叩击背部，并戴好无菌手套，将无菌集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰器，按吸痰法将痰吸入无菌集痰器内，并盖好瓶盖，收集好后立即送检。
医院微生物室采样及检查原则
采样后必须尽快对样品进行相应指标的检测：送检时间不得超过6h，若样品保存于0—4℃条件时。
送检时间不得超过24h。
3.1、空气采样及检查方法
3.1.1、采样时间
选择消毒处理后与进行医疗活动之前期间采样。
3.1.2、采祥高度
与地面垂直高度80—150cm。
3.1.3、布点方法
室内面积≤30M2，设一条对角线上取3点，即中心一点、两端各距墙lm处各取一点；室内面积>30m2，设东、西、南、北、中5点，其中东、西、南、北点均距墙1m。
3.1.4、采样方法
用9cm直径普通营养琼脂平板在采样点暴露5min后立即送检培养。
3.1.5、结果计算
空气细菌菌落总数(cfu／m3)＝50000N AT
式中：A一平板面积。
cm2：
T一平板暴露时间，min
N一平均菌落数，cfu／平皿。
3.2、物体表面采样及检查方法。
