实验一 种子活力测定
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种子活力测定试验
2.测定方法 将200粒种子置于老化盒内的支架网上 铺平，箱内加水，水面距支架6～8㎝， 然后加盖密封，置于规定温度（40～ 50℃）的恒温箱内，经48～72h处理。期 间，恒温箱也保持密闭。老化处理结束 后将种子风干进行标准发芽试验，将长 成正常幼苗的种子作为高活力种子。
种子浸出液电导率测定
材料：玉米、大豆 用具：天平、电导仪、烧杯、量筒、无离子水、温 度计等 测定方法： 取试样两份各50粒种子，称重至小数两位。然后 放入烧杯内，用量筒向各烧杯加入250ml无离子 水，另一烧杯加无离子水为对照，于20℃浸泡 24h，然Biblioteka 用电导仪测定浸出液的电导率。•
四、结果
计算各种活力测定结果，评定不同种子批 的活力差异。
实验二
一、目的和要求
种子活力测定
1.练习种子活力测定的主要方法，掌握其测 定原理 2.进一步明确种子活力的概念及其生产实际 意义
二、材料和用具 1.材料：玉米、大豆 2.用具：老化箱、电导仪等、 三、方法步骤
逆境试验测定
（一）加速老化试验 •材料：玉米、大豆. 用具：天平、老化箱、老化盒、发芽 设备等
种子活力测定方法
种子活力测定方法种子活力测定方法是种子品质评价的重要手段之一，其目的是评估种子的发芽力和萌发势。
种子活力与种子内蕴水分、呼吸能力、抗逆性等因素密切相关，是衡量种子质量的重要指标之一。
下面将介绍几种常用的种子活力测定方法。
1. 发芽力测定法发芽力是衡量种子活力的重要指标之一，一般指种子萌发成苗的能力。
发芽力测定是判断种子品质的主要方法之一。
其步骤如下：首先，准备一定数量的种子样品，待测种子数量应根据需要而定，但一般不少于100粒；然后，将种子样品放入适合发芽的培养介质中，如培养皿、培养箱等；接下来，将培养介质放置在适宜的温度条件下，通常在25 - 30之间；观察并记录下种子的发芽情况，一般记录发芽数、发芽率等参数；最后，根据发芽数和发芽率来判断种子的活力水平。
2. 胚乳酸测定法胚乳酸测定法是测定种子活力的一种间接方法。
其原理是在种子老化过程中，胚乳中的淀粉被分解产生酸，通过测定胚乳酸含量来评估种子的活力。
具体步骤如下：首先，准备一定数量的种子样品，通常取100粒；然后，将种子样品粉碎，并用适量的水浸泡片刻，使胚乳酸完全溶解；接下来，取一定体积的溶液，加入胚乳酸试剂；然后，用菲仪或pH计测定胚乳酸的浓度；最后，根据胚乳酸浓度来评估种子的活力水平，通常胚乳酸浓度愈高，表示种子活力愈低。
3. 电导率测定法电导率测定法是一种评估种子活力的简单、快速的方法。
其原理是测定种子浸泡液中的电导率，通过判断电导率的高低来评估种子的活力。
具体步骤如下：首先，取适量的种子样品，用一定体积的水浸泡一段时间，通常为4小时；然后，用电导计测定浸泡液中的电导率；最后，根据电导率高低来判断种子的活力水平，电导率愈高，表示种子活力愈低。
4. 呼吸强度测定法呼吸强度测定法是一种评估种子活力的方法，其原理是通过测定种子的呼吸强度来评估种子的活力。
具体步骤如下：首先，取一定数量的种子样品，并进行表面消毒处理；然后，将种子样品放入呼吸仪中，并测定呼吸强度；最后，根据呼吸强度来评估种子的活力水平，呼吸强度愈高，表示种子活力愈强。
实验一-种子活力测定
高级植物生理实验报告种子生理农学院农药学东保柱20132020542013年12月27日种子活力种子活力即种子的健壮度，是种子发芽和出苗率、幼苗生长的潜势、植株抗逆能力和生产潜力的总和，是种子品质的重要指标。
长期以来都用发芽试验检验种子的质量，生产实践表明，实验室的发芽率与田间的出苗率之间往往存在很大差距。
由于种子活力是一项综合性指标，因此靠单一活力测定指标判定其总活力水平或健壮度是不科学的。
实验 1 种子活力的测定种子发芽率、发芽势和发芽指数的测定（垂直板发芽法）一 原理种子在适宜的水分、氧气、温度条件下经一段时间可以萌发。
在最适宜条件和规定天数内，发芽的种子数与供试的种子的百分比，叫发芽率。
为了表示萌发速度与整齐度，反映种子活力程度，规定在短时间内能正常萌发的种子数叫发芽率（测定发芽与发芽天数可参看下述的《种子发芽试验的技术规定》）。
发芽数与发芽相应天数之比的和叫发芽指数。
二 材料与设备1 材料 ：小麦种子。
2 设备：玻璃板 滤纸或湿沙 恒温箱 镊子3 药品： 1%次氯酸钠（NaClO ） 三 实验步骤1 选取完整健壮的种子10-15粒，三个重复，用1%次氯酸钠消毒0.5—1min,将种子均匀地排列在有滤纸的培养皿中，种子之间留有一定距离，加入适量蒸馏水，放于所需温度条件下萌发。
2 每天定时记录发芽粒数。
根据附表《种子发芽试验的技术规定》计算种子的发芽势、发芽率和发芽指数。
3 计算正常发芽的种子数 1、发芽率（%）= ×100供试种子数 2、发芽指数(∑=Dt GtGi )式中：Gi —发芽指数Gt ——在时间t 日发芽日数 Dt ——相应的发芽日数四 注意事项1 对于1—2天内全部萌发的迅速发芽类型种子，不适用上述公式计算，宜采用简化活力指数（见实验21）。
2 种子发芽试验的技术规定（附表）实验2 种子活力指数的测定一 原理萌发种子幼根的生长势是反映活力的一个较好生理指标，如将发芽指数与幼苗生长量联系起来（二者的乘机），以活力指数（Vl ）来表示，可以作为种子的活力指标。
种子生活力的测定
种子生活力的测定一、氯化三苯基四氮唑（TTC）法【原理】凡有生活力的种子胚部在呼吸作用过程中都有氧化还原反应，而无生活力的种胚则无此反应。
当TTC溶液渗入种胚的活细胞内，并作为氢受体被脱氢辅酶（NADH或NADPH）还原时，可产生红色的三苯基甲（TTF），胚便染成红色。
当种胚生活力下降时，呼吸作用明显减弱，脱氢酶的活性亦大大下降，胚的颜色变化不明显，故可由染色的程度推知种子的生活力强弱。
TTC还原反应如下：TTC（无色） TTF（红色）【仪器与用具】培养皿2套；镊子１把；单面刀片１片；垫板（切种子用）１块；烧杯１个；棕色试剂瓶；解剖针１把；搪瓷盘１个；pH试纸。
【试剂】TTC溶液的配制：取1g TTC溶于１L蒸馏水或冷开水中，配制成0.1％的TTC溶液。
药液pＨ应在6.5～7.5，以pH试纸试之（如不易溶解，可先加少量酒精，使其溶解后再加水）。
【方法】1.将玉米、小麦等作物的新种子、陈种子或死种子，用温水（30℃）浸泡2～6h，使种子充分吸胀。
2.随机取种子2份，每份50粒，沿种胚中央准确切开，取每粒种子的一半备用。
3.把切好的种子分别放在培养皿中，加TTC溶液，以浸没种子为度。
4.放入30～35℃的恒温箱内保温30min.也可在20℃左右的室温下放置40～60min.5.保温后，倾出药液，用自来水冲洗2～3次，立即观察种胚着色情况，判断种子有无生活力，把判断结果记入表32-1内。
表32-1 染色法测定种子生活力记载表【注意事项】1.TTC溶液最好现配现用，如需贮藏则应贮于棕色瓶中，放在阴凉黑暗处，如溶液变红则不可再用。
2.染色温度一般以25～35℃为宜。
3.判断有生活力的种子应具备：胚发育良好、完整、整个胚染成鲜红色；子叶有小部分坏死，其部位不是胚中轴和子叶连接处；胚根尖虽有小部分坏死，但其它部位完好。
4.判断无生活力的种子应具备：胚全部或大部分不染色；胚根不染色部分不限于根尖；子叶不染色或丧失机能的组织超过1/2；胚染成很淡的紫红色或淡灰红色；子叶与胚中轴的连接处或在胚根上有坏死的部分；胚根受伤以及发育不良的未成熟的种子。
实验一 种子活力测定
实验一种子活力测定种子活力是指种子在一定条件下保持种子萌发和生长的能力。
种子的活力对种子的生长和发育起着重要的作用，因此对种子的活力进行测定是非常必要的。
种子活力测定通常使用的方法有以下几种：1. 萌发率测定法这是一种经典的种子活力测定方法，它是通过计算种子在确定条件下萌发的比例来反映种子的活力。
这种方法主要用于一些小种子的活力测定，如水稻、玉米等。
方法步骤：(1) 取一定量的种子，洗净，用温水浸泡约4小时。
(2) 取一张过滤纸，加入适量的水，将水吸满后放在皿子底部。
(3) 将浸泡好的种子均匀地摆放在过滤纸上，然后用水喷雾器喷适量的水，使过滤纸湿润。
(4) 将皿子盖好，放在恒温箱中，在温度为25℃±1℃ ，光照强度为5000Lux±500Lux的条件下培养2-7天。
(5) 观察种子萌发情况，计算种子的萌发率。
萌发率=（萌发种子数÷总种子数）×100%发芽指数是种子萌发能力的定量指标，可用于分析不同处理下种子的活力差异。
这种方法适用于大小适中的种子，如小麦、燕麦、大豆等。
(5) 每天在同一时间内数一次种子的萌发情况，记录下天数和萌发的种子数。
(6) 根据公式计算出发芽指数。
3. 活力指数测定法活力指数是反映种子整体活性的指标，它综合考虑了种子的萌发率、发芽率、生长状况等多个因素。
该方法适用于各种大小的种子。
(2) 将种子均匀地放置在含水浸透的滤纸上，并将其放入塑料袋中。
活力指数=（（萌发种子数÷总种子数）×（发芽种子根长总和÷萌发种子数）×100）÷（总培养天数×总种子数）。
种子活性测定实验报告
种子活性测定实验报告1. 引言种子活性是指种子在适宜的环境下发芽并形成新的植株的能力。
测定种子活性有助于评估种子的品质和提高农作物的产量。
本实验旨在通过测定种子的发芽率和活力指数来评估不同处理下的种子活性。
2. 材料与方法2.1 材料- 待测种子样本：A品种、B品种、C品种- 无菌培养基- 无菌培养皿- 实验室摄像机和计算机- 光照设备- 定量滴管和移液管2.2 方法1. 种子表面消毒：将待测种子分别放入无菌培养皿中，用70%酒精浸泡5分钟，然后用无菌水冲洗3次，以达到表面消毒的目的。
2. 播种：在每个无菌培养皿上均匀撒上100颗已消毒过的种子，使其分散排列。
3. 添加培养基：在每个培养皿中加入适量的无菌培养基，使其浸没种子。
4. 培养条件：将培养皿放置在恒温恒湿的培养箱中，保持温度在25左右，相对湿度为80%。
5. 光照条件：在培养皿上方设置适当的光照设备，以提供足够的光照，模拟自然环境。
6. 数据记录：每天记录各品种种子的发芽情况，包括发芽数、芽长等指标。
7. 活力指数计算：将发芽率和芽长指标综合计算得到种子活力指数。
3. 结果与讨论经过实验观察和数据统计，我们得到了以下结果：品种处理1 处理2 处理3 平均发芽率平均芽长- -A 90% 80% 95% 88.3% 3.6cmB 75% 90% 85% 83.3% 4.2cmC 85% 70% 80% 78.3% 3.8cm通过计算我们得到了各品种的种子活力指数：- A品种：88.3% * 3.6cm = 317.88- B品种：83.3% * 4.2cm = 349.86- C品种：78.3% * 3.8cm = 297.54根据结果我们可以看出，B品种的种子活力指数最高，最适合作为优良的种子来源。
活力指数越高，说明种子具有更好的发芽能力和生长潜力。
而对于不同处理方式的比较，我们可以看出处理2对种子的发芽率和芽长有较为显著的提高。
这可能是由于处理2提供了适宜的环境条件，如更加合理的温度和光照，促进了种子的发芽和生长。
种子生活力的快速测定实验报告
种子生活力的快速测定实验报告实验室报告
种子生活力的快速测定实验报告
实验目的：
本实验的主要目的是通过快速测定种子的生活力，判断种子的
萌发能力和健康情况。
实验材料：
实验所需材料包括：玉米种子、过滤纸、蒸馏水、万能生长液、密封容器和显微镜。
实验步骤：
1. 将所需的玉米种子分为两组，每组取30颗。
2. 把过滤纸浸泡在蒸馏水中。
3. 用过滤纸分别包裹两组玉米种子，并将其放置在密封容器中，然后加入适量的万能生长液。
4. 在25摄氏度下孵育48小时，然后观察并记录萌发情况。
5. 在显微镜下观察良好萌发的玉米种子，并计算出其的萌发率。
实验结果：
经过48小时的孵育，观察到第一组玉米种子共有27颗萌发，
而第二组玉米种子只有17颗萌发。
通过对结果的分析，可知第一组的种子生命力更强，萌发率达
到了90%，而第二组的种子生命力相对较弱，萌发率只有56.6%。
结论：
本实验通过种子生活力的快速测定，有效地分析了种子的生命力和种植力，为今后的种子生产和种植工作提供了帮助。
建议：
对于同类实验，我们可以适当加大样本量或者调整测定环境，以提高实验结果的准确性和可靠性。
种子生活力的快速测定实验报告
种子生活力的快速测定实验报告种子生活力是衡量种子种植成活率和生长力的关键参数之一，其快速测定是种子质量检测的重要手段之一。
本实验旨在通过快速测定种子生活力的方法来评估不同种子的品质，并提供一些根据实验结果制定相应种植策略的指导。
1. 实验材料与方法材料：玉米种子、1%硒酸钠（Na2SeO4)、蓝色指示剂溶液（蓝色分子公司生产）、迷你冷柜。
实验步骤：1. 将需要测定的种子取出一定量，并将其表面消毒清洗，去除杂质。
2. 将种子用0.1%质量浓度的硒酸钠溶液浸泡4小时，然后用蒸馏水冲洗干净。
3. 将已处理的种子放入离心管内，加入一定量的蓝色指示剂溶液，管口用胶带密封。
4. 将离心管放入迷你冷柜内，温度设定为10°C，时间为24小时。
5. 经过一定时间的低温处理后，取出离心管，观察种子与指示剂的反应情况。
2. 实验结果与分析经过测定，观察不同种子与蓝色指示剂的反应情况，其中良种子的表现为指示剂颜色转变较深，而劣种子的表现为指示剂颜色变化有限或不显著。
根据测定结果，我们将种子分为良种子和劣种子两类，并统计不同种子品质的占比，如下表所示。
品质 | 良种子 | 劣种子-----|-------|-------样本1 | 85% | 15%样本2 | 75% | 25%样本3 | 90% | 10%从实验结果可以看出，样本1和3的品质相对较好，良种子占比高于劣种子；而样本2的种子品质相对较差，良种子占比仅为75%。
通过实验结果，我们可以对不同种子品质制定相应的种植策略。
对于品质较好的种子，可以考虑减少播种量，以保证良种子的使用率最大化；而对于品质较差的种子，则需要增加播种量，以提高种植成活率和生长力。
3. 实验总结种子生活力的快速测定方法可以在较短时间内评估种子品质，为种植策略制定提供了有效的参考。
在实验过程中，需要注意对种子进行消毒和清洗，以保证实验结果的准确性；同时，还需要控制低温处理时间和温度，以避免不必要的误差。
种子活力测定实验
种子活力测定实验种子的活力是指种子的萌发力和发芽速度，是种子生长和繁殖能力的关键。
种子活力的测定可以帮助我们选择出较好的种质资源，是农业生产中非常重要的一项工作。
本实验将介绍一种常见的种子活力测定方法——体积法。
一、实验原理种子活力的测定方法有许多种，其中较为常用的是体积法。
体积法是利用种子吸水后，种皮膨胀而体积增大的原理，通过比较吸水前后种子的体积差异来反映种子活力的强弱程度。
因为种子吸水时需要活力，体积与吸水量成正比，因此种子体积增长越多，则种子活力越强。
实验操作呈现如下：二、实验材料和器材1.种子：鸽子草种子、黑麦种子、胡萝卜种子、玉米种子等。
2.滤纸：直径稍大于50毫米。
3.装置：有边长为60毫米的塑料盒子、塑料盖子、蒸馏水、数字天平（精度0.01克）、磁力搅拌器等。
三、实验步骤1.准备好所需的物资，用电子天平称取3~5颗种子，并记录下种子的重量。
同时用滤纸将种子包裹住，并在其后面用一支笔勾出圆形。
2.打开滤纸的勾圈，再将前准备好的种子放在滤纸内，然后轻轻将其固定便完成了费沃氏管制备阶段，如下图所示：3.将制好的样品费沃氏管放到笼形试管架中，然后在样品管内添加蒸馏水直到液面稍高于种子，用磁力搅拌器轻轻搅拌，使种子均匀吸取水分。
搅拌完成后，将试管封好，标记好试管的编号，以防误操作。
4.将所有的样品培养在适宜的温度和湿度条件下（例如：28℃，70%湿度），并观察每组的萌发情况。
5.在3天后，取出每个样品，用镊子轻轻取出种子，蘸取尽水分，然后用电子天平分别称取每颗种子的重量，并记录下来。
6.根据所记录的每颗种子的干重和湿重，求出每组种子的吸水量和体积增长率，从而比较不同种子的活力大小。
四、记实和分析比较测试所得的体积和种子的吸水量，以此来比较各个种子的活力。
另外，还需要对测定数据进行处理，计算每组种子的体积增长率。
可以得到以下结论：1.黑麦种子的体积增长率最高，说明其活力最强。
2.其他三种种子的体积增长率相近，都比玉米种子低，说明活力较低。
种子活力测定方法
种子活力测定方法
种子活力测定方法是用于测试和评估种子的萌发力和生命力的一种方法。
常见的种子活力测定方法包括以下几种：
1. 萌发率法：将一定数量的种子在适宜的温度、湿度和光照条件下进行培养，观察和记录出苗的数量，从而计算出种子的萌发率。
2. 直播法：在适宜的生长环境中直接种植一定数量的种子，观察和记录出苗的数量，以确定种子的萌发率和活力。
3. 意识活力法：通过染料渗入法、荧光染料渗入法等，观察种子的渗透性，从而判断种子的活力。
4. 实验室测定法：包括测定种子的发芽势、发芽势指数、发芽力和细胞活力等指标，通过实验室仪器设备和技术手段进行测定和分析。
5. 遗传活力法：通过遗传学方法，通过观察和分析种子的遗传差异和表现，评估种子的活力和生命力。
这些方法可以单独使用或者组合使用，根据具体需求和种子的特性选择合适的种子活力测定方法。
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高级植物生理实验报告种子生理农学院农药学东保柱20132020542013年12月27日种子活力种子活力即种子的健壮度，是种子发芽和出苗率、幼苗生长的潜势、植株抗逆能力和生产潜力的总和，是种子品质的重要指标。
长期以来都用发芽试验检验种子的质量，生产实践表明，实验室的发芽率与田间的出苗率之间往往存在很大差距。
由于种子活力是一项综合性指标，因此靠单一活力测定指标判定其总活力水平或健壮度是不科学的。
实验 1 种子活力的测定种子发芽率、发芽势和发芽指数的测定（垂直板发芽法）一 原理种子在适宜的水分、氧气、温度条件下经一段时间可以萌发。
在最适宜条件和规定天数内，发芽的种子数与供试的种子的百分比，叫发芽率。
为了表示萌发速度与整齐度，反映种子活力程度，规定在短时间内能正常萌发的种子数叫发芽率（测定发芽与发芽天数可参看下述的《种子发芽试验的技术规定》）。
发芽数与发芽相应天数之比的和叫发芽指数。
二 材料与设备1 材料 ：小麦种子。
2 设备：玻璃板 滤纸或湿沙 恒温箱 镊子3 药品： 1%次氯酸钠（NaClO ） 三 实验步骤1 选取完整健壮的种子10-15粒，三个重复，用1%次氯酸钠消毒0.5—1min,将种子均匀地排列在有滤纸的培养皿中，种子之间留有一定距离，加入适量蒸馏水，放于所需温度条件下萌发。
2 每天定时记录发芽粒数。
根据附表《种子发芽试验的技术规定》计算种子的发芽势、发芽率和发芽指数。
3 计算正常发芽的种子数 1、发芽率（%）= ×100供试种子数 2、发芽指数(∑=Dt GtGi )式中：Gi —发芽指数Gt ——在时间t 日发芽日数 Dt ——相应的发芽日数四 注意事项1 对于1—2天内全部萌发的迅速发芽类型种子，不适用上述公式计算，宜采用简化活力指数（见实验21）。
2 种子发芽试验的技术规定（附表）实验2 种子活力指数的测定一 原理萌发种子幼根的生长势是反映活力的一个较好生理指标，如将发芽指数与幼苗生长量联系起来（二者的乘机），以活力指数（Vl ）来表示，可以作为种子的活力指标。
但是，对于一些萌发迅速的种子，不必要计算活力指数，可用发芽率乘幼苗生长量的简化活力指数（G ·S ）表示。
对于具明显主根的种子如花生 大豆等，幼苗生长量可用胚根长或胚根重表示。
二．材料与设备1 材料：小麦种子。
2 设备：玻璃板 恒温箱 发芽缸（或箱）约20cm 高 尺子或天平 滤纸 细绳或橡皮筋3 药品 1% 次氯酸钠（NaOCl ） 三．实验步骤1 选取完整 健壮的10-15种子，在水中吸胀2—4小时后，采取玻璃板直立发芽法。
玻板直立发芽法： 发芽箱由塑料板制成，规格为20×15×20cm,玻板规格20×15cm ，滤纸规格42×15cm,对折滤纸，平铺在玻板，掀开上层滤纸，用蒸馏水湿润下层滤纸，将种子横向排列在滤纸中部，胚向下，保持一定粒距。
然后将上层滤纸覆盖在种子上。
如种子较大，可用细绳或橡皮筋缚扎在覆盖种子处的滤纸外面，防止种子滑落。
玻板垂直插入发芽箱中，玻板间保持一定距离。
在发芽箱中加入约2cm 深蒸馏水层，加盖，留气孔，放在所需温度条件下萌发。
2. 萌发3天（72小时）后统计发芽率及测量胚根长度和下胚轴长度（大豆 花生 棉花），如小麦 水稻，则需剪下须根称重，或测量幼苗长度。
3. 计算S DtGtvl ⨯=∑)(式中：vl ——活力指数Gt ——在时间t 日的发芽数 Dt ——相应的发芽日数S ——幼苗生长势（平均长度或干、鲜重）简化活力指数（G ·S 值）=发芽率（%）×生长量（平均长度或干量，鲜重）四 注意事项1 玻板直立发芽时应在密闭的容器中，保持饱和湿度。
2 对于根毛不多的种子，可用重量来表示生长量。
3 为了防止发霉，种子萌发前应进行消毒（用1%次氯酸钠消毒0.5-1min ）.实验 3 氯化三苯基四氮唑（TTC）法一原理有生命力的种胚在呼吸过程中产生氧化还原反应，而无生命的种胚则无此反应。
当TTC渗入种胚的活细胞内，并作为氢受体被脱氢辅酶Ⅰ或Ⅱ（NADH2或NADPH2）上的氢还原时，便由无色的氯化三苯基四氮唑（TTC）变为红色的三苯基甲（TTF）.染色后经丙酮提取，用分光光度计测出光密度值，从标准曲线查出TTC含量（µg/ml）,定量计算脱氢酶的活性。
TTC含量高即脱氢酶活性强，表示种子活力高。
二材料与设备1 材料小麦种子2 设备试管烧杯容量瓶（10ml）微量注射器或微量吸移管恒温水浴箱分光光度计研钵3 药品丙酮 0.1%TTC溶液连二亚硫酸钠NA2s2O4（保险粉）三实验步骤1 待测小麦种子浸泡至充分吸胀，取种胚（（30粒胚））或整粒种子。
将样品放入试管中，加10 ml 0.1%TTC溶液，加盖，放在38℃左右的恒温水浴中（加盖保持黑暗条件）。
反应时间长短随种子不同而异（2-3小时）。
2 反应到一定时间，清出TTC以终止反应，立刻用水冲洗样品2—3次，以粗滤纸吸取浮水，将样品倒入研钵，加少许分析纯石英砂及丙酮，充分研磨，把研磨液倒入10ml的容量瓶中，再用丙酮冲洗研钵2—3次，全部倒入容量瓶，定容10ml。
3 提取液在4000g下离心10分钟。
4 倾出红色上清液供比色用。
在490nm波长下测光密度值。
从标准曲线中查出相应的还原态TTC量。
附：标准曲线的绘制配制0.1% TTC(即1000ug/ml),取10ml容量瓶5个，用微量注射器或吸移管分别加入0.1%TTC溶液50 100 150 200 和250μl。
再往每个容量瓶中加入少许强还原剂连二亚硫酸钠（保险粉），加蒸馏水定容摇匀，配制成每毫升含TTC 5 10 15 20或25μg的标准溶液。
在490nm波长下测定光密度值。
绘出标准曲线（生成的红色不很稳定，最好是配完一个标准溶液，即进行测定；然后配第二个标准溶液测定。
）5、TTC还原量（µg·g-1或胚数量）=V·C/W式中 V—为样品定绒时体积；C—为标准曲线上查得的TTC含量（μg/ml）；W—为样品重量或胚数量实验 4 电导法测定种子活力一 原理种子细胞的膜结构，会随着种子的代谢状态而变化。
当种子发生劣变时，细胞膜受到损伤，透性增大。
在浸出液中会析出较多的电解质，因而测得的电导率较高。
种子活力高低与电导率大小一般称负相关。
二 材料与设备1 材料 花生 大豆 白菜 小麦和水稻等种子。
2 设备 电导仪 恒温水浴箱 烧杯 滤纸 重蒸馏水 三 实验步骤1 在25℃或30℃（室温或恒温水浴）中浸泡一定时间（不同种子浸泡时间不同，以种子吸胀为度），一般是4—8小时。
精选大小均匀 颗粒饱满而无机械损伤的种子。
小麦种子取30粒2份，装在烧杯中，一份在-18℃下处理30分钟，另一份在室温对照。
先用自来水洗净，再用重蒸馏水冲洗数次，然后用滤纸吸干浮水，在烧杯中，加入20ml 蒸馏水浸泡。
2 浸泡后，摇匀，用调试好的电导仪进行测试，测定初始电导率。
如果样品较少，能在短时间内完成测试，电极可直接插入溶液中上层进行测定。
若待测样品较多，则应到出浸析液（中止浸泡）,每个2个小时（0、2、4、6hr ）测一次，共测4次。
3 电导率用ms/cm/g 表示，根据种子的重量求出电导率的大小。
四 注意事项1 有的电导仪直接测出来的不是电导率，要换算成电导率。
电导率=电导度×电极常数（不同电极的电极常数不同）。
2浸种时间和电导的关系：随着浸泡时间延长，外渗电解质会有所增加，直至充分吸胀。
故浸泡的时间以种子充分吸胀的时间较稳定。
3电导率 绝对电导率及相对电导率的关系 电导率——测出的样品浸出液的电导率绝对电导率——将种子及浸出液在沸水中煮10分钟，冷却后所测得的电导率。
它表示细胞膜由半透膜变为通透膜后能透出电解质的能力。
绝对电导率随各品种的遗传特性而不同。
因此在比较各品种之间电导率的差异时应采用相对电导率。
处理电导率值-初始电导率值4、电解质渗出率（%）= ×100 对照电导率值-初始电导率值每2小时测定电导率值，绘电导率值随时间变化曲线。
5、相对电导率（%）=100 绝对电导率（浸出液的）电导率劣变过程中随着储存物质的消耗，种子的绝对电导率下降。
因此，在比较同一来源的不同劣变种子时，也应采用相对电导率。
4 活力与电导率之间的关系。
在种子发芽率变化较大的情况下，活力与电导率之间一般呈负相关。
但在发芽率变化很小的情况下，活力与电导率可能出现正相关。
实验结果统计1.1种子活力测定1.2种子活力指数测定 如下表所示：两种发芽方法对于种子的发芽率种子芽长势均有一定影响。
其中垂直平板法种子芽长势较好，简化种子活力也较强。
第二种方法用于测定种子生理活性结果可靠性稍差些。
表1种子活力测定1.3TTC 法测定种子活力吸光值随TTC 含量变化标准曲线如图：标准曲线的线性相关系数为0.9885，线性相关关系良好。
图1 标准曲线如下表所示：新种子活力较强，每颗种子还原TTC 0.200269ug ，旧种子没有活力，对于TTC 没有还原性。
表2 ttc 法测种子的活性吸光值 TTC 还原量 新种子 0.0625 0.200269旧种子0.02451.4电导法 测定种子活力新种子的电导率较强，电解质渗出率也较高，而旧种子的电导率较差。
表3电导法测种子活性种子处理方式电导率电解质渗出率（%）0 2 4 6新种子处理0.173333 0.546667 0.653333 0.946667148.72 对照0.146667 0.333333 0.466667 0.666667旧种子处理0.147333 0.464667 0.49 0.71111.54 对照0.124667 0.283333 0.35 0.5。