诱导E14小鼠ESC分化为小肠上皮细胞的实验探究
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《小鼠新型胚胎干细胞系的建立》篇一一、引言随着生物医学技术的不断发展,干细胞研究在生命科学领域中扮演着越来越重要的角色。
其中,胚胎干细胞(ESC)作为一种具有自我更新能力和多向分化潜能的细胞类型,已成为研究各种生物过程和疾病模型的热门研究对象。
本文旨在探讨小鼠新型胚胎干细胞系的建立过程及其在科研领域的应用价值。
二、材料与方法1. 实验材料本实验所需材料包括小鼠胚胎、培养基、生长因子等。
所有材料均需经过严格的质量控制,确保实验结果的可靠性。
2. 方法(1)胚胎获取与处理:从特定品系的小鼠中获取早期胚胎,并进行必要的处理,如去透明带等。
(2)干细胞培养:将处理后的胚胎置于特定培养基中,添加生长因子等必要成分,进行干细胞培养。
(3)干细胞系建立:通过细胞克隆、筛选等方法,建立新型胚胎干细胞系。
(4)细胞鉴定与表型分析:通过分子生物学技术对新型胚胎干细胞系进行鉴定,包括基因型、染色体稳定性等方面的分析。
三、实验结果1. 胚胎处理与干细胞培养结果经过适当的处理后,胚胎在特定培养基中成功附着并开始发育。
在适宜的条件下,干细胞得以增殖并形成克隆。
2. 新型胚胎干细胞系的建立通过细胞克隆、筛选等步骤,成功建立了新型胚胎干细胞系。
该细胞系具有自我更新能力和多向分化潜能,为后续研究提供了可靠的细胞来源。
3. 细胞鉴定与表型分析结果通过分子生物学技术对新型胚胎干细胞系进行鉴定,结果显示该细胞系基因型稳定,染色体无异常,具有较高的纯度。
此外,该细胞系在体外分化实验中表现出良好的分化潜能。
四、讨论1. 小鼠新型胚胎干细胞系建立的意义建立小鼠新型胚胎干细胞系对于研究生物学、医学等领域具有重要意义。
首先,该细胞系可用于研究小鼠胚胎发育过程及机制,为人类胚胎发育研究提供参考。
其次,该细胞系可分化为多种细胞类型,为疾病模型研究、药物筛选等领域提供可靠的细胞来源。
此外,该细胞系还可用于基因编辑、基因治疗等方面的研究。
2. 小鼠新型胚胎干细胞系的优点与挑战(1)优点:新型胚胎干细胞系具有自我更新能力强、分化潜能高、基因型稳定等特点,为科研工作者提供了可靠的细胞来源。
《LPS诱导人结肠上皮细胞(NCM460)凋亡机制研究》篇一一、引言细胞凋亡是一种复杂的生理过程,对于维持体内稳态具有至关重要的作用。
近年来,许多研究指出脂多糖(LPS)对多种细胞类型的生物学行为有显著影响,其中也包括对人类结肠上皮细胞的影响。
人结肠上皮细胞(NCM460)作为肠道屏障的主要组成部分,其凋亡过程对于理解肠道炎症性疾病的发生与发展机制具有重大意义。
本研究将深入探讨LPS诱导NCM460细胞凋亡的机制,为肠道疾病的治疗和预防提供理论依据。
二、材料与方法1. 材料实验选用人结肠上皮细胞(NCM460)作为研究对象,LPS 为刺激剂,同时使用一系列相关试剂和设备进行实验操作。
2. 方法(1)细胞培养与处理:在适宜条件下培养NCM460细胞,并使用不同浓度的LPS进行处理。
(2)凋亡检测:通过流式细胞术、Western blot等方法检测细胞凋亡情况。
(3)信号通路分析:利用PCR、免疫印迹等技术分析相关信号通路的变化。
(4)数据统计与分析:采用SPSS软件进行数据分析,结果以平均值±标准差表示。
三、结果1. LPS诱导NCM460细胞凋亡实验结果显示,随着LPS浓度的增加,NCM460细胞的凋亡率显著增加。
流式细胞术检测结果表明,LPS处理后,细胞早期和晚期凋亡的比例均有所上升。
2. 凋亡相关基因和蛋白的表达变化Western blot和PCR结果表明,LPS处理后,促凋亡基因和蛋白的表达水平上升,而抗凋亡基因和蛋白的表达水平下降。
3. 信号通路分析通过对相关信号通路的检测,发现LPS处理后,NF-κB、MAPK等信号通路被激活,进一步促进了细胞的凋亡。
四、讨论本研究表明,LPS能够诱导人结肠上皮细胞(NCM460)发生凋亡。
通过检测凋亡相关基因和蛋白的表达变化,以及分析相关信号通路的激活情况,我们得出以下结论:1. LPS通过上调促凋亡基因和蛋白的表达,下调抗凋亡基因和蛋白的表达,从而诱导NCM460细胞发生凋亡。
《LPS诱导人结肠上皮细胞(NCM460)凋亡机制研究》篇一一、引言结肠癌是一种常见的消化系统恶性肿瘤,其发生、发展与细胞凋亡的调节机制密切相关。
在细胞凋亡的诸多因素中,脂多糖(LPS)作为一种常见的外源性刺激物,其对人结肠上皮细胞(NCM460)的凋亡作用机制研究显得尤为重要。
本篇论文将深入探讨LPS诱导NCM460细胞凋亡的机制,为进一步研究结肠癌的发病机理和防治提供理论依据。
二、材料与方法1. 实验材料(1)细胞株:人结肠上皮细胞株NCM460。
(2)试剂与药品:LPS、细胞培养基、胰酶等。
(3)仪器设备:倒置显微镜、流式细胞仪、实时荧光定量PCR仪等。
2. 实验方法(1)细胞培养:培养NCM460细胞并调整至对数生长期。
(2)LPS处理:将NCM460细胞分别以不同浓度LPS处理,观察其形态变化及凋亡情况。
(3)凋亡检测:采用流式细胞仪检测细胞凋亡率,实时荧光定量PCR检测相关基因表达水平。
(4)数据分析:对实验数据进行统计分析,绘制图表。
三、实验结果1. LPS诱导NCM460细胞凋亡的形态学观察通过倒置显微镜观察,发现LPS处理后NCM460细胞出现典型的凋亡形态学改变,如细胞皱缩、胞质浓缩等。
随着LPS浓度的增加和作用时间的延长,凋亡细胞比例逐渐增加。
2. LPS对NCM460细胞凋亡率的影响流式细胞仪检测结果显示,LPS处理后NCM460细胞的凋亡率显著升高,且呈浓度依赖性和时间依赖性。
低浓度LPS作用24小时后即可观察到明显的凋亡效应,而高浓度LPS作用时间更长时,凋亡率进一步增加。
3. LPS诱导NCM460细胞凋亡的相关基因表达实时荧光定量PCR检测结果显示,LPS处理后NCM460细胞中与凋亡相关的基因表达水平发生变化。
其中,促凋亡基因如Caspase-3、Fas等表达上调,而抗凋亡基因如Bcl-2表达下调。
这些结果表明LPS通过调节相关基因的表达来诱导NCM460细胞发生凋亡。
体外定向诱导小鼠胚胎干细胞向血管平滑肌细胞分化的开题报告背景和意义干细胞是一类可以自我更新并且具有分化潜能的细胞,包括胚胎干细胞和成体干细胞。
胚胎干细胞可以分化成多种类型的细胞,因此具有重要的医学研究和临床应用前景。
其中,胚胎干细胞可以分化成血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cells,VSMCs)。
VSMCs是构成血管壁的主要组成部分之一,其在维持血管形态和功能以及心血管疾病的发生中具有重要作用。
因此,VSMC具有重要的研究价值。
现有的研究表明,体外定向诱导是体外分化过程中的关键步骤之一,可以实现诱导干细胞向特定类型细胞的分化。
本实验旨在通过体外定向诱导,将小鼠胚胎干细胞(mouse embryonic stem cells,mESCs)分化成VSMC,通过研究VSMC的基因表达和生物学行为,为深入探究VSMC发育和功能提供基础研究支持。
研究内容与方法1. 建立小鼠胚胎干细胞培养体系。
采用小鼠胚胎干细胞的培养体系,包括培养基的准备、细胞传代、分化诱导等步骤,以满足后续的实验需求。
2. 选取VSMC相关基因,并利用qRT-PCR技术检测。
通过文献综述和基因芯片分析,筛选VSMC相关基因,并利用qRT-PCR技术检测其在小鼠胚胎干细胞中的表达情况,以确定定向诱导效果。
3. 体外定向诱导小鼠胚胎干细胞向VSMC分化。
采用基于文献之前报道的体外定向诱导方案,包括培养基成分的改变、信号分子添加等步骤,将小鼠胚胎干细胞定向诱导成为VSMC。
4. 观察VSMC形态学特征。
通过光学显微镜观察VSMC的形态学特征,判断定向诱导效果。
5. 检测VSMC相关基因表达和生物学行为。
通过qRT-PCR和免疫印迹等技术检测细胞中VSMC相关基因的表达,同时检测其生物学行为,如增殖、迁移等,以评估小鼠胚胎干细胞向VSMC分化的效果和特点。
意义和前景本实验旨在通过体外定向诱导,将小鼠胚胎干细胞分化成VSMC,并对其进行深入研究。
小鼠小肠上皮内淋巴细胞的提取与抗原表型测定和功能的初步研究①周正任 叶晓卉 杨晓临 王 丹 (中国医科大学病原生物学教研室,沈阳110001) 中国图书分类号 R392112 文献标识码 A 文章编号 10002484X(2001)0320135203摘 要 目的:建立一种提取小肠上皮内淋巴细胞的方法,并对其功能进行初步研究。
方法:采用机械分离法和Percoll 非连续密度梯度离心法提取小鼠小肠上皮内淋巴细胞,经间接荧光染色后用流式细胞仪检测表型。
应用乳酸脱氢酶法检测其自然杀伤功能。
结果:应用该法可获得小鼠小肠上皮内淋巴细胞2×106~4×106Π只鼠,活力测定>95%。
抗原表型中7318%以上表达C D8分子,T CRγδ为4318%。
而且自然杀伤活性明显高于小鼠脾淋巴细胞。
结论:表明采用该法提取小鼠小肠上皮内淋巴细胞有效。
IE L具有自然杀伤活性。
关键词 小肠上皮内淋巴细胞 自然杀伤活性 抗原表型Studies on isolation phonotype and natural cytotoxicity of murine intraepithelial lymphocytesZHOU Zheng2Ren,YE Xiao2Hui,Y ANG Xiao2Lin et al.China Medical Univer sity,Pathogenic Microbiology Department, Shenyang110001Abstract Objective:T o extract a method for is olating murine intraepithelial lymphocyte and analyze its main function.Methods:Murine intestinal intraepithelial lymphocyte was is olated by a mechanical technique and Percoll discontinous density gradient centrigugation.Its surface antigens were measured by using indirect immunoflurescence.Its natural killing activity was examined by LDH method.R esults:2×106~4×106iIE LsΠper m ouse were acquired by using this method,add its vitality>95%.O f phenotypic antigen,m ore than73.8%showed C D8+cell, T CRγδ43.8%.IE L’s natural killing activity was higher than P BMCs.Conclusion:This method is effective of is olating IE Ls.IE Ls has natural killing activity.K ey w ords Intraepithelial lymphocyte Natural killing activity Phonotype 小鼠小肠上皮内淋巴细胞(intestinal intraepithe2 lial lym phocyte,iIE L)主要见于小肠粘膜绒毛上皮细胞之间,9512%位于上皮基底部,317%在上皮层, 111%在顶端。
体外诱导小鼠胚胎干细胞分化为T淋巴细胞样细胞的开题报告一、研究背景胚胎干细胞(embryonic stem cells,ESCs)是由早期胚胎发展而来的多能干细胞,能够发育成各类体细胞。
因此,ESCs有着广泛的应用前景,包括再生医学、药物筛选等。
然而,ESCs在应用中存在一些限制,如存在免疫排异反应等问题。
为了解决这些问题,通过将ESCs体外诱导分化成特定细胞类型,可以克服免疫排异等问题。
而T淋巴细胞是起源于骨髓的免疫细胞,它们在免疫监视、免疫调节以及抵御感染方面扮演着重要角色。
因此,将ESC诱导分化为T淋巴细胞样细胞,将有助于解决ESCs应用中的免疫问题,并为疾病治疗提供新的思路。
二、研究目的本文旨在探究体外诱导小鼠ESCs分化为T淋巴细胞样细胞的机理,并寻找适合的细胞培养条件。
并通过实验验证分化后的细胞是否表达免疫相关蛋白。
三、研究方法1、小鼠胚胎干细胞的培养采用小鼠胚胎干细胞线F1的细胞株,通过胶贴法培养。
2、体外诱导分化采用多步诱导法,包括培养基的变换、化学因子或蛋白质的加入等。
3、细胞表型的鉴定通过流式细胞术、免疫荧光染色等方法鉴定细胞的表型,包括表面标记物和细胞类型特异性蛋白。
4、免疫细胞的功能分析通过细胞分离、体外刺激实验等方法鉴定免疫细胞的功能特性。
四、研究意义本研究为解决ESCs应用中的免疫问题、开发新的疾病治疗方法提供了新思路。
同时,通过本研究探究T淋巴细胞分化的机理,也有助于了解免疫系统发育中的分化调控机制。
未来,将进一步开展该研究,从分子机制、动物实验等方面深入探究T淋巴细胞样细胞的免疫特性,为开发体外诱导的免疫细胞治疗方案提供有力的支持。
《小鼠新型胚胎干细胞系的建立》篇一一、引言胚胎干细胞(Embryonic Stem Cells, ESC)的研究一直是生物学和医学领域的重要课题。
这些细胞具有自我更新和多潜能的特性,为再生医学、疾病模型、药物筛选等多个领域提供了巨大的研究潜力。
近年来,随着对小鼠胚胎干细胞研究的深入,新型小鼠胚胎干细胞系的建立显得尤为重要。
本文旨在详细介绍小鼠新型胚胎干细胞系的建立过程、方法和应用前景。
二、材料与方法1. 材料准备(1)实验动物:选择合适的小鼠品系作为供体,确保其遗传背景清晰。
(2)实验试剂:包括培养基、生长因子、抗生素等。
(3)实验设备:显微镜、培养箱、离心机等。
2. 方法(1)胚胎获取:从小鼠中获得早期胚胎。
(2)胚胎培养:将胚胎置于特定培养基中,加入生长因子,进行体外培养。
(3)干细胞诱导:通过特定方法诱导胚胎内细胞团向胚胎干细胞方向分化。
(4)干细胞系建立:经过筛选和扩增,建立稳定的小鼠胚胎干细胞系。
三、实验过程与结果1. 胚胎获取与培养通过超数排卵和人工授精等方法,从小鼠中获得早期胚胎。
将胚胎置于含有适当营养成分和生长因子的培养基中,置于适宜温度和湿度的培养箱中培养。
2. 干细胞诱导与分化通过特定方法诱导胚胎内细胞团向胚胎干细胞方向分化。
这一过程需要严格控制培养条件和时间,以确保干细胞的成功诱导和分化。
3. 干细胞系的建立与鉴定经过筛选和扩增,建立稳定的小鼠胚胎干细胞系。
通过细胞形态观察、生长曲线绘制、基因表达分析等方法,对干细胞系进行鉴定和评估。
四、讨论与分析1. 小鼠新型胚胎干细胞系的特点与优势新型小鼠胚胎干细胞系具有较高的分化潜能、稳定的遗传背景和良好的扩增能力等特点。
与以往的小鼠胚胎干细胞系相比,新型干细胞系在研究过程中具有更高的可靠性和实用性。
2. 小鼠新型胚胎干细胞系的应用前景(1)再生医学:小鼠新型胚胎干细胞系可用于研究细胞分化和组织再生,为再生医学提供新的治疗策略。
(2)疾病模型:通过基因编辑技术,可以构建特定疾病的小鼠模型,为疾病研究和药物筛选提供有力工具。
小鼠小肠粘膜上皮细胞处理方法及细胞说明书小鼠小肠粘膜上皮细胞处理方法及细胞说明书仅供参考,具体操作还需要根据到货时细胞密度,细胞生长状态等具体情况,酌情处理。
一.小鼠小肠粘膜上皮细胞贴壁细胞客户接收到细胞,用75%的酒精消毒(建议配制75%酒精的水是灭菌过的)培养瓶外部。
肉眼观察细胞培养基颜色,显微镜观察细胞生长情况,并对细胞进行不同倍数拍照(建议收到时的培养瓶拍一张照片,显微镜拍收到时的细胞100X,200X 各一张)。
显微镜观察细胞,当细胞融汇80%左右(可以传代的情况下),细胞应该在37度培养箱预温1-2h后再做处理。
如未达到细胞传代密度,培养瓶应预留一部分培养基继续培养。
严格无菌操作,打开细胞培养瓶。
将细胞培养瓶内的培养基用吸管完全吸出(严禁直接倾倒),放入另一无菌容器中(建议换新的培养基培养细胞)。
用PBS2-3ml/次轻轻洗细胞表面,加入适量的0.05%胰酶-EDTA消化细胞,显微镜下观察细胞变圆,轻轻拍打培养瓶直到细胞脱落,加入终止液终止。
1000rpm,5min离心,重悬细胞。
换新的细胞培养瓶,37℃,5%CO2培养。
二.小鼠小肠粘膜上皮细胞悬浮细胞1.接收到细胞,用75%的酒精消毒(建议配制75%酒精的水是灭菌过的)培养瓶外部。
2.肉眼观察细胞培养基颜色,显微镜观察细胞生长情况,并对细胞进行不同倍数拍照(建议收到时的培养瓶拍一张照片,显微镜拍收到时的细胞100X,200X各一张)。
3.严格无菌操作,打开细胞培养瓶。
4.将细胞培养瓶内的培养基用吸管完全吸出(严禁直接倾倒)。
5.1000rpm,5min离心,重悬细胞。
换新的细胞培养瓶和新鲜培养基,37℃,5%CO2培养。
鼠胚胎干细胞定向诱导为角膜上皮细胞的实验研究作者:杨成明滕利黄谙飞来源:《中国医药导报》2013年第08期[摘要] 目的建立能够稳定表达绿色荧光蛋白(green fluorescent protein,GFP)的鼠胚胎干细胞系,并研究体外诱导鼠胚胎干细胞(embryonic stem cell,Es细胞)向角膜上皮细胞分化的可能性及条件,为角膜损伤提供新型的上皮修复组织来源。
方法质粒pEGFP-N1脂质体复合体转染鼠胚胎干细胞,对稳定表达GFP的ES细胞以Ⅳ型胶原作为诱导条件,定向诱导鼠ES细胞向角膜上皮细胞转化,观察培养后形态改变,免疫荧光及RT-PCR检测K12、K14及CD44的表达。
结果转染后ES细胞稳定表达GFP,成功诱导出角膜上皮样细胞,呈典型上皮样细胞形态,免疫组化及RT-PCR检测显示,K12及CD44表达阳性,K14表达阴性。
结论转染GFP的ES细胞,在Ⅳ型胶原的诱导下,成功向角膜上皮细胞分化。
[关键词] 胚胎干细胞;绿色荧光蛋白;分化;角膜上皮细胞;诱导[中图分类号] R329.2 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2013)03(b)-0013-03角膜上皮位于眼角膜表面,是维持眼表正常生理功能的重要条件。
健全的角膜上皮细胞是角膜抵御外界各种有害因素损伤的重要条件。
人的角膜自我更新由位于角膜缘外围区域的角膜缘干细胞来维持,结构与功能健全的角膜缘干细胞是角膜上皮再生的主要来源,当角膜受到化学及热烧伤,以及患有Stevens-Johnson syndrome等疾病时,角膜缘上皮细胞将会缺失,导致增加角膜感染、穿孔、新生血管化的危险[1]。
因此,重建完整的角膜上皮就显得异常重要。
胚胎干细胞(embryonic stem cells,ES细胞)是从早期胚胎内细胞团分离获得的,具有体外增殖和全能性两大特点。
近年来随着ES细胞研究的不断深入,其逐渐应用于细胞、组织的修复和移植[2]。
小肠上皮细胞分化与生长的调节机制研究小肠是人类消化系统中一个重要的器官。
其中,小肠上皮细胞是小肠黏膜中最主要的细胞类型,它们承担了吸收营养物质和液体的重要功能。
小肠上皮细胞的分化和生长是一个复杂的过程,涉及许多互相作用的分子机制。
本文将介绍其中一些较为重要的因素,以及它们如何通过调节小肠上皮细胞的分化和生长来维持机体的健康。
1. Wnt信号通路在小肠上皮细胞分化中的作用Wnt信号通路是在小肠上皮细胞分化中扮演着关键角色的一个分子通路。
Wnt通路有多个类型,其中β-catenin依赖型Wnt信号通路在小肠上皮细胞分化中最为重要。
这一信号通路的活性主要由Wnt蛋白和其受体Frizzled的结合所决定。
当Wnt蛋白与Frizzled结合时,它们将激活β-catenin。
随后,β-catenin进入到细胞核中,与Tcf/Lef转录因子结合,进而激活Wnt通路下游基因的转录。
β-catenin依赖型Wnt信号通路在小肠上皮细胞中的表达模式非常规律。
在幼年阶段,它主要参与到干细胞的增殖和分化中。
在成年阶段,Wnt通路下游基因的表达逐渐向肠道顶端转移,这表明它对肠道维持靶组织的完整性非常重要。
当β-catenin的表达紊乱时,就有可能导致小肠上皮细胞向恶性方向发展,最终发展成为小肠癌。
2. 基本成纤维生长因子(bFGF)在小肠上皮细胞生长中的作用基本成纤维生长因子(bFGF)是小肠上皮细胞生长中的另一个关键调节因素。
在小肠上皮细胞中,bFGF主要介导细胞的增殖和迁移。
bFGF与细胞表面的受体结合后,激活了多种下游信号通路,包括PI3K/Akt、Ras/Raf/MAPK等,从而促进小肠上皮细胞的增殖和生长。
尽管在bFGF调节小肠上皮细胞生长方面的作用已经得到了深入研究,但仍有许多问题需要解决。
例如,bFGF对小肠上皮细胞迁移的调节机制仍然不清楚。
研究团队正在尝试使用进一步研究来揭示这些问题的答案。
3. 炎性细胞因子对小肠上皮细胞分化和生长的影响炎性细胞因子也是调节小肠上皮细胞分化和生长的重要环节。
图1.1.1小肠上皮细胞(100×)小肠上皮细胞24~48小时可见贴壁
图1.1.4小肠上皮细胞(400×)细胞浆丰富,核为圆形或卵圆形,含1~2个核仁,核周I叮见许多小空泡
附图
图1.1.2小肠上皮
细胞(100x)
4~6天形成一群群
的细胞集落
图1.1.5小肠上皮细
胞免疫细胞化学
(CKl8)染色(100×)
小肠上皮细胞免疫组
化染色后,川见胞浆内
出现棕色颗粒
图1.1.3小肠上皮细
胞(100×)
lO~12天细胞汇合成
片
图1.1.6小肠上皮细
胞免疫细胞化学(CKl8)
阴性对照(100×)
小肠上皮细胞免疫组化
阴性对照,细胞未见被
染色
图1.1.7小肠上皮细胞AKP染色(400X)细胞表面呈暗黑或灰黑色阳性反应图1.2.1小肠问质细胞HE染色(100x)
图2.1.1ESC传代第二天形成细胞克隆(100X)
图1.2.2小肠问质细
胞免疫荧光(vimentin)
染色(200X)
胞浆内可见绿色荧光
图2.1.2悬滴法培养5天
的EB
(100x)
图2.1-3上清组诱导14天(100×)2w左右上清组的大部分分化细胞为上皮样细胞,呈现较好的均质性
图2.2.i上清组免疫荧光(CKl8)染色(核为PI染色)(200×)图2.1.4非上清组诱导14天(100X)非上清组的分化细胞中还有较多的成纤维细胞样细胞等杂细胞生长
图2.2.2非上清组免疫荧光(CKl8)染色(核为PI染色)
(200×)
图2.2.3EB的AKP染色(100×)
图2.2.5上清组的分化
细胞的AKP染色(400×)图2.2.4EB分化后的AKP染色(100×)
图2.2.6非上清组的分化细胞的AKP染色
(400×)
◇f。
皇,毫曼体外定向诱导E14小鼠ESC分化为小肠上皮细胞的实验研究附图
图2.3.1Msi—l基因(1,2,3泳道分别代表对图2.3.2Hes—l基因RT—PCR电泳图照组,上清组和非上清RTPCR电泳图
诱导分化后的细胞Msi—l组)诱导分化后的细胞Hes—l基因mRNA水平的表达情基因mRNA水平的表达情况况
图2.3.3Cdx2基因图2.3.4CKl9基因图2.3.5B—actin基因RT—PCR电泳图RT—PCR电泳图RTPCR电泳图
诱导分化后的细胞Cdx2诱导分化后的细胞CKl9
基因mRNA水平的表达情基因mRNA水平的表达情
况况。