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一、蛋白浓度的直接测定（UV法）这种方法是在280nm波长，直接测试蛋白。
选择Warburg 公式，光度计可以直接显示出样品的浓度，或者是选择相应的换算方法，将吸光值转换为样品浓度。
蛋白质测定过程非常简单，先测试空白液，然后直接测试蛋白质。
从而显得结果很不稳定。
蛋白质直接定量方法，适合测试较纯净、成分相对单一的蛋白质。
紫外直接定量法相对于比色法来说，速度快，操作简单；但是容易受到平行物质的干扰，如DNA的干扰；另外敏感度低，要求蛋白的浓度较高。
（1）简易经验公式蛋白质浓度(mg/ml) = [1.45*OD280-0.74*OD260 ] * Dilution factor（2）精确计算通过计算OD280/OD260的比值，然后查表得到校正因子F，再通过如下公式计算最终结果：蛋白质浓度(mg/ml) = F *(1/d) *OD 280 * D其中d为测定OD值比色杯的厚度D为溶液的稀释倍数二、比色法蛋白浓度测定蛋白质通常是多种蛋白质的化合物，比色法测定的基础是蛋白质构成成分：氨基酸（如酪氨酸，丝氨酸）与外加的显色基团或者染料反应，产生有色物质。
有色物质的浓度与蛋白质反应的氨基酸数目直接相关，从而反应蛋白质浓度。
三．双缩脲法（Biuret法）实验原理 双缩脲（NH3CONHCONH3）是两个分子脲经180℃左右加热，放出一个分子氨后得到的产物。
在强碱性溶液中，双缩脲与CuSO4形成紫色络合物，称为双缩脲反应。
凡具有两个酰胺基或两个直接连接的肽键，或能过一个中间碳原子相连的肽键，这类化合物都有双缩脲反应。
紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比，而与蛋白质分子量及氨基酸成分无关，故可用来测定蛋白质含量。
测定范围为1~10mg蛋白质。
干扰这一测定的物质主要有：硫酸铵、Tris缓冲液和某些氨基酸等。
试剂与器材试剂：（1）标准蛋白质溶液：用标准的结晶牛血清清蛋白（BSA）或标准酪蛋白，配制成10mg/ml的标准蛋白溶液，可用BSA浓度1mg/ml的A280为0.66来校正其纯度。
蛋白质浓度测量标准
蛋白质浓度是衡量蛋白质含量的重要参数。
因此，确定正确的蛋白质浓度对于许多生物化学和分子生物学实验至关重要。
这里我们介绍几种常用的蛋白质浓度测量标准。
1. 比色法：比色法是测定蛋白质浓度最常用的方法之一。
该方法基于分子间色素的吸收差异，比较未知浓度的蛋白质样品与已知浓度的标准样品的吸光度。
2. BCA法：BCA法是一种常用的蛋白质浓度测量标准，其原理为利用还原性离子（如Cu2+）与蛋白质中的蛋白质酪氨酸残基发生反应，形成紫色化合物，通过比色法确定蛋白质浓度。
3. Lowry法：Lowry法是一种经典的蛋白质浓度测量方法，其原理是通过蛋白质与碱式铜离子复合，还原Folin-Ciocalteu试剂，生成蓝色化合物，最后通过比色法确定蛋白质浓度。
4. Bradford法：Bradford法是一种快速、敏感的蛋白质浓度测量方法，其原理为蛋白质样品与Bradford染料发生结合，形成复合物后，可通过比色法确定蛋白质浓度。
总之，选择正确的蛋白质浓度测量标准对于实验的准确性和可靠性具有至关重要的作用。
在选择测量方法时，应该根据实验需要和样品的特性选择适合的方法。
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蛋白浓度测定方法引言：蛋白质是生物体内广泛存在的一类重要有机分子，其浓度的准确测定对于生物研究和医学诊断具有重要意义。
本文将介绍几种常用的蛋白浓度测定方法，包括比色法、BCA法、Lowry法和Bradford 法，并对其原理、步骤和应用进行详细说明。
一、比色法：比色法是一种常用的蛋白浓度测定方法，基于蛋白质与某些特定试剂反应产生颜色变化的原理。
常用的试剂有布拉德福试剂、科学试剂等。
该方法操作简便，结果准确可靠，广泛应用于蛋白质研究领域。
1. 原理：比色法的原理是蛋白质与某些试剂反应产生可测量的颜色变化，根据颜色的强度可以推算出蛋白质的浓度。
这种反应通常是由于蛋白质中存在的特定官能团与试剂之间的化学反应导致的。
2. 步骤：比色法的步骤主要包括样品制备、试剂配制、反应和测量。
首先，将待测样品制备成适当浓度的溶液；然后，配制试剂，并与样品混合反应；最后，使用光谱仪或分光光度计测量反应产生的颜色的光吸收值，并根据标准曲线推算出蛋白质的浓度。
3. 应用：比色法广泛应用于生物化学、分子生物学、药学等领域。
例如，可以用于蛋白质表达水平的测定、蛋白质纯化过程中的监测以及药物研发过程中的蛋白质浓度测定等。
二、BCA法：BCA法是一种基于铜离子与蛋白质中的蛋白质酰基反应产生紫色络合物的测定方法。
该方法具有灵敏度高、稳定性好等特点，广泛应用于蛋白质浓度测定和蛋白质含量分析。
1. 原理：BCA法的原理是蛋白质中的蛋白质酰基与铜离子在碱性条件下反应生成紫色络合物，该络合物的吸收峰位于562 nm处。
蛋白质浓度与吸光度呈线性关系，可通过比色法测定吸光度来推算蛋白质的浓度。
2. 步骤：BCA法的步骤主要包括样品制备、试剂配制、反应和测量。
首先，将待测样品制备成适当浓度的溶液；然后，配制BCA试剂，并与样品混合反应；最后，使用分光光度计测量反应产生的紫色络合物的吸光度，并根据标准曲线推算出蛋白质的浓度。
3. 应用：BCA法被广泛应用于生物化学、分子生物学、生物技术等领域。
测蛋白浓度的方法
测蛋白浓度的方法有多种，常见的方法包括：
1. Bradford法：用Bradford试剂与蛋白质反应，形成蓝色的蛋白质-染料复合物。
根据复合物与蛋白质浓度成反比的关系，可以通过比色法或荧光法测定蛋白质浓度。
2. Lowry法：将蛋白质与碱式铜试剂和Folin-Phenol试剂反应，生成紫色蛋白质-复合物。
通过比色法或荧光法测定复合物的吸光度，计算出蛋白质浓度。
3. BCA法：将蛋白质与BCA试剂反应形成紫色的蛋白质-染料复合物，根据复合物与蛋白质浓度成正比的关系，通过比色法或荧光法测定蛋白质浓度。
4. UV分光光度法：利用蛋白质在280nm处的吸收峰测定蛋白质浓度。
该方法的优点是快速、简单，但需要纯化后的蛋白质，并且无法区分不同种类的蛋白质。
5. 二维凝胶电泳：分析各种蛋白在二维中的迁移距离，可以定量测定蛋白质的相对含量。
该方法需要复杂的操作和设备，但能够同时定量多种蛋白质。
蛋白质浓度测定方法蛋白质是生物体内一类重要的生物大分子，其浓度的准确测定对于生物学研究和生物工程技术具有重要意义。
目前常用的蛋白质浓度测定方法主要包括比色法、BCA法、Lowry法和Bradford法等。
下面将对这几种常用的蛋白质浓度测定方法进行详细介绍。
比色法是一种常用的蛋白质浓度测定方法，其原理是利用蛋白质与某种试剂发生反应后产生显色物质，通过测定显色物质的吸光度来确定蛋白质的浓度。
比色法操作简单，结果准确，适用于大多数蛋白质的浓度测定。
BCA法是一种基于铜离子与蛋白质中的蛋白质和肽键发生还原反应而形成的紫色螯合物来测定蛋白质浓度的方法。
BCA法对于蛋白质的浓度测定具有较高的灵敏度和特异性，适用于各种类型的蛋白质。
Lowry法是一种经典的蛋白质浓度测定方法，其原理是利用蛋白质与碱性铜离子和蛋白质中的酚类物质在碱性溶液中发生离子还原反应，生成蓝色络合物，通过测定其吸光度来确定蛋白质的浓度。
Lowry法对于蛋白质的浓度测定具有较高的灵敏度和稳定性，适用于大部分蛋白质的浓度测定。
Bradford法是一种基于某种染料与蛋白质中的氨基酸残基之间的相互作用来测定蛋白质浓度的方法。
Bradford法对于蛋白质的浓度测定具有较高的灵敏度和线性范围，适用于多种类型的蛋白质。
在进行蛋白质浓度测定时，需要注意以下几点，首先，选择合适的测定方法，根据样品的特性和实验要求进行选择；其次，掌握好操作技巧，严格按照操作步骤进行，避免操作失误；最后，对测定结果进行准确的记录和分析，确保结果的可靠性和准确性。
总之，蛋白质浓度的准确测定对于生物学研究和生物工程技术具有重要意义，选择合适的测定方法并掌握好操作技巧是保证测定结果准确可靠的关键。
希望本文介绍的蛋白质浓度测定方法能够对您有所帮助。
一、蛋白浓度的直接测定（UV法）这种方法是在280nm波长，直接测试蛋白。
选择Warburg 公式，光度计可以直接显示出样品的浓度，或者是选择相应的换算方法，将吸光值转换为样品浓度。
蛋白质测定过程非常简单，先测试空白液，然后直接测试蛋白质。
从而显得结果很不稳定。
蛋白质直接定量方法，适合测试较纯净、成分相对单一的蛋白质。
紫外直接定量法相对于比色法来说，速度快，操作简单；但是容易受到平行物质的干扰，如DNA的干扰；另外敏感度低，要求蛋白的浓度较高。
（1）简易经验公式蛋白质浓度(mg/ml) = [1.45*OD280-0.74*OD260 ] * Dilution factor（2）精确计算通过计算OD280/OD260的比值，然后查表得到校正因子F，再通过如下公式计算最终结果：蛋白质浓度(mg/ml) = F *(1/d) *OD 280 * D其中d为测定OD值比色杯的厚度D为溶液的稀释倍数二．紫外吸收法测定蛋白质含量【实验目的】1. 学习紫外吸收法测定蛋白质含量的原理。
2. 掌握紫外分光光度计的操作方法。
【实验原理】大多数蛋白质分子结构中含有芳香族氨基酸（酪氨酸和色氨酸）残基，使蛋白质在280nm的紫外光区产生最大吸收，并且这一波长范围内的吸收值与蛋白质浓度的成正比，利用这一特性可定量测定蛋白质的含量。
紫外吸收法可测定0.1-0.5mg/ml的蛋白质溶液，此操作简便，测定迅速，不消耗样品，低浓度盐类不干扰测定。
因此，此法在蛋白质的制备中广泛应用。
【实验材料】1.实验器材试管及试管架；50毫升容量瓶 2只；移液管；紫外分光光度计。
2.实验试剂(1)标准蛋白质溶液：精确配制2mg／ml的酪蛋白溶液。
(2)样品溶液：配制约0.5mg/ml的酪蛋白溶液作为未知样品溶液。
【实验操作】1. 绘制标准曲线取7支试管按下列各表加入各试剂：试剂加完后摇匀，在紫外分光光度计上，于280nm处以0号管为对照，分别测定各管溶液的光密度值。
蛋白质浓度测定方法1.低里德试剂法低里德试剂法通过测定蛋白质与试剂中碱式染料之间的吸光度来计算蛋白质浓度。
常用的低里德试剂有考马斯亮蓝G-250和试剂Folin-Ciocalteu。
这种方法操作简便，灵敏度高，但依赖于特定的蛋白质。
2.比色法比色法使用吸光度测定蛋白质溶液中特定波长的光的吸收程度。
常用的试剂有Bradford试剂、Biuret试剂和BCA试剂。
这些试剂与蛋白质发生化学反应后，形成显色物质，显色强度与蛋白质浓度成正比。
这种方法操作简便，灵敏度高，但对于一些物质干扰较大。
3.紫外吸收法紫外吸收法是通过测定蛋白质在特定波长下的吸光度来计算蛋白质浓度。
蛋白质在280 nm波长下的吸光度与其含量成正比。
该方法对纯度较高的蛋白质测定较为准确，但对于包含核酸、色素等物质的溶液会有干扰。
4.氨基酸分析法氨基酸分析法是通过测定蛋白质中的氨基酸含量来估计蛋白质浓度。
可使用色谱法或光谱法进行氨基酸测定。
该方法需要较复杂的实验设置和仪器，适合用于纯化蛋白质或特定氨基酸分析。
5.生物学活性测定法生物学活性测定法是通过测定蛋白质对生物系统或特定底物的活化能力来估计蛋白质浓度。
例如，酶活测定法通过测定酶活性与酶浓度之间的关系来计算蛋白质浓度。
这种方法直接反映了蛋白质的功能性，但前提是需要具备可靠的活性测定方法。
在实验中选择合适的蛋白质浓度测定方法需要根据实验目的、样品属性和仪器设备等进行综合考虑。
此外，为了减小误差，实验过程中应注意控制实验条件的一致性，并进行适当的平行样品测定。
蛋白质浓度检测标准引言蛋白质是生物体内非常重要的有机化合物，其浓度的准确检测对于许多生物学和生物化学研究具有重要意义。
蛋白质浓度的准确检测可以帮助科学家了解细胞内蛋白质的含量和分布，起到指导生物研究方法和结果解释的作用。
因此，制定蛋白质浓度检测标准至关重要。
确定蛋白质浓度的方法1.分光光度法分光光度法是目前最常用的测定蛋白质浓度的方法之一。
该方法利用蛋白质在特定波长下的吸光性质来测定其浓度。
具体操作步骤如下：–准备一定浓度的标准蛋白溶液，例如1mg/mL的牛血清白蛋白（BSA）溶液。
–使用分光光度计在280nm波长下测量标准蛋白溶液的吸光度。
记录吸光度与浓度的关系。
–测量待测蛋白溶液的吸光度，并根据标准曲线确定其浓度。
2.二氧化碳测定法二氧化碳测定法利用蛋白质氨基酸和二氧化碳的反应，原理是测定生成的二氧化碳量与蛋白质浓度成正比。
具体操作步骤如下：–将蛋白溶液与NaOH溶液混合，使蛋白质中的氨基酸与NaOH反应产生二氧化碳。
–静置反应混合液一段时间后，使用酸去除多余的NaOH。
–使用酸碱滴定法测定反应产生的一氧化碳的量，根据一氧化碳与蛋白质浓度的关系确定蛋白质的浓度。
3.比色法比色法是一种简单且常用的蛋白质浓度测定方法。
其原理是利用蛋白质与某些试剂的化学反应产生显色物质，颜色的深浅与蛋白质的浓度成正比。
具体操作步骤如下：–将蛋白质溶液与试剂混合，反应一段时间后生成显色物质。
–使用分光光度计测量显色物质的吸光度，根据吸光度与浓度的关系确定蛋白质的浓度。
蛋白质浓度检测的标准制定1.标准蛋白溶液的选取制定蛋白质浓度检测标准的第一步是选取标准蛋白溶液。
常用的标准蛋白溶液包括牛血清白蛋白（BSA）、人血清白蛋白（HSA）等。
选取标准蛋白溶液时应考虑其纯度、稳定性、价格等因素。
2.确定标准曲线标准曲线是将已知浓度的标准蛋白溶液的吸光度与浓度进行关联的曲线。
制定标准曲线的具体步骤如下：–准备一系列浓度递增的标准蛋白溶液，例如0.1mg/mL、0.2mg/mL、0.3mg/mL等。
测蛋白质浓度的方法
测定蛋白质浓度的常用方法有：
1. 布拉德福法（Bradford法）：利用蛋白质与染料共存时发生吸光性变化的原理。
将样品与染料（布拉德福试剂）反应后，通过比色法测定吸光度，再与标准曲线进行比较以确定蛋白质浓度。
2. Lowry法：利用蛋白质与试剂（含铜离子和碱液）发生离子传递反应产生复合物，再与酚反应形成比色产物，通过比色法测定吸光度，再与标准曲线进行比较以确定蛋白质浓度。
3. BCA法（双硫仑法）：利用蛋白质与试剂（含双硫仑和铜离子）反应生成紫色螯合物，通过比色法测定吸光度，再与标准曲线进行比较以确定蛋白质浓度。
该方法适用于一般抗原浓度范围内。
4. 490 nm法：该方法利用酪氨酸与试剂（含酮氨酸和硫氰酸）发生反应生成紫色产物，通过比色法测定吸光度，再与标准曲线进行比较以确定蛋白质浓度。
需要注意的是，不同方法适用于不同类型和浓度的蛋白质，选择合适的方法进行测定非常重要。
同时，测定结果可能受到样品的酸碱度、离子浓度、存在的干扰物等因素的影响，应尽可能控制这些条件以获得准确的测量结果。
实验九蛋白质浓度的测定(四)──考马斯亮蓝染色法目的要求学习考马斯亮蓝（Coomassie Brilliant Blue）法测定蛋白质浓度的原理和方法。
实验原理考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度，是利用蛋白质―染料结合的原理，定量的测定微量蛋白浓度的快速、灵敏的方法。
考马斯亮蓝G―250存在着两种不同的颜色形式，红色和蓝色。
它和蛋白质通过范德华力结合，在一定蛋白质浓度范围内，蛋白质和染料结合符合比尔定律（Beer’s law）。
此染料与蛋白质结合后颜色有红色形式和蓝色形式，最大光吸收由465nm变成595nm，通过测定595nm处光吸收的增加量可知与其结合蛋白质的量。
蛋白质和染料结合是一个很快的过程，约2min即可反应完全，呈现最大光吸收，并可稳定1h，之后，蛋白质―染料复合物发生聚合并沉淀出来。
蛋白质―染料复合物具有很高的消光系数，使得在测定蛋白质浓度时灵敏度很高，在测定溶液中含蛋白质5µL/ml时就有0.275光吸收值的变化，比Lowry法灵敏4倍，测定范围为10－100µg蛋白质，微量测定法测定范围是1－10µg蛋白质。
此反应重复性好，精确度高，线性关系好。
标准曲线在蛋白质浓度较大时稍有弯曲，这是由于染料本身的两种颜色形式光谱有重叠，试剂背景值随更多染料与蛋白质结合而不断降低，但直线弯曲程度很轻，不影响测定。
此方法干扰物少，研究表明：NaCl，KCl，MgCl2，乙醇，（NH4）2SO4无干扰。
强碱缓冲液在测定中有一些颜色干扰，这可以用适当的缓冲液对照扣除其影响。
Tris，乙酸，2―巯基乙醇，蔗糖，甘油，EDTA及微量的去污剂如Triton X―100，SDS，玻璃去污剂有少量颜色干扰，用适当的缓冲液对照很容易除掉。
但是，大量去污剂的存在对颜色影响太大而不易消除。
试剂与器材一、试剂考马斯亮蓝试剂：考马斯亮蓝G―250 100mg溶于50ml95%乙醇中，加入100ml85%磷酸，用蒸馏水稀释至1000ml，滤纸过滤。
最终试剂中含0.01%(W/V)考马斯亮蓝G―250，4.7%(W/V)乙醇。
二、标准和待测蛋白质溶液1．标准蛋白质溶液结晶牛血清蛋白，预先经微量凯氏定氮法测定蛋白氮含量，根据其纯度用0.15mol/LNaCl 配制成1mg/ml，0.1mg/ml蛋白溶液。
2．未知蛋白质溶液。
三、器材试管及试管架，移液管（0.1ml及5ml），UV－2000型分光光度计。
操作方法一、标准法制定标准曲线取14支试管，分两组按下表a平行操作。
绘制标准曲线：以A595nm为纵坐标，标准蛋白含量为横坐标，在坐标纸上绘制标准曲线。
摇匀，1h内以0号管为空白对照，在595nm处比色二、微量法制定标准曲线取12支试管，分两组按下表b平行操作。
绘制标准曲线：以A595nm为纵坐标，标准蛋白含量为横坐标，在坐标纸上绘制标准曲线。
摇匀，1h内以0号管为空白对照，在595nm处比色三、未知样品蛋白质浓度测定测定方法同上，取合适的未知样品体积，使其测定值在标准曲线的直线范围内。
根据所测定的A595nm值，在标准曲线上查出其相当于标准蛋白的量，从而计算出未知样品的蛋白质浓度（mg/ml）。
注意事项（1）（1）如果测定要求很严格，可以在试剂加入后的5－20min内测定光吸收，因为在这段时间内颜色是最稳定的。
（2）（2）测定中，蛋白－染料复合物会有少部分吸附于比色杯壁上，实验证明此复合物的吸附量是可以忽略的。
测定完后可用乙醇将蓝色的比色杯洗干净。
思考题：根据下列所给的条件和要求，选择一种或几种常用蛋白质定量方法测定蛋白质的浓度：（1）（1）样品不易溶解，但要求结果较准确。
（2）（2）要求在半天内测定60个样品。
（3）要求很迅速地测定一系列试管（30支）中溶液的蛋白质浓度。
实验三、考马斯亮蓝染色法测定蛋白质浓度目的要求1、学会蛋白质含量的测定方法。
2、掌握该测定方法的基本原理和优缺点。
原理考马斯亮蓝(Coomassie Brilliant Blue)测定蛋白浓度，是利用蛋白质一染料结合的原理。
考马斯亮蓝G-250存在着两种不同颜色形式，红色和蓝色。
此染料与蛋白质结合后颜色由红色形式转变成蓝色形式，最大光吸收由465nm变成595nm。
在一定蛋白质浓度范围内，蛋白质和染料结合符合比尔定律(Beer’s law)，因此可以通过测定染料在595nm处光吸收的增加量得到与其结合的蛋白质量。
蛋白质和染料结合是一个很快的过程，约2 min即可反应完全，呈现最大光吸收，并可稳定1 h左右，因此测定过程快速，且不需要严格的时间控制。
蛋白质染料复合物具有很高的消光系数，使得在测定蛋白质浓度时灵敏度很高，在测定溶液中含蛋白质5μg/mL时就有0.275光吸收值的变化，比Lowry法灵敏4倍，测定范围为10-100μg蛋白质，微量测定法测定范围是1-10μg蛋白质。
此反应重复性好，精确度高，线性关系好。
标准曲线在蛋白质浓度较大时稍有弯曲，这是由于染料本身的两种颜色形式光谱有重叠，试剂背景值随更多染料与蛋白质结合而不断降低，但直线弯曲程度很轻，不影响测定。
此方法干扰物少，研究表明:NaCl、KCl、MgCl2、乙醇、(NH4)2SO4不干扰测定。
强碱性缓冲剂在测定中有一些颜色干扰，可以通过适当的缓冲液对照扣除其影响。
Tris、乙酸、α-巯基乙醇、蔗糖、甘油、EDTA、微量的去污剂（如Triton X-100，SDS）和玻璃去污剂均有少量颜色干扰，用适当的缓冲液对照很容易除掉。
但是，大量去污剂的存在对颜色影响太大而不易消除。
由于该法简单、迅速、干扰物质少、灵敏度高，现已广泛应用于蛋白质含量测定。
试剂和器材1试剂(1)标准蛋白质溶液结晶牛血清白蛋白，预先经微量凯氏定氮法或按牛血清白蛋白1%1cmOD=6.6测定蛋白质含量，再用0.15 mol/L NaCl配制成1 mg/mL，0.1 mg/mL蛋白溶液。
(2)考马斯亮蓝试剂考马斯亮蓝G-250 100 mg溶于50 mL 95%乙醇中，加入100 mL 85%磷酸，用蒸馏水稀释至1000 mL，滤纸过滤。
最终试剂中含0.01%(W/V)考马斯亮蓝G-250，4.7%(W/V)乙醇，8.5%(W/V)磷酸。
2.待测样品未知蛋白质溶液，要求蛋白浓度范围为0.1-5 mg/mL，若浓度过高时，需用0.15 mol/L NaCl溶液适当稀释。
3．器材(1)722型分光光度计(2)微量进样器(3)移液管(0.1 mL及5 mL)(4)试管及试管架3．操作方法1．标准法制作标准曲线摇匀，1 h内以0号试管为空白对照，在595nm处比色以OD595nm为纵坐标，标准蛋白含量为横坐标，在坐标纸上绘制标准曲线。
2．微量法制作标准曲线取12支试管，分两组按下表平行操作。
摇匀，1 h内以0号试管为空白对照，在595 nm处比色以OD595nm为纵坐标，标准蛋白含量为横坐标，在坐标纸上绘制标准曲线。
3．未知样品蛋白质浓度的测定测定方法同上，取合适的未知样品体积，使其测定值在标准曲线的直线范围内，根据所测定的OD595nm值，在标准曲线上查出其相当于标准蛋白的量，从而计算出未知样品的蛋白质浓度(mg/mL)。
4．注意事项（1）如果测定要求很严格，可以再试剂加入后的5-20 min内测定光吸收，因为再这段时间内颜色最稳定。
（2）测定中，蛋白-染料复合物会有少部分吸附于比色杯壁上，但此复合物的吸附量可以忽略。
测定完后可用乙醇将蓝色的比色杯洗干净。
思考题1.请详究考马斯亮蓝与蛋白质的呈色原理。
如何进行蛋白质的定量测定。
2.采用该法测定样品的蛋白质含量时，样品中的什么物质对测定结果有干扰？作为标准蛋白的牛血清白蛋白在应用时有何要求。
3.使用分光光度计时，比色皿对所测样品的结果有无影响，该怎样处理？1.常规染色脱色方法：a. 电泳结束后，取凝胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，确保染色液可以充分覆盖凝胶。
b. 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温染色1小时或更长时间。
注：具体的染色时间取决于凝胶的厚度和染色时的温度。
凝胶较厚，温度较低，则染色时间宜适当延长。
凝胶较薄，温度较高，则染色时间可以适当缩短。
通常染色至凝胶的颜色和染色液的颜色非常接近，在染色液中几乎看不清凝胶时，可以认为已染色充分。
染色2-4个小时或更长时间不会对最终的染色效果产生负面影响。
c. 倒出染色液。
染色液可以回收重复使用至少2-3次。
d. 加入适量考马斯亮蓝染色脱色液，确保脱色液可以充分覆盖凝胶。
注：脱色液可以选购碧云天的考马斯亮蓝染色脱色液(P0017C)；如果希望自行配制，推荐的脱色液配方为：40%乙醇，10%乙酸，50％蒸馏水。
也可以使用其它适当的脱色液。
e. 置于水平摇床或侧摆摇床上缓慢摇动，室温脱色4-24小时。
期间更换脱色液2-4次，直至蓝色背景基本上全部被脱去，并且蛋白条带染色效果达到预期。
通常蛋白条带在脱色1-2小时后即可出现。
注：脱色期间可以在脱色液中加入一片吸水纸，可以使部分染料吸附在吸水纸上，加快脱色。
脱色时间过长也会导致蛋白条带的颜色变浅。
f. 完成脱色后，可以把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。
保存在水中的凝胶会发生溶涨。
如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。
长期保存可以制备干胶。
2.快速染色脱色方法：a. 电泳结束后，取胶放入适量考马斯亮蓝染色液中，微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，立即停止加热。
通常对于胶浓度大于10％的胶比较坚韧，在发生煮沸时不易破损；对于胶浓度小于10%的胶，宜尽量避免煮沸，以免出现胶碎裂的情况。
b. 随后在染色液温度较高的情况下，在室温摇床上摇动5-10分钟。
c. 倒出染色液。
染色液可以回收重复使用至少2-3次。
d. 加入适量考马斯亮蓝染色脱色液，确保染色液可以充分覆盖凝胶。
注：脱色液可以选购碧云天的考马斯亮蓝染色脱色液(P0017C)；如果希望自行配制，推荐的脱色液配方为：40%乙醇，10%乙酸，50％蒸馏水。
也可以使用其它适当的脱色液。
e. 微波炉加热至接近沸腾或刚刚沸腾，立即停止加热。
f. 随后在脱色液温度较高的情况下，在摇床上摇动5-10分钟。
此时通常可以观察到比较清楚的蛋白条带。
g. 更换新鲜的脱色液，重复步骤e和步骤f，直至蓝色背景基本上全部被脱去，蛋白条带染色效果达到预期。
h. 完成脱色后，可以把凝胶保存在水中，用于后续的拍照等。
保存在水中的凝胶会发生溶涨。
如需避免溶涨，可以把胶保存在含20%甘油的水中。
长期保存可以制备干胶。
常见问题:1. 常规染色脱色方法和快速染色脱色方法的优缺点？常规染色脱色方法耗时较长，但检测灵敏度更高，染色效果更加稳定。
快速染色脱色方法通常检测灵敏度略低，并且在微波炉加热的过程中有时会出现暴沸导致凝胶碎裂的情况，需特别注意。
