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细胞培养及检测相关技术小结一、细胞培养基配制以1000ml培养基为例。
1000ml成骨细胞培养基 = 850mlα－MEM培养液 + 150 ml 特级胎牛血清FBS (15%)(1). α－MEM powder: 10.2 g/L ~~~ 8.67 g for 850 ml(2). NaHCO3: 2.2 g/L ~~~ 1.87 g for 850 ml(3). Twice distilled water 850 ml, dissolve the powder in water(4). FBS (15%,v/v) 150 ml(5). Filter to sterilized bottle(6). Label the bottle and store in 4℃.Notes: 4,5 should be operated in the sterile working place. And if necessary, we can add some antibiotics into the medium（usually in primary cell culture）. 二、PBS（10×）NaCl: 80g/LKCl: 2g/LNa2HPO4: 14.4 g/LKH2PO4: 2.4 g/LPH=7.4, with HCl or NaOHToo much PO42-is harmful to cell, so only very little amount is necessary. Get some certain to dilute this 10 times concentration PBS when we need.三、胰蛋白酶Trypsin- EDTA 消化液(10×)This solution is used for cell released from the culture flask。
[实验器材] 0.25%胰酶、胎牛血清、F-12培养基、PBS、培养瓶、5ml白枪头、15ml、50ml离心管[实验步骤]1、取出细胞，显微镜下观察细胞形态和密度，确定细胞生长状况，是否需要传代或换液；2、将培养基、PBS、胰酶培养基等预热及超净台消毒结束后，将试剂及细胞等喷酒精后移入超净台，将废液缸喷足酒精移入超净台，取酒精棉放入超净台；3、点燃酒精灯，将瓶口拧松，过火消毒；4、在确定细胞生长状况良好且没有污染的情况下，5、用适量PBS清洗细胞表面，并弃去PBS；6、加入适量胰酶消化细胞，此时可将细胞置于37°C细胞培养箱内消化；待消化完全后，用胰酶2倍体积的完全培养基中止消化，将细胞移入离心管1000rpm，5min离心；7、弃上清，加适量完全培养基吹打混匀细胞(沿壁轻轻吹打24次左右)，按合适比例进行细胞传代，在盖上标记好细胞名称、代数及传代日期并放入孵箱；8、收拾物品，整理实验台，做试验记录，打开超净台和细胞间紫外，30min后关闭细胞的换液[实验器材]培养基、胎牛血清、50ml离心管、5ml白枪头、PBS(白枪头、离心管提前高压)[实验步骤]1、将培养基、PBS、离心管放入超净工作台，紫外灯照射30min。
将胎牛血清从-20℃放入37℃水浴锅内，完全溶解后拿出。
2、用50ml离心管配置适当浓度的血清培养基。
3、将细胞拿出，吸去培养基，用3mlPBS洗2次，各瓶加入4ml血清培养基。
4、整理洁净台！细胞的给药[实验器材]培养基、胎牛血清、50ml离心管、5ml白枪头、PBS(白枪头、离心管提前高压)、皮质酮、咖啡因[实验步骤]1.将培养基、PBS、离心管放入超净工作台，紫外灯照射30min。
将胎牛血清从-20℃放入37℃水浴锅内，完全溶解后拿出。
2.用50ml离心管配置适当浓度的血清培养基。
3.在15ml离心管中配置皮质酮及咖啡因浓度梯度。
4.按2ml/孔加入6孔板中，做好标记。
细胞计数方法------细胞计数板法实验原理：当待测细胞悬液中细胞均匀分布时，通过测定一定体积悬液中的细胞的数目，即可换算出每毫升细胞悬液中细胞的细胞数目。
具体操作：1. 将计数板及盖片擦拭干净，并将盖片盖在计数板。
2. 将细胞悬液吸出少许，滴加在盖片边缘，使悬液充满盖片和计数板之间，静置3min，注意盖片下不要有气泡，也不能让悬液流入旁边槽中。
3. 计算板四大格细胞总数，压线细胞只计左侧和上方的。
然后按公式计算：细胞数/mL=四大格细胞总数/4×104个/ml(注：当细胞很多时，可在四个格中选一定数目较平均的小格，由于每大格中有16个小格，然后计左侧和上方的细胞数，求出每小格的细胞数，取平均值m，m ×16即每个格的平均值。
所以，细胞密度=m×16×104个/ml)说明：公式中除以4，因为计数了4个大格的细胞数。
公式中乘以104因为计数板中每一个大格的体积为：1.0mm（长）×1.0mm（宽）×0.1mm（高）=0.1mm3而 1ml=1000ul=1000mm3（注意：镜下偶见有两个以上细胞组成的细胞团，应按单个细胞计算，若细胞团10%以上，说明分散不好，需重新制备细胞悬液。
）================================================细胞计数板的使用一、血球计数板-基本构造血球计数板是一块特制的厚型载玻片，载玻片上有四个槽构成三个平台。
中间的平台较宽，其中间又被一短横槽分隔成两半，每个半边上面各刻有一小方格网，每个方格网共分九个大格，中央的一大格作为计数用，称为计数区。
计数区的刻度有两种：一种是计数区分为16个大方格（大方格用三线隔开），而每个大方格又分成25个小方格；另一种是一个计数区分成25个大方格（大方格之间用双线分开），而每个大方格又分成16个小方格。
但是不管计数区是哪一种构造，它们都有一个共同特点，即计数区都由400个小方格组成。
细胞计数板计数原理什么是细胞计数板细胞计数板，也称为海姆斯希计数板（Hemocytometer），是一种常用的实验室工具，用于计数和测量细胞数量。
它通常由玻璃制成，具有一个规定大小的网格板和一个盖片，网格板上刻有成规定尺寸的小方格。
通过在细胞计数板上放置细胞样品，然后通过显微镜观察和计数来确定细胞的浓度和数量。
细胞计数板的主要原理细胞计数板的计数原理基于以下几个方面：1. 成浓缩在使用细胞计数板之前，通常需要对细胞样品进行合适的稀释。
这是为了使细胞浓度在可观察范围内，并且避免细胞过于密集而无法准确计数。
通常使用缓冲溶液或染色剂来稀释样品。
2. 通过计数网格来估算细胞浓度细胞计数板的上方刻有一个特定尺寸的计数网格，通常是一个9或16个小方格组成的大方格。
每个小方格都再次划分成16个更小的方格。
通过显微镜观察，将视野对准计数板上的网格，并记录每个小方格中的细胞数量。
3. 统计与浓度计算在细胞计数过程中，对细胞数量进行计数，并记录每个小方格中的细胞数。
然后，将每个小方格中的细胞数加总，根据总数以及某个特定体积的稀释液，可以推算出细胞的浓度。
细胞计数板的使用步骤下面是一般情况下使用细胞计数板的步骤：1.准备样品稀释液：根据细胞样品的浓度，将其使用合适的溶液（比如缓冲溶液）稀释到合适的浓度，使细胞数在500至5000个之间。
2.取一小部分稀释后的细胞样品并将其放置在细胞计数板的装载槽中。
注意不要过量装载以确保细胞在每个小方格中均匀分布。
3.将细胞计数板覆盖盖片，确保细胞在网格上均匀分散。
4.使用显微镜将细胞计数板放置在平台上，并选择适当的放大倍数来观察细胞。
5.计数过程：从一个固定的起点开始，观察每个小方格并记录其中的细胞数。
按照一定的顺序，逐个计算每个小方格中的细胞数并记录。
6.统计计数：将每个小方格中的细胞数加总，并将总数除以小方格的数量得到每个小方格的平均细胞数。
7.计算细胞浓度：通过将每个小方格的平均细胞数乘以稀释液的体积来计算细胞的浓度。
细胞板方法和注意事项
以下是 6 条关于细胞板方法和注意事项的内容：
1. 细胞板的使用呀，就像搭积木一样，得有耐心和技巧呢！比如说在进行细胞培养时，放置细胞板可不能随随便便，得轻轻的、稳稳的，就像呵护小宝宝一样。
你可别用力过猛把它给弄碎了呀！不然一切都前功尽弃啦！
2. 嘿，细胞板方法里面学问可大了去啦！就拿细胞接种来说，那得均匀地把细胞铺在板上，这可不是随便撒撒就行的哦。
你想想看，要是这边一堆那边没有，那不是乱套了嘛！所以一定要仔细认真呀，可别犯糊涂哟！
3. 细胞板的注意事项可不能小瞧呀！好比说保持细胞板的清洁，这就像是给家里做大扫除一样重要。
要是脏兮兮的，细胞能生长好才怪呢！你说对吧？千万不能偷懒不做好清洁这一步呀！
4. 哇塞，细胞板方法如果没掌握好，那可不得了呀！就像做饭时调料放错了，味道全变了。
像细胞培养的条件，温度呀、湿度呀，都得严格把控，不能有一点差错呢，你难道不想把细胞养得健健康康的嘛？
5. 哎呀呀，细胞板的这些注意事项你可得牢记在心呀！比如不要让细胞板受到污染，这就好像保护自己的宝贝不让别人碰到一样。
稍有不慎，整个实验可能就毁了呢！你可别不当回事呀！
6. 细胞板呀，要小心对待它哟！像操作的时候动作得轻柔，不能毛毛躁躁的。
这就跟对待一件珍贵的瓷器一样，稍微粗鲁点就可能损坏啦。
你说是不是得
格外小心呢？总之，一定要重视细胞板的方法和注意事项，这样才能让实验顺顺利利的呀！。
（一）实验前应明确的问题1.选择适当的细胞接种浓度。
一般情况下，96孔培养板的一内贴壁细胞长满时约有105个细胞。
但由于不同细胞贴壁后面积差异很大，因此，在进行MTT试验前，要进行预实验检测其贴壁率、倍增时间以及不同接种细胞数条件下的生长曲线，确定试验中每孔的接种细胞数和培养时间，以保证培养终止致细胞过满。
这样，才能保证MTT结晶形成酌量与细胞数呈的线性关系。
否则细胞数太多敏感性降低，太少观察不到差异。
2.药物浓度的设定。
一定要多看文献，参考别人的结果再定个比较大的范围先初筛。
根据自己初筛的结果缩小浓度和时间范围再细筛。
切记！否则，可能你用的时间和浓度根本不是药物的有效浓度和时间。
3. 时间点的设定。
在不同时间点的测定OD值，输入excel表，最后得到不同时间点的抑制率变化情况，画出变化的曲线，曲线什么时候变得平坦了（到了平台期）那个时间点应该就是最好的时间点（因为这个时候的细胞增殖抑制表现的最明显）。
4.培养时间。
200ul的培养液对于10的4～5次方的增殖期细胞来说，很难维持68h，如果营养不够的话，细胞会由增殖期渐渐趋向G0期而趋于静止，影响结果，我们是在48h换液的。
5.MTT法只能测定细胞相对数和相对活力，不能测定细胞绝对数。
做MTT时，尽量无菌操作，因为细菌也可以导致MTT比色OD值的升高。
6.理论未必都是对的。
要根据自己的实际情况调整。
7.实验时应设置调零孔，对照孔，加药孔。
调零孔加培养基、MTT、二甲基亚砜。
对照孔和加药孔都要加细胞、培养液、MTT、二甲基亚砜，不同的是对照孔加溶解药物的介质，而加药组加入不同浓度的药物。
8.避免血清干扰。
用含15％胎牛血清培养液培养细胞时，高的血清物质会影响试验孔的光吸收值。
由于试验本底增加，会试验敏感性。
因此，一般选小于10％胎牛血清的培养液进行。
在呈色后，尽量吸净培养孔内残余培养液。
（二）实验步骤贴壁细胞：1.收集对数期细胞，调整细胞悬液浓度，每孔加入100ul,铺板使待测细胞调密度至1000-10000孔，（边缘孔用无菌PBS填充）。
细胞培养技巧与注意事项分享细胞培养是生物学研究中常用的实验技术之一，它可以帮助研究人员了解细胞的生理功能、疾病发生机制以及药物的作用机制等。
然而，细胞培养过程中存在着一系列的技巧和注意事项，下面将分享一些经验和建议。
首先，细胞培养的基本步骤包括细胞的分离、传代和培养。
在细胞分离过程中，要注意使用合适的酶或缓冲液来解离细胞，避免对细胞造成损伤。
此外，细胞的传代过程中需要注意细胞密度的控制，过高的细胞密度会导致细胞凋亡或细胞间的竞争，影响细胞的生长和健康状态。
其次，培养基的选择也是细胞培养中的重要环节。
常用的培养基包括DMEM、RPMI-1640、MEM等，不同类型的细胞需要选择适合其生长的培养基。
此外，培养基中添加适量的血清、生长因子和抗生素等物质，可以提供细胞所需的营养和生长因子，并抑制细菌和真菌的污染。
细胞培养过程中，细胞的环境条件也需要合理控制。
细胞需要在适宜的温度、湿度和二氧化碳浓度下生长。
常见的细胞培养箱可以提供恒温、恒湿和恒气体环境，确保细胞处于最佳的生长状态。
此外，细胞的培养器皿也需要选择适合的类型，如培养皿、培养瓶、多孔板等，以满足不同实验需求。
细胞培养中还需要注意细胞的检测和鉴定。
细胞的纯度和活性对实验结果的准确性和可靠性有着重要的影响。
常用的方法包括细胞形态观察、细胞计数、细胞凋亡检测、细胞周期分析等。
此外，细胞的鉴定也需要通过免疫组化、PCR等技术来确认细胞的种类和来源。
在细胞培养中，细胞的污染是一个常见的问题。
细胞的污染来源包括细菌、真菌、支原体、病毒等。
为了避免细胞的污染，需要在实验室中建立严格的无菌操作规范，使用无菌器皿和试剂，并定期对培养环境进行消毒和清洁。
此外，细胞培养中的实验数据的记录和管理也是非常重要的。
及时、准确地记录实验操作步骤、培养条件和结果，有助于实验的重复性和可比性。
同时，对细胞的来源、传代次数和培养时间等信息进行管理，可以避免实验数据的混乱和错误。
细胞培养作为一项基础的实验技术，对于生物学研究具有重要的意义。
