猕猴桃试验报告
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猕猴桃试验报告
《农产品贮运学》综合性贮藏实验报告——保鲜剂对猕猴桃（海沃德）贮藏⽣理与品质的影响
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《农产品贮运学》综合设计性性贮藏实验报告——1-MCP对猕猴桃（海沃得）贮藏品质与采后⽣理特性⼀．实验⽬的、实验要求、实验意义：1.实验⽬的
运⽤本课程所学的贮藏原理和实验检测⽅法，设计⼀套完整的果实贮藏⽅案，利⽤现有的各种检测⼿段，观察和分析贮藏中果实的⽣理⽣化动态变化和不同环境条件对果实的影响，初步掌握果蔬贮藏的基本原理和实验⽅法。2.实验要求
2.1 本实验是《农产品贮运学》课程的综合实践内容，涉及到过去所学的许多相）关理论和检测⽅法，因此，实验过程中必须参阅课本和相关专业资料，提⾼分析问题和解决问题的能⼒。2.2实验均在课余时间进⾏，每位同学要在安排的时间内分组完成每⼀次实验内容，不得⽆故迟到、缺席。
2.3检测内容较多，实验延续时间较长，要求每位同学做好每次试验的原始记录，以便资料整理和分析。
2.4进⼊实验室后，必须遵守实验室管理制度，注意安全，爱护公物，并⾃觉保持实验室的卫⽣。
3.实验意义
通过本次实验，可以学到以下⼏点：A.对实验前相关⾃资料的查阅、实验的设计、实验内容的测定以及实验后资料的整理、实验报告的完成等⼀系列的⼯作的进⾏，可以提⾼我们分析问题和解决问题的能⼒。也可以提⾼我们的创造性和动⼿能⼒，巩固所学的专业知识，掌握科学研究的基本⽅法。B.了解1－MCP处理对猕猴桃贮藏期的⽣理作⽤，掌握猕猴桃的贮藏⽅法，巩固所学理论知识。可把研究成果⽤于实践，对猕猴桃的⽣产、贮藏及其运输将产⽣重⼤影响，同时对我国的国民经济发展和社会主义新农村建设具有重⼤的指导意义。
⼆、贮藏实验设计1. 供试原料：海沃德品种新鲜猕猴桃（市售）质量描述：猕猴桃是绿⾊的，软⽑，果⾁呈黄⾊，果实较硬，有⼋九成熟。
2．使⽤药品：本次实验所⽤保鲜剂是选⽤台湾利统公司产的1-MCP ⽚剂，经75L的熏蒸容器处理0.26g的1-MCP 11⼩时配制⽽成的⾼效、⽆毒的专⽤保鲜剂。1－MCP具有与⼄烯受体结合的性质，且其与⼄烯结合的情况不⼀样。它与受体结合后，受体并不失去催熟、促进⽼化的抑制功能。另外，由于该物质⽐⼄烯更易与⼄烯受体结合，故在与⼄烯同浓度时，保鲜剂⾸先与⼄烯受体结合。这样，当⽤保鲜剂处理果品时，由于果实中⼄烯受体与保鲜剂结合，致使⼄烯⽆法与其受体结合，从⽽抑制了催熟、促进⽼化的作⽤。
当⼄烯受体与⼄烯结合就丧失了功能，⽽未与⼄烯结合或与保鲜剂结合时则可对催熟和⽼化具有“闸门”的功能。鉴此，当保鲜剂结合的⼄烯受体存在时，会产⽣新的⼄烯受体并欲与⼄烯结合，此时，与保鲜剂结合的受体就会起到“闸门”的作⽤，抑制果实的成熟与⽼化。以后，待与保鲜剂结合的⼄烯受体发⽣分解后，新的⼄烯受体才能与⼄烯结合，才开始催熟或⽼化。这样，保鲜剂可较长时间达到保鲜效果．3.试验设计：不处理与1－MCP处理
分别将未处理对照组和处理组（⽼师实验前处理好的猕猴桃）在室温下⽤0.02mmPVC纳⽶保鲜袋密封包装，常温下贮藏在纸箱内，待对照完全成熟后结束实验。每三天检测⼀次。
检测内容：检测的内容是对处理和对照猕猴桃的营养成分的测定、品质测定、⽣理指标的测定及观察记录。a.果实原料营养成分测定：
●总糖含量（%）——蒽酮法
●有机酸含量（%）——中和法
●还原性抗坏⾎酸含量（mg/100g）——碘滴定法
b.果实采后⽣理及其它指标测定：
●呼吸强度（CO
2mg/kg.h）——红外线CO
2
分析仪
●贮藏环境CO
2/O
2
⽓体浓度（%）——⽓体测定仪
●果⾁硬度（kg/cm2）——果实硬度计
●果⽪⾊（L.a.b）——测⾊⾊差计
●果实失⽔率（%）——重量计算法
●贮藏环境温湿度变化——每次观察记载
c.营养成分的测定取2个猕猴桃进⾏营养成分测定，主要包括对猕猴桃中总糖、有机酸、维⽣素C(Vc)的测定。（对贮藏前和贮藏完成后的猕猴桃进⾏两次测定）
三、实验测定的具体⽅法：1.有机酸的测定——中和法：
称取均匀样品20克，置研钵中研碎，⽤漏⽃转⼊200毫升容量瓶中，加蒸馏⽔⾄刻度。混合均匀后，⽤棉花或滤纸过滤。
吸取滤液20毫升放⼈三⾓瓶中，加酚酞指⽰剂2滴，⽤0.1摩尔/升NaOH 标准溶液滴定，⾄初呈淡红⾊在半分钟内不褪⾊为⽌，记下氢氧化钠⽤量。重复三次，取其平均值。然后根据NaOH的⽤量计算出含酸量。
计算公式为：含酸量%=(VNaOH
×0.0936×0.064/20)×(250/25)×1002. 总糖的测定——蒽酮分光光度法：
（1）．测有机酸剩下的溶液，在贴有滤纸的漏⽃中进⾏过滤于⼲燥的⼩烧杯中5毫升左右，吸取1毫升的滤液加⼊100毫升容量瓶中定容。
（2）．吸取1毫升滤液放⼊1号试管再加⼊1毫升⽔和6毫升蒽酮，另⼀试管（2号）加2毫升⽔和6毫升蒽酮，都放⼊⽔浴锅（100℃）⽔浴3–5分钟，冷却备⽤。
（3）．进⾏⽐⾊测定吸光度3．维⽣素C的测定——碘液法：
称取的20克样品放在研钵中，加2%盐酸5～10ml，研磨成浆状。然后将研钵中的样品移⼊100ml容量瓶中，⽤2%盐酸稀释定容，充分摇匀，静置⽚刻再⽤双层纱布滤⼊烧杯中备⽤。在100ml的烧杯中，⽤移液管移⼊1%KI液0.5ml，0.5%淀粉液2ml，制备的样品试液5ml，再加蒸馏⽔2.5ml。⽤0.001NKIO3液滴定，⾄微兰⾊且1分钟不褪⾊为终点。记录所⽤KIO3液毫升数，重复3次取平均值计算维⽣素C含量。
计算公式： W=(V×0.0725)/B×(b/a) ×100W---100克样品中含抗坏⾎酸毫克数
毫克数V---滴定样品所⽤的KIO
3
0.0725---1毫升0.001N碘酸钾溶液相当于抗坏⾎酸的量（mg/ml）
B---滴定时所⽤样品液毫升数
b---制成样品液的总毫升数
a---样品克数
4. 可溶性固形物的测定——仪器法：
把去⽪的猕猴桃切碎，⽤纱布包裹挤汁，滴到⽤⾃来⽔校零过的⼿持折光仪检测部位，盖好后迎着光源读数5．果实硬度的测定——仪器法：
（1）取果实2个，在果实中部对应两⾯⽤⼩⼑薄薄地削去直径为12毫⽶果⽪，尽可能少损伤果⾁。
（2）将果实硬度计的探头垂直地对准果⾯测试处，缓慢施加压⼒，使测头插⼊果实，深⼊⾄规定的标线为⽌，从指⽰器上直接读数即为果实的硬度。
（3）读取读数，以每平⽅厘⽶⾯积上承受压⼒的千克数来表⽰千克⼒/厘⽶2（应换算成1千克⼒/厘⽶2＝98.0665千帕），注明测头直径数，取其平均值。压⼒愈强即果实硬度愈⼤，成熟度越低，也愈耐贮藏。记录实验结果，计算果⾁平均硬度。
{测果实硬度的仪器如图所⽰}
6.果⽪颜⾊的测定——仪器法：
先在选定⽤来测颜⾊的2个猕猴桃上画8个直径约⼆⼗厘⽶的圈并逐个编上号码（1.2.3……），在如下图所⽰的测⾊⾊差计上进⾏果⽪颜⾊的测定
7.袋内O
2/CO
2
⽓体浓度的测定）——仪器法：
针筒注⼊法：⽤针筒（20～30毫升）取样，针筒经⼲燥器后抽⽓，第⼀次抽⽓⽓样必须排掉，以清洗⼲燥器和针筒内上次样品的残余⽓体。第⼆次抽取⽓
后，从仪器⽓样进⼝（在后板上）经短的连接管相连，均匀地将⽓样注⼊仪器，待读数稳定后先读氧⽓的百分含量，后读⼆氧化碳的百分含量。8.果实呼吸强度的测定——仪器法：
⽤红外线CO2分析器（GXH-3010D型）测定，开机预热半⼩时以上，然后把待测猕猴桃，密封⼊样品室中，置于⼀定温度下测定，待数值稳定后，记录仪器读数ppm （如下图所⽰测定果实呼吸强度的仪器：）
四、实验结果与分析讨论1．总糖：猕猴桃测量总糖的公式：y=0.3+3.0275x猕猴桃总糖含量测定数据表
由上表可知：糖类物质贮藏后较贮藏前有明显的增长，通常果实在贮藏前期
内部的淀粉转化成可溶性糖，可溶性固性物有所增加以补充呼吸作⽤消耗能量，但随着果实呼吸作⽤趋于旺盛，尤其是贮藏后期淀粉转化成糖远不⾜于补充呼吸消耗，可溶性糖的含量回逐渐降低。2．有机酸：
猕猴桃有机酸含量数据表
由上表可知：有机酸的含量在贮藏前和贮藏后的含量相当，未出现⼤的含量波动。3.Vc还原性抗坏⾎酸含量的测定表
由上表可知：维⽣素C物质在贮藏前的含量⾼于贮藏后的，可见经过贮藏维⽣素C含量均损失，处理组中的维⽣素C含量稍⾼于对照组的。
猕猴桃中总糖，有机酸，Vc
图⼀4.可溶性固形物含量：
可溶性固形物含量，贮藏后⽐贮藏前减少了，可能是由于猕猴桃⾃⾝的⽣理代谢变化⽽导致可溶性固形物⽤于呼吸和⽣理成熟。5.果⽪颜⾊变化：
颜⾊数据中L（亮度）、 a（＋a红/－a绿）、b（＋b黄/－b蓝）变化情况如下猕猴桃果⾁颜⾊变化
-20
0204060
由此表可以得出：猕猴桃果⽪的L ，a ，z 逐渐减⼩，随着贮藏天数的推移，果⽪颜⾊逐渐由暗到明，由绿变红，由蓝变黄。6.袋内CO 2 /O 2⽓体变化：（如下图所⽰）
猕猴桃储藏中CO2/O2的变化
00.050.10.150.20.250.30.350.40.450.52007年11⽉20⽇
2007年11⽉21⽇2007年11⽉22⽇2007年11⽉23⽇
2007年11⽉24⽇2007年11⽉25⽇
2007年11⽉26⽇2007年11⽉27⽇2007年11⽉28⽇
2007年11⽉29⽇2007年11⽉30⽇
2007年12⽉1⽇2007年12⽉2⽇2007年12⽉3⽇
2007年12⽉4⽇2007年12⽉5⽇
2007年12⽉6⽇2007年12⽉7⽇2007年12⽉8⽇
2007年12⽉9⽇2007年12⽉10⽇
2007年12⽉11⽇2007年12⽉12⽇2007年12⽉13⽇
2007年12⽉14⽇
⽇期
百分⽐
图三
由图三可知，猕猴桃贮藏袋中⽓体成分的⽐例发⽣着很⼤的变化。在实验开始后⼗天左右，处理组袋内⽓体⽐例达到最⾼⽐值。之后在11⽉29⽇⼜突降到最低值，以后⼜有所回升。未处理组则在12⽉2⽇达到⾼峰，鉴于最主要原因是袋内猕猴桃进⾏呼吸作⽤，消耗O 2，呼出CO 2。在不同的时间段内，呼吸程度有所不同，直接产⽣不同的⽐值。7.果实呼吸强度的变化：
果实呼吸强度的变化：由图4可知，对照组与处理组的呼吸强度有着相同的变化趋势，在整个实验过程中（11⽉14⽇--12⽉14⽇），处理组的呼吸强度和未处理组的呼吸强度值始终互相交叉，并且在实验开始前达到⾼峰，最后⼜在11⽉24⽇⼆者同时出现⼀个⼩的呼吸⾼峰。11⽉30⽇出现最低值
呼吸强度（mgCO2/kg ．h ）
