血培养采集的方法及注意事项 ppt课件
- 格式：pptx
- 大小：23.01 MB
- 文档页数：11
下载文档原格式
合集下载
血标本的正确采集和留取PPT课件
注意事项
• 3.严禁在输液、输血的针头处抽取血标本，以免影 响检验结果。应在对侧肢体采取。 • 4.同时抽取几个项目的血标本时，一般先注入血培 养瓶，其次注入抗凝管，最后注入干燥试管，动作 需迅速准确。 • 5. 应尽量不使用止血带，如必须使用止血带，应在 1分钟内采血，看到回血马上解开止血带。
.
LOGO
THANK
YOU
SUCCESS
2019/4/15
血标本的正确采集和留取
陈婷婷
LOGO
标本采集的原则
1 2
遵照医嘱
充分准备：
1）患者准备 2）用物准备 3）护士自身准备
3
严格查对：
检查项目、患者姓名、床号、住院 号
4
正确采集：
方法、时间、量、容器
5
及时送检
静脉血标本
测定血沉及血液中某种物质含量，如血 糖、尿素氮、肌酐、尿酸、肌酸、血氨 ；
全血标本
血清标本
测定血清酶、脂类、电解质、肝功能等 ；
血培养标本
培养、检测血液中的致病菌。
静脉血标本
全血标本：
紫色—— EDTA抗凝管 紫色头盖，乙二胺四乙 酸（EDTA，分子量292）及其盐是一种氨基多羧基酸，可以有 效地螯合血液标本中钙离子，螯合钙或将钙反应位点移去将阻 滞和终止内源性或外源性凝过程，从而防止血液标本凝固。血 常规，2ml 蓝色—— 枸橼酸钠凝血试验管 浅蓝头盖，枸橼 酸钠主要通过与血样中钙离子螯合而起抗凝作用。国家临订实 验室标准化委员会推荐的抗凝剂浓度是3.2%或3.8%，抗凝剂与 血液的比例为1：9。止凝血，2ml 黑色——枸橼酸钠血沉试验管 黑色头盖，血沉 试验要求的枸橼酸钠浓度是3.2%(相当于0.109mol/L)抗凝剂与 血液的比例为1：4。 血沉，2ml 如用注射器采血，取下针头，将血液顺管壁缓慢注入有抗凝剂 的试管内，及时、充分、轻轻颠倒混匀至少5-8次以上使血液 与抗凝剂充分混合，避免血液凝固。
血培养标本的正确采集课件
指导用药
通过血培养和药敏试验，医生可以了解病原微生物的耐药性，选择 敏感的抗生素进行治疗，提高治愈率。
评估病情
血培养的结果可以反映病情的严重程度和病程进展情况，帮助医生 评估治疗效果和调整治疗方案。
血培养标本采集的发展前景和研究方向
自动化采集技术
01
随着技术的发展，自动化血培养系统逐渐应用于临床，能够提
如采血时用力拍打采血部位、在输液时从输液侧 采血、在同侧手臂同时采血和输液等，可能导致 培养结果不准确。应避免这些不规范操作，确保 采血过程严格遵守无菌原则。
04 血培养标本采集的临床 应用和价值
血培养标本采集在临床中的应用
诊断感染性疾病
血培养是诊断血液感染性疾病的 重要手段，通过培养血液中的病 原微生物，可确诊败血症、菌血
症等严重感染性疾病。
指导抗生素治疗
血培养可以帮助医生了解病原微生 物的种类和药敏情况，从而指导抗 生素的选择和使用，提高治疗效果。
监测治疗效果
通过定期进行血培养检查，可以监 测治疗效果，判断病情是否好转或 恶化，及时调整治疗方案。
血培养标本采集对临床诊断和治疗的价值
明确诊断
血培养能够直接检测到血液中的病原微生物，为临床医生提供确 切的诊断依据，避免误诊和漏诊。
阳性检出率。
采集部位ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
通常选择肘静脉或股静脉作为 采集部位，以保证充足的血量 和避免局部感染。
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则，避免污染，减少外界 细菌的混入。
采集量
根据不同培养瓶的要求，采集 适量血液，一般为8-10ml。
采集后标本的保存和处理
及时送检
采集后的血培养标本应尽快送检，避 免长时间放置导致细菌繁殖或死亡。
通过血培养和药敏试验，医生可以了解病原微生物的耐药性，选择 敏感的抗生素进行治疗，提高治愈率。
评估病情
血培养的结果可以反映病情的严重程度和病程进展情况，帮助医生 评估治疗效果和调整治疗方案。
血培养标本采集的发展前景和研究方向
自动化采集技术
01
随着技术的发展，自动化血培养系统逐渐应用于临床，能够提
如采血时用力拍打采血部位、在输液时从输液侧 采血、在同侧手臂同时采血和输液等，可能导致 培养结果不准确。应避免这些不规范操作，确保 采血过程严格遵守无菌原则。
04 血培养标本采集的临床 应用和价值
血培养标本采集在临床中的应用
诊断感染性疾病
血培养是诊断血液感染性疾病的 重要手段，通过培养血液中的病 原微生物，可确诊败血症、菌血
症等严重感染性疾病。
指导抗生素治疗
血培养可以帮助医生了解病原微生 物的种类和药敏情况，从而指导抗 生素的选择和使用，提高治疗效果。
监测治疗效果
通过定期进行血培养检查，可以监 测治疗效果，判断病情是否好转或 恶化，及时调整治疗方案。
血培养标本采集对临床诊断和治疗的价值
明确诊断
血培养能够直接检测到血液中的病原微生物，为临床医生提供确 切的诊断依据，避免误诊和漏诊。
阳性检出率。
采集部位ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
通常选择肘静脉或股静脉作为 采集部位，以保证充足的血量 和避免局部感染。
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则，避免污染，减少外界 细菌的混入。
采集量
根据不同培养瓶的要求，采集 适量血液，一般为8-10ml。
采集后标本的保存和处理
及时送检
采集后的血培养标本应尽快送检，避 免长时间放置导致细菌繁殖或死亡。
血培养标本采集-课件(演示)图文
注射器抽取： 用注射器无菌穿刺取血 后，勿换针头直接注入 组培养瓶。
轻轻混匀以防凝固!
血标本采集的量
患儿 体重kg
患儿 总血量ml
推荐
占患儿总血量
培养血量ml 的百分比%
≤1 1.1-2 2.1-12.7 12.8-36.3 ›36.3
50-99 100-200
› 200 ›800 ›2200
2 2 4 10 20-30
采血时机
血 培 养 的 采 集 ？
寒战和发 热初期
使用抗菌 药物前
停药6-8小 时后或下 次用药前
采集步骤
准备血培养瓶
保持手的卫生
Text2
Text1
Text5
皮肤消毒
Text3
Text4
抽取血标本
血标本采集的 量
保持手的卫生
洗手
手消毒
准备血培养瓶
检查培养瓶无渗漏破裂 Nhomakorabea有效期
Cycle name
注意事项
❖ 在使用抗菌药物之前采集标本，应注明标本采集 时间，精确到小时
❖ 标本采集过程中必须严格无菌操作，以免将污染 菌误以为病原菌
❖ 要保证足够的标本量，以提高血液培养阳性 ❖ 根据患者的具体情况，采用不同的培养瓶，危重
患者可同时采用多种培养瓶，以免漏检，必要时 增加送检次数
讨论
存在问题
假阳性：
培养液 清澈
污染 用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60S，待干
皮肤消毒
❖ 用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，直径达 8cmX10cm以上，30秒待干后采血。
❖ 采血部位通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌 药物的静脉处采血。
抽取血标本
采血针： 持穿刺针按常规方法刺入 静脉，另一头刺入相应血 培养瓶内，利用瓶内真空 抽取血标本
血培养标本的正确采集95470ppt课件
3. 白细胞增多（＞ 10×109/L，特别有“核左移”
4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L ）
5. 血小板减少
Hale Waihona Puke 6. 皮肤、粘膜出血7. 昏迷
8. 多器官衰竭
精选ppt
建议：每套血培养同时接种至需氧瓶和
厌氧瓶，有利于需氧菌和厌氧菌的检出。 当厌氧菌感染不能除外的病人，如腹部手 术合并感染的病人，必须同时做厌氧菌血 培养。但如果不能满足推荐的采血量时， 应首先满足需氧瓶。
血培养标本的正确采集
精选ppt
什么是血培养
将新鲜离体的血液标本接种于营养培 养基上，在一定温度、湿度等条件下，使 对营养要求较高的细菌生长繁殖并对其进 行鉴别，从而确定病原菌的一种人工培养 法。用于菌血症、败血症及脓毒败血症的 病因学诊断。一般需要5-7天,才能出报告。
精选ppt
血培养标本的采集
精选ppt
血培养采集的SOP
▪ 时间 ▪ 数量 ▪ 方法 ▪ 血量 ▪ 运送
精选ppt
血培养采集SOP—时间
1．尽可能在抗菌药物使用前 2．下次用药前采集 3．寒战和发热初期时采血可提高培养阳性率 4．怀疑血流感染时应尽早采血，无需体
温超过39℃才抽血，避免错过时机
精选ppt
血培养采集SOP—数量
A. 推荐采集2-3套血培养(同时或间隔30min～ 1h ）
B. 感染性心内膜炎或金黄色葡萄球菌菌血症应 在48-96 小时重复培养
精选ppt
血培养采集SOP—方法
▪ 手卫生：洗手或手消毒 ▪ 准备血培养瓶：破损？保质期？渗漏？污染？
内部隔膜盖并非是无菌的， 75%酒精，60s ▪ 皮肤消毒：碘酊30S 直径5cm ▪ 不同部位外周静脉血 ▪ 轻摇瓶子以防血液凝固
血培养标本采集课件
采血过程中的无创检测技术
01
02
03
无创检测技术能够减少采血过 程中的创伤和痛苦，提高患者 的舒适度。
无创检测技术能够实时监测患 者的生理参数，为临床提供更 全面的诊断信息。
无创检测技术的发展将有助于 推动医疗技术的进步，提高医 疗水平。
THANKS
解决方案
选择合适的采血部位，避免在皮 肤破损、炎症、疤痕等处采集血 液，同时注意采血针的深度适中
。
采血时机不正确
01
总结词
采血时机不正确可能影响培养结果，如发热时采集可能增加污染菌的检
出率。
02
详细描述
发热时，体内白细胞增多，可能将污染菌误认为是病原菌；而使用抗菌
药物后，可能抑制病原菌生长，导致假阴性结果。
血培养标本采集过程中，需要注意采集时间、采血量、采血 部位以及防止污染等方面的要求，以保证培养结果的准确性 。
抗生素疗效的评估
在使用抗生素治疗血液感染的过程中，血培养可以用于评 估抗生素的疗效。通过定期采集血液样本进行培养，可以 观察病原体数量的变化情况，从而判断抗生素是否有效， 为调整治疗方案提供依据。
05
血培养标本采集的未来发展
自动化采血设备的研究和应用
01
自动化采血设备能够提高采血效率，减少人为 误差，是未来发展的趋势。
02
自动化设备能够实现快速、准确的血样采集， 减少患者等待时间。
03
自动化设备的应用将有助于提高采血质量，为 临床提供更可靠的诊断依据。
个性化采血方案的发展
根据患者的具体情况制定个性化的采血方案，能够更好地满足临床需求。 个性化采血方案能够提高采血效果，减少不必要的采血操作。 个性化采血方案的发展将有助于提高医疗质量和患者满意度。
血培养标本如何正确采集 PPT
可以互相讨论下，但要小声点
怀疑与导管有关的血行感染时：
拔除导管------两份外周血标本+导管培养
保留导管-------一份外周血+一份导管采血 （间隔时间≦5分钟）
血培养采集SOP—血量
♫成人血培养的标本量为8-10ml
两小时内
假阳性：污染率：3%-5% 干预：抽取标本前、中、后严 格遵守无菌 操作规程
血培养采集SOP—时间
1．尽可能在抗菌药物使用前 2．下次用药前采集 3．寒战和发热初起时采血可提高培养阳性
率 4．怀疑血流感染时应尽早采血，无需体
温超过39℃才抽血
推荐采集2-3套血培养(同时或间隔）
感染性心内膜炎或金黄色葡萄球菌菌血症应 在48-96 小时重复培养
大家有疑问的，可以询问和交流
血培养标本如何正确采集
♫血培养标本采集的意义 ♫如何采集 ♫目前存在的感染严重威胁患者的生命 明确诊断是何种病原菌感染 减少抗菌药物的误用和滥用 大大地改善患者的预后 降低患者的病死率，减少医疗花费
1. 发热 ＞38℃ 低温＜36℃ 2. 寒战 3. 白细胞增多（ ＞ 10×109/L，特别有“核左移”） 4. 粒细胞减少 5. 血小板减少 6. 皮肤、粘膜出血 7. 昏迷 8. 多器官衰竭 9. 血压降低 10. 呼吸加快
假阴性： 标本凝固 （轻摇） 标本量不够（1：10） 在用药的一边静脉抽取 （避开） 大剂量用抗生素后抽取标本（避开） 大剂量应用激素（避开）
细菌培养基及培养过程
♫ 高热时抽？ ♫ 标本常温下阳性率高？ ♫ 标本冷藏？
♫换针头？ ♫烧瓶口？
怀疑与导管有关的血行感染时：
拔除导管------两份外周血标本+导管培养
保留导管-------一份外周血+一份导管采血 （间隔时间≦5分钟）
血培养采集SOP—血量
♫成人血培养的标本量为8-10ml
两小时内
假阳性：污染率：3%-5% 干预：抽取标本前、中、后严 格遵守无菌 操作规程
血培养采集SOP—时间
1．尽可能在抗菌药物使用前 2．下次用药前采集 3．寒战和发热初起时采血可提高培养阳性
率 4．怀疑血流感染时应尽早采血，无需体
温超过39℃才抽血
推荐采集2-3套血培养(同时或间隔）
感染性心内膜炎或金黄色葡萄球菌菌血症应 在48-96 小时重复培养
大家有疑问的，可以询问和交流
血培养标本如何正确采集
♫血培养标本采集的意义 ♫如何采集 ♫目前存在的感染严重威胁患者的生命 明确诊断是何种病原菌感染 减少抗菌药物的误用和滥用 大大地改善患者的预后 降低患者的病死率，减少医疗花费
1. 发热 ＞38℃ 低温＜36℃ 2. 寒战 3. 白细胞增多（ ＞ 10×109/L，特别有“核左移”） 4. 粒细胞减少 5. 血小板减少 6. 皮肤、粘膜出血 7. 昏迷 8. 多器官衰竭 9. 血压降低 10. 呼吸加快
假阴性： 标本凝固 （轻摇） 标本量不够（1：10） 在用药的一边静脉抽取 （避开） 大剂量用抗生素后抽取标本（避开） 大剂量应用激素（避开）
细菌培养基及培养过程
♫ 高热时抽？ ♫ 标本常温下阳性率高？ ♫ 标本冷藏？
♫换针头？ ♫烧瓶口？
血培养采集ppt课件
和可靠性。
5. 结果分析与应用
1. 结果分析：当血培养出现阳性报警时，需 要进行涂片显微镜检查，确认是否为污染或 病原菌生长。同时，对不同时间采血的结果 进行对比分析，以确定真正的感染菌。 2. 结果应用：根据血培养检测结果，医生可 以制定更加准确的治疗方案，选择适当的抗 菌药物，并评估病情严重程度。同时，血培 养结果还可以用于监测治疗效果和评估预后 情况。
3. 防止交叉感染措施
01
1. 采血过程需严格无菌操作， 采血容器必须经过灭菌处理。
03
3. 采血针头需注意检查，保 证其性能和质量。
02
2. 采血针头必须一次使用， 严禁多次使用，避免交叉感 染。
04
4. 在采集血样前、中、后都 需要对手部进行消毒，并保 持手部清洁干燥。
05
5. 采集的血样必须及时送检， 避免长时间放置，防止污染。
在无菌试管中。
3. 标本保存温度与时间
血培养标本采集后，应在尽可能短的时 间内送至实验室。未开封的培养瓶应储 存在15~25℃的环境中，并尽快转送至 实验室。若实验室无法及时处理，应暂 时保存于4℃的环境中，若时间超过48 小时，则需移至2~8℃的环境中储存。 如果储存时间超过一周，则需将培养瓶 转移至低温冰箱，以避免培养瓶内细菌 的生长。
检测结果的准确性。
2. 运输时间
运输时间应为3~7天。对 于已经采取保存措施的冷 冻血液样品，可在血液温 度高于60℃的情况下进行
长时间运输。
3. 运输方式
可以选择血清或红细胞血清采集离心法。离心 管放置之前应该调整针芯转速并掌握旋转温度 控制技术。离血清速度可根据机器的性能而有 所区别，保存菌血症套要高速分离防止分层现 象出现。血培养检测采血部位一定要做好记录。 采血应执行正常的无菌操作程序，血液应存放
抽取血培养的流程及注意事项ppt课件
▪ 3．怀疑菌血症或真菌菌血症，血培养结果持续阴性，应 改变学培养方法，以便获得罕见的或苛养的微生物。 4．感染性心内膜炎，对急性心内膜炎患者1h（2h内）采 集3份血培养，如果所有结果24h后阴性，再采集3份血培 养瓶。入院前两周内接受抗生素治疗的患者，连续三天采 集血培养，每天2份。
精品课件
17
精品课件
11
▪ 11、脱去手套，再次核对，协助患者取合适卧位， 整理床单位。
▪ 12、整理用物，洗手。在培养瓶上填写抽血的时 间、部位。
▪ 13、及时将标本送检。
如用无菌采血针，可在穿刺见回血后直接把尾 部插入消毒后血培养瓶中，其余步骤同上。
精品课件
12
七、标本运送
▪
血培。养瓶应在2小时内送至实验室，延迟上机
16
对特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议：
▪ 1．怀疑原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、 关节炎或肺炎的患者：应立即采集2或3份血培养瓶，快速 进行血培养。
▪ 2．不明病源的发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热：发 热开始采集2或3份血培养。24h至36h后，估计温度升高之 前（通常在下午）立即采集2份以上血培养。
▪ 2、常规血培养不宜从静脉导管或静脉留置装置取血，为什么？ ——污染菌或定植菌的可能性较大，除非怀疑CRBSI
▪ 3、如果需要从导管处取血，初段血或导管内的补液是否需要弃去？为什么？ ——不能弃去，以便于判断污染菌、定植菌或病原菌
▪ 4、如果用注射器采血，采好后注入血培养瓶之前是否需要更换针头？为什 么？
➢ 免疫功能低下的患者
精品课件
4
➢ 多器官衰竭
➢ 血压降低
➢ 昏迷
➢ 降钙素原升高（PCT）
➢ C反应蛋白升高（CRP）
精品课件
17
精品课件
11
▪ 11、脱去手套，再次核对，协助患者取合适卧位， 整理床单位。
▪ 12、整理用物，洗手。在培养瓶上填写抽血的时 间、部位。
▪ 13、及时将标本送检。
如用无菌采血针，可在穿刺见回血后直接把尾 部插入消毒后血培养瓶中，其余步骤同上。
精品课件
12
七、标本运送
▪
血培。养瓶应在2小时内送至实验室，延迟上机
16
对特殊的全身性和局部感染患者采集血培养的建议：
▪ 1．怀疑原发性菌血症、真菌菌血症、脑膜炎、骨髓炎、 关节炎或肺炎的患者：应立即采集2或3份血培养瓶，快速 进行血培养。
▪ 2．不明病源的发热，如隐性脓肿，伤寒热和波浪热：发 热开始采集2或3份血培养。24h至36h后，估计温度升高之 前（通常在下午）立即采集2份以上血培养。
▪ 2、常规血培养不宜从静脉导管或静脉留置装置取血，为什么？ ——污染菌或定植菌的可能性较大，除非怀疑CRBSI
▪ 3、如果需要从导管处取血，初段血或导管内的补液是否需要弃去？为什么？ ——不能弃去，以便于判断污染菌、定植菌或病原菌
▪ 4、如果用注射器采血，采好后注入血培养瓶之前是否需要更换针头？为什 么？
➢ 免疫功能低下的患者
精品课件
4
➢ 多器官衰竭
➢ 血压降低
➢ 昏迷
➢ 降钙素原升高（PCT）
➢ C反应蛋白升高（CRP）
血培养标本采集课件(PPT演示)
06
血培养标本采集的临床应用与展望
血培养标本采集在临床诊断中的应用
诊断感染性疾病
血培养是诊断感染性疾病的金标准， 通过培养血液中的病原微生物，可帮 助医生确定感染的病原体类型，为后 续治疗提供依据。
指导抗生素选择
通过血培养结果，医生可以了解病原 微生物对不同抗生素的敏感性和耐药 性，从而选择敏感抗生素进行治疗， 提高治疗效果并减少耐药性的产生。
采集人员培训
定期对采集人员进行培训， 提高其操作技能和安全意 识。
采集物品准备
01
02
03
04
血培养瓶
选择适当的血培养瓶，如需同 时检测需氧和厌氧菌，应准备
两种培养瓶。
消毒物品
准备消毒剂、消毒棉签等，用 于采血部位皮肤的消毒。
采集器具
准备适当的采血针、注射器等 采集器具，确保采血过程顺利
。
记录表格
采血量不足可能是由于护士在采集时未能准 确估计所需的血量，或者由于患者血管条件 不佳导致采血困难。为解决这一问题，应加 强护士的培训，提高对血培养采血量的认识 ，同时对于血管条件不佳的患者，应选择合
适的采血部位和采血技巧。
采血部位不当
总结词
采血部位不当可能导致血液成分的差异，影响培养结 果。
详细描述
采集量的确定
总结词
采集足够的血量是保证培养结果可靠性的重要因素。
详细描述
根据不同的培养目的和检测方法，需要采集不同量的血液。 一般来说，成人每次采集10-20ml血液，婴幼儿每次采集15ml血液。如果怀疑患者有血流感染，应适当增加采血量以 提高阳性率。
采集过程中的无菌操作
总结词
严格遵守无菌操作是保证血培养标本质 量的重要环节。
2024年度-血培养标本采集ppt课件
血培养标本采集ppt课件
1
目 录
• 引言 • 血培养标本采集前准备 • 血培养标本采集方法 • 血培养标本的运送和保存 • 血培养标本的接收和处理 • 血培养结果解读与临床应用
2 contents
01
引言
3
目的和背景
了解血培养标本采集 的意义和重要性
提高血培养标本采集 的质量和效率，减少 误差和污染
运送容器 使用无菌、密封良好的容器装载标本，确保容器无破损、 无泄漏。容器外应标明患者姓名、采集时间、采集部位等 信息。
运送方式 根据实验室要求和实际情况，选择合适的运送方式，如专 人递送、快递等。确保运送过程中标本的安全和及时性。
15
标本保存
保存条件
血培养标本在送达实验室前，应 在2-8℃的冰箱中保存。避免冷冻 和反复冻融，以免影响检测结果。
控制采血量
根据检测项目的要求，控制采血量，避免浪 费和不必要的痛苦。
选择合适的穿刺部位
选择相对较大、较直、弹性好的血管进行穿 刺，避免在关节、静脉窦等部位穿刺。
标本及时送检
采集后的标本应及时送检，避免放置时间过 长导致细菌繁殖和标本变质。
13
04
血培养标本的运送和保存
14
标本运送
运送条件 血培养标本应在采集后尽快送至实验室，一般要求在2小 时内送达。运送过程中需保持标本的温度和湿度稳定，避 免剧烈震动和光照。
选择合适的真空采血管，检查其 完整性和有效期。
皮肤消毒
同常规采血法。
穿刺采血
选择合适的穿刺部位，使用真空 采血针进行穿刺采血，血液自动 流入真空采血管内。
标本处理
将采集的血液注入无菌培养瓶中， 轻轻摇匀，避免产生气泡。
12
1
目 录
• 引言 • 血培养标本采集前准备 • 血培养标本采集方法 • 血培养标本的运送和保存 • 血培养标本的接收和处理 • 血培养结果解读与临床应用
2 contents
01
引言
3
目的和背景
了解血培养标本采集 的意义和重要性
提高血培养标本采集 的质量和效率，减少 误差和污染
运送容器 使用无菌、密封良好的容器装载标本，确保容器无破损、 无泄漏。容器外应标明患者姓名、采集时间、采集部位等 信息。
运送方式 根据实验室要求和实际情况，选择合适的运送方式，如专 人递送、快递等。确保运送过程中标本的安全和及时性。
15
标本保存
保存条件
血培养标本在送达实验室前，应 在2-8℃的冰箱中保存。避免冷冻 和反复冻融，以免影响检测结果。
控制采血量
根据检测项目的要求，控制采血量，避免浪 费和不必要的痛苦。
选择合适的穿刺部位
选择相对较大、较直、弹性好的血管进行穿 刺，避免在关节、静脉窦等部位穿刺。
标本及时送检
采集后的标本应及时送检，避免放置时间过 长导致细菌繁殖和标本变质。
13
04
血培养标本的运送和保存
14
标本运送
运送条件 血培养标本应在采集后尽快送至实验室，一般要求在2小 时内送达。运送过程中需保持标本的温度和湿度稳定，避 免剧烈震动和光照。
选择合适的真空采血管，检查其 完整性和有效期。
皮肤消毒
同常规采血法。
穿刺采血
选择合适的穿刺部位，使用真空 采血针进行穿刺采血，血液自动 流入真空采血管内。
标本处理
将采集的血液注入无菌培养瓶中， 轻轻摇匀，避免产生气泡。
12
《血培养标本采集》课件
《血培养标本采集》PPT 课件
血培养标本采集是一项重要的医学检验技术，本课件将介绍血培养标本采集 的背景、目的、必要性以及一系列操作技巧和注意事项。
背景知识
了解血培养的基本原理以及在临床诊断中的重要性，包括检测细菌感染和选 择适当的抗生素。
目的
解释为什么需要进行血培养标本采集，包括提高感染性疾病的诊断准确率和 指导治疗方案。
采集后处理
讲解完成采集后需要进行的处理工作， 如正确封闭标本容器和标记样本的信 息。
防止污染和交叉Leabharlann 染提供防止污染和交叉感染的措施，包括严格遵守无菌操作规范和及时处理污 染的情况。
特别注意事项
• 提醒采集人员注意个人卫生和消毒措施 • 讲解采集过程中需要注意的事项，如避免污染和交叉感染的控制等 • 强调处理样本时需要注意的安全事项
血培养标本采集流程
1
采集操作
2
详细描述采集操作的步骤，包括选择
合适的采集部位和正确的采集技巧。
3
准备工作
讲解采集前需要进行的准备工作，如 检查采集工具和标本容器的完整性。
必要性
详细介绍血培养标本采集的必要性，强调对于发热患者、免疫受损患者以及疑似感染性疾病的患者的重 要性。
时机选择
讲解在何种情况下选择进行血培养标本采集，例如发热持续时间、感染症状以及病情的严重程度等。
标本容器选择
详细介绍选择合适的标本容器以确保标本的稳定性和准确性，包括适用于不 同类型的血培养的容器。
血培养标本采集是一项重要的医学检验技术，本课件将介绍血培养标本采集 的背景、目的、必要性以及一系列操作技巧和注意事项。
背景知识
了解血培养的基本原理以及在临床诊断中的重要性，包括检测细菌感染和选 择适当的抗生素。
目的
解释为什么需要进行血培养标本采集，包括提高感染性疾病的诊断准确率和 指导治疗方案。
采集后处理
讲解完成采集后需要进行的处理工作， 如正确封闭标本容器和标记样本的信 息。
防止污染和交叉Leabharlann 染提供防止污染和交叉感染的措施，包括严格遵守无菌操作规范和及时处理污 染的情况。
特别注意事项
• 提醒采集人员注意个人卫生和消毒措施 • 讲解采集过程中需要注意的事项，如避免污染和交叉感染的控制等 • 强调处理样本时需要注意的安全事项
血培养标本采集流程
1
采集操作
2
详细描述采集操作的步骤，包括选择
合适的采集部位和正确的采集技巧。
3
准备工作
讲解采集前需要进行的准备工作，如 检查采集工具和标本容器的完整性。
必要性
详细介绍血培养标本采集的必要性，强调对于发热患者、免疫受损患者以及疑似感染性疾病的患者的重 要性。
时机选择
讲解在何种情况下选择进行血培养标本采集，例如发热持续时间、感染症状以及病情的严重程度等。
标本容器选择
详细介绍选择合适的标本容器以确保标本的稳定性和准确性，包括适用于不 同类型的血培养的容器。
血标本采集ppt课件
点击此处添加正文
血标本采集的注意事项
点击此处添加正文，文字是您思想的提炼。
04
1. 注意患者状态
1. 患者在采集血标本前应处于平静状态，避免剧烈运动或情绪激动。
1
2. 采血时应避免在饥饿或过饱状态下进行，避免空腹时间过长，以免影响血糖水平。
2
3. 采血前应避免饮酒或使用对检测结果有影响的药物，如避孕药、胰岛素等。
2. 特殊采血
对于急性病的复查病人，一般要间隔3~7天采血，以观察病情变化。
3. 间隔采血
对于严重脱水、休克、水肿患者，应充分补充液体，待病情稳定后再采集血标本。
4. 特殊患者
应在寒战或体温升至最高时进行采样，可提高阳性检出率。
5. 血培养采样
3. 注意采集部位和方法
01
一般选择静脉采血，常用的静脉包括肘静脉、股静脉、颈外静脉等。
4. 合理处理废弃的血标本
03
3. 对于可能感染病毒的血液，要采取密封，避免发生交叉感染，消毒剂可以选择高温蒸煮等处理。
02
2. 对检测过的血液废弃物的处理要经过规定的消毒程序。
法规的要求。
04
4. 在医疗废品转运车到来的过程中，转运工作按照按照工作常规进行处理，然后拉走储存设备里的医用，其中留作医疗垃圾的血液废弃物要按要求进行统一处理。
2. 准备采集器具
采集血标本前需要准备合适的器具，如真空采血管、注射器、试管等。真空采血管最为常用，具有防止血液污染、便于保存等优点。
1. 准备采集器具
采血前应对采血部位进行消毒，一般使用碘伏消毒液，避免感染。
3. 消毒采血部位
0
采集血标本时，应准备标签，标注患者姓名、采集日期等信息，以便后续识别。
1. 了解患者信息
血标本采集的注意事项
点击此处添加正文，文字是您思想的提炼。
04
1. 注意患者状态
1. 患者在采集血标本前应处于平静状态，避免剧烈运动或情绪激动。
1
2. 采血时应避免在饥饿或过饱状态下进行，避免空腹时间过长，以免影响血糖水平。
2
3. 采血前应避免饮酒或使用对检测结果有影响的药物，如避孕药、胰岛素等。
2. 特殊采血
对于急性病的复查病人，一般要间隔3~7天采血，以观察病情变化。
3. 间隔采血
对于严重脱水、休克、水肿患者，应充分补充液体，待病情稳定后再采集血标本。
4. 特殊患者
应在寒战或体温升至最高时进行采样，可提高阳性检出率。
5. 血培养采样
3. 注意采集部位和方法
01
一般选择静脉采血，常用的静脉包括肘静脉、股静脉、颈外静脉等。
4. 合理处理废弃的血标本
03
3. 对于可能感染病毒的血液，要采取密封，避免发生交叉感染，消毒剂可以选择高温蒸煮等处理。
02
2. 对检测过的血液废弃物的处理要经过规定的消毒程序。
法规的要求。
04
4. 在医疗废品转运车到来的过程中，转运工作按照按照工作常规进行处理，然后拉走储存设备里的医用，其中留作医疗垃圾的血液废弃物要按要求进行统一处理。
2. 准备采集器具
采集血标本前需要准备合适的器具，如真空采血管、注射器、试管等。真空采血管最为常用，具有防止血液污染、便于保存等优点。
1. 准备采集器具
采血前应对采血部位进行消毒，一般使用碘伏消毒液，避免感染。
3. 消毒采血部位
0
采集血标本时，应准备标签，标注患者姓名、采集日期等信息，以便后续识别。
1. 了解患者信息
血培养采集的方法及注意事项2017课件PPT
2021/3/10
11
采血时间
细菌浓度 0
2021/3/10
30 时间 (分钟)
体温 60
12
采集血培养时间的重要性?
166 病人
9% +
105 病人
14% +
发热高峰前12-2.5小时
9% +
199 病人
发热高峰前2.5-0.5小时
258 病人
11% +
2021/3/10
发热高峰期间
发热高峰后1-12小时
Thomson et al. 1991. ASCP. Mayo Clinic Study13
采血时间
寒颤和发热初起，心内膜炎（持续性菌血症）例外 在应用抗菌药物之前 如果患者已经应用抗菌药物治疗，应该在下一次用药之前
采集血培养
2021/3/10
14
采血套数
基本概念
成人“一套” 血培养包括：需氧瓶和厌氧瓶各一个 注意：一次穿刺采血，算“一套”，采集第二套应从另一穿刺点获得
2021/3/10
19
为何要送厌氧血培养瓶？？
❖ In this study, use of paired aerobic/anaerobic blood culture bottles yielded more staphylococci, members of the family Enterobacteriaceae, and anaerobes when compared to paired aerobic blood culture bottles.50
16
阳性套数
1 1 2 1 2 3
采集套数
1 2 2 3 3 3
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
ppt课件
19
为何要送厌氧血培养瓶？？
❖ In this study, use of paired aerobic/anaerobic blood culture bottles yielded more staphylococci, members of the family Enterobacteriaceae, and anaerobes when compared to paired aerobic blood culture bottles.50
3
95
3
3 37
100
0
0 25
0
0
采集1套无法判 断是病原菌还 是污染菌
2－3套血培养，有助于污染的判断
ppt课件
Tokars, JI. Clin Infect Dis 2004; 39:33317
血培养套数与阳性检出率
（％） 99％
100
96％
90
80 70 65％
80％
60
50
40
30
20
10
CLSI标准每年更新
ppt课件
9
关键要点
采血指征 采血时间 采血套数 采血次数 接种血量 消毒灭菌
ppt课件
10
采血指征
怀疑血流感染时要做血培养
发热要做血培养！
不明原因的发热(＞38℃)或体温过低(＜36℃) 白细胞增多（ ＞10х109/L），粒细胞减少（＜1.0х109/L） 休克，寒颤 严重的局部感染(脑膜炎、心内膜炎、肺炎、肾盂肾炎、感染…) 心率异常加快 低血压或高血压 呼吸频率加快(＞20次/分或CO2分压＜32mmHg)
这些研究中，使用“配对需氧/厌氧血培养瓶”比用“两个需氧 血培养瓶”能检出更多的金葡、肠杆菌科细菌和厌氧菌
证实有感染性的病原体 鉴定病原体，做药敏试验 指导抗菌药物的使用
能够更好的帮助医生合理用药，减少患者的死亡率
ppt课件
4
目前血培养存在的主要问题---医生
血培养重视程度不够，送检率低
血培养用处不大，治疗费用增加，有指征不送检 血培养时间长，不能适应临床需求
只做需氧培养，不同时做厌氧培养，病原菌检出率低
ppt课件
5
目前血培养存在的主要问题---检验员
血培养检测运输标准及接收标准不规范
➢ 应室温储存的却低温储存 ➢ 标本没有及时检验，导致微生物检测延迟 ➢ 实验室人员没有认真核查接收标本（采血量不够、培养瓶有破损
等）
血培养阳性结果的处理不够及时
➢ 没有及时将结果反馈给临床 ➢ “时间就是生命”
❖ it is recommended that routine blood cultures include paired aerobic/anaerobic blood culture bottles.50-52
❖ When less than the recommended volume of blood is drawn for culture, the blood should be inoculated into the aerobic vial first; any remaining blood should then be inoculated into the anaerobic vial.
采血时间
寒颤和发热初起，心内膜炎（持续性菌血症）例外 在应用抗菌药物之前 如果患者已经应用抗菌药物治疗，应该在下一次用药之前
采集血培养
ppt课件
14
采血套数
基本概念
成人“一套” 血培养包括：需氧瓶和厌氧瓶各一个 注意：一次穿刺采血，算“一套”，采集第二套应从另一穿刺点获得
“双瓶双侧”，是指从一个部位采血接种一套培养瓶，再从另一部位 采血接种另一套培养瓶，一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为
单 个血培养
儿童一般只做需氧培养，特殊患者才考虑厌氧培养
ppt课件
15
采血套数
指南中强调：血培养至少送2套 除外新生儿外，成人：任何时候，不能只送一瓶！
ppt课件
16
阳性套数
1 1 2 1 2 3
采集套数
1 2 2 3 3 3
临床意义 ％
0 2 60 0 75 100
污染可能 无法确认
％
％
97
0
1套
2套
3套
4套
Cockerill, CID 2004
ppt课件
血培养套数
18
血培养套数与检测灵敏度 （％）
Weinstein et al. Detection of Bloodstream Infections in Adults: How Many BloodCultures Are Needed J Clin Microbiol. 2007; 45:3546-3548
血培养采集的方法及注意事项
ppt课件
2017-05-22
1
血培养的概念
血培养是一项实验室检查，是采集患者血液标本并接种到培 养瓶，用以发现、识别导致患者感染的病原微生物
是诊断菌血症和真菌血症的基本而重要的方法 对感染性疾病的诊断、治疗和预后都有极为重要的临床意义
ppt课件
2
ppt课件
3
血培养的目的
ppt课件
6
目前血培养存在的主要问题---护理人员
采血消毒不够严格，导致污染率偏高
➢ 皮肤消毒不够严格 ➢ 培养瓶的消毒问题
不规范的血培养
➢ 采血量、采血时间、采血套数不符合规范 ➢ 不规范的血培养导致病原菌分离率低 ➢ 难以判断病原菌是污染造成还是感染造成的
标本没有及时送检，导致检测延迟
ppt课件
7
血培养标本如何采集
ppt课件
8
血培养临床实践指南
CLSI是美国【临床实验室标准化协会】的英文缩 写，英文名为Clinical and Laboratory Standards Institute
美国CLSI的抗微生物药物敏感性试验操作方法和 判断标准，是国内临床细菌检验遵循的标准。由 于制订该项标准需要投入大量的人力、财力和物 力，所以大多数国家包括中国都还没有建立自己 的标准而依赖CLSI的方法浓度 0
30 时间 (分钟)
ppt课件
体温 60
12
采集血培养时间的重要性?
166 病人
9% +
105 病人
14% +
发热高峰前12-2.5小时
9% +
199 病人
发热高峰前2.5-0.5小时
258 病人
11% +
发热高峰期间
发热高峰后1-12小时
ppt课T件homson et al. 1991. ASCP. Mayo Clinic Study13